无菌检查和微生物限度检查操作规范
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药包材微生物限度检查操作规程药包材微生物限度检查操作规程一、目的与范围为保障药包材的卫生质量,规范药包材微生物限度检查操作,本操作规程适用于药包材微生物限度检查。
二、术语与定义1. 药包材:指用于药品包装的材料,如玻璃瓶、铝箔、袋子等。
2. 微生物限度:指药包材中的微生物污染的数量不能超过一定的限度。
3. 检查样品:指从药包材中取样检查的样品。
三、操作流程1. 准备工作1.1 检查人员应在工作前进行手部消毒,并佩戴洁净工作服、帽子和口罩。
1.2 检查仪器设备应进行清洁和消毒,确保无污染。
1.3 首次使用检查样品前,应进行无菌处理。
2. 取样2.1 根据药包材的特点,选择合适的取样方法,如剪刀剪取、刮取等。
2.2 取样时应注意避免污染,避免手部和工具的直接接触。
2.3 取样应充分代表药包材的不同部位和不同批次。
3. 样品处理3.1 将取样的药包材放入无菌容器中,避免接触外界环境。
3.2 添加合适的培养基,保证微生物生长。
3.3 药包材中的微生物落菌数较多时,可对样品进行稀释处理。
4. 培养和观察4.1 将培养基接种完毕后,密封容器,确保无菌。
4.2 将培养基置于适宜的温度和湿度条件下培养。
4.3 观察培养基是否出现细菌、真菌等微生物的生长。
5. 计数和判断5.1 培养基培养一定时间后,根据培养基上的菌落形态、颜色等特征进行初步判断。
5.2 将培养基进行放大培养,使用显微镜观察细菌、真菌的形态和结构,进行进一步鉴定。
5.3 使用计数板对菌落进行计数,记录每种微生物的数量。
5.4 根据国家规定的微生物限度标准,判断样品是否合格。
6. 结果记录和分析6.1 将检查结果记录在相应的记录表中,包括药包材名称、样品编号、微生物种类和数量等信息。
6.2 对合格的样品进行合格认证,对不合格的样品进行处理和记录。
6.3 对不合格的样品进行原因分析,查明污染源,并采取相应的措施进行处理和纠正。
四、操作注意事项1. 所有操作应在洁净室中进行,避免外界空气和微生物的污染。
微生物限度检查仪操作规程一、目的本操作规程旨在规范微生物限度检查仪的使用,确保检查结果的准确性和可靠性。
二、适用范围本操作规程适用于所有使用微生物限度检查仪进行微生物检测的实验室。
三、设备准备1.检查仪器:确保检查仪器处于正常工作状态,且已经进行了日常的校准和验证。
2.试剂准备:准备好所需要的试剂和培养基,并按照说明书进行储存和使用。
四、操作流程1.样品准备-将待测样品进行预处理,如稀释、过滤等操作,以确保检测结果的准确性。
-按照要求取样品,确保样品的代表性,并且避免外部污染。
-将样品转移至无菌容器中,避免交叉污染。
2.检测操作-打开检查仪器的电源,确保所有参数显示正常。
-设置检测参数,包括样品体积、培养基类型等。
-在无菌条件下,将样品转移到培养基中,确保样品均匀分布。
-在培养基上绘制分类孔,确保每个样品有足够的空间生长。
-关闭培养皿,确保培养皿与培养基接触紧密,并有利于微生物的生长。
-将培养皿放入检查仪器中,确保培养皿的摆放位置正确。
-启动检查仪器,按照仪器的要求进行检测。
-检测结束后,关闭检查仪器,将培养皿取出并妥善处理。
五、数据分析与记录1.对于生长的微生物,根据标准方法进行鉴定,并记录鉴定结果。
2.对于未生长的微生物,根据标准方法进行计数,并记录计数结果。
3.对于得到的结果,根据相关标准进行数据分析,并判断样品是否符合微生物限度要求。
4.将检测结果和分析记录在相关的数据表格或文件中,确保数据的可追溯性。
六、设备维护与清洁1.检查仪器的日常维护工作包括:定期校准、保养和维修。
2.定期清洁检查仪器的内部和外部部件,确保检查仪器的清洁和卫生。
3.根据仪器的使用说明书,进行规定的维护和保养工作。
七、风险控制1.在操作过程中,严格遵守相应的操作规程和安全要求,确保个人和环境安全。
2.如发现异常情况或设备故障,应立即停止操作,并及时报告相关人员进行处理。
3.定期开展培训和教育,提高操作人员的专业知识和操作技能。
1.目的建立微生物限度检查法的标准操作规程,规范微生物限度检验操作。
