呼吸强度的测定

植物呼吸强度测定实验报告：
1.实验目的：熟悉测定呼吸强度的方法及其依据原理
2.材料：绿豆种子
3.仪器试剂：0.05mol/l Ba(OH)2 ，1/22mol/l 草酸，指示剂：酚酞，广口瓶，酸式滴定管，
滴定架，小篮子，干燥剂
4.步骤
在2个洗净的广口瓶中装入20mol/l,0.05mol/lBa(OH)2,溶液迅速盖严
在2个小篮子里个各装入发芽和为发芽的绿豆种子10g然后分别挂入广口瓶中塞严，勿使漏气
每1min摇动广口瓶一次
0.5h后取出种子，滴入2滴指示剂塞紧瓶塞，再充分摇匀
拔出大橡皮塞上的小玻璃塞将滴定管插入小孔中，用1/22mol/l 草酸滴定至无色，记录滴定所用的草酸溶液的体积
5.计算
呼吸强度mg（O2/gFW.h）=(V0-V1)*2/种子重量*时间=（16.2-12.3）/5*0.5=1.52。

中国海洋大学实验报告2015年11月17号姓名：白洁专业年级： 2014级生物科学学号： 14050011001同组者：高远高学雨课程：植物生理学实验题目：呼吸酶的简易测定法一、实验目的学习植物呼吸作用的另一种测定方法,掌握用小篮子法测定植物的呼吸作用速率. 二、实验原理植物进行呼吸时放出CO2 ，测定一定的植物材料在单位时间内放出的的量CO2 ，即可测知该植物材料的呼吸强度。

测定植物释放CO2的量，可利用Ba(OH) 2溶液吸收呼吸过程中释放的CO2 ，然后再用草酸溶液滴定剩余的Ba(OH)2 ，从空白和样品二者消耗草酸溶液之差，既可算出呼吸过程释放的CO2量。

三、仪器试剂1.器材：广口瓶呼吸测定装置、托盘天平、碱式滴定管、温度计。

2. 试剂：1）草酸溶液2）饱和氢氧化钡溶液3）酚酞指示剂3. 实验材料：刚萌发的小麦种子四、实验步骤1、取250mL广口瓶4个，用橡皮塞密封，塞下挂一尼龙窗纱制作的小篮，用于盛实验材料。

装置如右图：2、称取刚萌发的小麦种子5克两份，分别装入小篮内，将小篮子分别挂在已加有饱和Ba（OH）2溶液10mL的广口瓶内，立即塞紧瓶塞，防止漏气。

每隔10分钟轻轻地摇动广口瓶，破坏溶液表面的BaCO3 薄膜，以利于CO2 的吸收，反应半小时。

小心打开瓶塞迅速取出小篮,加入1～2滴酚酞指示剂,用草酸溶液滴定.直到红色消失为止,记录滴定用去的草酸溶液的体积。

3、另称取刚萌发的小麦5g两份，分别装入小篮内，放入加有一定体积水的250mL烧杯中，在电炉上加热煮沸10分钟，冷却后，将小篮子分别挂在已加有饱和的Ba（OH）2 溶液10mL的广口瓶内，按上述步骤进行测定，以此作为空白对照。

五、数据处理六、思考题1.为什么要用煮死的幼苗来做空白试验用煮死的种子做空白对照试验是为了减小环境误差2.请列举出其他的植物呼吸速率的测定方法并评价它们的优缺点水生植物可利用溶解氧浓度测定判断呼吸速率，这是因为水中CO2浓度测定不易，而水中氧浓度测定较简单。

实验一果蔬呼吸强度测定一、目的及原理呼吸作用是果蔬采收后进行的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。

测定呼吸强度可衡量呼吸作用的强弱，了解果蔬采后生理状态，为低温和气调贮运以及呼吸热计算提供必要的数据。

因此，在研究或处理果蔬贮藏问题时，测定呼吸强度是经常采用的手段。

呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出其呼吸强度。

其单位为每公斤每小时释放出CO2毫克数。

反应如下：2NaOH + CO2→Na2CO3 + H2ONa2CO3 + BaCl2→BaCO3↓+ 2NaCl2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O测定可分为气流法和静置法两种。

