细胞原代培养实验报告

细胞的原代培养实验报告一、实验目的细胞原代培养是指从机体取出细胞、组织或器官后，通过机械或酶学方法分散成单个细胞，在体外进行培养的过程。

本次实验的目的是掌握细胞原代培养的基本技术和方法，观察细胞在体外的生长和形态变化，为进一步的细胞生物学研究奠定基础。

二、实验原理细胞原代培养的关键在于保持细胞的活性和完整性，同时提供适宜的生长环境。

通常采用酶消化法或组织块培养法来获取单细胞或细胞团。

在培养过程中，细胞需要充足的营养物质、适宜的温度、pH 值和气体环境，以促进细胞的生长和分裂。

三、实验材料1、实验动物：新生小鼠2、试剂和培养基：DMEM 培养基、胎牛血清、胰蛋白酶、EDTA、青霉素链霉素溶液、PBS 缓冲液等3、实验器材：超净工作台、CO₂培养箱、倒置显微镜、离心机、移液器、培养瓶、培养皿、手术器械等四、实验步骤1、取材处死新生小鼠，用 75%酒精消毒其腹部皮肤。

用手术剪剪开腹部皮肤和肌肉，取出肝脏组织，置于预冷的 PBS缓冲液中。

2、组织处理将肝脏组织转移至培养皿中，用 PBS 缓冲液冲洗 2-3 次，去除血液和杂质。

用眼科剪将组织剪成 1-2mm³的小块。

3、酶消化将组织小块转移至离心管中，加入适量的胰蛋白酶EDTA 溶液，置于 37℃水浴中消化 15-20 分钟，期间每隔 5 分钟轻轻振荡一次。

消化结束后，加入等量的含血清的培养基终止消化，用移液器轻轻吹打制成细胞悬液。

4、细胞过滤将细胞悬液通过 200 目滤网过滤，去除未消化的组织块和细胞团。

5、细胞计数和接种吸取少量细胞悬液，加入台盼蓝染液，在显微镜下计数活细胞数。

根据细胞计数结果，将细胞以适当的密度接种于培养瓶或培养皿中，置于 CO₂培养箱中培养。

6、培养和观察培养 24 小时后，在倒置显微镜下观察细胞的贴壁情况。

每隔 2-3 天更换一次培养基，观察细胞的生长和形态变化。

五、实验结果1、细胞贴壁情况培养 24 小时后，大部分细胞已贴壁，呈圆形或多边形，贴壁细胞周围有光晕。

实验报告-细胞原代培养实验细胞生物学实验报告实验三细胞原代培养1引言1.1 实验目的1. 理解细胞原代培养原理。

2. 了解细胞原代培养的应用。

3. 独立进行鼠胚和鸡胚细胞原代培养操作。

4. 巩固无菌操作技术。

1.2 实验原理细胞原代培养：原代培养组织直接从机体获取后，通过组织块长出单层细胞或者用酶消化或机械方法将组织分散成单个细胞开始培养，严格意义上的原代培养指在首次传代前的培养，但通常把第一代至第十代以内的培养细胞统称为原代细胞培养。

2实验仪器、试剂及操作步骤2.1 实验仪器超净工作台、倒置相差显微镜、CO2培养箱、酒精灯、酒精棉球、酒精喷壶、试管架、滴管筒（头）、废液缸、手术小直剪刀、眼科直镊子、眼科弯镊子、玻璃平皿、培养瓶等2.2 实验试剂DMEM培养基、D-Hanks缓冲液、血清、抗生素、胰蛋白酶消化液等2.3 实验材料动物：9至12日龄的鸡胚、15日龄的鼠胚2.4 实验步骤A.鸡胚成纤维细胞的原代培养1.实验室和超净工作台消毒，紫外照射20Min左右。

2.穿好实验服，进无菌室前穿鞋套、洗手。

3.关闭紫外灯，开日光灯和开风机，超净工作台台面应整洁，用75%酒精擦双手消毒，擦拭台面。

4.在D-Hanks缓冲液中按1：100的比例加入双抗。

5.取9-12日龄鸡胚，用照蛋器照检，画出气室边界和胎位。

将鸡胚置于鸡卵架上，用酒精棉球擦拭蛋壳。

6.用镊子在鸡蛋气室位置敲一道划痕，然后用镊子小心去除气室部位的蛋壳。

7.换用洁净的无菌镊子揭开膜，取出鸡胚至灭菌的培养皿中，用D-Hanks缓冲液冲洗鸡胚。

8.用眼科剪去除鸡胚的头部、四肢以及内脏，然后用D-Hanks缓冲液充分洗涤躯干。

9.将躯干置于小平皿盖中，用D-Hanks缓冲液至少洗涤3次，充分弃除红细胞。

10.用无菌眼科小剪刀将鸡胚躯干剪成1mm3的碎块。

在胚胎组织块中加入1mL的胎牛血清，用滴管吸取组织块接种到培养瓶内。

在培养瓶中放置10-15个组织块。

细胞生物学实验报告实验三细胞原代培养1引言1.1 实验目的1. 理解细胞原代培养原理。

2. 了解细胞原代培养的应用。

3. 独立进行鼠胚和鸡胚细胞原代培养操作。

4. 巩固无菌操作技术。

1.2 实验原理细胞原代培养：原代培养组织直接从机体获取后，通过组织块长出单层细胞或者用酶消化或机械方法将组织分散成单个细胞开始培养，严格意义上的原代培养指在首次传代前的培养，但通常把第一代至第十代以内的培养细胞统称为原代细胞培养。