2.范围适用于QC生测室微生物限度检查的操作。
3.责任人微生物限度检验员、QC部负责人对本规程的实施负责。
4.依据《中国药典》2010版二部附录5.程序5.1.微生物限度检查法定义微生物限度检查法系检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。
检查项目包括细菌数、霉菌数、酵母菌数及控制菌检查。
5.2.微生物限度检查室环境要求微生物限度检查应在环境洁净度10 000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内进行。
检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。
5.3.抽样5.3.1.供试品一般按批号随机抽样。
5.3.2.抽样量为一般检验用量(2个以上最小包装单位)的3倍量。
5.3.3.抽样时,凡发现有异常可疑的样品,应选有疑问的样品,但因机械损伤明显破裂的包装不得作为样品,凡已能从药品、瓶口(外盖内侧及瓶口周围)外观看出长螨、长霉、虫蛀及变质的药品,可直接判为不合格,无需再抽样检验。
5.4.供试品保存5.4.1.供试品在检验之前,应保存在阴凉干燥处,以防供试品中的污染菌因保藏条件而引起致死、损伤或繁殖。
5.4.2.供试品在检验之前,应保持原有包装状态,严禁开启,包装已开启的样品不得作为供试品。
5.5.检查前的准备5.5.1.用具的洗涤与灭菌5.5.1.1.试管:使用过的试管经消毒后,将培养基倒出,用清洁液洗刷,用水冲洗4-5次,倒立,晾干备用。
灭菌前,用棉塞塞上管口,牛皮纸包紧,扎紧。
5.5.1.2.吸管:使用过的吸管用清洁液浸泡数分钟后,用水冲洗4-5次,晾干,备用。
灭菌前,在吸管上端距0.5cm处塞入约2cm左右的适当疏松棉花,用牛皮纸裹紧。
5.5.1.3.研钵:使用过的研钵用清洁液洗刷后,用水冲洗数次,晾干备用。
1 目的规范微生物限度检查操作。
2 适用范围适用于微生物限度的检查。
3 职责质量检定部人员严格按本SOP操作。
4 工作程序4.1 仪器4.1.1 超净工作台4.1.2 微生物检测系统4.2 试剂所用培养基及缓冲液均按《中华人民共和国药典》2005版三部要求进行配制。
玫瑰红钠培养基、营养琼脂培养基4.3 试验方法采用薄膜过滤法4.4试验前准备试验过程中所有用的器材都应进行灭菌后方可使用;超净工作台使用前需进行紫外灭菌30min。
4.5 试验步骤4.5.1 将样品加入薄膜过滤器的滤杯中4.3.1.3 供试品检查时,如果使用了表面活性剂、中和剂或灭活剂,应证明其有效性及对微生物的生长和存活无影响4.3.1.4 除另有规定外,本检查法中细菌培养温度为30~35℃;霉菌、酵母菌培养温度为23~28℃;控制菌培养温度为35~37℃。
4.3.1.5 检验结果以1g、1ml、10g、10ml或10cm2为单位报告。
4.3.2 检验量4.3.2.1 检验量即一次试验所用的供试品量(g、ml或cm2)。
4.3.2.2 除另有规定外,一般供试品的检查量为10g或10ml;化学膜剂为100cm2;贵重药品、微量包装药品的检验量可以酌减。
4.3.3 供试液的制备供试液制备若需用水浴加温时,温度不应超过45℃。
供试液从制备至加入检验用培养基,不得超过1小时。
4.3.3.1液体供试品取供试品10ml,加pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml,混匀,作为1:10的供试液。
油剂可加入适量的无菌聚山梨脂80使供试品分散均匀。
水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。
4.3.4 细菌、霉菌及酵母菌计数4.3.4.1 检查法薄膜过滤法采用薄膜过滤法,滤膜孔径应不大于0.45um,直径约为50mm。
选择滤膜材质时应保证供试品及其溶剂不影响微生物的充分被截留。
滤器及滤膜使用前应采用适宜的方法灭菌。
使用时,应保证滤膜再过滤前后的完整性。
