蛋白酶测定方法
- 格式:doc
- 大小:62.50 KB
- 文档页数:3
蛋白酶活性采用茚三酮比色法测定1、试剂配制①1%的酪素溶液:用 pH7.4 的 0.2M 磷酸盐缓冲溶液配制。
PH为7.4的0.2M磷酸盐缓冲溶液:0.2M 磷酸氢二钠(27.8g NaHPO4·2H2O溶于 1L 蒸馏水中)19ml 加 0.2M 磷酸二氢钾(53.65g KH2PO4溶于 1L 蒸馏水中)81ml 即成。
②0.1N 硫酸。
③20%硫酸钠。
④2%茚三酮液:2g 茚三酮溶于 100ml 丙酮。
⑤甲苯。
⑥甘氨酸标准溶液:取 0.1g 甘氨酸溶液水中,定容 1L,则得 1ml 含 0.02mg 氨基氮的标准液。
再稀释 10 倍做成标准液。
标准曲线的绘制:分别吸取工作液 1,3,5,7,9,13ml 移于50ml 容量瓶中,加 1ml 的茚三酮,冲洗瓶颈后在沸水浴上加热10min,将获得的着色溶液用蒸馏水稀释至刻度。
在风光光度计上于 500nm 处比色测定颜色深度。
以光密度为纵坐标,以氨基氮浓度为横坐标,绘制曲线。
2、操作步骤称 4g 风干土,置于 50ml 三角瓶中,加 20ml1%酪素溶液和 1ml 甲苯,小心振荡后用木塞盖紧,在30℃恒温箱中培养 24h。
培养结束后,于混合物中加 2ml0.1N 硫酸和 12ml 20% 硫酸钠液,以沉淀蛋白质,然后离心 15min(6000 转/min)。
取上清液2ml,置于 50ml 容量瓶中,按绘制标准曲线显色的方法进行比色测定。
为了消除土壤中原来含有的氨基氮引起的误差,每一土样需做无基质对照,整个实验需做无土对照。
无土对照:不加土样,其他操作与样品实验相同。
无基质对照:以等体积的水代替基质,其他操作与样品实验相同。
蛋白酶活性,以 24 小时后1g 土壤中氨基氮的毫克数表示。
3、结果计算NH2-N(mg)=a×5式中 a——从标准曲线查的氨基氮毫克数5——换算成 1g 土的系数。
蛋白酶活力测定实验报告
实验目的:
通过测定蛋白酶的活力,了解其功能和活性。
实验原理:
蛋白酶是一类能够水解蛋白质的酶,可以将蛋白质分解为多肽和氨基酸。
蛋白酶活力是指单位时间内酶水解蛋白质的能力,通常以单位时间内水解的底物的量来表示。
本实验使用的方法是酶促反应测定法。
首先,将待测蛋白酶与底物混合,反应一定时间后,停止反应并添加淀粉溶液产生反应终止剂,最后用碘化钾溶液滴定反应产物。
实验步骤:
1. 预备试剂:制备蛋白酶和底物的工作液,制备淀粉溶液和反应终止剂,制备碘化钾溶液。
2. 实验装置:准备滴定装置和试管架。
3. 设置实验条件:保持温度恒定,控制pH值。
4. 实验操作:在试管中加入待测蛋白酶和底物工作液,反应一定时间后,加入淀粉溶液和反应终止剂,最后用碘化钾溶液滴定。
5. 记录数据:记录滴定所需碘化钾的体积,计算出酶活力。
实验结果:
根据实验数据,计算出蛋白酶的活力,通常以单位时间内水解的底物的量来表示。
实验讨论:
分析实验结果,比较不同条件下蛋白酶的活力差异,并讨论影响蛋白酶活力的因素。
实验结论:
通过分析实验结果,得出结论,总结蛋白酶活力与其他因素之间的关系,并提出可能的应用前景。
实验总结:
总结实验过程,评价实验结果及数据,提出改进意见,并对今后可能的研究方向进行展望。
参考文献:
列出所参考的文献。
分光光度法测定蛋白酶酶活1适用范围本方法适用于中性蛋白酶、酸性蛋白酶酶活的测定。
2测定原理蛋白酶在一定的温度与pH条件下,水解酪素(酪蛋白)底物,产生含有酚基的氨基酸(如:酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生产钼蓝和钨蓝,用分光光度计于波长680nm下测定溶液吸光度。
酶活力与吸光度成正比,由此可以计算产品的酶活力。
酶活单位的定义:每1mL粗酶液,在一定温度和pH值条件下,10min水解酪素产生1μg酪氨酸为一个酶活力单位,以(u/mL)表示。
3仪器和设备3.1分析天平:精度为0.0001g。
3.2紫外分光光度计。
3.3恒温水浴锅:精度±0.2℃。
3.4PH计:精度为0.01PH单位。
4试剂和溶液除非另有说明,在分析中仅使用分析纯试剂和蒸馏水。
4.1福林(Folin)试剂市售分析纯福林试剂。
4.2福林使用溶液一份福林试剂与两份水混合,摇匀。
4.3碳酸钠溶液(42.4g/L)称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,用水溶解并定容至1000ml。
4.4三氯乙酸c(CCl3COOH)=0.4mol/L称取三氯乙酸65.4g,用水溶解并定容至1000 mL。
4.5氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L称取氢氧化钠片剂20.0g,加水900ml并搅拌溶解,待溶液到室温后加水定容至1000ml,摇匀。
4.6盐酸溶液c(HCL)=1 mol/L及0.1 mol/L1 mol/L HCL:取90mL浓盐酸溶解于蒸馏水中,定容至1000mL。
0.1 mol/L HCL:取9mL浓盐酸溶解于蒸馏水中,定容至1000mL。
4.7缓冲溶液4.7.1磷酸缓冲液(pH=7.5,适用于中性蛋白酶)称取磷酸氢二钠(Na2HPO4•12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4•12H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