2实验仪器、试剂及操作步骤2.1 实验仪器超净工作台、倒置相差显微镜、CO2培养箱、酒精灯、酒精棉球、酒精喷壶、试管架、滴管筒（头）、废液缸、手术小直剪刀、眼科直镊子、眼科弯镊子、玻璃平皿、培养瓶等2.2 实验试剂DMEM培养基、D-Hanks缓冲液、血清、抗生素、胰蛋白酶消化液等2.3 实验材料动物：9至12日龄的鸡胚、15日龄的鼠胚2.4 实验步骤A.鸡胚成纤维细胞的原代培养1.实验室和超净工作台消毒，紫外照射20Min左右。

2.穿好实验服，进无菌室前穿鞋套、洗手。

3.关闭紫外灯，开日光灯和开风机，超净工作台台面应整洁，用75%酒精擦双手消毒，擦拭台面。

4.在D-Hanks缓冲液中按1：100的比例加入双抗。

5.取9-12日龄鸡胚，用照蛋器照检，画出气室边界和胎位。

将鸡胚置于鸡卵架上，用酒精棉球擦拭蛋壳。

6.用镊子在鸡蛋气室位置敲一道划痕，然后用镊子小心去除气室部位的蛋壳。

7.换用洁净的无菌镊子揭开膜，取出鸡胚至灭菌的培养皿中，用D-Hanks缓冲液冲洗鸡胚。

8.用眼科剪去除鸡胚的头部、四肢以及内脏，然后用D-Hanks缓冲液充分洗涤躯干。

9.将躯干置于小平皿盖中，用D-Hanks缓冲液至少洗涤3次，充分弃除红细胞。

10.用无菌眼科小剪刀将鸡胚躯干剪成1mm3的碎块。

在胚胎组织块中加入1mL的胎牛血清，用滴管吸取组织块接种到培养瓶内。

在培养瓶中放置10-15个组织块。

11.在培养瓶的另一侧面加入完全培养基，注意不要冲到组织块。

原代细胞培养实验报告实验名称：原代细胞培养实验实验目的：1.掌握原代细胞培养的基本技术和方法；2.观察和记录原代细胞在体外培养过程中的生长和变化；3.学习和探究细胞培养对细胞形态、功能和特性的影响。

实验材料和方法：1.实验材料：原代细胞，培养基，培养皿，培养瓶，培养箱等；2.实验方法：a.准备工作：消毒实验区域，准备适宜的培养条件；b.培养器皿预处理：将培养皿和培养瓶加热至高温，使其表面杀菌；c.细胞移植：用适量的培养基将原代细胞移植至培养皿或培养瓶中；d.细胞培养：将细胞培养在恒温恒湿的培养箱中，定期观察和记录细胞的生长情况；e.细胞传代：当细胞达到一定密度时，用消化液将细胞从原培养皿中剥离，并转移到新的培养皿中，促进细胞的继续生长和繁殖。

实验结果与分析：在进行原代细胞培养实验的过程中，我们发现原代细胞在培养基中可以维持一定的形态和生物活性。

经过一段时间的培养，细胞开始出现贴壁生长，并形成单层密集的细胞群。

这时，细胞的数量明显增加，可见其细胞分裂和增殖的效果。

细胞形态也逐渐变得规整，细胞质较为丰满，细胞核染色质着色精细。

随着培养的时间推移，细胞的代谢活动逐渐增强，细胞数量持续增加。

细胞形态和功能逐渐分化，并出现特定的细胞类型，如心肌细胞、肝细胞等。

这表明原代细胞在体外培养的过程中，依然能够保持其特定的细胞类型和功能特性。

然而，我们也发现在长时间的培养过程中，细胞的生长速度逐渐放缓，甚至停滞。

细胞形态也开始出现变异和退化，如细胞形状异常、质量变差等。

这可能是由于细胞的老化和突变导致，同时也与培养条件和传代的次数有关。

结论：通过本次实验，我们成功地进行了原代细胞的培养，并观察到了细胞在体外培养过程中的生长和变化。

我们发现原代细胞能够在适宜的培养条件下，维持其形态和功能的稳定性，并且能够分化成特定的细胞类型。

然而，在长时间的培养过程中，细胞的生长速度逐渐放缓，而细胞的形态也逐渐出现变异和退化。

因此，在进行原代细胞培养时，需要合理控制培养条件和适时进行细胞传代，以保持细胞的生长和特性。

第1篇一、实验目的本实验旨在通过对原代细胞的分离、培养和鉴定，掌握原代细胞培养的基本操作流程，了解原代细胞的生物学特性，并对其进行准确的鉴定，为后续的细胞生物学研究奠定基础。

二、实验原理原代细胞是指直接从生物体内提取的组织细胞，经过分离、培养后形成的细胞群体。

原代细胞保留了其来源组织的遗传和生物学特征，能够反映生物体内细胞的真实状态。

本实验采用组织块培养法分离原代细胞，通过显微镜观察细胞形态、生长状态以及进行细胞表面标志物的检测，对原代细胞进行鉴定。

三、实验材料与仪器1. 实验材料- 新鲜的组织样本- 无菌培养皿、培养瓶- DMEM培养基- FBS（胎牛血清）- 0.25%胰蛋白酶- 10% FBS DMEM培养基- 抗体（CD45、CD34等）- 试剂：二抗、辣根过氧化物酶（HRP）标记的抗体、DAB显色剂等2. 实验仪器- 超净工作台- 倒置显微镜- 恒温培养箱- 冰箱- 低温高速离心机- 分光光度计四、实验方法1. 组织块培养（1）将新鲜的组织样本置于无菌培养皿中，用无菌手术刀将其切成1mm×1mm×1mm的小块。