微生物限度检查法标准操作规程第一篇:微生物限度检查法标准操作规程概述1.引言微生物限度检查法(Microbial Limit Test, MLT)是药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品产品质量控制检验的重要手段之一。
它的意义在于保证制品中微生物污染的可控性,保障产品的安全有效性。
本篇文章将围绕微生物限度检查法的标准操作规程,对其概述进行介绍。
2.主要内容2.1 微生物限度检查法的定义微生物限度检查法(Microbial Limit Test, MLT)是指对药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品产品中细菌和真菌等微生物数量进行检查的方法和标准。
它是评价产品质量与卫生安全性的重要方法。
2.2 微生物限度检查法的目的微生物限度检查法的目的在于评价药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品产品中的微生物数量是否在规定的限度范围内,以保证产品的安全性和有效性。
同时,微生物限度检查法也可为制品的生产、质量控制和质量管理提供有效依据。
2.3 微生物限度检查法的适用范围微生物限度检查法适用于药品、医疗器械、食品和化妆品等生物制品的质量控制检验。
其中,针对药品类,在我国《药典》中有详细规定。
3. 微生物限度检查法的标准操作规程3.1 样品处理样品处理过程应密闭、无菌且保持无菌状态。
洗手、穿戴无菌工作服及手套等工艺应符合规定,以避免二次污染。
3.2 检验方法微生物限度检查法主要分为计数法和筛选法,具体方法可根据制品的特性进行选择使用,并符合规定的国家标准。
对于细菌,常用的检验方法包括菌落计数法、薄膜过滤法等;对于真菌,常用的检验方法包括直接涂片法、薄膜过滤法等。
3.3 限度对于不同的制品,在药品中通常采用菌落计数法,在制品中微生物的限度规定一般标准分别为:细菌总数不超过10^3CFU/g或/mL,霉菌和酵母菌总数不超过10^2CFU/g或/mL。
3.4 结果判定若检测出的微生物数目符合规定限度,则判定结论为合格;若其中一个指标不符合规定,则判定为不合格。
更改历史微生物限度检查操作规程1.0 目的建立微生物限度检查标准操作规程,规范检验操作,确保检验结果准确2.0 范围适用于本公司采用微生物限度检查法测定的供试品。
3.0 职责质量部负责按本规程的要求执行微生物限度检查操作。
4.0 工作程序4.1 洁净区间的确认微生物计数检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内或隔离系统中进行,其全部过程必须严格遵守无菌操作,防止微生物污染,防止污染的措施不得影响供试品(即待检样品、产品)中微生物的检出。
4.2 培养基4.2.1 应使用按中国药典处方及规定的方法制备的培养基。
4.2.2 所用培养基可按中国药典规定的处方及制备方法自行配制,也可使用按中国药典规定的处方生产的脱水培养基进行配制;或购买商品化的预制培养基。
4.2.3 配制后应采用验证合格的灭菌程序灭菌。
制备好的培养基若不即时使用,应置于无菌密闭容器中,在2~25℃、避光的环境下保存。
4.2.4 胰酪大豆胨琼脂培养基或胰酪大豆胨液体培养基用于测定需氧菌总数;沙氏葡萄糖琼脂培养基用于测定霉菌和酵母菌总数。
4.2.5 供试品微生物计数、控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
4.2.6 供试品的微生物计数方法、控制菌检查方法应进行方法适用性试验,以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数或控制菌检查。
4.3 菌种及菌液制备检查所用的菌种及菌液制备见附件 1 微生物计数培养基的适用性检查和附件3 控制菌检查培养基的适用性检查。
稀释剂、冲洗液及其制备的要求见附件1 微生物计数培养基的适用性检查。
4.4 培养基的适用性检查供试品微生物计数、控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
微生物限度检查所用的培养基每批均应进行适用性检查,检查可在供试品检查前或与供试品检查同时进行。
具体要求见附件1 微生物计数培养基的适用性检查和附件3 控制菌检查培养基的适用性检查。
