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微生物限度检查法1范围本标准适用于非规定灭菌制剂及其原料、辅料检查项目包括细菌数、霉菌及酵母菌数、控制菌检查及活螨的检查。
2依据标准《中华人民共和国药典》《药品微生物学检验手册》YBB00132002药品包装用复合膜、袋通则3人员资质及培训3.1从事药品微生物检验工作的负责人应具备微生物学或相近专业知识的教育背景。
3.2检验人员应依据所在岗位和职责接受相应的培训，在确认可以承担某一试验前，不能独立从事该项微生物试验。
应保证所有人员在上岗前接受胜任工作所必需的设备操作、微生物检验技术和实验室生物安全等方面的培训，经考核合格后方可上岗，同时，实验室应制定所有级别实验人员的继续教育计划。
3.3检验人员必须熟悉相关检验方法、程序、检测目的和结果评价。
3.4实验室应通过参加内部质量控制、能力验证或使用标准菌株等方法客观评价检验人员的能力，必要时对其进行再培训并重新评估。
当使用一种非经常使用的方法或技术时，有必要在检测前确认微生物检测人员的操作技能。
4培养基4.1培养基的制备4.1.1培养基可按处方配制。
也可使用按处方生产的符合规定的脱水培养基。
4.1.2在制备培养基时，应选择质量符合要求的脱水培养基或单独配方组分进行配制。
脱水培养基应附有处方和使用说明，配制时应按使用说明上的要求操作以确保培养基的质量符合要求，不得使用结块或颜色发生改变的脱水培养基。
4.1.3脱水培养基或单独配方组分应在适当的条件下贮藏，如低温、干燥和避光，所有的容器应密闭，尤其是盛放脱水培养基的容器。
商品化的成品培养基除了应附有处方和使用说明外，还应注明有效期、贮藏条件、适用性检查试验的质控菌和用途。
4.1.4为保证培养基质量的稳定可靠，各脱水培养基或各配方组分应准确称量，并要求有一定的精确度。
配制培养基最常用的溶剂是纯化水，特殊情况下，可能需要去离子水和蒸馏水。
应记录各称量物的重量和水的使用量。
4.1.5配制培养基所用容器和配套器具应洁净，可用纯化水冲洗玻璃器皿以消除清洁剂和外来物质的残留。
微生物限度检查法标准操作规程第一篇：微生物限度检查法标准操作规程概述1.引言微生物限度检查法（Microbial Limit Test, MLT）是药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品产品质量控制检验的重要手段之一。
它的意义在于保证制品中微生物污染的可控性，保障产品的安全有效性。
本篇文章将围绕微生物限度检查法的标准操作规程，对其概述进行介绍。
2.主要内容2.1 微生物限度检查法的定义微生物限度检查法（Microbial Limit Test, MLT）是指对药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品产品中细菌和真菌等微生物数量进行检查的方法和标准。
它是评价产品质量与卫生安全性的重要方法。
2.2 微生物限度检查法的目的微生物限度检查法的目的在于评价药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品产品中的微生物数量是否在规定的限度范围内，以保证产品的安全性和有效性。
同时，微生物限度检查法也可为制品的生产、质量控制和质量管理提供有效依据。
2.3 微生物限度检查法的适用范围微生物限度检查法适用于药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品的质量控制检验。
其中，针对药品类，在我国《药典》中有详细规定。
3. 微生物限度检查法的标准操作规程3.1 样品处理样品处理过程应密闭、无菌且保持无菌状态。
洗手、穿戴无菌工作服及手套等工艺应符合规定，以避免二次污染。
3.2 检验方法微生物限度检查法主要分为计数法和筛选法，具体方法可根据制品的特性进行选择使用，并符合规定的国家标准。
对于细菌，常用的检验方法包括菌落计数法、薄膜过滤法等；对于真菌，常用的检验方法包括直接涂片法、薄膜过滤法等。
3.3 限度对于不同的制品，在药品中通常采用菌落计数法，在制品中微生物的限度规定一般标准分别为：细菌总数不超过10^3CFU/g或/mL，霉菌和酵母菌总数不超过10^2CFU/g或/mL。