（2）将组织块置于培养皿中，加入适量DMEM培养基，用移液枪吹打使其分散。

（3）将分散后的组织块转移至无菌培养瓶中，加入适量DMEM培养基和FBS，置于37℃、5%CO2的恒温培养箱中培养。

2. 细胞传代（1）当细胞生长到约80%融合时，用0.25%胰蛋白酶消化细胞。

（2）消化后的细胞用10% FBS DMEM培养基终止消化，离心收集细胞。

（3）弃去上清液，加入适量DMEM培养基重悬细胞，按1:2的比例传代。

3. 细胞形态观察（1）取部分细胞悬液，滴于载玻片上，进行染色。

（2）用倒置显微镜观察细胞形态、生长状态等。

4. 细胞表面标志物检测（1）将细胞用PBS洗涤，离心收集细胞。

（2）加入抗体，4℃孵育1小时。

（3）加入二抗，室温孵育30分钟。

（4）加入DAB显色剂，室温孵育5-10分钟。

一、实验目的1. 熟悉并掌握哺乳动物细胞原代培养的基本操作流程。

2. 学习细胞消化、细胞计数、营养液的配制及酸碱度的调节。

3. 了解无菌操作的重要性，学会分辨死活细胞，掌握细胞计数。

二、实验原理细胞培养是生物学和医学研究的重要手段之一，可分为原代培养和传代培养。

原代培养是指从生物体中取出某种组织或细胞，在人工培养条件下使其生存、生长、繁殖或传代的过程。

细胞培养技术的最大优点是使我们得以直接观察活细胞，并在有控制的环境条件下进行实验，避免了体内实验时的许多复杂因素。

细胞培养可分为原代培养和传代（继代）培养。

直接从体内获取的组织细胞进行首次培养为原代培养；当原代培养的细胞增殖达到一定密度后，则需要做再培养，即将培养的细胞分散后，从一个容器以1：2或其他比率转移到另一个或几个容器中扩大培养，为传代培养，传代培养的累积次数就是细胞的代数。

细胞培养是一种程序复杂、要求条件多而严格的实验性工作。

所有离体细胞的生长都受温度、渗透压、pH值、无机盐等因素的影响。

三、实验材料与试剂1. 实验材料：新生乳鼠肺组织2. 器材：眼科剪、眼科镊、泡器械（直径15cm）、培养皿、动物解剖用的泡沫支架、青霉素瓶、吸管、培养瓶、离心管、废液瓶、倒置显微镜、二氧化碳培养箱、电磁搅拌器3. 试剂：Hank’s液、RPMI-1640液、血清细胞培养液、安尔碘、酒精四、实验步骤1. 取新生乳鼠肺组织，用无菌手术刀将组织切成小块。