4.5 方法适用性试验供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验,以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数。
微生物限度检查标准操作规程《微生物限度检查标准操作规程》一、目的微生物限度检查是药品、食品、化妆品等产品质量的重要指标之一,其目的是为了保障产品的安全性和稳定性。
本标准操作规程旨在规范微生物限度检查的操作流程,确保检查结果的准确性和可靠性。
二、范围本标准操作规程适用于药品、食品、化妆品等产品的微生物限度检查,包括大肠菌群、金黄色葡萄球菌、霉菌和酵母菌等微生物指标的检查。
三、检查设备和试剂1. 培养基:根据不同的微生物指标选择适当的培养基,如大肠培养基、Mannitol盐琼脂、Sabouraud葡萄糖琼脂等。
2. 培养皿:使用符合规定的试验培养皿。
3. 培养箱:保证培养条件的恒温培养箱。
4. 其他常用实验用具:包括无菌采样容器、吸管、移液器、无菌培养皿等。
四、操作流程1. 样品采集:从产品中采集适量样品,保持无菌状态。
2. 制备稀释液:根据样品的特性,选择适当的稀释液将样品进行适当稀释。
3. 接种培养:将稀释后的样品接种在适当的培养基上,并在符合条件的培养箱中进行培养。
4. 观察和统计:观察培养皿中微生物的生长情况,统计出微生物的数量。
5. 结果判定:根据标准规定的微生物限度标准,判断检测结果是否符合规定。
五、质量控制1. 实验员必须进行严格的无菌操作训练,并使用正确的个人防护用具。
2. 培养基的质量必须符合规定,避免培养基带有细菌污染。
3. 检查设备必须经过定期的检查和校准,保持正常的工作状态。
4. 标本的采集、处理、保存和运送必须符合规定,避免外界的污染和干扰。
六、结果报告根据检测结果和规定的限度标准,出具检测报告,标明产品的微生物限度是否符合规定,以及具体的检测结果数据。
七、总结微生物限度检查是产品质量检验的重要环节,严格按照标准操作规程进行操作,可以保证检测结果的准确性和可靠性。
实验员在操作过程中也需严格遵守规程,做好个人防护措施,确保实验室的安全和卫生。
微生物限度检查简易操作规程1.1微生物限度检查法中细菌培养温度为30~35℃,霉菌、酵母菌培养温度为23~28℃,控制菌培养温度为30~35℃。
1.2 称取供试品10g,置PH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液100ml中,用匀浆仪或其它适宜方法混匀后,作为供试液。
在制备过程中,必要时可加吐温80,并适当加温,但不宜超过45℃。
1.2.1细菌计数用营养琼脂培养基,霉菌、酵母菌计数用虎红琼脂培养基。
取供试验用的稀释剂各1ml,置4个无菌平皿中,分别按细菌、霉菌计数用的培养基制备平板、培养、检查,不得长菌。
取均匀供试液,进一步稀释成1:102、1:103等适宜的稀释度。
分别取连续三级10倍稀释的供试液各1ml,置直径约90mm 的平皿中,再注入约45℃的培养基约15~20ml,混匀,待凝固后,倒置培养,每稀释度应作2~3个平皿。
1.2.2大肠埃希菌(Escherichia Coli)[CMCC (B)44 102] 取供试品10ml(相当于供试品1g、1ml、10cm2),直接或处理后接种至适量(不少于100 ml)的胆盐乳糖培养基中,培养18~24小时,必要可延长至48小时。
取上述培养物0.2ml, 接种至含5mlMUG培养基的试管内,培养,于5小时、24小时在366nm 紫外线下观察,同时用未接种的MUG培养基作本底对照。
若管内培养物呈现荧光,为MUG阳性;不呈现荧光,为MUG阴性。
观察后沿培养管的管壁加入数滴靛基质试液,液面呈玫瑰红色,为靛基质阳性;呈现本色,为靛基质阴性。
本底对照应为MUG阴性。
1.2.3大肠菌群(Coliform)取含适量(不少于10ml)的胆盐乳糖培养基管3支,分别加入1:10的供试品1ml(含供试品0.1g或0.1ml)、1:100的供试品1ml(含供试品0.01g或0.01 ml)1:1000的供试品1ml(含供试品0.001g 或0.001m l)另取1支胆盐乳糖发酵培养基管加入稀释液1ml作为阴性对照管。