3.4 结果判定若检测出的微生物数目符合规定限度，则判定结论为合格；若其中一个指标不符合规定，则判定为不合格。
中国药典2020微生物限度检查
中国药典2020的微生物限度检查是一项严格的检查标准，用
于评估药物及相关产品中微生物污染的程度。
根据中国药典2020的要求，药品和相关产品在销售前必须经过微生物限度
检查，以确保其质量和安全性。
微生物限度检查包括检测制备过程中是否存在微生物污染、产品使用后是否易受微生物感染等方面。
根据不同的药品性质和用途，微生物限度检查可以涵盖不同的微生物指标，如细菌、真菌、酵母菌等。
中国药典2020中关于微生物限度检查的要求包括样品采集、
检验方法、标准和评估等方面。
具体的检验方法和标准根据不同的药品类别和用途而有所不同，例如，口服药品、注射剂、眼用制剂等都有各自的微生物限度标准。
微生物限度检查的目的是为了确保药品及相关产品无微生物污染或其污染水平在规定范围内，以保证使用者的安全。
在药品生产和销售过程中，严格遵守微生物限度检查的标准是非常重要的，以避免因微生物污染引发的健康问题。
需要注意的是，微生物限度检查只是药品质量控制的一部分，其他重要的质量控制措施还包括化学成分分析、物理性质检查、稳定性评估等。
所有这些质量控制步骤的目标是确保药品的质量和安全性，以满足患者的需要。
1108中药饮片微生物限度检查法解读中药饮片是指将中药研磨、提取、浸泡等处理后，制成粉末或颗粒状，并用于饮片制剂中的中药制品。
中药饮片在药物生产和临床应用中具有重要的地位，但其微生物污染问题一直是制约其质量与安全的重要因素之一。
因此，对中药饮片中的微生物进行限度检查是非常重要的。
中药饮片微生物限度检查法是根据药典和药监部门规定的技术要求进行的。
这些规定对饮片中的常见微生物如细菌、霉菌、酵母菌等进行了一系列的检测方法和标准，以确保中药饮片的质量和安全性。
首先，对于中药饮片的微生物检查，一般是从产品的取样、样品制备、培养基制备、菌落计数和鉴定等几个方面进行。
取样是中药饮片微生物限度检查中的一项非常重要的工作，取样的方式和位置应该根据具体的规定进行操作，以确保取样的代表性。
在取样过程中，要注意避免外界的污染和误差。
样品制备是指将取得的中药饮片样品进行初步的准备工作，最常用的方法是将样品用适当的溶剂进行萃取。
萃取的溶剂和方法根据饮片的特性和要求来确定，一般可以选择水、乙醇、甘油等。
将其制备成适当的悬浮液或溶液，以便于之后的检测。
培养基制备是为了让微生物在培养基上生长和繁殖，便于后续的菌落计数和鉴定。
不同类型的微生物需要不同的培养基，常用的有肉汤、琼脂、抗生素培养基等，根据需要选择适当的培养基进行制备。
菌落计数是中药饮片微生物限度检查中最常见的方法之一，通过将样品萃取溶液在培养基上等温接种并培养一定时间，然后对培养基上的菌落进行计数。
菌落计数方法分为无菌液体稀释法和无菌固体法两种，根据具体的样品和要求选择合适的方法进行。
鉴定是为了确定检测到的微生物种类和特性，采用的方法有生化试剂法、形态学特性法、分子生物学方法等。
通过进行鉴定可以更准确地确定微生物的种类和数量，从而判断是否符合微生物限度检查的标准要求。
在中药饮片微生物限度检查中，对于不同的微生物，存在着不同的标准和限度值。
一般情况下，细菌数量不应超过规定的限度值，酵母菌和霉菌数量也有相应的限制。
《中国药典》2010年版二部附录XI J （附录115页）《微生物限度检查法》微生物限度标准非无菌药品的微生物限度标准是基于药品的给药途径及对患者健康潜在的危害而制订的。
药品的生产、贮存、销售过程中的检验，原料及辅料的检验，新药标准制订，进口药品标准复核，考察药品质量及仲裁等，除另有规定外，其微生物限度均以本标准为依据。
1.制剂通则、品种项下要求无菌的制剂及标示无菌的制剂应符合无菌检查法规定。
2.口服给药制剂细菌数每1g不得过l000CFU 。
每lml 不得过100CFU 。
霉菌和酵母菌数每lg或lml 不得过100CFU 。
大肠埃希菌每1g 或lml不得检出.3 ．局部给药制剂3.1用于手术、烧伤及严重创伤的局部给药制剂应符合无菌检查法规定。
3.2 耳、鼻及呼吸道吸入给药制剂细菌数每1g、lml 或l0cm2，不得过100CPU 。
霉菌和酵母菌数每1g、lml 或l0cm2，不得过10CPU 。