2. 将组织块放入装有Hank’s液的培养皿中，用眼科剪和眼科镊轻轻剪碎组织。

3. 将剪碎的组织块移入离心管中，加入适量胰蛋白酶，在37℃水浴中消化10分钟。

4. 将消化后的细胞悬液移入离心管中，1000 rpm离心5分钟，弃上清。

5. 用RPMI-1640液重悬细胞，调整细胞浓度至1×10^6细胞/mL。

6. 将细胞悬液接种于培养皿中，放入二氧化碳培养箱中培养。

7. 每2-3天更换一次培养液，观察细胞生长情况。

实验名称：哺乳动物细胞原代培养与传代培养实验日期： 2023年X月X日实验目的：1. 掌握哺乳动物细胞的原代培养与传代培养的基本操作过程。

2. 理解细胞培养技术在医学研究中的应用及其重要性。

3. 通过实验观察细胞的生长、分裂和形态变化，加深对细胞生物学知识的理解。

实验原理：细胞培养技术是生物学研究的重要手段之一，通过模拟体内生理条件，在人工培养条件下使细胞生存、生长、繁殖或传代。

细胞培养可分为原代培养和传代培养。

原代培养是指直接从体内获取的组织细胞进行首次培养；传代培养是指当原代培养的细胞增殖达到一定密度后，将其分散后转移到另一个或几个容器中扩大培养。

细胞培养技术的优点在于可以直接观察活细胞，并在有控制的环境条件下进行实验，避免了体内实验时的许多复杂因素。

此外，细胞培养可以提供大量生物性状相同的细胞作为研究对象，具有经济、便捷等优点。

实验材料：1. 实验动物：小鼠或大鼠。

2. 组织：肝脏、肾脏、皮肤等。

3. 培养基：DMEM培养基、胎牛血清、青霉素、链霉素。

4. 实验器材：细胞培养瓶、培养皿、移液器、显微镜、吸管、剪刀、镊子等。

实验步骤：一、原代培养1. 处理动物，获取所需组织。

2. 将组织剪碎，用消化酶消化，制成细胞悬液。

3. 将细胞悬液接种到培养瓶中，放入培养箱培养。

4. 观察细胞生长情况，适时更换培养基。

二、传代培养1. 将培养瓶中的细胞用移液器吸出，制成细胞悬液。

2. 计算细胞密度，按比例稀释细胞悬液。

3. 将稀释后的细胞悬液接种到新的培养瓶中，放入培养箱培养。

4. 观察细胞生长情况，适时更换培养基。

实验结果：一、原代培养1. 细胞从接种到培养瓶后，逐渐贴壁生长，形成单层细胞。

2. 细胞形态规则，细胞核清晰可见。

3. 随着培养时间的延长，细胞密度逐渐增加。

二、传代培养1. 细胞从接种到新的培养瓶后，逐渐贴壁生长，形成单层细胞。

2. 细胞形态与原代培养细胞相似，细胞核清晰可见。

3. 随着传代次数的增加，细胞密度逐渐增加。

实验十一细胞的原代培养一、实验目的1、了解细胞体外培养的原理、基本方法。

2、掌握无菌操作方法及注意事项。

3、学习观察体外培养细胞的形态及生长状况。

二、实验原理模仿体内生长环境，使来自机体的细胞、组织、器官能够在人工培养条件下生存、生长、繁殖。

三、实验器材1、纯水设备：纯水仪2、干燥消毒设备：电热干燥箱、高压蒸汽消毒锅、过滤器及0.22 ?m滤膜；3、超净工作台4、培养设备：普通培养箱、CO2培养箱；5、贮存设备：冰箱、液氮罐6、观察设备：倒置显微镜7、其他设备：天平、离心机、水浴锅等培养主要用品1、培养瓶、皿：以玻璃器皿为主，应选择透明度好、无毒、中性硬度玻璃制品（1）培养瓶（2）培养皿2、血球计数板3、眼科剪、镊；实验材料7－14日龄鸡胚（肝素）抗凝血原代培养材料选择幼体组织（尤其是胚胎组织）比成年个体的组织容易培养分化程度低的组织比分化高的容易培养肿瘤组织比正常组织容易培养。

实验试剂1、D'Hanks液KH2PO4 0.06g，NaCl 8.0g，NaHCO3 0.35g，KCl 0.4g，葡萄糖1.0g，Na2HPO4?H2O 0.06g，加H2O至1000ml注：Hank's液可以高压灭菌。

4℃下保存。

2、o．25％胰蛋白酶（D'Hanks液配）3、M199 培养液小牛血清、4．5、青、链霉素6、5％NaHCO3、2％碘酒7、75％酒精8、洗液：由重铬酸钾、浓硫酸和蒸馏水按一定比例配制而成四、实验方法与步骤一）培养前的准备工作1、用品清洗与消毒2、溶液配制与消毒（1）培养液、酶、抗生素等生物活性成分需过滤消毒（2）平衡盐等高压蒸汽消毒3、预热溶液4、工作间及超净台消毒：紫外线、消毒液。

5、洗手和着装6、进入无菌室7、关闭超净工作台内的紫外光灯,点燃酒精灯(一切操作均需在酒精灯火焰下进行)将消毒过的所用物品放入超净工作台中组织块培养法培养鸡心肌细胞步骤1、配M199完全培养液：M199基础培养液90％小牛血清10％青霉素100IU/ml链霉素100?g/ml过滤除菌。

一、实验目的1. 掌握原代细胞培养的基本原理和操作步骤。

2. 学习细胞传代培养的方法和注意事项。

3. 观察细胞在不同培养条件下的生长状态，为后续实验提供基础细胞。

二、实验原理原代细胞培养是指从生物体内取出组织或细胞，经过消化、分离等步骤，在无菌条件下将其培养在适宜的培养基中，使其生长、繁殖的过程。

原代细胞培养是细胞生物学、分子生物学、药理学等领域研究的重要技术手段。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：小鼠肝脏组织、胰蛋白酶、EDTA、DMEM培养基、胎牛血清、青霉素、链霉素、无菌水、细胞培养瓶、培养皿、移液器、显微镜、离心机等。

2. 实验仪器：CO2培养箱、超净工作台、显微镜、离心机、移液器等。

四、实验方法1. 组织处理：将小鼠肝脏组织放入无菌培养皿中，用无菌手术剪将其剪成1mm³大小的组织块。

2. 消化：将组织块放入含有胰蛋白酶和EDTA的消化液中，在37℃水浴中消化5-10分钟。

3. 分离：将消化后的组织块转移到离心管中，加入适量DMEM培养基，用移液器吹打使其分散成单个细胞。

4. 细胞计数：取少量细胞悬液，用血球计数板进行细胞计数。

5. 细胞接种：将细胞悬液接种到培养瓶中，放入CO2培养箱中培养。

6. 细胞传代：待细胞生长至单层时，用胰蛋白酶消化细胞，按照1：2的比例进行传代培养。

7. 观察细胞生长状态：定期观察细胞生长状态，记录细胞数量、形态等变化。

五、实验结果1. 细胞计数：接种后24小时，细胞开始贴壁生长，48小时后细胞数量明显增加。

2. 细胞传代：传代培养过程中，细胞生长状态良好，细胞数量、形态等指标均符合要求。

3. 细胞生长状态：细胞呈多边形，排列整齐，细胞间隙较小，细胞核清晰可见。

六、实验讨论1. 原代细胞培养的成功关键在于无菌操作和适宜的培养条件。

在实验过程中，要严格按照无菌操作规程进行，确保细胞培养环境的无菌。

2. 细胞传代培养是维持细胞生长和繁殖的重要手段。

在传代过程中，要选择合适的消化时间，避免过度消化或消化不足。

细胞原代培养细胞生物学实验报告细胞原代培养实验报告一、实验目的本实验的主要目的是进行细胞原代培养，通过对细胞的体外生长和繁殖过程进行观察和研究，以了解细胞的生物学特性，探索细胞生长、分化和凋亡的机制，为细胞生物学、肿瘤学、药理学等领域的研究提供实验基础。