气流法设备较复杂，结果准确。

静置法简便，但准确性较差。

二、药品与器材苹果、梨、柑橘、番茄、黄瓜、青菜等。

钠石灰、20%氢氧化钠、0.4mol/l氢氧化钠、0.1mol/l草酸、饱和氯化钡溶液、酚酞指示剂、正丁醇、凡士林。

真空干燥器、大气采样器、吸收管、滴定管架、铁夹、25ml滴定管、15ml三角瓶、500ml烧杯、φ8cm培养皿、小漏斗、10ml移液量管、洗耳球、100ml容量瓶、万用试纸、天平。

三、操作与步骤气流法：气流法的特点是果蔬处在气流畅通的环境中进行呼吸，比较接近自然状态，因此，可以在恒定的条件下进行较长时间的多次连续测定。

测定时使不含CO2的气流通过果蔬呼吸室，将果蔬呼吸时释放的CO2带入吸收管，被管中定量的碱液所吸收，经一定时间的吸收后，取出碱液，用酸滴定，由碱量差值计算出CO2量。

1.按图（暂不连接吸收管）连接好大气采样器，同时检查不使有漏气，开动大气采样器中的空气泵，如果在装有20%NaOH溶液的净化瓶中有连续不断的气泡产生，说明整个系统气密性良好，否则应检查各接口是否漏气。

2.用天平称取果蔬材料1kg，放入呼吸室，先将呼吸室与安全瓶连接，拨动开关，将空气流量调节在0.4l/min；将定时钟旋钮反时钟方向转到30min处，先使呼吸室抽空平衡0.5h，然后连接吸收管开始正式测定。

植物呼吸强度的测定（小篮子法）一、实验目的：掌握小篮子法测定呼吸强度的方法及其原理。

二、实验原理：测定呼吸作用，一般测定呼吸过程消耗的O2量，或放出的CO2量。

本实验用小篮子法测定呼吸过程中释放的CO2。

植物进行呼吸时放出CO2，计算一定的植物样品在单位时间内放出CO2的数量，即为该样品的呼吸速率。

利用Ba(OH)2溶液吸收呼吸过程中释放的CO2，试验结束后，用草酸溶液滴定残留的Ba(OH)2，从空白和样品两者消耗草酸溶液之差，即可计算出呼吸过程中释放的CO2量。

三、仪器药品广口瓶酸式滴定管尼龙网制小篮0.05mol/L Ba(OH)2指示剂：0.1%麝香草酚酞酒精溶液1/44mol/L 草酸溶液四、操作步骤取500ml广口瓶一个, 瓶塞下面挂一网状小篮,用以盛实验材料。

称取萌发的小麦种子15g装于小篮内,将小篮挂在广口瓶内,同时加入0.05mol/LBa(OH)2溶液15ml于广口瓶内,立即塞紧瓶塞,防止漏气。

每十分钟左右,轻轻摇动广口瓶,破坏溶液表面BaCO3薄膜,以利对CO2的吸收。

1小时后,小心打开瓶塞,迅速取出小篮,加入2滴指示剂,立即重新塞紧瓶塞。

然后拔出小橡皮塞,将滴定管插入小孔中,用1/44mol/L草酸滴定,直到紫红色转变成无色为止。

记录滴定所耗用草酸溶液的ml数。

另取用沸水煮死的种子为材料,做同样测定,以此作为对照。

取500ml广口瓶一个, 瓶塞下面挂一网状小篮,用以盛实验材料。

称取萌发的小麦种子15g装于小篮内,将小篮挂在广口瓶内,同时加入0.05mol/LBa(OH)2溶液15ml于广口瓶内,立即塞紧瓶塞,防止漏气。

每十分钟左右,轻轻摇动广口瓶,破坏溶液表面BaCO3薄膜,以利对CO2的吸收。

1小时后,小心打开瓶塞,迅速取出小篮,加入2滴指示剂,立即重新塞紧瓶塞。

然后拔出小橡皮塞,将滴定管插入小孔中,用1/44mol/L草酸滴定,直到紫红色转变成无色为止。

记录滴定所耗用草酸溶液的ml数。

实验三十一果蔬呼吸强度测定1.目的及原理呼吸作用是果蔬采收后的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。

测定呼吸强度可衡量呼吸作用强弱，了解果蔬采后生理状态，为低温和气调贮运及呼吸热计算提供必要数据。

呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出呼吸强度，其单位为每公斤每小时释放出CO2毫克数。

反应如下：2NaOH + CO2→Na2CO3 + H2ONa2CO3 + BaCl2→BaCO2↓+ 2NaCl2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O测定可分为气流法和静置法两种。

