细胞培养注意事项

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细胞培养注意事项(from Internet)

1) 无菌操作:

a. 实验进行前,无菌操作台一紫外灯照射30~60min灭菌,以70%酒精擦拭无菌操作台面,实验完毕后,将实验物品带出工作台,以70%酒精擦拭无菌操作台面。

b. 实验用品以70%酒精擦拭后才带入无菌操作台内,实验操作应在台面中央无菌区域,勿在边缘非无菌区域操作。各种操作动作要轻、准确,不能乱碰。吸取两种以上的使用液时,要注意更换吸管。

c. 小心去用无菌实验物品,避免造成污染。勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口,亦不要在打开容器正上方操作实验。容器打开后,以手夹住瓶身并握住瓶身,倾斜45O角取用,将瓶盖改口朝上放置桌面。

d. 操作过程当中,应小心毒性物品,例如DMSO等,避免尖锐针头伤害等。

e. 定期检测CO2钢瓶的压力,培养箱的CO2浓度、温度、水盘收否有污染(本实验室使用的为蓝盖瓶装无菌水,应每周更换。

f. 定期打扫细胞房:每周打扫一次,先用自来水拖地、擦桌子,然后用3‰新洁尔灭or0.5%过氧乙酸擦拭

g. CO2培养箱灭菌:先用3‰新洁尔灭擦拭,然后用75%酒精擦拭or0.5%过氧乙酸,可以的话再用紫外灯照射

2) 实验用品(均为无菌)

a. 培养基&胰酶

细胞培养基通常需添加10%血清,1%双抗(penicillin/streptomycin,P/S)。

血清中若出现凝絮物,普遍原因是血清中的脂蛋白变性及解冻后,血清中存在血纤维蛋白造成,这些凝絮沉淀物不会影响血清本身的品质。

一旦您在新鲜培养基中添加了血清和抗生素时,您应该在两到三周内使用它。因为一些抗生素和血清中的基本成分在解冻后就开始降解。

在溶解的一周内使用贮存在4℃冰箱中的液体胰蛋白酶溶液。胰蛋白酶在4℃就可能开始降解,如果在室温下放置超过30分钟,就会变得不稳定。

培养基使用前应从冰箱中取出预热。 b. (使用过的玻璃器皿要先泡入来苏尔/洗涤剂溶液中,刷洗干净,用清水洗净,水分稍凉干后再泡酸液)玻璃瓶用酸液浸泡12h后,用自来水冲洗15+次,最后用双蒸水过3+次,先烘干,再用,铝箔纸包覆瓶盖,高温高压蒸汽灭菌,放在烘箱中烘干,使用之前,在超净台上用紫外照射30min后,可使用。

c. 做完实验后应检查细胞使用的枪头、吸管是否足够,若发现不多或不足,应提醒细胞房准备人员准备物品,切勿待仅存时候再着急。当超净台上枪头、吸管量少时,应从烘箱中取灭菌后的物品,放入超净台,紫外照射杀菌。(烘箱中物品是热的,立即使用除了存在污染问题,由于热胀冷缩,量程变化对实验有所影响。)

3) 细胞培养问题

a. 复苏细胞

(1) 取出冷冻管后,须立即放入37C水槽中快速解冻,轻摇冷冻管使其在1分钟内全部融化,并注意水面不可超过冷冻管盖沿,否则易发生污染情形。另冷冻管由液氮桶中取出解冻时,必须注意安全,预防冷冻管之爆裂。

(2) 取出0.9ml解冻细胞悬浮液,缓缓加入有培养基的培养容器内(稀释比例1:10~1:15),混合均匀,放入CO2培养箱。24h后,更换培养基。

b. 细胞离心

欲回收动物细胞,其离心速率一般为300xg (约1,000rpm),5 - 10分钟,过高之转速,将造成细胞死亡

c. 细胞传代

(1) 吸掉旧培养基

(2) 用PBS洗涤细胞1~2次

(3) 加入Trpsin-EDTA溶液37℃作用数分钟,吸掉Trypsin-EDTA溶液(若不移除,则在作用后加入2倍体积含血清的新鲜培养基终止Trpsin作用,离心后再吸掉上清液)

