大鼠取血方法

大鼠取血方法1、割(剪)尾采血:当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0、1ml,大鼠0、3~0、5ml。2、鼠尾刺血法:大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒与擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静3。如果长期反复取血,应先靠近鼠尾~1050mm脉,拔出针头时

2021-03-21
实验大鼠取材方案

实验大鼠取材方案[取材内容]1.取大鼠静脉血,分离血浆、血清,-80℃保存。2.取大鼠门静脉血,分离血清,-80℃保存。3.取大鼠甲状腺组织,制备甲状腺电镜观察标本,其余组织液氮冰冻保存备用。4.取大鼠胸腺组织,制备胸腺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织液氮冰冻保存备用。5.取大鼠肺组织,制备肺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本,其余组织分装液氮冰

2024-02-07
大鼠取材方案

实验大鼠取材方案[取材内容]1. 取大歸脉血分离血衆血清-80 C保存。2. 取大鼠门静脉血分离血清-80 C保存。3. 取大鼠甲状腺组织.制备甲状腺电镜观察标本其余组织液氮冰冻保存备用〃4. 取大鼠胸腺组织制备胸腺组织电镜观察标本、免疫组化孵标本其余组织液氮冰冻保存备用。5. 取大鼠肺组织制备肺组织电镜观察标本,免疫组化观察标本其余组织分装液氮冰搽保存备用

2024-02-07
大鼠取材方案

实验大鼠取材方案[取材内容]1. 取大鼠静脉血分离血浆、血清-80℃保存。2. 取大鼠门静脉血分离血清-80℃保存。3. 取大鼠甲状腺组织制备甲状腺电镜观察标本其余组织液氮冰冻保存备用。4. 取大鼠胸腺组织制备胸腺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本其余组织液氮冰冻保存备用。5. 取大鼠肺组织制备肺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本其余组织分装液氮冰冻保存备用

2024-02-07
老鼠眼眶取血

.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套),应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧,使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3~4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm),使采血器与鼠面成45℃的夹角,由眼内角刺入,针头斜面先向眼球,刺入后再转180度使斜面对

2020-10-08
大鼠取材方案

实验大鼠取材方案[取材内容]1. 取大鼠静脉血分离血浆、血清-80℃保存。2. 取大鼠门静脉血分离血清-80℃保存。3. 取大鼠甲状腺组织制备甲状腺电镜观察标本其余组织液氮冰冻保存备用。4. 取大鼠胸腺组织制备胸腺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本其余组织液氮冰冻保存备用。5. 取大鼠肺组织制备肺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本其余组织分装液氮冰冻保存备用

2024-02-07
大鼠取血方法

大鼠取血方法1. 割(剪)尾采血:当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3〜0.5ml。1.4見尖采血才法将大杖囲進好•阳50乜左右SL水根池城部妁2 血骨充血后•用球消黑、擦干BU匕用消澎手术旳的去尾尖3 ■ 10mi叭魅后从用根那向尼尖檢忙血fl朋尖流岀。此法町采L5-2 mL2. 鼠尾刺血法:大鼠用血量

2024-02-07
大鼠取血方法

大鼠取血方法1.割(剪)尾采血:当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。2.鼠尾刺血法:大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期

2024-02-07
大鼠和小鼠的采血方法

大鼠和小鼠的采血方法(最全)这里主要介绍几种大小鼠的采血方法,以帮助试验中需要用到相关技术的人员。1)尾尖取血:当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45 C温水中浸泡数分钟,也可用二甲苯等化学药物涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,剪去尾尖,血自尾尖流出,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间,多次采取鼠尾尖部血液,每次采血时,将

2024-02-07
大鼠取血方法

大鼠取血方法1.割(剪)尾采血:当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml ,大鼠0.3 ~0.5ml。2.鼠尾刺血法:大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7 号或8 号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。

2024-02-07
大鼠股动脉采血

大鼠的麻醉深度麻醉:10%水合氯醛腹腔注射,剂量0.3ml/100g。于麻醉前称重。2.2大鼠股动脉取血将大鼠麻醉后,仰卧位固定,根据股动脉搏动情况确定股动脉的位置和走行方向,以8%硫化钠脱毛,碘酒酒精消毒皮肤,沿股动脉方向纵向切开皮肤,以血管钳钝性分离肌肉,暴露股动脉鞘。股动脉鞘中由内到外依次是:股静脉、股动脉、股神经,直径由粗到细,其中粉红色且触之有搏动

2024-02-07
大鼠取血方法

大鼠取血方法1.割(剪)尾采血:当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。2.鼠尾刺血法:大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期

2024-02-07
大小鼠眼眶取血方法附图)

大小鼠眼眶取血方法附图)

2024-02-07
大鼠取血方法

大鼠取血方法1、割(剪)尾采血:当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0、1ml,大鼠0、3~0、5ml。2、鼠尾刺血法:大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒与擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期

2024-02-07
动物取血方法

生理学实验动物的取血方法(一)大鼠、小鼠1、尾静脉使鼠尾静脉充分充血后,用剪刀剪去尾尖,尾静脉知即可流出,用手轻轻从尾根部向尾尖部挤几下,可以取到数滴血。2.眼眶动脉和静脉用左手抓住鼠,拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧,使鼠眼球突出。右手取一无钩弯小镊,在鼠右侧眼球根部将眼球摘去,关将鼠倒置,头向下,此法由于取过程动物未死,心脏不断在跳动,因此取血量比断头法多

2024-02-07
大小鼠眼眶取血方法(附图)

大小鼠眼眶取血方法(附图)

2024-02-07
大鼠取材方案

实验大鼠取材方案[取材内容]1. 取大鼠静脉血分离血浆、血清-80℃保存。2. 取大鼠门静脉血分离血清-80℃保存。3. 取大鼠甲状腺组织制备甲状腺电镜观察标本其余组织液氮冰冻保存备用。4. 取大鼠胸腺组织制备胸腺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本其余组织液氮冰冻保存备用。5. 取大鼠肺组织制备肺组织电镜观察标本、免疫组化观察标本其余组织分装液氮冰冻保存备用

2024-02-07
大鼠取血方法

大鼠取血方法1.割(剪)尾采血:当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。2.鼠尾刺血法:大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查),可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7号或8号注射针头,刺入鼠尾静脉,拔出针头时即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果长期

2024-02-07
大鼠和小鼠的采血方法(最全)

大鼠和小鼠的采血方法(最全)这里主要介绍几种大小鼠的采血方法,以帮助试验中需要用到相关技术的人员。1)尾尖取血:当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用二甲苯等化学药物涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,剪去尾尖,血自尾尖流出,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间,多次采取鼠尾尖部血液,每次采血时,将鼠

2024-02-07
动物取血方法

生理学实验动物的取血方法(一)大鼠、小鼠1、尾静脉使鼠尾静脉充分充血后,用剪刀剪去尾尖,尾静脉知即可流出,用手轻轻从尾根部向尾尖部挤几下,可以取到数滴血。2.眼眶动脉和静脉用左手抓住鼠,拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧,使鼠眼球突出。右手取一无钩弯小镊,在鼠右侧眼球根部将眼球摘去,关将鼠倒置,头向下,此法由于取过程动物未死,心脏不断在跳动,因此取血量比断头法多

2024-02-07