二、实验原理细胞原代培养是指将组织样本通过一定的消化和培养技术，获得并培养单细胞悬液的过程。

这些细胞可以在体外生长和繁殖，并保持一定的生物学特性。

通过细胞原代培养，我们可以对细胞的生长、分化和凋亡过程进行深入研究，了解细胞的生物学特性，探索疾病的发病机制和药物的作用机制。

三、实验步骤1.组织样本准备：选取适当的组织样本，用PBS洗涤并用剃毛刀除去表面脂肪和结缔组织，切成1-2mm3的小块。

2.消化：将组织块加入含有胰蛋白酶和EDTA的消化液中，在37℃下消化10-15分钟。

期间需轻轻摇动几次以促进细胞释放。

3.细胞悬液制备：消化完成后，将消化液过滤至100目筛网，用PBS洗涤并离心（1000rpm，5分钟）去除上清液。

加入适量培养基制成细胞悬液。

4.细胞培养：将细胞悬液接种到培养瓶中，加入适量培养基进行培养。

在培养期间需注意观察细胞的生长情况和更换培养基。

5.细胞传代：当细胞生长到一定密度时，可以进行传代。

用胰蛋白酶消化细胞并离心收集，加入适量培养基制成细胞悬液，按比例接种到新的培养瓶中。

6.实验记录：在整个实验过程中，需要对细胞的生长情况、形态学变化等进行详细记录。

同时，需要定期拍照记录细胞的生长情况。

7.结果分析：通过对细胞的生长情况、形态学变化等进行观察和分析，可以得出有关细胞生物学特性的结论。

四、实验结果及数据分析1.实验结果（请在此插入不同时间点的细胞生长照片）通过观察和记录细胞的生长情况，我们发现原代细胞在接种后的前几天内处于适应期，细胞数量增长较慢。