4.7.2乳酸缓冲液(pH=3.0,适用于酸性蛋白酶)甲液:称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000 mL。
2013/05/13紫外分光光度法测蛋白酶酶活1、原理蛋白酶在一定的温度与pH条件下,水解酪素底物,然后加入三氯乙酸终止酶反应,并使未水解的酪素沉淀除去,滤液对紫外光有吸收,可用紫外分光光度法测定。
根据吸光度计算其酶活力。
酶活单位的定义:每1mL粗酶液,在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以(u/mL)表示。
2、试剂和溶液三氯乙酸、氢氧化钠、盐酸、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、乳酸、乳酸钠、硼酸钠(硼砂)均为分析纯,酪素、酪氨酸为生化试剂。
2.1 三氯乙酸c(CCL3·COOH)=0.4mol/L称取三氯乙酸65.4g,用水溶解并定容至1000 mL。
2.2 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按GB601配制。
2.3 盐酸溶液c(HCL)=1 mol/L及0.1 mol/L1 mol/L HCL:取90mL浓盐酸溶解于去离子水中,定容至1000mL。
0.1 mol/L HCL:取9mL浓盐酸溶解于去离子水中,定容至1000mL。
2.4 缓冲溶液a、磷酸缓冲液(pH=7.5)适用于中性蛋白酶称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4·12H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
b、乳酸缓冲液(pH=3.0)适用于酸性蛋白酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000 mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000 mL。
使用溶液取甲液8 mL,加乙液1 mL,混匀,稀释一倍,即成0.05moi/L乳酸缓冲溶液。
c、硼酸缓冲溶液(pH=10.5)适用于碱性蛋白酶甲液称取硼酸钠(硼砂)19.08g,加水溶解并定容至1000 mL。
乙液称取氢氧化钠4.0g,加水溶解并定容至1000 mL。
使用溶液取甲液500 mL、乙液400 mL混匀,用水稀释至1000mL。
蛋白酶酶活测定方法一、实验原理:一定条件下不仅能够水解蛋白质中的肽键,也能够水解酰胺键和酯键,因此可用蛋白质或人工合成的酰胺及脂类化合物作为底物来测定蛋白酶的活力。
本实验选用酪蛋白为底物,测定微生物蛋白酶水解肽键的活力。
酪蛋白经蛋白酶作用后,降解成相对分子质量较小的肽和氨基酸,在反应混合物中加入三氯醋酸溶液,相对分子质量较大的蛋白质和肽沉淀下来,相对分子质量较小的肽和氨基酸仍留在溶液中,溶解于三氯醋酸(TCA)溶液的肽的数量与酶的数量和反应时间成正比。
在280nm波长下测定溶液吸光度的增加,计算酶的活力。
一分钟内1mg牛血清蛋白(BSA)相当的非蛋白性Lowry试液显色物质的增量值定义为一个蛋白酶活性单位(IU)。
二、试剂配制:A溶液:含2%KCl,1%TrltonX-100的50mM磷酸盐缓冲溶液(pH 6.0)试样TG酶溶液:直接取发酵样12000rpm离心5min,取上清测定。
底物溶液:精确称取底物二甲基酪蛋白0.250g,加入50mM PB缓冲溶液(pH 6.0)10mL,常温搅拌30min使其溶解后备用。
三、操作步骤:1. 试样1)将底物溶液放入37℃恒温水浴中预热备用2)试管中加入试样TG酶溶液0.2mL后放入恒温水浴中,10min后加入已预热的底物溶液1mL,立即振荡混合,于37℃反应60min3)反应结束后,加入12% TCA溶液1mL,再于37℃反应30min,使反应终止4)20℃,3000rpm,20min离心后取上清备用。
2.空白1)试管中加入已预热底物溶液1mL,再加入12% TCA溶液1mL,振荡混合后,于37℃反应60min2)加入试样TG酶溶液0.2mL,振荡混合后,于37℃反应30min3)20℃,3000rpm,20min离心后取上清备用。
四、Lowry法显色反应试管中分别加入试样清液和空白清液各0.2mL,加入A溶液1mL,振荡混合后室温下放置10min,然后加入试剂B 0.1mL,振荡混合后,于37℃反,空白的吸应30min。
1 蛋白酶活力的测定1.1 原理采用福林-酚试剂法。
福林-酚试剂在碱性条件下可被酚类化合物还原呈蓝色(钼蓝和钨蓝混合物),由于蛋白质分子中有含酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),可使蛋白质及其水解产物呈上述反应。
因此可利用此原理测定蛋白酶活力。
通常以酪蛋白为底物,在一定pH值和温度条件下,同酶液反应,经一段时间后终止酶促反应,经离心或过滤除去酪蛋白筹沉淀物后取上清液,用Na2CO3碱化,再加入福林-酚试剂显色,蓝色的深浅与滤液中生成产物酪氨酸量成正比;酪氨酸含量用分光光度计在660nm波长处测定,从而计算出蛋白酶的活力。