(4) 轻拍培养瓶使细胞自瓶壁自然脱落,加入适量培养基,以吸管上下吸放数次打散细胞团块,混合均匀后,依稀释比例转移至新的培养瓶中,以正常条件培养。培养瓶在放入培养箱前,请先用70%酒精擦拭表面。手勿接触瓶口,拿皿时请用手指固定上下面,勿接触周边。 d. 细胞冻存

(1) 欲冻存细胞应在生长良好且存活率高的状态下,约为80~90%的密度

(2) 冷冻保存使用的DMSO等级,必须为Tissue culture grade之DMSO(如SigmaD2650),其本身即为无菌状况,第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中,保存于4C,避免反复冷冻解冻造成DMSO之裂解而释出有害物质,并可减少污染之机会。若要过滤DMSO,则须使用耐DMSO之Nylon材质滤膜。

(3) 动物细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含5 - 10% DMSO

(dimethyl sulfoxide) 和90 -95%原来细胞生长用之新鲜培养基均匀混合之。注意:由于DMSO稀释时会放出大量热能,故不可将DMSO直接加入细胞液中,必须使用前先行配制完成。

(4) 细胞冻存方法

冷冻保存方法一:冷冻管置于4℃30~60分钟 → (-20 ℃ 30分钟) → -80℃16~18小时(或隔夜)→液氮槽vapor phase长期储存。

冷冻保存方法二: 冷冻管置于已设定程序之可程序降温机中每分钟降1-3 C 至–80 C 以下,再放入液氮槽vaporphase长期储存。*-20 ℃不可超过1小时,以防止冰晶过大,造成细胞大量死亡,亦可跳过此步骤直接放入-80C冰箱中,惟存活率稍微降低一些。

e. 细胞污染

细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉浆菌。主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。严格无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染之最好方法。

微生物污染,加入相应抗生素或者直接弃之。

支原体污染,不能由肉眼观察出来,直接灭菌后丢弃,以避免污染其它细胞株。支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数,代谢及研究任一数据。故进行实验前,必须确认细胞为mycoplasma-free,实验结果之数据方有意义。

细胞房注意事项 (1) 培养箱取放物品前,用酒精清洁手套,尽量缩短开门时间和减少开门次数

(2) 培养瓶/皿放入培养箱前,用酒精消毒表面,擦干残留酒精,避免培养箱内滞留过多乙醇蒸气

(3) 使用人数多时,2人共用一层培养箱,平时每人一层,按预定位置摆放培养瓶/皿,摆放整齐,方便查找,以避免长时间敞开培养箱

(4) 频繁将细胞拿出观察,容易给培养箱造成污染,同时也会影响细胞生长条件恒定

(5) 超净台使用前用紫外灯照射30min,使用完毕后也需用紫外照射30min后关闭紫外灯。使用前后需用酒精棉球擦拭工作区消毒,所有物品放入超净台内使用前均应消毒。使用完毕,请清洁操作台,将垃圾用垃圾袋装好拿出细胞房丢弃。吸管请取出棉花后完全浸泡在酸液中

(6) 酒精和酒精棉球,以及各类细胞房用品细胞房内存放量不足时,请及时补给或通知负责人

(7) 从冰箱去房物品动作要迅速,关门时要检查门是否关好,按类别存放试剂

(8) 分装好的血清长时间保存于-20℃,使用前放在4℃解冻。原则上解冻好的血清应全部配成含血清的培养基备用,若有生育,则暂时于4℃并尽快使用。尽量不要使用他人开过的血清,以免交叉污染

(9) 分装好的胰酶,取用时标记自己名字,尽量不要用他人开的胰酶,以免交叉污染

(10) 细胞房实行值班制,由使用细胞房的同学轮流负责细胞房的清洁、培养箱清洁及各物品的补给。物品补给随时进行,细胞房清洁每周一次,培养箱清洁每两周一次。(具体安排安排中)