灰楸体外植株再生体系建立

笃斯越桔离体培养及植株再生体系的建立顾地周;高捍东;顾美影;朱俊义;姜云天【期刊名称】《林业科学研究》【年(卷),期】2009(22)2【摘要】以笃斯越桔新生嫩芽为外植体,应用均匀设计法筛选其最适合的基部直接再生芽苗和生根的培养基,结果表明,最适合的基部直接再生芽苗诱导培养基为:DR+2-ip2.75 mg·L-1 +IAA0.10 mg·L-1,诱导率为99%;生根培养基:MS(改良)+IAA 1.00 mg·L-1 +Kt0.30 mg·L-1,生根率达98%;以再生植株的茎节为材料进行快繁的结果表明,在25 d的一个培养周期内增殖倍数平均达40以上,快繁培养基:MS(改良)+IAA 0.50～1.00 mg·L-1 +Kt0.30 mg·L-1+GA3 0.20 mg·L-1.建立了笃斯越桔的植株再生和快繁体系.【总页数】4页(P226-229)【作者】顾地周;高捍东;顾美影;朱俊义;姜云天【作者单位】通化师范学院生物系,吉林,通化,134002;南京林业大学森林资源与环境学院,江苏,南京,210037;通化师范学院生物系,吉林,通化,134002;通化师范学院生物系,吉林,通化,134002;通化师范学院生物系,吉林,通化,134002【正文语种】中文【中图分类】S722.3【相关文献】1.贯叶金丝桃离体培养及植株再生体系的建立 [J], 周尧;唐宁;宋东杰2.榨菜下胚轴离体培养植株再生体系的建立 [J], 张艳梅;于锡宏;蒋欣梅;卢志权;丛超3.杂交狼尾草离体培养植株再生体系的建立 [J], 谢妤;张子雯4.催吐萝芙木离体培养和植株再生体系的建立 [J], 董佳颖;杨小田;向小群;郭晋雅;高峰5.‘宏绿1号’辣椒离体培养与植株再生体系的建立 [J], 钟源源; 李思琦; 何小帆; 李彪; 肖丰坤; 何承忠因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

植物组织培养植株再生途径有哪些植物组织培养植株再生途径有：1、器官间接发生途径在本途径中，所培养的外植体在培养基中的植物生长物质等因素的诱导下，其细胞呈没有分化的状态，重新恢复了细胞的分裂能力。

然后随着培养的持续，细胞数量不断增加，形成由薄壁细胞所组成的愈伤组织。

这种结构松散的组织在适宜的植物生长物质等培养条件下会重新分化出茎叶、根系等，最终形成一个完整的植株。

利用植物细胞在组织培养过程中所形成的大量愈伤组织，可以在短时间内通过器官发生分化出大量小植株。

因此，通过愈伤组织途径，可以使被培养材料的繁殖系数迅速增加。

但是此途径有其缺陷性，因为愈伤组织的细胞在遗传上具有不稳定性。

此外，随着愈伤组织继代培养时间的延长，它们最初所表现的植株再生能力会逐渐下降，甚至完全消失。

因此在实际的操作中，应根据培养目的应慎重选择此途径。

2、器官直接发生途径在此途径中，器官可直接从外植物体上进行诱导，例如香蕉草的侧芽培养，首先会分化出小芽，然后自新芽叶腋形成芽丛；风信子的鳞茎切片进行培养，在适宜的条件下，其基部就会分化小鳞茎。

在器官直接发生途径过程中，由于细胞染色体的倍数基本保持稳定，因此发生变异的现象频率较低，这样也能保证所培养的试管苗保持母株良好的种性，因此途径是组培中常用的再生途径。

通过腋芽的方式进行器官的直接发生，在正常情况下腋芽都能发育成枝条，但是在很多情况下，腋芽通常都会在一定时间内处于休眠状态，对于顶端优势较强的花卉种类来说，只有将顶芽摘去，才能促使侧芽抽生。

研究表明，顶端优势的现象可以为细胞分裂素所抑制。

因此在组织培养过程中，当提高了培养基中的细胞分裂素水平后，所接种的茎段上往往就会长出大量腋芽。

从细胞学上来说，这些腋芽的遗传性质十分稳定，所以利用所培养出腋芽的快速增殖对于花卉品种，特别是以嵌合体状态存在的花卉品种来说具有实用价值。

不定芽也是增殖试管苗的一种重要方式。

从植物学的角度来看，不定芽是指茎尖、叶腋以外的其他器官或组织上所形成的芽。

野生小花碧冬茄外植体器官分化与植株再生研究赵岩;储俊;许娜;马忠友;刘伟;夏海武【摘要】[目的]为野生小花碧冬茄组织快繁技术提供依据,文中研究了组培条件下,不同浓度的6-BA、NAA、IBA处理对野生小花碧冬茄外植体器官分化和植株再生的影响.[方法]以野生小花碧冬茄无菌种子获得的试管苗为材料,筛选其成苗培养和生根培养最适激素组合.[结果]成苗培养中,较高浓度的6-BA配合较低浓度的NAA 有利于外植体形成丛生芽,而高水平的NAA会引起愈伤组织的大量产生.对野生小花碧冬茄而言,芽分化最佳培养基组合为MS+蔗糖30 g/L+琼脂粉5g/L+NAA 0.2 mg/L+6-BA 1.5 mg/L；愈伤组织最佳培养基组合为MS+蔗糖30 g/L+琼脂粉5g/L+NAA 0.4 mg/L+6-BBA 1.0 mg/L;生根最佳培养基组合为I/2MS+蔗糖30 g/L+琼脂粉5 g/L+IBA 1.0 mg/L+NAA 0.4 mg/L.[结论]明确野生小花碧冬茄芽分化、愈伤组织和生根培养的理想激素配比,初步建立了野生小花碧冬茄的高效再生体系.%[ Objective] This study aimed lo provide the basis for rapid propagation technology of wild Petunia Juss. . [ Method] Effects of different plant hormones 6-BA, NAA and IBA on the organ differentiation and plantlet regeneration of wild Petunia Juss. . Explanis were investigated. The optimal medium for seedling culture and rooting induction were selected with aseptic plantlets of wild Petunia Juss.. [ Result] Higher concentration of 6-BA in combination with lower concentration of NAA is beneficial to the formation of multiple-bud clumps induced by callus, and a higher level of NAA will lead to a sharp increase of callus. The optima] medium for bud differentiation is MS + 30 g/L of sucrose + 5 g/L of agar +0. 2 mg/L of EVAA + 1.5 mg/L of 6-BA; the optimal medium for callusculture is MS +30 g/L of sucrose +5 g/L of" agar + 0.4 mg/L of NAA + 1.0 mg/L of 6-BA; the optimal medium for rooting induction is 1/2MS + 30 g/L of sucrose + 5 g/L of agar + 1.0 mg/L of IBA +0.4 mg/L of NAA. [Conclusion] The optimal exogenous hormone combinations for bud regeneration, callus culture and rooting induction were defined ? an efficient regeneration system of wild Petunia Juss. , was established preliminarily.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2012(000)013【总页数】3页(P7640-7642)【关键词】碧冬茄;器官分化;植株再生;植物激素【作者】赵岩;储俊;许娜;马忠友;刘伟;夏海武【作者单位】安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100;安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100;安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100;安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100;安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100;安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100【正文语种】中文【中图分类】S567.21;Q949.77.7;Q943.1碧冬茄(Petunia Juss.)为茄科茄属一年生草本植物［1］，原产于南美洲，目前已确定的种类有30余种［2］。