1.2 试剂1.2.l 福林-酚试剂向2000mL的磨口回流瓶中加入100g钨酸钠(Na2WO4?2H2O)、25g钼酸钠及700mL的去离子水,再加入50mL85%的磷酸及浓盐酸l00mL,充分混合后,接上回流冷凝管,以文火回流10h,结束后再加入150g的硫酸锂(LiSO4)、50mL去离子水及数滴溴水,再继续沸腾15min,以驱除过量的溴,冷却后滤液呈黄绿色(如仍呈绿色,需再重复滴加溴水的步骤),加去离子水定容至1000mL乱,过滤,滤液置于棕色试剂瓶中,贮于冰箱中可长期保存备用。
此溶液使用时可按1:3比例用去离子水稀释。
1.2.2 0.4mol/L三氯乙酸(TCA)溶液精确称取TCA65.4g,加去离子水定容至1000mL。
1.2.3 0.4mo1/L碳酸钠溶液精确称取无水碳酸钠42.4g,加去离于水溶解后,定容至1000mL。
1.2.4 pH值3~6醋酸缓冲液精确取NaAc?3H2O16g与268mL浓度为6mol/L醋酸溶液混合,用去离子水稀释定容至1000mL。
1.2.5 2%酪蛋白底物缓冲液1.2.5.1 测试酸性蛋白酶缓冲液精确称取酪蛋白20g,加入0.1mol/L氢氧化钠20mL(用去离子水配制),在水浴中加热溶解,然后用pH值3.6醋酸缓冲液定容至1000mL。
蛋白酶酶活的测定方法(福林法)1. 酶单位定义: 1g固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以u /g(u/mL)表示。
2.原理蛋白酶在一定温度和pH值条件下,水解酪素底物,产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生成钼蓝和钨蓝,用分光光度法测定,计算其酶活力。
3.试剂和溶液3.1福林试剂的准备于2000mL磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2WO4.2H2O)100g,钼酸钠(Na2MoO4.2H2O)25g,水700mL、85%磷酸50mL、浓盐酸100mL,小火沸腾回流10h,取下回流冷却器,在通风橱中加入硫酸锂(LiSO4)50g,水50mL和数滴浓溴水(99%),再微沸15min,以除去多余的溴(冷却后仍有绿色需要再加入溴水,再煮沸除去过量的溴),冷却,加水定容至1000mL,混匀,过滤。
制得得试剂应呈金黄色,贮存于棕色瓶内。
使用溶液:一份福林试剂与二份水混合,摇匀。
3.2碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4mol/L称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.3三氯乙酸c(CCl3.COOH)=0.4mol/L称取三氯乙酸65.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按GB601配制。
3.5 盐酸溶液c(HCl)=1mol/L及0.1 mol/L按GB601配制。
3.6 缓冲溶液a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适用于中性蛋白酶。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4.12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4. 2H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0),适用于酸性蛋白酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000mL。
蛋白酶酶活的测定方法(福林法)1. 酶单位定义: 1g固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以u /g(u/mL)表示。
2.原理蛋白酶在一定温度和pH值条件下,水解酪素底物,产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生成钼蓝和钨蓝,用分光光度法测定,计算其酶活力。
3.试剂和溶液3.1福林试剂的准备于2000mL磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2WO4.2H2O)100g,钼酸钠(Na2MoO4.2H2O)25g,水700mL、85%磷酸50mL、浓盐酸100mL,小火沸腾回流10h,取下回流冷却器,在通风橱中加入硫酸锂(LiSO4)50g,水50mL和数滴浓溴水(99%),再微沸15min,以除去多余的溴(冷却后仍有绿色需要再加入溴水,再煮沸除去过量的溴),冷却,加水定容至1000mL,混匀,过滤。
制得得试剂应呈金黄色,贮存于棕色瓶内。
使用溶液:一份福林试剂与二份水混合,摇匀。
3.2碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4mol/L称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.3三氯乙酸c(CCl3.COOH)=0.4mol/L称取三氯乙酸65.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按GB601配制。
3.5 盐酸溶液c(HCl)=1mol/L及0.1 mol/L按GB601配制。