金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌每1g、lml 或l0cm2不得检出。
大肠埃希菌鼻及呼吸道给药的制剂，每1g、lml 或l0cm2，不得检出。
3.3 阴道、尿道给药制剂细菌数每1g、lml 或l0cm2，不得过100CFU 。
霉菌数和酵母菌数每1g、lml 或l0cm2应小于10CFU 。
金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、白色念珠菌每1g、lml 或l0cm2，不得检出。
3 .4 直肠给药制剂细菌数每1g不得过l000CFU。
每lml 不得过100CFU 。
霉菌和酵母菌数每1g 或lml 不得过100CFU 。
金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌每lg 或lml 不得检出。
3.5 其他局部给药制剂细菌数每1g、lml 或l0cm2不得过100CFU 。
霉菌和酵母菌数每1g、lml 或l0cm2不得过100CFU 。
金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌每1g、lml 或l0cm2不得检出。
4.含动物组织（包括提取物）的口服给药制剂每10g 或10ml 还不得检出沙门菌。
霉菌和酵母菌总数、控制菌的检查。
二、引用标准：《中国药典》2015年版(通则1105-1106)三、目录1．微生物限度标准2．设备、仪器及用具3．消毒液、稀释剂、试液及培养基4．检查总则（通则1105：非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法，通则1106 非无菌产品微生物限度检查：控制菌检查法）5．微生物计数法检查6．控制菌检查法7．实验技术8. 附件1．微生物限度标准非无菌药用原料及辅料的微生物限度标准(2)．目测霉变者以不合格论。
(3)．“无”为标准依据或无相应规定。
准依据或无相应规定。
2．设施、仪器及用具2.1、设施：2.1.1．微生物限度检查室及相关设施：微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求。
检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。
2.1.2．其他设备：高压蒸汽灭菌器；细菌培养箱（30~35℃）；霉菌培养箱（25~28℃）；电炉（或其他适宜的加热装置）；恒温水浴；电热干燥箱（250~300℃）；电冰箱。
生化试剂储存箱。
2.2仪器及器皿2.2.1．菌落计数器；显微镜（1500X）；电子天平或药物天平（感量0.1g）；pH系列比色计。
2.2.2．玻璃器皿：锥形瓶（250~300ml，内装玻璃珠若干）、研钵（玻璃或陶瓷制，∮10~12cm）、培养皿（∮9 cm）、量筒（100 ml）、试管（18×180mm）及塞、吸管（1ml 分度0.01，10 ml分度0.1）、载玻片、盖玻片、玻璃消毒缸（带盖）。
2.2.3新购的玻璃器皿的清洁：先用流水冲洗，浸泡于1%~2%盐酸（工业用）液中约2~6小时，除去游离碱质，再用流水冲洗。
用于化学分析的玻璃仪器，需用重铬酸钾清洁液浸泡数分钟后，再用流水冲洗，最后以纯化水涮洗2~3次，晾干备用。
2.3用过的玻璃器皿：2.3.1未被病原微生物污染的器皿：可随时洗涤。
目的：规范药品微生物限度标准。
适用范围：药品微生物限度的检查。
责任者：操作员、化验员。
中成药、化学药品、生化药品的非灭菌制剂及药用原料、辅料，除另有规定外，皆按本法进行检验，并按中华人民共和国药典2000年版附录XIJ《微生物限度检查法》的规定判定检验结果。
检验方法总则1、抽样1.1 供试品采用随机抽样方法，按批号抽样。
1.2 抽样量一般应为检验用量（2个以上最小包装单位）的3倍量。
1.3 抽样时，凡发现有异常或可疑的样品，应抽选有疑问的样品，但因机械损伤明显破裂的包装不得作为样品。
1.4 凡已能从药品、瓶口（外盖内侧及瓶口周围）外观看出长螨、发霉、虫蛀以及变质的药品，可直接判为不合格品，无需再抽样检验。
2、供试品保存2.1 供试品在检验前，应保存在阴凉干燥处（勿冷藏或冷冻），以防供试品中的污染菌因保藏条件引起致死、损伤或繁殖。