微生物限度检查法标准操作规程一、目的:建立一个微生物限度检查标准操作规程,规范质检员的操作,保证实验的安全性、准确性。
二、范围:适用于微生物限度检查的产品。
三、责任:QC部质检员对本规程实施负责。
四、内容1.检验依据:《中国药典》2010年版二部。
2. 简述2.1.微生物限度检查法系检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。
检查项目包括细菌数、霉菌数、酵母菌数及控制菌数检查。
2.2.微生物限度检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内进行。
检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染,防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室(区)悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。
2.3.供试品检查时,如果使用了表面活性剂、中和剂或灭活剂,应证明其有效性及对微生物无毒性。
2.4.除另有规定外,本检查法中细菌及控制菌培养温度为30~35℃;霉菌、酵母菌培养温度为23~28℃2.5.检验结果以1g、1ml、10g、10ml或10cm2为单位报告,特殊品种可以最小包装单位报告。
3.设备、仪器3.1.设备:3.1.1.洁净实验室:微生物限度检查应有单独的洁净实验室,每个洁净实验室应有独立的净化空气系统。
结构和要求:洁净室应采光良好,避免潮湿、远离厕所及污染区。
操作间与缓冲间应有样品传递窗,出入操作间和缓冲间的门不应直对。
洁净实验室内应六面光滑平整,能耐受清洗消毒。
墙壁与地面、天花板连接处无缝隙,不留死角。
操作间不应安装下水道。
洁净实验室内的照明灯应嵌装在天花板内,室内光照应分布均匀,光照度不低于300LX。
●温度、湿度:洁净实验室内温度应控制在18~26℃,相对湿度最好在40%~60%。
●操作间:操作间应安装空气除菌过滤层流装置。
洁净度不应低于10000级,局部洁净度为100级(或放置同等级净化工作台)。
微生物限度检查法操作规程1.范围本规程适用于微生物限度的检查。
2.设备、仪器及用具、试液、培养基2.1 无菌室:温度18~26℃,相对湿度45~60%,洁净度不应低于10000级。
2.2 其他设备:净化工作台(洁净度为100级)、生化培养箱(23~28℃)、恒温培养箱(30~35℃)、电热恒温水浴锅、高压蒸汽消毒器、电热恒温干燥箱(最高工作温度300℃)、冰箱。
2.3 托盘天平、显微镜。
2.4 玻璃器皿2.4.1 锥形瓶、吸管、试管、培养皿90mm、量筒、烧杯、研钵、载玻片、盖玻片。
2.4.2 洗涤:吸管、锥形瓶、培养皿、烧杯等用清洁液浸泡,用清水冲洗干净再用蒸馏水冲洗2~3遍,晾干。
使用过后如与细菌接触,应121℃湿热灭菌20分钟,倒出内容物,然后清洗、晾干。
2.5 酒精灯、灭菌剪刀、接种环、灭菌镊子、大小橡皮乳头(放于干净带盖的容器中,并定期用70~75%乙醇溶液浸泡)、记号笔。
2.6 无菌衣、帽、口罩(用牛皮纸包严)灭菌,备用。
2.7 试液2.7.1消毒液:0.1%新洁尔灭或络合碘、75%乙醇溶液、5%来苏溶液。
2.7.2 稀释剂: PH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液取磷酸二氢钾3.56g,磷酸氢二钠7.23g、氯化钠4.30g、蛋白胨,加水1000ml,微温溶解,滤清,分装于锥形瓶或试管内,每瓶100ml或每管9ml,加塞,121℃灭菌20分钟备用。
2.7.3 靛基质试液(柯凡克试剂或欧-波氏试剂)、结晶紫染液、碘液、95%乙醇、溴麝香草酚蓝指示剂、酸性品红指示剂、沙黄染液、甲基红指示液、α-萘酚乙醇试液、40%氢氧化钾。
2.8 培养基2.8.1 选择:营养琼脂培养基(细菌计数用);玫瑰红钠琼脂培养基(霉菌及酵母菌计数用);胆盐乳糖培养基;MUG培养基、曙红亚甲蓝琼脂培养基(EMB)、麦康凯琼脂培养基、乳糖培养基、枸橼酸盐培养基、磷酸盐葡萄糖胨水培养基、蛋白胨水培养基、四硫磺酸钠亮绿培养基、胆盐硫乳琼脂(DHL)。