3.6 缓冲溶液a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适用于中性蛋白酶。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4.12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4. 2H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0),适用于酸性蛋白酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000mL。
蛋白酶活性的测定方法(GB/T23527-2009)1 原理蛋白酶对酪蛋白、乳清蛋白、谷物蛋白等都有很好的水解作用。
磷钨酸和磷钼酸混合试剂,即福林-酚试剂,碱性条件下极不稳定,易被酚类化合物还原而呈蓝色反应(钨兰和钨兰混合物)。
由于蛋白质中含有具有酚基的氨基酸(酪氨酸、色氨酸、苯丙氨酸),因此,蛋白质及其水解产物也呈此反应。
利用蛋白酶分解酪素(底物)生成含酚基氨基酸的呈色反应,来间接测定蛋白酶的活力。
2 仪器和设备2.1 分析天平:精度0.0001g2.2 恒温水浴:精度±0.2℃2.3 计时表2.4 分光光度计2.5 沸水浴器2.6 振荡混合器2.7 pH计: 精度0.01pH单位3 试剂和溶液3.1 乳酸缓冲液(pH=3.0)适用于酸性蛋白酶甲液:称取乳酸(80%-90%)10.6g,加水溶解并定容至1000ml。
乙液:称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000ml.使用溶液:取甲液8ml,加乙液1ml,摇匀,稀释一倍,即成0.05mol/L乳酸缓冲溶液。
3.2 磷酸缓冲液的制备(pH=7.5)适用于中性蛋白酶准确称取磷酸氢二钠(Na2HPO3.12H2O)6.02和磷酸二氢钠(NaH2PO3.2H2O)0.5g,加水定容至1000ml3.3 硼酸缓冲液(pH=10.5) 适用于碱性蛋白酶甲液:称取硼酸钠19.08g,加水溶解并定容至1000ml。
乙液:称取氢氧化钠4.0g,加水溶解并定容至1000ml.使用溶液:取甲液500ml,加乙液400ml,摇匀,用水稀释至1L。
3.4 0.4mol/L碳酸钠溶液:准确称取无水碳酸钠42.4g,以蒸馏水溶解定溶至1000ml.3.5 0.4mol/L的三氯醋酸液:准确称取65.4三氯醋酸,以蒸馏水溶解定溶至1000ml3.6 0.5mol/L的NaOH:准确称取2g NaOH溶解并定至100ml3.7 10.00mg/ml酪素溶液称取酪素1.000g,准确至0.001g,用少量的0.5mol/L的氢氧化钠溶液(若为酸性蛋白酶则用浓乳酸2-3滴)润湿,,加入适量的各适宜的缓冲液约80ml,在沸水浴中边加热边搅拌,直至完全溶解,冷却后,转入100ml容量瓶中,用适宜的缓冲液稀释至刻度,此溶液在冰箱内贮存,有效期为三天.3.8 100μg/ml酪氨酸标准溶液3.8.1 准确称取预先于105℃干燥至恒重的L-酪氨酸0.1000g ,用1mol/L 的盐酸60ml 溶解后定容至100ml,即为1.00mg/ml的酪氨酸溶液.3.8.2 吸取1.00mg/ml酪氨酸标准溶液10.00ml,用0.1mol/L盐酸定容至100ml,即得100.0μg/ml L-酪氨酸标准溶液.3.9 酶样的制备准确称取1.000g固体酶或移取1ml液体酶样,用少量的适宜缓冲液溶解并用玻璃棒捣研,然后将上清液倒入100ml容量瓶,沉渣中再添入少量缓冲液捣研多次,最后全部移入容量瓶,稀释到刻度,用四层纱布过滤。
解析蛋白酶活性测定聚焦蛋白酶研究新进展1 定义1g固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和PH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以(u/ mL)表示。
2 福林法(第一法)2、1 原理蛋白酶在一珲的温度与PH条件下,水解底物,产生含有酚基的氨基酸(如:酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生成钼蓝与钨蓝,用分光度法测定,计算其酶活力。
2、2 试剂和溶液2、2、1 福林试剂的制备于2000mL磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2Wo4·2H2O)100g、钼酸钠(Na2MoO4·2H2O)25g、水700mL、85%磷酸50mL、浓盐酸100mL,水火沸腾回流10h,取下回流冷却器,在通风橱中加入硫酸锂(Li2SO4)50g、水50mL和数滴浓溴水(99%),再微沸15min,以除去多余的溴(冷后人有绿色需再加溴水,再煮沸除去过量的溴),冷却,见水定溶至1000ml。
混匀,过滤。
制得的试剂应呈金黄色,贮存于棕色瓶内。
使用溶液:一份福林试剂与二份水混合,摇匀。
2、2、2 碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4mol/L称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,用水溶解并定容至1000 mL。
2、2、3 三氯乙酸c(CCl3·COOH)=0.4mol/L称取三氯乙酸65.4g,用水溶解并定容至1000 mL。
2、2、4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按GB601配制。