气流法设备较复杂，结果准确。

静置法简便，但准确性较差。

本实验学习和掌握测定方法。

2 材料试剂及仪器苹果，梨，柑桔，蕃茄，黄瓜，青菜等。

钠石灰，20%氢氧化钠，0.4 mol/L氢氧化钠，0.1 mol/L草酸，饱和氯化钡溶液，酚酞指示剂，正丁醇，凡士林。

真空干燥器，大气采样器，吸收管，滴定管架，铁夹，25ml滴定管，15ml三角瓶，500ml烧杯，φ8cm培养皿，小漏斗，10ml移液管，洗耳球，100ml容量瓶，万用试纸，台称。

3.操作方法3.1 气流法气流法的特点是果蔬处在气流畅通的环境中进行呼吸，比较接近自然状态，因此，可以在恒定的条件下进行较长时间的多次连续测定。

测定时使不含CO2的气流通过果蔬呼吸室，将果蔬呼吸时释放的CO2带入吸收管，被管中定量的碱液所吸收，经一定时间的吸收后，取出碱液，用酸滴定，由碱量差值计算出CO2量。

（1）按图（暂不串接吸收管）连接好大气采样器，同时检查不使有漏气，开动大气采样器中的空气泵，如果在装有20% NaOH溶液的净化瓶中有连续不断的气泡产生，说明整个系统气密性良好，否则应检查各接口是否漏气。

（2）用台称称取果蔬材料1公斤，放入呼吸室，先将呼吸室与安全瓶连接，拨动开关，将空气流量调在0.4升/分，将定时钟旋钮按反时针方向转到30分钟处，先使呼吸室抽空平衡半小时，然后连接吸收管开始正式测定。

土壤呼吸强度的测定土壤空气的变化过程主要是氧的消耗和二氧化碳的累积。

土壤空气中二氧化碳浓度大，对作物根系是不利的，若排出二氧化碳，不仅可消除其不利影响，而且可促进作物光合作用。

因此，反映土壤排出二氧化碳能力的土壤呼吸强度是—个重要的土壤性质。

土壤中的生物活动，包括根系呼吸及微生物活动，是产生二氧化碳的主要来源，因此测定土壤呼吸强度还可反映土壤中生物活性，作为土壤肥力的一项指标。

(一)测定原理用Na0H吸收土壤呼吸放出的CO2，生成Na2CO3：2Na0H+C02——→Na2CO3+H20 (1)先以酚酞作指示剂，用HCl滴定，中和剩余的Na0H，并使(1)式生成的Na2CO3转变为NaHCO3：Na0H + HCl——→NaCl+H20 (2)Na2CO3+ HCl——→NaHCO3十NaCl (3)再以甲基橙作指示剂，用HCl滴定，这时所有的NaHC03均变为NaCl：NaHCO3+ HCl——→ NaCl+H20+CO2 (4)从(3)、(4)式可见，用甲基橙作指示剂时所消耗HCl量的2倍，即为中和Na2CO3的用量，从而可计算出吸收CO2的数量。

(二)测定方法方法(一)1、称取相当于干土重20克的新鲜土样，置于150毫升烧杯或铝盒中(也可用容重圈采取原状土)；2、准确吸取2molL-1NaOH l0毫升于另一150毫升烧杯中；3、将两只烧杯同时放入无干燥剂的干燥器中，加盖密闭，放置1—2天；4、取出盛Na0H的烧杯，洗入250毫升容量瓶中，稀释至刻度；5、吸取稀释液25毫升，加酚酞1滴，用标准0.05molL-1HCl滴定至无色，再加甲基橙1滴，继续用0.05 molL-1 HCl滴定至溶液由橙黄色变为桔红色，记录后者所用HCl的毫升数(或用溴酚兰代替甲基橙，滴定颜色由兰变黄)；6、再在另一干燥器中，只放NaOH，不放土壤，用同法测定，作为空白。

7、计算：250毫升溶液中CO2的重量(W1克)44 250W1=(V1-V2)×C×————×——2×1000 25式中：V1——供试溶液用甲基橙作指示剂时所用HCl毫升数的2倍；V2——空白试验溶液用甲基橙作指示剂时所用HCl毫升数的2倍C——HCl的摩尔浓度（molL-1）44————为CO2的毫摩尔质量2×1000250——为分取倍数，25再换算为土壤呼吸强度(CO2毫克/克干土，小时)CO2毫克/克干土，小时=W1×1000×1/20×1/2420——试验所用土壤的克数24——试验所经历的时间（24小时）方法（二）1、准确称取2molL-1NaOH溶液10—20毫升于带胶塞的三角瓶中，携至实验地点；2、选好实验场地，然后放一培养皿，用树枝垫在底部，以保证土壤通气。