2.2 供试品在检验之前，应保持原包装状态，严禁开启。
包装已开启的样品不得作为供试品。
3、检验3.1 供试品检验项目按中国药典2000年版二部附录XIJ 《微生物限度检查法》确定。
3.2 检验的全过程必须符合无菌操作要求，严防再污染。
3.3 除另有规定外，供试品制备成供试液后，应在均匀状态取样。
3.4 供试品制成供试液后，应在1小时内注皿操作完毕。
4、检验量4.1 所有剂型的检验均需取自2个以上包装单位。
4.2 化学药品、生化药品的胶囊剂、片剂、颗粒剂等检验量为10g。
5、供试液的制备5.1 一般固体供试品称取10g，置研钵中，以100ml稀释剂（0.1mol/L磷酸盐缓冲液或生理盐水），分次加入研磨均匀，并转移至 250ml锥形瓶中，使成1:10供试液。
或者将供试品和稀释剂同置匀浆仪中，以转速3000~5000转／分，开机1~2分钟。
对吸水膨胀或粘度大的供试品，可制成1:20供试液。
5.2 胶囊剂供试液制备方法称取供试品10g置锥形瓶中，加入稀释剂100ml，于45℃水浴中振摇至溶，即为1:10供试液。
微生物限度检查法微生物限度检查法系检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。
检查项目包括细菌数、霉菌数、酵母菌数及控制菌检查。
微生物限度检查应在环境洁净度10000 级下的局部洁净度100 级的单向流空气区域内进行。
检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。
供试品检查时．如果使用了表面活性剂、中和剂或灭活剂，应证明其有效性及对微生物无毒性。
除另有规定外，本检查法中细菌及控制菌培养温度为30～35 ℃；霉菌、酵母菌培养温度为23～28 ℃。
检验结果以1g 、lml 、10g 、l0ml 或10cm2为单位报告，特殊品种可以最小包装单位报告。
检验量检验量即一次试验所用的供试品量（g 、ml 或cm2）。
除另有规定外，一般供试品的检验量为10g 或10ml；膜剂为100 cm2；贵重药品、微量包装药品的检验量可以酌减。
要求检查沙门菌的供试品，其检验量应增加20g 或20ml （其中10g或10ml 用于阳性对照试验）。
检验时,应从2 个以上最小包装单位中抽取供试品，膜剂还不得少于4 片。
一般应随机抽取不少于检验用星（两个以上最小包装单位）的3 倍量供试品。
供试液的制备根据供试品的理化特性与生物学特性，采取适宜的方法制备供试液。
供试液制备若需加温时，应均匀加热，且温度不应超过45℃。
供试液从制备至加入检验用培养基，不得超过1 小时。
除另有规定外，常用的供试液制备方法如下。
1.液体供试品取供试品10ml ，加pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml ，混匀，作为l:10 的供试液。
油剂可加入适量的无菌聚山梨酯80 使供试品分散均匀。
水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。
2.固体、半固体或黏稠性供试品取供试品10g ，加pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至1OOml ，用匀浆仪或其他适宜的方法，混匀，作为1:10 的供试液。
必要时加适量的无菌聚山梨酯80 ，并置水浴中适当加温使供试品分散均匀。
3.需用特殊方法制备供试液的供试品（1）非水溶性供试品方法1 取供试品5g（或5ml ) ，加至含溶化的（温度不超过45℃）5g司盘80 、3g单硬脂酸甘油酯、10g聚山梨酯80 无菌混合物的烧杯中，用无菌玻棒搅拌成团后，慢慢加人45 ℃的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml ，边加边搅拌，使供试品充分乳化，作为1 : 20 的供试液。
方法2 取供试品10g ，加至含20ml 无菌十四烷酸异丙酯（制法见附录XII A 无菌检查法中供试品的无菌检查项下）和无菌玻璃珠的适宜容器中．必要时可增加十四烷酸异丙酯的用量，充分振摇，使供试品溶解。