2、2、5 盐酸溶液c(HCI)=1 mol/L及0.1 mol/L按GB601配制。
2、2、6 缓冲溶液a、磷酸缓冲液 (PH=7.5)适用于中性蛋白酶称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4·12H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
b、乳酸缓冲液(PH=3.0)适用于酸性蛋白酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000 mL。
分光光度法测定蛋白酶酶活1适用范围本方法适用于中性蛋白酶、酸性蛋白酶酶活得测定。
2测定原理蛋白酶在一定得温度与pH条件下,水解酪素(酪蛋白)底物,产生含有酚基得氨基酸(如:酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生产钼蓝与钨蓝,用分光光度计于波长680nm下测定溶液吸光度。
酶活力与吸光度成正比,由此可以计算产品得酶活力。
酶活单位得定义:每1mL粗酶液,在一定温度与pH值条件下,10min水解酪素产生1μg酪氨酸为一个酶活力单位,以(u/mL)表示。
3仪器与设备3.1分析天平:精度为0。
0001g。
3.2紫外分光光度计。
3.3恒温水浴锅:精度±0。
2℃。
3.4PH计:精度为0.01PH单位。
4试剂与溶液除非另有说明,在分析中仅使用分析纯试剂与蒸馏水。
4.1福林(Folin)试剂市售分析纯福林试剂、4.2福林使用溶液一份福林试剂与两份水混合,摇匀。
4.3碳酸钠溶液(42、4g/L)称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,用水溶解并定容至1000ml。
4.4三氯乙酸c(CCl3COOH)=0、4mol/L称取三氯乙酸65、4g,用水溶解并定容至1000 mL、4.5氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L称取氢氧化钠片剂20。
0g,加水900ml并搅拌溶解,待溶液到室温后加水定容至1000ml,摇匀。
4.6盐酸溶液c(HCL)=1 mol/L及0。
1mol/L1 mol/L HCL:取90mL浓盐酸溶解于蒸馏水中,定容至1000mL。
0、1 mol/L HCL:取9mL浓盐酸溶解于蒸馏水中,定容至1000mL、4.7缓冲溶液4.7.1磷酸缓冲液(pH=7。
5,适用于中性蛋白酶)称取磷酸氢二钠(Na2HPO4•12H2O)6、02g与磷酸二氢钠(NaH2PO4•12H2O)0、5g,加水溶解并定容至1000mL。
4.7.2乳酸缓冲液(pH=3。
0,适用于酸性蛋白酶)甲液:称取乳酸(80%~90%)10、6g,加水溶解并定容至1000 mL。
中华人民共和国专业标准蛋白酶活力测定法 SB/T 10317-1999Measurement of proteinase activity━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━本方法适用于酿造酱油时在制品菌种、成曲的蛋白酶活力测定。
1 福林法1.1 试剂及溶液: 以下试剂都为分析纯1.1.1 福林试剂(Folin试剂):于2000mL磨口回流装置内,加入钨酸钠(Na2WO4·2H2O) 100g,钼酸钠(Na2MoO4·2H2O)25g,蒸馏水700mL,85%磷酸50mL,浓盐酸100mL,文火回流10h。
取去冷凝器,加入硫酸锂(Li2SO4)50g,蒸馏水50mL,混匀,加入几滴液体溴,再煮沸15min,以驱逐残溴及除去颜色,溶液应呈黄色而非绿色。
若溶液仍有绿色,需要再加几滴溴液,再煮沸除去之。
冷却后,定容至1000mL,用细菌漏斗(No4~5)过滤,置于棕色瓶中保存。
此溶液使用时加2倍蒸馏水稀释。
即成已稀释的福林试剂。
1.1.2 0.4mol碳酸钠溶液: 称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,定容至1000mL。
1.1.3 0.4mol三氯乙酸(T C A)溶液: 称取三氯乙酸(CCL3COOH)65.4g,定容至1000mL。
1.1.4 pH7.2磷酸盐缓冲液:称取磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O)31.2g,定容至1000mL,即成0.2mol溶液(A液)。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)71.63g,定容至1000mL,即成0.2mol溶液(B液)。
取A 液28mL 和B 液72mL,再用蒸馏水稀释1倍,即成0.1mol pH7.2的磷酸盐缓冲液。
1.1.5 2%酪蛋白溶液:准确称取干酪素2g,称准至0.002g,加入0.1N氢氧化钠10mL,在水浴中加热使溶解(必要时用小火加热煮沸),然后用pH7.2磷酸盐缓冲液定容至100mL即成。
蛋白酶检测操作1. 概述蛋白酶检测是一种用于检测样品中蛋白酶活性和浓度的实验操作。
蛋白酶是一类能够降解蛋白质的酶,其活性和浓度的检测对于许多生物学和生化学研究非常重要。
本文将介绍蛋白酶检测的基本原理、常用的实验方法和操作步骤,并简要介绍一些常见的蛋白酶检测试剂和设备。
2. 基本原理蛋白酶检测的基本原理是通过特定的底物或试剂与蛋白酶发生反应来间接或直接测定蛋白酶的活性或浓度。