一、实验目的1. 了解土豆呼吸作用的基本原理。

2. 掌握测定土豆呼吸强度的方法。

3. 通过实验，探究不同条件下土豆呼吸强度的变化规律。

二、实验原理土豆呼吸作用是指土豆在氧气的参与下，将有机物质分解为二氧化碳和水，并释放能量的过程。

呼吸强度是指单位时间内土豆呼吸作用所释放的二氧化碳量。

实验中，通过测定土豆在一定时间内释放的二氧化碳量，可以计算出呼吸强度。

三、实验材料与方法1. 实验材料：新鲜土豆、广口瓶、酒精灯、滴定管、酚酞指示剂、0.05mol/LBa(OH)2溶液、草酸、1/22mol/L 草酸溶液、温度计、计时器等。

2. 实验步骤：（1）将新鲜土豆洗净，去皮，切成1cm×1cm×1cm的小块，放入广口瓶中。

（2）将广口瓶密封，放入25℃的恒温箱中。

（3）每隔一段时间，用滴定管向广口瓶中加入一定量的Ba(OH)2溶液，并用酒精灯加热，直至产生沉淀。

（4）用草酸溶液滴定沉淀，记录滴定所需草酸的体积。

（5）根据草酸的体积，计算出土豆在一定时间内释放的二氧化碳量。

（6）重复实验，探究不同温度、不同湿度、不同光照条件下土豆呼吸强度的变化规律。

四、实验结果与分析1. 不同温度下土豆呼吸强度的变化实验结果显示，随着温度的升高，土豆呼吸强度逐渐增加。

这可能是因为高温有利于土豆细胞内酶的活性，从而加速呼吸作用。

2. 不同湿度下土豆呼吸强度的变化实验结果显示，在较高湿度条件下，土豆呼吸强度明显增加。

这可能是因为湿度较高有利于土豆细胞内水分的保持，从而提高呼吸作用。

3. 不同光照条件下土豆呼吸强度的变化实验结果显示，在充足光照条件下，土豆呼吸强度较高。

这可能是因为光照有利于土豆进行光合作用，为呼吸作用提供能量。

五、结论与展望1. 结论本实验通过测定土豆呼吸强度，验证了土豆呼吸作用的基本原理。

实验结果表明，土豆呼吸强度受温度、湿度、光照等因素的影响。

2. 展望（1）进一步研究不同品种、不同生长阶段土豆的呼吸强度差异。

植物呼吸强度的测定一、实验目的掌握用小篮子法测定植物呼吸强度二、实验原理在密闭容器中加入一定量Ba(OH)，并悬挂2可为植物材料，则植物材料呼吸放出的CO2吸收，然后用草酸溶液滴定容器中Ba(OH)2残留Ba(OH)，从空白和样品二者消耗草酸2溶液之差，即可计算出呼吸过程中释放的CO 2量。

其反应如下：Ba(OH)2+CO2→BaCO3↓+ H2OBa(OH)2（剩余）+ H2C2O4→BaC2O4↓+ 2H2O三、仪器与用具器材：电子天平，尼龙网制小篮广口瓶及塞子，温度计，酸式和碱式滴定管各1支，滴定管架1套。

材料：发芽种子四、试剂0.05 mol/L Ba(OH)2：Ba(OH)2 8.6 g 或Ba(OH)2·8H 2O15.78 g 溶于1000 ml 蒸馏水中0.1％酚酞指示剂：1 g 酚酞溶于100 ml 95%乙醇中1/44 mol/L 草酸溶液：准确称取重结晶H 2C 2O 4·8H 2O2.8651 g 溶于蒸馏水中，定容至1000 ml ，每ml 相当于1 mlCO 2五、方法与步骤取500 ml 广口瓶一个，加一个三孔橡皮塞。

一孔插入一装有钠石灰的干燥管，使吸收空气中的CO2，保证在测定呼吸时进入呼吸瓶的空气中无CO2；一孔插入温度计；另一孔直径约为1 cm ，供滴定用。

平时用一小橡皮塞塞紧。

在瓶塞下面装一小钩，以便悬挂用尼龙纱窗制作的小篮，供装测定的植物材料用。

1．装配广口瓶测呼吸装置2．种子称取及装瓶饱和Ba(OH)溶液20 ml称取发芽种子15 g将称好种子装在小篮子中2小篮子挂在瓶塞上，放入广口瓶塞紧瓶塞3．滴定30～60 min后，小心打开瓶塞，迅速取出小篮，加入2滴指示剂，立即重新盖紧瓶塞，然后拔出小橡皮塞，把滴定管插入小孔中，用1/44 mol/L的草酸滴定，直至红色消失为止。