随后，细胞数量开始加速增长，并逐渐形成集落。

传代后，细胞的生长速度又逐渐减缓，但仍然保持稳定增长。

第1篇一、实验目的1. 掌握细胞培养的基本操作技术，包括原代培养和传代培养。

2. 了解细胞培养过程中所需的设备、试剂及操作步骤。

3. 掌握细胞培养环境的调控，如温度、pH值、氧气等。

4. 通过实验观察细胞生长、增殖和形态变化，了解细胞生物学特性。

二、实验原理细胞培养是一种在体外模拟生物体内环境，使细胞在人工培养条件下生长、繁殖或传代的技术。

细胞培养技术在生物学、医学、药理学等领域具有广泛的应用。

细胞培养可分为原代培养和传代培养。

原代培养是指从生物体内取出组织或细胞，在体外进行首次培养；传代培养是指将原代培养的细胞分散后，以一定比例转移到新的培养容器中，继续培养。

三、实验材料1. 培养基：DMEM培养基、胎牛血清、抗生素等。

2. 培养器具：培养皿、培养瓶、移液枪、吸管等。

3. 设备：恒温培养箱、超净工作台、显微镜等。

4. 试剂：胰蛋白酶、EDTA、磷酸盐缓冲盐溶液（PBS）等。

四、实验步骤1. 原代培养（1）取动物组织，用PBS清洗，去除杂质。

（2）将组织剪成小块，加入胰蛋白酶，37℃水浴消化。

（3）消化至组织块分散成单个细胞，用PBS清洗，去除胰蛋白酶。

（4）加入胎牛血清，终止消化。

（5）用移液枪将细胞悬液均匀接种于培养皿或培养瓶中。

（6）将培养皿或培养瓶放入恒温培养箱中，37℃、5%CO2条件下培养。

2. 传代培养（1）观察原代培养的细胞生长情况，当细胞密度达到80%时，进行传代。

（2）用胰蛋白酶或EDTA消化细胞。

（3）将消化后的细胞悬液加入PBS，清洗，去除胰蛋白酶或EDTA。

（4）加入胎牛血清，终止消化。

（5）用移液枪将细胞悬液均匀接种于新的培养皿或培养瓶中。

（6）将培养皿或培养瓶放入恒温培养箱中，37℃、5%CO2条件下培养。

3. 细胞培养环境调控（1）温度：保持恒温培养箱温度在37℃。

（2）pH值：定期检测培养液的pH值，维持pH值在7.2-7.4。

（3）氧气：保持培养箱内5%CO2，以维持细胞生长所需的氧气浓度。

一、实验目的1. 掌握原代细胞培养的基本原理和操作步骤。

2. 熟悉细胞培养所需的设备和试剂。

3. 了解细胞培养过程中可能遇到的问题及解决方法。

二、实验原理原代培养是指从生物体内取出组织或细胞，在体外模拟体内生理条件，使其生存、生长、繁殖或传代的过程。

原代培养细胞与体内细胞在形态结构和功能活动上具有相似性，适用于研究细胞生长、代谢、分化等生物学特性。

三、实验材料1. 实验动物：小鼠、大鼠等。

2. 组织：肝脏、脾脏、皮肤等。

3. 试剂：胰蛋白酶、EDTA、胎牛血清、DMEM培养基等。

4. 设备：超净工作台、细胞培养箱、倒置显微镜、移液器、离心机等。

四、实验步骤1. 组织块制备（1）取动物组织，用生理盐水清洗，去除血污。

（2）将组织剪成1mm×1mm×1mm的小块。

（3）将组织块置于含有胰蛋白酶的消毒培养皿中，37℃水浴消化15-20分钟。

（4）加入适量胎牛血清终止消化，用吸管吹打组织块，使其分散成单个细胞。

2. 细胞接种（1）将分散后的细胞悬液移至含有DMEM培养基的培养瓶中，置于细胞培养箱中培养。

（2）观察细胞生长情况，适时更换新鲜培养基。

3. 细胞传代（1）待细胞生长至单层时，用胰蛋白酶消化细胞。

（2）收集消化后的细胞，加入胎牛血清终止消化。

（3）将细胞悬液接种至新的培养瓶中，继续培养。

4. 细胞观察（1）使用倒置显微镜观察细胞形态、生长状态等。

（2）对细胞进行染色，如台盼蓝染色、Giemsa染色等，观察细胞核、细胞器等结构。

五、实验结果1. 原代细胞在培养过程中呈现典型的贴壁生长，细胞形态为多边形、梭形等。

2. 细胞生长速度较快，2-3天即可达到80%的融合度。

3. 细胞传代过程中，细胞生长状态良好，无明显形态变化。

六、实验讨论1. 原代细胞培养过程中，无菌操作至关重要。

应确保所有操作均在超净工作台内进行，避免污染。

2. 培养基的配制和质量直接影响细胞生长。

应严格按照试剂说明书配制培养基，并确保其质量。

实验名称：细胞原代培养与传代培养实验日期：2023年4月10日实验目的：1. 熟悉哺乳动物细胞原代培养和传代培养的基本操作流程。

2. 掌握细胞培养技术的基本原理和注意事项。

3. 了解细胞生长和增殖的基本规律。

实验原理：细胞培养技术是一种在人工条件下模拟细胞生长环境的实验方法。

通过细胞培养，我们可以直接观察活细胞，研究细胞的生长、分化、代谢和功能等生物学特性。

细胞培养可分为原代培养和传代培养。

原代培养是指直接从生物体中取出组织或细胞进行培养，而传代培养则是指将原代培养的细胞增殖到一定密度后，将其分散到新的培养容器中进行培养。

实验材料：1. 哺乳动物组织（如小鼠胚胎成纤维细胞）2. DMEM培养基3. 胎牛血清4. 0.25%胰蛋白酶5. 75%酒精6. 灭菌棉签7. 培养皿8. 培养箱9. 显微镜实验步骤：一、原代培养：1. 取出组织，用无菌手术剪将其剪成小块。