常用的蛋白酶检测方法包括颜色反应法、荧光法和质谱法等。
2.1 颜色反应法颜色反应法是一种常用的蛋白酶活性测定方法,其原理是将蛋白酶作用于特定的底物后,产生的产物与某些指示剂发生颜色变化,并通过测定颜色的强度来间接测定蛋白酶的活性。
常用的颜色反应法有Bradford法、Lowry法和BCA法等。
这些方法的原理相似,底物与蛋白酶作用后产生巯基体系或受酸水解而形成可着色反应产物,其颜色强度与酶活性成正比。
2.2 荧光法荧光法是一种直接测定蛋白酶活性的方法,其原理是利用荧光探针与蛋白酶反应后荧光强度的变化来测定酶活性。
荧光法具有高灵敏度、高选择性和实时监测的优点。
常用的荧光法有AF488-Casein法和AF488-Gelatin法等。
这些方法的原理是荧光探针与蛋白酶结合后产生荧光信号,可以通过荧光显微镜或荧光光度计进行测定。
2.3 质谱法质谱法是一种直接测定蛋白酶活性和浓度的方法,其原理是利用质谱仪对蛋白酶水解产物进行检测和定量分析。
质谱法具有高灵敏度、高分辨率和高通量的优点。
常用的质谱法有MALDI-TOF法和LC-MS法等。
这些方法的原理是将蛋白酶水解产物通过质谱仪分析和测定,可以得到酶活性和浓度的相关信息。
3. 实验方法和操作步骤3.1 颜色反应法3.1.1 Bradford法材料准备•Bradford试剂•蛋白质标准溶液•待测样品实验步骤1.准备一系列不同浓度的蛋白质标准溶液,浓度范围覆盖待测样品的浓度。
2.取一定量的标准溶液和样品,分别加入试管中。
实验三蛋白酶活力的测定一、目的掌握用分光光度计法测定蛋白酶活力的原理与操作技术。
二、原理蛋白酶水解酪蛋白,其产物酪氨酸能在碱性条件下使福林——酚试剂还原,生成鉬蓝与钨蓝,以比色法测定。
三、试剂及仪器1.福林—酚试剂称取50g钨酸钠(Na2WO4•2H2O),12.5g钼酸钠(Na2MoO4•2H2O),置入1000mL原底烧瓶中,加350mL水,25mL85%磷酸,50mL浓盐酸,文火微沸回流10h,取下回流冷凝器,加50g硫酸锂(Li2SO4)和25mL水,混匀后,加溴水脱色,直至溶液呈金黄色,再微沸15min,驱除残余的溴,冷却,用4号耐酸玻璃过滤器抽滤,滤液用水稀释至500mL。
使用时用2倍体积的水稀释。
2.0.4mol/L碳酸钠溶液:称取42.4g碳酸钠,用水溶解并定容至1000mL。
3.0.4mol/L三氯乙酸溶液:称取65.5g三氯乙酸,用水溶解并定容至1000mL。
4.2%酪蛋白溶液称取2.00g酪蛋白(又名干酪素),加约40mL水和2~3滴浓氨水,于沸水浴中加热溶解,冷却后,用pH7.2磷酸缓冲溶液稀释定容至100mL,贮存于冰箱中。
5.pH7.2磷酸缓冲液0.2mol/L 磷酸二氢钠溶液:称取31.2g磷酸二氢钠(NaH2PO4•2H2O),用水溶解稀释至1000mL;0.2mol/L 磷酸氢二钠溶液:称取71.6g磷酸氢二钠(Na2HPO4•12H2O),用水溶解稀释至1000mL;pH7.2磷酸缓冲溶液:取28mL 0.2mol/L磷酸二氢钠溶液和72mL 0.2mol/L磷酸氢二钠溶液,用水稀释至1000mL。
6.标准酪氨酸溶液:准确称取0.1g DL-酪氨酸,加少量0.2mol/L盐酸溶液(取1.7mL浓盐酸,用水稀释至100mL),加热溶解,用水定容至1000mL,每毫升含DL-酪氨酸100微克。
7.仪器:分光光度计、试管四、操作步骤1.标准曲线绘制编号0 1 2 3 4 5 6 7 80 1 2 3 4 5 6 7 8标准酪氨酸溶液(mL)[100g/mL]水(mL) 10 9 8 7 6 5 4 3 2稀释酪氨酸溶液浓度(g/mL) 0 10 20 30 40 50 60 70 80在上述各管中各取1mL,分别加入5mL 0.4mol/L碳酸钠溶液,1mL福林—酚试剂,于400C水浴显色20min,在680nm波长下测吸光度,绘制标准曲线,在标准曲线上求得吸光度为1时相当的酪氨酸g数,即为K值。
实验四蛋白酶活力得测定一、实验目得1、了解蛋白酶活力测定得原理;2、掌握蛋白酶活力测定得方法。
二、实验原理蛋白酶在一定条件下不仅能够水解蛋白质中得肽键,也能够水解酰胺键与酯键,因此可用蛋白质或人工合成得酰胺及酯类化合物作为底物来测定蛋白酶得活力、本实验选用酪蛋白为底物,测定微生物蛋白酶水解肽键得活力。
酪蛋白经蛋白酶作用后,降解成相对分子质量较小得肽与氨基酸,在反应混合物中加入三氯醋酸溶液,相对分子质量较大得蛋白质与肽就沉淀下来,相对分子质量较小得肽与氨基酸仍留在溶液中,溶解于三氯醋酸溶液中得肽得数量正比于酶得数量与反应时间。
在280nm波长下测定溶液吸光度得增加,就可计算酶得活力。
三、实验试剂①微生物蛋白酶萃取液(0、01g/ml):称取1。
0g酶制剂,加100ml蒸馏水搅拌30min,在4℃下离心分离后,将上层清夜置于冰箱中保存,使用前稀释一定倍数;② 0。
02mol/L磷酸盐缓冲液(pH7.5);③ 1%酪蛋白溶液:取1、0g酪蛋白,加100ml 0。
2mol/L磷酸盐缓冲液(PH7。
5),加热并搅拌使它完全分散,然后置于冰箱中保存;④ 5%三氯醋酸(TCA)溶液。
四、实验步骤1、将5%TCA溶液与1%酪蛋白溶液在37℃下保温。
2、取四支15ml具塞试管,分别标上记号A1、A0、B1与B0、在A1与A 0试管中各吸入0、20ml酶液,在B1与B0试管中各吸入0.40ml酶液,分别用0.2mol/L磷酸盐缓冲液定容至2、00ml。