然后加入45 ℃的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液10Oml ，振摇5～10 分钟，萃取，静置使油水明显分层，取其水层作为l : 10 的供试液。
（2）膜剂供试品取供试品100cm2，剪碎，加pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液100ml （必要时可增加稀释液），浸泡，振摇，作为1:10 的供试液。
（3）肠溶及结肠溶制剂供试品取供试品10g ，加pH6.8无菌磷酸盐缓冲液（用于肠溶制剂）或pH7.6 无菌磷酸盐缓冲液（用于结肠溶制剂）至100ml ，置45 ℃水浴中，振摇，使溶解，作为1 :10 的供试液。
（4）气雾剂、喷雾剂供试品取规定量供试品，置冰冻室冷冻约1 小时，取出，迅速消毒供试品开启部位，用无菌钢锥在该部位钻一小孔，放至室温，并轻轻转动容器，使抛射剂缓缓全部释出。
用无菌注射器吸出全部药液，加至适量的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液（若含非水溶性成分，加适觉的无菌聚山梨酯80 ）中，混匀，取相当于10g 或10ml 的供试品，再稀释成1:10 的供试液。
（5）贴剂供试品取规定量供试品，去掉贴剂的保护层，放置在无菌玻璃或塑料片上，粘贴面朝上。
用适宜的无菌多孔材料（如无菌纱布）覆盖贴剂的粘贴面，以避免贴剂粘贴在一起。
然后将其置于适宜体积并含有表面活性剂（如聚山梨酯80 或卵磷脂）的稀释剂中，用力振荡至少30 分钟，制成供试液。
贴剂也可采用其他适宜的方法制备成供试液。
（6）具抑菌活性的供试品当供试品有抑菌活性时，采用下列方法进行处理，以消除供试液的抑菌活性，再依法检查。
常用的方法如下。
①培养基稀释法取规定量的供试液，至较大量的培养基中，使单位体积内的供试品含量减少，至不含抑菌作用。
测定细菌、霉菌及酵母菌的菌数时，取同稀释级的供试液2ml ，每1ml供试液可等量分注多个平皿，倾注琼脂培养基，混匀，凝固，培养，计数。
每1ml供试液所注的平皿中生长的菌落数之和即为1ml 的菌落数，计算每1ml供试液的平均菌落数，按平皿法计数规则报告菌数；控制菌检查时，可加大增菌培养基的用量。
②离心沉淀法取一定量的供试液，500 转／分钟离心3 分钟，取全部上清液混合。
用于细菌检查。
③薄膜过滤法见细菌、霉菌及酵母菌计数项下的“薄膜过滤法”。
④中和法凡含汞、砷或防腐剂等具有抑菌作用的供试品，可用适宜的中和剂或灭活剂消除其抑菌成分。
中和剂或灭活剂可加在所用的稀释液或培养基中。
细菌、霉菌及酵母菌计数计数培养基的适用性检查细菌、霉菌及酵母菌计数用的培养基应进行培养基的适用性检查，成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应检查。
菌种试验用菌株的传代次数不得超过5 代（从菌种保藏中心获得的冷冻干燥菌种为第0代），并采用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学特性。
大肠埃希菌（Escherichia coli[CMCC ( B ) 44l02]金黄色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）[ CMCC ( B ) 26003 ]枯草芽抱杆菌（Bacillus subtilis ) [ CMCC ( B ) 63501 ]白色念珠菌（Candida albicans ）〔CMCC ( F ) 98001 〕黑曲霉（Aspergillus niger) [ CMCC ( F ) 98003 ]菌液制备接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽抱杆菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基中或营养琼脂培养基上，培养18 ～24 小时；接种白色念珠菌的新鲜培养物至改良马丁培养基中或改良马丁琼脂培养基上，培养24～48 小时。
上述培养物用0 . 9 ％无菌氯化钠溶液制成每lml 含菌数为50～100CFU 的菌悬液。