记录滴定碱液所耗的草酸溶液的毫升数。

4．对照滴定另取一广口瓶放20 ml Ba(OH)2,不放测定材料（或放入用沸水煮死的种子），以此作为对照30～60 min后，小心打开瓶塞，加入2滴指示剂，立即重新盖紧瓶塞拔出小橡皮塞，把滴定管插入小孔中，用1/44 mol/L的草酸滴定，直至红色消失为止。

实验五植物呼吸强度的测定呼吸作用是一切生活细胞所共有的生命活动,是新陈代谢的一个重要组成部分,是植物所有生理活动所需要能量的来源,对植物有着十分重要的意义,一旦呼吸作用停止,也就预示生命的结束。

测定呼吸作用,一般测定呼吸过程消耗的O2量,或放去的CO2量。

其方法很多,除下面介绍的几种外,还可以用华氏呼吸计和氧电极法。

[实验目的]熟悉测定呼吸强度的不同方法及其所根据的原理。

Ⅰ简易测定法[实验原理]萌发的种子在一个密闭容器中,呼吸作用消耗容器中的O2放出CO2,而CO2又为容器中的碱液所吸收,致使容器中气体压力减小,容器内外产生压力差,使得玻璃管内水柱上升。

水柱上升的高度,即代表容器内外压力差的大小,亦即代表呼吸作用大小。

如果用同一套装置,测定不同的材料样品,即可从水柱上升的高度或玻璃管内水的体积,相对地比较它们的呼吸强度。

[器材与试剂]1．实验仪器游标卡尺,天平,广口瓶,橡皮塞,小烧杯,玻璃管,纱布,移液管2．实验试剂 10% NaOH,石蜡3.实验材料已经萌发的水稻(小麦或大豆)种子[实验步骤]1.定装置如图4-1所示,包括广口瓶(A)(于瓶塞上钉一金属小弯钩) 、曲管(B)和烧杯(C)。

烧杯内装水(可加数滴红墨水),广口瓶内加入20ml10% NaOH。

2.称取已经萌发的水稻(小麦或大豆)种子数克,用纱布包裹,并用棉线结扎悬挂于广口瓶塞弯钩上。

然后盖紧瓶塞,并用融化的石蜡密封瓶口,记录开始的实验时间。

3．经一定的时间后,测量水柱上升高度。

4．用下述方法表示呼吸作用强弱。

(1)以上升水柱的高度表示相对呼吸强度:(Cm/h)(2)以水柱中上升的水量(ml)表示相对呼吸强度:水柱高(cm)ⅹπг²(cm²),式中π=3.1416, г为玻璃管内半径,单位为cm,可用游标卡尺量得。

Ⅱ小篮子法[实验原理]利用Ba(OH)2溶液吸收呼吸过程中释放的CO2,实验结束后,用草酸溶液滴定残留的Ba(OH)2,从空白和样品两者消耗草酸溶液之差,即可计算出呼吸过程中释放的CO2的量。

一、实验目的要求：
呼吸作用是农产品收获后进行的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。

测定呼吸强度可衡量呼吸作用强弱，了解农产品收获后生理状态，为低温和气调贮运以及呼吸热计算提供必要数据。

因此，在研究或处理农产品贮藏问题时，呼吸强度是经常测定的指标。

二、实验原理
测定装置主要有便携式红外线co2气体分析仪和植物组织呼吸室。

利用植物呼吸放出的co2量来计算呼吸强度。

三、实验仪器材料
1.便携式co2分析仪、标本缸、保鲜膜、剪刀、量筒、凡士林油
2.香蕉
四、实验步骤：
使用标本缸作为呼吸室，内置要测定的果实，瓶口抹上凡士林油，封上保鲜膜密封，以防漏气。

标本缸的容积可根据样品的大小采用不同的大小。

但容积不宜过大，由于短期内co2浓度上升较小测定时间太长，又又影响测量精度，反之co2浓度升高过快，易在短时间内超出co2分析仪的测量范围
五、计算公式：
R=(Vt－Vs).t.c.W/1000
R:呼吸强度ml/kg.h
Vt:呼吸室容积ml
Vs:果实体积ml
W:果实重量g
T：测定时间
C：co2浓度测定值。