在A0与B0试管中各吸入6.00ml5%三氯醋酸溶液,上述四支试管都置于37℃水浴中保温、3、在各试管中吸入2。
00ml1%酪蛋白溶液,在37℃下保温10min(准确计时)后,再向A1与B1试管中吸入6。
00ml5%三氯醋酸溶液。
4、将试管从水浴中取出,在室温下放置1h,用少量上清液润湿滤纸后过滤,保留滤出液。
5、在280nm波长下,分别以A0与B0滤液为空白,测定A1与B1滤液得吸光度。
蛋白酶酶活的测定方法(福林法)1. 酶单位定义: 1g固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以u /g(u/mL)表示。
2.原理蛋白酶在一定温度和pH值条件下,水解酪素底物,产生含有酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),在碱性条件下,将福林试剂(Folin)还原,生成钼蓝和钨蓝,用分光光度法测定,计算其酶活力。
3.试剂和溶液3.1福林试剂的准备于2000mL磨口回流装置中加入钨酸钠(Na2WO4.2H2O)100g,钼酸钠(Na2MoO4.2H2O)25g,水700mL、85%磷酸50mL、浓盐酸100mL,小火沸腾回流10h,取下回流冷却器,在通风橱中加入硫酸锂(LiSO4)50g,水50mL和数滴浓溴水(99%),再微沸15min,以除去多余的溴(冷却后仍有绿色需要再加入溴水,再煮沸除去过量的溴),冷却,加水定容至1000mL,混匀,过滤。
制得得试剂应呈金黄色,贮存于棕色瓶内。
使用溶液:一份福林试剂与二份水混合,摇匀。
3.2碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4mol/L称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.3三氯乙酸c(CCl3.COOH)=0.4mol/L称取三氯乙酸65.4g,加水溶解并定容至1000mL。
3.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按GB601配制。
3.5 盐酸溶液c(HCl)=1mol/L及0.1 mol/L按GB601配制。
3.6 缓冲溶液a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适用于中性蛋白酶。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4.12H2O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH2PO4. 2H2O)0.5g,加水溶解并定容至1000mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0),适用于酸性蛋白酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000mL。
蛋白酶检测方法有多种,以下为您提供其中的三种:
第一种是福林酚试剂法。
该方法使用酪蛋白溶液为底物,在特定的缓冲液中加入酶液,然后加入福林酚试剂进行显色反应。
通过测量光密度值,可以测定蛋白酶的活性。
第二种是紫外分光光度法。
该方法利用紫外分光光度计对蛋白酶水解酪蛋白质产生的酪氨酸进行定量测定。
通过比较样品与空白样品的吸光度值,可以计算出蛋白酶的活性。
第三种是高效液相色谱法。
该方法利用高效液相色谱仪对蛋白酶水解酪蛋白质产生的酪氨酸进行分离和定量测定。
通过比较样品与标准品中酪氨酸的含量,可以计算出蛋白酶的活性。
蛋白酶活性测定方法一蛋白酶活力单位定义1g 固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1μg酪氨酸为一个活力单位,以u/g(u/mL)表示。
二测定原理蛋白酶在一定的温度与pH条件下,水解酪素底物,然后加人三氯乙酸终止酶反应,并使未水解的酪素沉淀除去,滤液对紫外光有吸收,可用紫外分光光度法测定。
根据吸光度计算其酶活力。
三应用范围本法适用于各种含有酸性蛋白酶的复合酶和液体酶及单酶的测定。
四测定条件4.1 底物:酪蛋白4.2 pH: 3.004.3 温度:40℃±0.5℃4.4 保温时间: 10min五仪器5.1 紫外分光光度计5.2 超级恒温水浴40±0.2℃5.3 秒表5.4 分析天平:感量0.0001g六试剂和溶液6.1.2 碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4 mol/L称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4 g ,用水溶解并定容至1000 mL。
6.1.3 三氯乙酸c(CCI3·COOH)=0.4 mol/L称取三氯乙酸65.4 g ,用水溶解并定容至1000 mL。
6.1.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L按 GB 601配制。
6.1.5 盐酸溶液c(HCl)=1 mol/L及0.1 mol/L按 GB 601配制。