1目的规范微生物限度检验操作,确保检验结果准确、可靠。
2依据《中国药典》2015版。
3范围本标准适用于微生物限度检验。
4责任中心化验室负责人:对本规程的实施负责。
中心化验室检验人员:严格按照本规程执行检验操作。
5程序5.1执行标准:《中国药典》2015版。
5.2抽样:照《取样标准操作规程》进行。
6内容6.1需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数计数计数方法包括平皿法、薄膜过滤法和最可能数法(MPN法)。
检查时,按已验证的计数方法进行供试品的需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数的测定。
6.1.1设备、仪器及用具6.1.1.1设备微生物限度检测室、净化工作台、生化培养箱(30〜35£)、生化培养箱(20〜25£)、电热恒温水浴锅、烘箱、脉动真空灭菌柜、紫外灯等。
6.1.1.2仪器及器皿显微镜、托盘天平、锥形瓶、研钵、培养皿、量筒、试管及塞、移液枪及吸头、薄膜过滤器等。
6.1.1.3用具大、小橡皮乳头,洁净工作服、口罩、医用手套、接种环、酒精灯、酒精棉球、灭菌剪刀、灭菌镊子、不锈钢药匙、试管架、火柴、记号笔、薄膜过滤膜等。
6.1.2试液6.1.2.1消毒液A.0.1%新洁尔灭溶液B.75%乙醇溶液6.1.2.2稀释液、试剂及配制A. pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液:取磷酸二氢钾3.56g、无水磷酸氢二钠5.77g、氯化钠4.3g、蛋白胨1.0g,加纯化水1000ml,微温溶解,滤清,分装,1210C灭菌15分钟。
B.聚山梨酯80C.无菌十四烷酸异丙酯D. pH6.8无菌磷酸盐缓冲液6.1.3培养基胰酪大豆胨琼脂培养基、胰酪大豆胨液体培养基、沙氏葡萄糖琼脂培养基6.1.4操作方法6.1.4.1试验前准备6.1.4.1.1将供试品及所有已灭菌的平皿、锥形瓶、试管、移液枪吸头(1ml、10ml)、量筒、稀释液、培养基等移至传递窗内。
每次试验所用物品必须事先计划,准备足够用量,避免操作中出入操作间。
6.1.4.1.2开启微生物检测室紫外灯和空调净化系统,并使其工作不低于30min。
一、范围:本标准规定了微生物限度的检查方法和操作要求;适用于检品需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数、控制菌的检查。
二、引用标准:《中国药典》2015年版(通则1105-1106)三、目录1.微生物限度标准2.设备、仪器及用具3.消毒液、稀释剂、试液及培养基4.检查总则(通则1105:非无菌产品微生物限度检查:微生物计数法,通则1106 非无菌产品微生物限度检查:控制菌检查法)5.微生物计数法检查6.控制菌检查法7.实验技术8. 附件1.微生物限度标准非无菌药用原料及辅料的微生物限度标准*未做统一规定。
(1).“—”为不得检出。
(2).目测霉变者以不合格论。
说明:1.“—”为每100 cm中不得检出。
2.目测霉变者以不合格论。
3.“无”为标准依据或无相应规定。
2.设施、仪器及用具2.1、设施:2.1.1.微生物限度检查室及相关设施:微生物计数试验环境应符合微生物限度检查的要求。
检验全过程必须严格遵守无菌操作,防止再污染,防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。
单向流空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。
2.1.2.其他设备:高压蒸汽灭菌器;细菌培养箱(30~35℃);霉菌培养箱(25~28℃);电炉(或其他适宜的加热装置);恒温水浴;电热干燥箱(250~300℃);电冰箱。
生化试剂储存箱。
2.2仪器及器皿2.2.1.菌落计数器;显微镜(1500X);电子天平或药物天平(感量0.1g);pH系列比色计。