2. 将组织块放入含有胎牛血清的DMEM培养基中，用无菌手术剪轻轻搅拌，使组织块分散成细胞。

3. 将分散好的细胞悬液用无菌吸管转移至培养皿中。

4. 将培养皿放入培养箱中，在37℃、5%CO2条件下培养。

二、传代培养：1. 当原代培养的细胞长满培养皿时，用0.25%胰蛋白酶消化细胞。

2. 将消化好的细胞悬液用无菌吸管转移至新的培养皿中。

3. 将培养皿放入培养箱中，在37℃、5%CO2条件下培养。

三、观察与记录：1. 使用显微镜观察细胞的生长情况，记录细胞的形态、数量和生长速度。

2. 每天观察并记录细胞生长情况，直至实验结束。

实验结果：1. 原代培养过程中，细胞从组织块中分离出来，逐渐增殖，形成单层细胞。

2. 传代培养过程中，细胞继续增殖，细胞数量逐渐增加。

3. 细胞在培养过程中呈现典型的成纤维细胞形态，细胞核呈椭圆形，细胞质丰富。

实验结论：1. 成功进行了哺乳动物细胞的原代培养和传代培养。

2. 掌握了细胞培养技术的基本原理和操作流程。

3. 了解细胞生长和增殖的基本规律。

细胞原代培养实验报告一、实验目的本实验旨在通过细胞原代培养实验，学习细胞培养技术，了解细胞生长特性和生理功能，以及评估细胞毒性和细胞增殖能力。

二、实验原理细胞原代培养是指从组织或器官中分离出的一种或多种类型的原代细胞在无血清条件下进行传代培养。

该技术可以用于研究不同类型的细胞生长特性、生理功能和分子机制。

在无血清条件下进行原代细胞培养可以避免血清成分对实验结果的影响，并且有助于减少非特异性因素对实验结果的干扰。

三、实验步骤1. 准备工作：将所需物品（包括培养皿、离心管、移液器、显微镜等）消毒，并将所有物品放置在无菌条件下。

2. 组织取样：选择需要研究的组织或器官，如肝脏、肺组织等，并将其切成小块。

3. 组织分离：将组织块放入含有酶类消化液（如胰蛋白酶）的培养皿中，将其放置在37℃的恒温培养箱中进行消化。

消化时间根据不同的组织类型而异，通常需要30分钟至1小时。

4. 细胞分离：将消化后的组织过筛，用离心管收集细胞沉淀，并用生理盐水洗涤。

5. 细胞培养：将细胞沉淀转移至含有完整培养基（如DMEM/F12）的无菌培养皿中，并加入适量的血清替代物（如B27），以促进细胞生长和增殖。

将培养皿放置在37℃、5% CO2、95%湿度的恒温培养箱中进行传代培养。

6. 细胞检测：通过显微镜观察细胞形态和数量变化，并使用MTT法或CCK-8法评估细胞增殖能力。

同时可以使用流式细胞术等技术对细胞进行表型和功能分析。

四、实验结果通过原代细胞培养实验，我们成功地从肺组织中分离出了一种类型的原代肺成纤维细胞（primary lung fibroblasts）。

在无血清条件下进行传代培养后，我们观察到细胞数量逐渐增加，并且细胞形态发生了明显的变化。

同时，我们使用MTT法评估了细胞增殖能力，并发现细胞在培养24小时后开始快速增殖，直到培养72小时时达到峰值。

此外，我们还使用流式细胞术对原代肺成纤维细胞进行了表型和功能分析，并发现其具有一定的合成和分泌基质蛋白的能力。

细胞生物学实验报告细胞原代培养姓名：学号：班级：专业：同组成员：一、实验原理细胞培养是生物学和医学研究中最常用的手段之一，可分为原代培养和传代培养两种。

原代培养是直接从生物体获取组织或器官的一部分进行培养。

由于培养的细胞刚刚从活体组织分离出来，故更接近于生物体内的生活状态。

这一方法可为研究生物体细胞的生长、代谢、繁殖提供有力的手段。

同时也为以后传代培养创造条件。

原代培养的方法：1、组织块法在平皿中用弯头剪把组织尽量剪碎，每个组织块小于1mm3大小。

用Hanks 液洗涤2—3次，自然沉淀。

用吸管吸去上清液。

将组织块贴于培养瓶进行培养。

2、酶消化法将1mm3大小的组织块放入1个三角瓶内加入10—30ml的0.125%的胰蛋白酶。

370C磁棒搅拌消化20－30分钟。

然后终止消化。

用几层无菌纱布过滤。

取过滤液，离心800rpm 5—10分钟收集细胞。

弃上清，加入带有双抗的培养基，放入培养瓶培养。

取材注意事项：取材要注意新鲜和保鲜。

取材应严格无菌。

取材和原代细胞制作时，要用锋利的器械，如手术刀或剃须刀片切碎组织，尽可能减少对细胞的机械损伤。

要仔细去除所取材料上的血液（血块）、脂肪、坏死组织及结缔组织，切碎组织时应避免组织干燥，可在含少量培养液的器皿中进行。

取材应注意组织类型、分化程度、年龄等，一般来讲，胚胎组织较成熟个体组织容易培养，分化低的较分化高的组织容易生长，肿瘤组织较正常组织容易培养。

二、实验目的1、理解细胞原代培养原理2、熟悉细胞原代培养方法与过程3、了解细胞原代培养的应用4、独立进行细胞原代培养操作三、实验材料手术小直剪刀、眼科直镊子、眼科弯镊子、玻璃平皿、培养瓶、试管、移液管、巴斯德吸管、废液缸、75%酒精棉球、酒精灯。

