原生质体融合技术简介

植物原生质体的分离及融合生93沈睿2009012372同组：古梦婷实验日期：2011年11月2日一．实验原理1.原生质体分离原生质体指包被在植物细胞壁内的生活物质。细胞壁的主要成分是纤维素和果胶质，它们分别经纤维素酶和果胶酶处理即可分解，从而脱去细胞壁，得到原生质体。2.原生质体融和诱导原生质体融合的方法有多种，譬如物理法（电场刺激，激光，显微操作等）、化学

实验六植物原生质体的分离与融合一、实验目的：1、掌握原生质体分离的方法；2、了解并掌握利用PEG原生质体融合的原理和方法。二、实验原理：PEG为一种高分子化合物，能与水、蛋白质、和碳水化合物等一些基团能形成氢键。普遍认为聚乙二醇分子能改变各类细胞的膜结构，使两细胞接触点处质膜的脂类分子发生疏散和重组，由于两细胞接口处双分子层质膜的相互亲和以及彼此的表面张力作

4原生质体培养和融合

原生质体培养和融合

植物原生质体融合技术

细胞工程实验六植物原生质体的分离与融合实验概要本实验介绍了原生质体分离的方法及利用PEG原生质体融合的原理和方法。实验原理植物原生质体是除去细胞壁后为原生质所包围的“裸露细胞”，是开展基础研究的理想材料。其中酶解法分离原生质体是一个常用的技术，其原理是植物细胞壁主要由纤维素、半纤维素和果胶质组成，因而使用纤维素酶、半纤维素酶和果胶酶能降解细胞壁成分，除去细胞

食品生物技术课程论文原生质体细胞融合技术原生质体细胞融合技术摘要：细胞融合技术作为细胞工程的一项核心基础技术己在农业、医药、环保等领域得到了迅速发展和应用。综述了细胞融合技术中的常用方法:细胞融合仙台病毒诱导法、细胞融合PEG（聚乙二醇)诱导法、细胞融合电场诱导法、细胞融合激光诱导法;以及最新研究进展:基于微流控芯片的细胞融合技术、高通量细胞融合芯片、空间细

Three advantages compared with PEG fusionNo toxicity to protoplastsHigher fusion frequency

➢ 小原生质体(miniprotoplast)：也称核质体 (nuclearplast)，具备完整细胞核，但只含有部分 细胞质。➢ 微小原生质体(microprotoplast)：

（3）常规诱变育种选用材料为孢子， 这些休眠体对诱变剂比较迟钝， 获得的大部分为负变株，而制备原生质体的出发材料一般为对数期的 细胞，活力较强，对环境和诱变剂较为敏感， 破壁和再生

• 含义：去掉细胞壁的由质膜包裹、具有生活 力的裸露细胞。陈传红 制作 2007 / 5• Protoplast陈传红 制作 2007 / 5细胞植物细胞模式图高尔基体液泡微丝细胞

叶片愈伤组织第一节、原生质体分离 及纯化二、 原生质体纯化与活力测定（一）原生质体纯化方法三种离心沉淀法 漂浮法 界面法第一节、原生质体分离 及纯化1、 离心沉淀法原理：应用原生质

五、影响原生质体培养的因素4、培养基成分 1）基本培养基：MS,B5，Nitsch、N6、KM-8P 2）碳源：葡萄糖（大多数用） 3）无机盐浓度和氮形态：无机盐浓度不宜过高，尤

பைடு நூலகம்2、PEG的影响1 分子量与浓度: 细胞融合效果与PEG的分子量及其浓 度成正比；但PEG的分子量越大、浓度越高, 对细胞的 毒性也就越大。为了兼顾二者，在实

植物原生质体培养及细胞融合过程分离叶肉原生质体的完整流程表面灭菌的叶片 ①撕去下表皮 酶溶液及渗压稳定剂 ②抽真空、振荡 原生质体沉于培养皿底（叶段漂浮其上）保温8hr③⑤离心2次

三、培养条件新分离出来的原生质体应在散射光或黑暗中培养。培养温度一般在25-30℃下。四、培养方法1. 液体浅层培养原生质体悬浮在液体培养基（约2×105/ml密度） —将原生质体

前言• 植物原生质体的概念• 植物原生质体融合的涵义 • 植物原生质体融合的发展植物原生质体的概念• 原生质体就是除去了细胞壁的裸露的球形 细胞。 • 原生质体具有一切活细胞的特性

原生质体的分离、融合与培养一、实验目的1.了解植物原生质体分离、融合和培养的基本原理。2.掌握植物原生质体分离、融合和培养的基本过程。3.了解并掌握利用PEG原生质体融合的原理和方法。二、实验原理植物原生质体是除去细胞壁后为原生质所包围的“裸露细胞”，是开展基础研究的理想材料。其中酶解法分离原生质体是一个常用的技术，其原理是植物细胞壁主要由纤维素、半纤维素和

33 第八章原生质体培养与细胞融 合第一节 原生质体培养一、 原生质体的培养概况 1、概念： 植物的原生质体(Protoplast)指除去细胞壁以后的裸露细胞。 原生质体培养（Pr