接种黑曲霉的新鲜培养物至改良马丁琼脂斜面培养基上，培养5 ～7 天，加人3 ～5ml 含0.05 % ( ml /ml ）聚山梨酯80 的0.9 ％无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。
然后，采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内，用含0.05 % ( ml / ml ）聚山梨酯80 的0.9％无菌氯化钠溶液制成每lml 含孢子数50 ～100CFU 的孢子悬液。
菌液制备后若在室温下放置，应在2 小时内使用；若保存在2～8 ℃，可在24 小时内使用。
黑曲霉孢子悬液可保存在2 ～8 ℃，在验证过的贮存期内使用。
适用性检查取大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽抱杆菌各50～100CFU ，分别注入无菌平皿中，立即倾注营养琼脂培养基，每株试验菌平行制备2 个平皿，混匀，凝固，置30～35 ℃培养48 小时，计数；取白色念珠菌、黑曲霉各50～100CFU ，分别注入无菌平皿中，立即倾注玫瑰红钠琼脂培养基，每株试验菌平行制备2 个平皿，混匀，凝固，置23 ～28 ℃培养72 小时，计数；取白色念珠菌50 ～100CFU ，注入无菌平皿中，立即倾注酵母浸出粉胨葡萄糖琼脂培养基．平行制备2 个平皿，混匀，凝固，置23 ～28 ℃培养72 小时，计数。
同时，用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验。
结果判定若被检培养基上的菌落平均数不小于对照培养基上的菌落平均数的70 % ，且菌落形态大小与对照培养基上的菌落一致，判该培养基的适用性检查符合规定。
计数方法的验证当建立产品的微生物限度检查法时，应进行细菌、霉菌及酵母菌计数方法的验证，以确认所采用的方法适合于该产品的细菌、霉菌及酵母菌数的测定。
若产品的组分或原检验条件发生改变可能影响检验结果时，计数方法应重新验证。
验证时，按供试液的制备和细菌、霉菌及酵母菌计数所规定的方法及下列要求进行。
对各试验菌的回收率应逐一进行验证。
菌种及菌液制备同计数培养鉴的适用性检查。
验证方法验证试验至少应进行3 次独立的平行试验，并分别计算各试验菌每次试验的回收率。
( l )试验组平皿法计数时，取试验可能用的最低稀释级供试液lml 和50 ～100CFU 试验菌，分别注人平皿中，立即倾注琼脂培养基，每株试验菌平行制备2 个平皿，按平皿法测定其菌数。
薄膜过滤法计数时，取规定量试验可能用的最低稀释级供试液，过滤，冲洗，在最后一次的冲洗液中加人50～100CFU 试验菌，过滤，按薄膜过滤法测定其菌数。
( 2 )菌液组测定所加的试验菌数。
( 3 )供试品对照组取规定量供试液，按菌落计数方法测定供试品本底菌数。
( 4 )稀释剂对照组若供试液制备需要分散、乳化、中和、离心或薄膜过滤等特殊处理时，应增加稀释剂对照组，以考察供试液制备过程中微生物受影响的程度。
试验时，可用相应的稀释液替代供试品，加入试验菌，使最终菌浓度为每lml 供试液含50 ～100CFU ，按试验组的供试液制备方法和菌落计数方法测定其菌数。
结果判断在3 次独立的平行试验中，稀释剂对照组的菌数回收率（稀释剂对照组的平均菌落数占菌液组的平均菌落数的百分率）应均不低于70 % 。
若试验组的菌数回收率（试验组的平均菌落数减去供试品对照组的平均菌落数的值占菌液组的平均菌落数的百分率）均不低于70％，照该供试液制备方法和计数法测定供试品的细菌、霉菌及酵母菌数；若任一次试验中试验组的菌数回收率低于70 % ，应采用培养基稀释法、离心沉淀法、薄膜过滤法、中和法（常见干扰物的中和剂或灭活方法见表1 ）等方法或联合使用这些方法消除供试品的抑菌活性，并重新进行方法验证。
表l 常见干扰物的中和剂或灭活方法若没有适宜的方法消除供试品的抑菌活性，那么验证试验中微生物回收的失败可看成是因供试品的抗菌活性引起的，同时表明该供试品不能被试验菌污染。
但是，供试品也可能仅对试验用菌株具有抑制作用，而对其他菌株没有抑制作用。
因此，根据供试品须符合的微生物限度标准和菌数报告规则，在不影响检验结果判断的前提下，应采用能使微生物生长的更高稀释级的供试液进行方法验证试验。
若验证试验符合要求，应以该稀释级供试液作为最低稀释级的供试液进行供试品检验。