6.1.6 缓冲溶液a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适用于中性蛋白酶称取磷酸氢二钠(Na2HP04·12H20)6.02 g和磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H20)0.5 g,加水溶解并定容至1000 mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0 ) 适用于酸性蛋白酶甲液称取乳酸(80%~90%)10.6 g,加水溶解并定容至1000 mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16 g,加水溶解并定容至1000 mL。
使用溶液取甲液8 mL,加乙液1 mL,混匀,稀释一倍,即成0.05mol/L乳酸缓冲溶液。
蛋白酶活性测定方法
一蛋白酶活力单位定义
1g 固体酶粉(或1mL液体酶),在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1μg酪氨酸为一个活力单位,以u/g(u/mL)表示。
二测定原理
蛋白酶在一定的温度与pH条件下,水解酪素底物,然后加人三氯乙酸终止酶反应,并使未水解的酪素沉淀除去,滤液对紫外光有吸收,可用紫外分光光度法测定。
根据吸光度计算其酶活力。
三应用范围
本法适用于各种含有酸性蛋白酶的复合酶和液体酶及单酶的测定。
四测定条件
4.1 底物:酪蛋白
4.2 pH: 3.00
4.3 温度: 40℃±0.5℃
4.4 保温时间: 10min
五仪器
5.1 紫外分光光度计
5.2 超级恒温水浴40±0.2℃
5.3 秒表
5.4 分析天平:感量0.0001g
六试剂和溶液
6.1.2 碳酸钠溶液c(Na2CO3)=0.4 mol/L
称取无水碳酸钠(Na2CO3)42.4 g ,用水溶解并定容至1000 mL。
6.1.3 三氯乙酸c(CCI3·COOH)=0.4 mol/L
称取三氯乙酸65.4 g ,用水溶解并定容至1000 mL。
6.1.4 氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L
按GB 601配制。
6.1.5 盐酸溶液c(HCl)=1 mol/L及0.1 mol/L
按GB 601配制。
6.1.6 缓冲溶液
a.磷酸缓冲液(pH=7.5),适用于中性蛋白酶
称取磷酸氢二钠(Na2HP04·12H20)6.02 g和磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H20)0.5 g,加水溶解并定容至1000 mL。
b.乳酸缓冲液(pH=3.0 ) 适用于酸性蛋白酶
甲液称取乳酸(80%~90%)10.6 g,加水溶解并定容至1000 mL。
乙液称取乳酸钠(70%)16 g,加水溶解并定容至1000 mL。
使用溶液取甲液8 mL,加乙液1 mL,混匀,稀释一倍,即成0.05mol/L乳酸缓冲溶液。
c.硼酸缓冲溶液(pH= 10.5) 适用于碱性蛋白酶
甲液称取硼酸钠(硼砂)19.08 g,加水溶解并定容至1000 mL。
乙液称取氢氧化钠4.0 g,加水溶解并定容至1000 mL。
使用溶液取甲液500 mL、乙液400 mL混匀,用水稀释至1000 mL,
上述各种缓冲溶液,均须用pH计校正。
6.1.7 l0 g/L酪素溶液
称取酪素1.000 g,精确至0.001 g,用少量0.5 mol/L氢氧化钠溶液(若酸性蛋白酶则用浓乳酸2~3滴)湿润后,加人适量的各种适宜pH的缓冲溶液约80 mL,在沸水浴中边加热边搅拌,直至完全溶解,冷却后,转入100 mL容量瓶中,用适宜的pH缓冲溶液稀释至刻度。
此溶液在冰箱内贮存,有效期为三天。
注:3 )酪素采用上海化学试剂采购供应站经销的试剂。
6.1.8 l00μg/mL L-酪氨酸4)标准溶液
a. 称取预先于105℃干燥至恒重的L-酪氨酸0.1000 g,精确至0.0002 g,用1mol/L盐酸60mL溶解后定容至100 mL,即为1 mg/mL酪氨酸标准溶液。
注:4 )L-酪氨酸采用上侮长江生化制药厂产品。
b. 吸取1 mg/mL酪氨酸标准溶液10.00 mL,用0.l mol/L盐酸定容至100mL,即得到100 μg/mLL-酪氨酸标准溶液。
七分析步骤
7.1标准曲线的绘制(求K值)
按下表1配制不同浓度的L-酪氨酸标准溶液,然后,直接用紫外分光光度计测定其吸光度(A),并计算K值,(其K值应在130~135范围内)。
7.2 待测酶液的制备
称取酶粉1~2g,精确至0.0002 g(或吸取液体酶1.00 mL) ,用少量该酶的缓冲液溶解,并用玻璃棒捣研,然后将上清液小心倾入容量瓶中,沉渣中再添加少量上述缓冲液如此溶解、捣研3~4次,最后全部移入容量瓶中,用缓冲液定容至刻度,摇匀。
用四层纱布过滤,滤液根据酶活力再一次用缓冲液稀释至适当浓度,供测试用(稀释至被测试液吸光值在0.25~0.40范围内)
测定酶粉时稀释倍数参考下表(液体酶亦可参照下表稀释)。
7.3测定
滤液用紫外分光光度计,在275nm波长下,用10 mm比色皿,测定其吸光度(A)。
7.4 计算
X =A×K×8/2×1/10×n×E
=2/5×A×K×n×E/m
式中:X——样品的酶活力,u/g(u/mL);
A——试样溶液的平均吸光度;
K——吸光常数;
8——反应试剂的总体积,mL;
2——吸取酶液2.00 mL,以1mL计;
1/10——反应时间10 min,以1 min计;
n——稀释倍数;
E——紫外法与福林法的换算系数(中性、碱性蛋白酶系数为0.50;酸性蛋白酶系数为0.77);
m——试样质量,g。
7.5 结果的允许差
平行试验测定值之差不得超过3%。