2.2.2.玻璃器皿:锥形瓶(250~300ml,内装玻璃珠若干)、研钵(玻璃或陶瓷制,∮10~12cm)、培养皿(∮9 cm)、量筒(100 ml)、试管(18×180mm)及塞、吸管(1ml分度0.01,10 ml分度0.1)、载玻片、盖玻片、玻璃消毒缸(带盖)。
2.2.3新购的玻璃器皿的清洁:先用流水冲洗,浸泡于1%~2%盐酸(工业用)液中约2~6小时,除去游离碱质,再用流水冲洗。
用于化学分析的玻璃仪器,需用重铬酸钾清洁液浸泡数分钟后,再用流水冲洗,最后以纯化水涮洗2~3次,晾干备用。
微生物限度操作规程1.目的建立微生物限度标准操作规程,确保微生物限度检测的准确性。
2.范围适用于本公司纯化水,注射用水,饮用水,原辅料中微生物限度的检查。
3.定义微生物限度检查法系指检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。
检查项目包括细菌数、霉菌数及控制菌检查。
4.职责4.1.QC负责本规程的起草、修订、培训及执行;4.2.QA、QC组长质量管理部经理负责本规程的审核;4.3.质量总监负责批准本规程;4.4.QA负责本规程执行的监督。
5.引用标准《中华人民共和国药典》2020年版二部6.材料6.1.房屋、设备、实验用具6.1.1.房屋:微生物限度实验室。
6.1.2.设备100级洁净工作台,30~35℃培养箱,20~25℃培养箱,台式灭菌器,三联式不锈钢滤器。
6.1.3.实验用具:隔离服、洁净工作服、工作鞋、口罩、帽子、10ml刻度吸管、毛巾、吸耳球、记号笔、酒精灯、镊子、酒精棉、托盘、电子天平、药勺、镊子、量筒等。
6.2.试剂:pH7.0氯化钠–蛋白胨缓冲液(无菌稀释液)6.3.实验用培养基(灵敏度实验合格)6.3.1.营养琼脂平皿(Ф90mm),用于细菌计数。
6.3.2.玫瑰红钠平皿(Ф90mm),用于霉菌及酵母菌计数。
6.3.3.胰酪胨大豆琼脂培养基平皿(Ф90mm),用于沉降菌检测。
6.3.4.品红亚硫酸钠琼脂平皿(Ф90mm),用于饮用水、水源中总大肠菌群的选择分离和鉴别。
6.3.5.培养基制备好后置30~35℃恒温培养房中预培养24~48小时,若培养基确无菌落生长方可用于实验。
如预培养后暂不用,培养基保存于2~8℃最长不超过21天。
6.4.实验用消毒液:0.2%洗必泰消毒液;75%酒精;0.5%84消毒液。
7.流程图无8.程序8.1.抽、取样8.1.1.水样采集:采样前所用的容器应无菌,应在采样、实验的全过程中实行无菌操作,保证水质不受污染。
用水样采集袋(无菌)或的蓝盖采样瓶,每个取样点取样前应放水1分钟,一个水点至少取样 1000ml,取样后将瓶盖拧紧,进行下一步操作,防止微生物污染;8.1.2.纯化水取水样不小于10ml,注射水取水样不小于200 ml,饮用水取水样不小于10ml。
微生物限度检查标准操作规程正文:一、目的:规范微生物限度检查的标准操作,确保所采用的微生物限度检验方法准确,试验结果可靠。
二、范围:适用于本公司各种样品的微生物限度检查。
三、职责:质量中心化验员负责本规程的执行。
质量中心管理人员负责本规程执行情况的监督检查。
四、内容:1.试验条件1.1试验环境检验必须在环境洁净度C级下的局部A级的单向流空气区域内进行。
1.2试验仪器、用具、培养基按照3.1.1 与3.2.1项下准备。
2.供试液的制备供试液若需加热时,应均匀加热,且温度不应超过45℃。
供试液从制备至加入检验用培养基,不得超过1小时。
常用供试液制备方法如下:2.1.液体供试品取供试品10ml,加入pH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml,混匀,作为1:10的供试液。
油剂可加入适量的无菌聚山梨酯80使供试品分散均匀。
水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液,例如:纯化水、注射用水、饮用水、药液类、各验证项下微生物样品。
2.2.固体、半固体或黏稠性供试品取供试品10g,加入PH7.0氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml,混匀,作为1:10的供试液。
必要时加适量的无菌聚山梨酯80,并置水浴中适当加温使供试品分散均匀(例如无水葡萄糖、氯化钠、乳酸钠溶液等)。