动物：9-12日龄的鸡胚蛋四、实验步骤1、购买9-12日龄鸡胚蛋。

放入孵化箱中孵养待用。

2、取鸡胚蛋一枚放入超净工作台中，用酒精棉球擦拭鸡蛋壳后，气室处擦拭两遍，用镊子小心去除气室部分的蛋壳。

第1篇一、实验目的1. 掌握细胞培养的基本操作流程，包括原代培养和传代培养。

2. 了解细胞培养过程中的无菌操作规范。

3. 观察细胞在体外培养过程中的生长、增殖和形态变化。

二、实验原理细胞培养是从生物体中取出某种组织或细胞，模拟体内生理条件，在人工培养条件下使其生存、生长、繁殖或传代的过程。

细胞培养技术的最大优点是使我们得以直接观察活细胞，并在有控制的环境条件下进行实验，避免了体内实验时的许多复杂因素，还可以与体内实验互为补充。

三、实验用品1. 仪器及器材：显微镜、载玻片、盖玻片、移液枪、培养皿、无菌操作台、无菌操作箱、细胞培养箱、CO2培养箱、细胞计数器等。

2. 试剂：细胞培养液、胰蛋白酶、胎牛血清、抗生素、无菌水等。

四、实验步骤1. 原代细胞培养（1）取动物组织，剪碎后用胰蛋白酶消化，制成细胞悬液。

（2）将细胞悬液加入培养皿，置于CO2培养箱中培养。

（3）观察细胞生长情况，每隔24小时更换一次培养液。

2. 传代培养（1）当细胞达到一定密度时，用胰蛋白酶消化细胞，制成细胞悬液。

（2）将细胞悬液按1：2的比例传代到新的培养皿中。

（3）观察细胞生长情况，每隔24小时更换一次培养液。

3. 细胞计数（1）取适量细胞悬液，加入细胞计数器。

（2）计数细胞数量，计算细胞密度。

4. 细胞形态观察（1）取细胞培养皿，用盖玻片覆盖。

（2）置于显微镜下观察细胞形态、生长情况。

五、实验结果1. 细胞生长情况：原代细胞在培养皿中生长良好，细胞密度逐渐增加。

传代培养后，细胞生长速度略有下降，但总体状况良好。

2. 细胞形态：细胞呈多边形，细胞核清晰可见，细胞间连接紧密。

3. 细胞计数：细胞密度为1×10^6个/mL。

六、实验结论1. 成功进行了原代细胞培养和传代培养。

2. 细胞在体外培养过程中生长良好，细胞形态正常。

3. 细胞培养技术为生物学研究提供了有力工具。

七、实验总结本次实验成功掌握了细胞培养的基本操作流程，了解了无菌操作规范，并观察了细胞在体外培养过程中的生长、增殖和形态变化。

细胞原代培养实验报告细胞原代培养实验报告细胞原代培养是一种常用的实验方法，用于研究细胞的生物学特性和功能。

本实验旨在通过原代培养的方式，观察和分析细胞在体外环境下的生长和变化。

我们选择了小鼠胚胎成纤维细胞作为实验对象，以下是实验的详细步骤和结果分析。

实验步骤：1. 细胞分离：将小鼠胚胎取出，用无菌PBS洗涤去除血液和其他污染物。

然后将胚胎组织切碎，并用胰酶和胆汁酸溶液进行消化。

最后通过过滤器筛选，获取单个细胞悬浮液。

2. 细胞培养：将细胞悬浮液转移到含有培养基的培养皿中，加入适量的血清和抗生素。

将培养皿放入恒温培养箱中，保持适宜的温度、湿度和二氧化碳浓度。

3. 细胞观察：每天观察细胞的生长情况，记录细胞数量和形态的变化。

使用显微镜观察细胞的形态和结构，拍摄照片以备后续分析。

4. 细胞传代：当细胞达到80-90%的密度时，使用胰酶和胆汁酸溶液将细胞从培养皿上剥离下来。

将细胞悬浮液转移到新的培养皿中，加入新的培养基，并按照相同的条件进行培养。

实验结果：在细胞培养的过程中，我们观察到小鼠胚胎成纤维细胞的生长和变化。

初始阶段，细胞悬浮液中的细胞数量较少，呈现单个细胞的状态。

随着培养时间的延长，细胞开始聚集成群，形成细胞聚落。

在观察细胞形态时，我们发现细胞呈现出典型的成纤维细胞形态特征。

细胞体积较小，形状呈椭圆或长条状，有较长的细胞突起。

细胞质呈现出丰富的胞浆，胞核位于细胞的中央位置。

随着细胞的传代，我们观察到细胞的增殖速度逐渐加快。

细胞密度逐渐增加，细胞聚落的大小也逐渐增大。

同时，我们还观察到细胞形态的变化，细胞突起的数量和长度有所增加。

实验讨论：细胞原代培养是一种常用的实验方法，可以用于研究细胞的生长、增殖和分化等生物学特性。

在本实验中，我们成功地将小鼠胚胎成纤维细胞进行原代培养，并观察到了细胞的生长和变化。

细胞的形态特征对于细胞的功能和特性具有重要的指示意义。

在本实验中，我们观察到小鼠胚胎成纤维细胞呈现出典型的成纤维细胞形态特征，这与之前的研究结果一致。

第1篇一、实验目的1. 掌握细胞培养的基本原理和方法；2. 了解细胞培养过程中的无菌操作和细胞传代技术；3. 观察细胞在体外培养过程中的生长和变化。

二、实验原理细胞培养是将细胞从生物体中取出，在体外模拟生物体内环境，使其在适宜的条件下生长、繁殖和传代。

细胞培养技术是生物学研究的重要手段，广泛应用于医学、生物工程等领域。

三、实验材料与仪器1. 实验材料：小鼠脾脏细胞、胰蛋白酶、细胞培养液、DMSO（二甲基亚砜）、培养瓶、移液器、细胞计数板、显微镜等。

2. 仪器：超净工作台、细胞培养箱、离心机、冰箱等。

四、实验步骤1. 细胞复苏：将冷冻保存的细胞复苏，解冻后用移液器吹打均匀，加入适量培养液，调整细胞浓度；2. 细胞接种：将复苏后的细胞接种于培养瓶中，放入细胞培养箱培养；3. 细胞传代：待细胞长满培养瓶后，用胰蛋白酶消化细胞，调整细胞浓度后，重新接种于新的培养瓶中；4. 细胞观察：定期观察细胞生长情况，记录细胞形态、数量和生长速度；5. 细胞冻存：将细胞传代后，取适量细胞加入DMSO，冷冻保存。

五、实验结果与分析1. 细胞复苏：复苏后的细胞呈圆形，细胞膜完整，无碎片；2. 细胞接种：接种后的细胞在培养箱中生长良好，细胞形态规则，细胞间连接紧密；3. 细胞传代：传代后的细胞生长迅速，细胞数量逐渐增加；4. 细胞观察：细胞在体外培养过程中，形态、数量和生长速度逐渐稳定。

六、实验结论1. 成功掌握了细胞培养的基本原理和方法；2. 掌握了细胞培养过程中的无菌操作和细胞传代技术；3. 观察到细胞在体外培养过程中的生长和变化。

七、实验讨论1. 细胞培养过程中，无菌操作至关重要，应严格遵循无菌操作规程；2. 细胞传代时，应选择合适的胰蛋白酶浓度和消化时间，以减少对细胞的损伤；3. 细胞培养过程中，应定期观察细胞生长情况，及时调整培养条件，以保证细胞生长良好。

八、实验总结本次实验成功进行了细胞培养，掌握了细胞培养的基本原理和方法，为后续的细胞学研究奠定了基础。