2.3内包材供试品供试液从制备至加入检验用培养基,不得超过1小时。
2.3.1内包膜、塑料输液袋取单层膜50cm2,剪碎,置于无菌锥形瓶内,加入pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液100ml,振摇1分钟,静置10分钟,即得供试液。
2.3.2 软管取软管26cm(表面积100cm2),剪碎,置于无菌锥形瓶内,加入pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液100ml,振摇1分钟,静置10分钟,即得供试液。
2.3.3加药塞、输液塞、口管、口盖、聚异戊二烯塞芯取供试品按表面积100cm2(加药塞9个、输液塞4个、口管4个、口盖9个、聚异戊二烯塞芯17个),置于无菌锥形瓶内,加入pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液100ml,振摇1分钟,静置10分钟,即得供试液。
无菌检查和微生物限度检查操作规范(中国药品生物制品检定所)一、无菌室的要求:无菌室是无菌检查、微生物限度检查的重要设备,面积不小于6平米,高度2.4-2.8m为宜。
建筑材料要光洁,不吸潮,无凸起,耐腐蚀,易清洗。
无菌室内部应六面光滑,无缝隙,里面连接处应呈凹凸形,不留死角。
操作间和缓冲间的门不应直对,缓冲间两个。
无菌室内采光面积要大,照明灯应镶嵌在天花板内,光照应分布均匀,光照度不低于300lux,电源开关应设在室外。
无菌室、缓冲间和操作间均应设置紫外线杀菌灯,每立方米2-2.5瓦,距实验台高度不超过1米,并应定期检查辐射强度,距1米处应不低于70微瓦/平方厘米,无菌室内应安装空气除菌过滤层流装置及调温装置,控制温度18-26℃,相对湿度40%-60%,操作间或净化工作台的洁净空气应保持与相临环境形成正压,不低于4.9帕。
操作区洁净度100级,操作间洁净度10000级,洁净度定期检查。
无菌室及缓冲间不得存放其他杂物,如培养箱。
用消毒液清洁无菌室操作台面,开启无菌室紫外灯和层流空气过滤30分钟以上。
无菌室的无菌程度,常用的沉降菌测定方法为:取营养肉汤琼脂平板3个,置无菌室的操作区台面左、中、右位置上,开盖暴露30分钟,在30-35℃培养2天后,计算菌落数。
用于无菌检查的无菌室或微生物限度检查的无菌室,细菌总数应小于3个,浮游菌每立方米应小于5个,否则,不能用于无菌检查和微生物限度检查。
二、培养基的准备1、培养基的制备:配制培养基的蒸馏水或去离子水应符合规定。
再称取需气菌、厌气菌培养基、真菌培养基的干燥培养基,加水溶化后,调节PH值,使灭菌后需气菌、厌气菌培养基的PH值为7.0-7.3,真菌培养基的PH值为6.2-6.6,分装、盖塞、灭菌,待用。
2、培养基灵敏度试验:培养基是无菌试验的基准物质,关系到无菌试验结果的科学、准确、可信度,因此,培养基灵敏度试验是无菌试验的重要组成部分。
只有使用灵敏度试验合格的培养基,才能保证无菌试验结果准确、可靠。
无菌检查和微生物限度检查操作规范(中国药品生物制品检定所)一、无菌室的要求:无菌室是无菌检查、微生物限度检查的重要设备,面积不小于6平米,高度2.4-2.8m为宜。
建筑材料要光洁,不吸潮,无凸起,耐腐蚀,易清洗。
无菌室内部应六面光滑,无缝隙,里面连接处应呈凹凸形,不留死角。
操作间和缓冲间的门不应直对,缓冲间两个。
无菌室内采光面积要大,照明灯应镶嵌在天花板内,光照应分布均匀,光照度不低于300lux,电源开关应设在室外。
无菌室、缓冲间和操作间均应设置紫外线杀菌灯,每立方米2-2.5瓦,距实验台高度不超过1米,并应定期检查辐射强度,距1米处应不低于70微瓦/平方厘米,无菌室内应安装空气除菌过滤层流装置及调温装置,控制温度18-26℃,相对湿度40%-60%,操作间或净化工作台的洁净空气应保持与相临环境形成正压,不低于4.9帕。
操作区洁净度100级,操作间洁净度10000级,洁净度定期检查。
无菌室及缓冲间不得存放其他杂物,如培养箱。
用消毒液清洁无菌室操作台面,开启无菌室紫外灯和层流空气过滤30分钟以上。
无菌室的无菌程度,常用的沉降菌测定方法为:取营养肉汤琼脂平板3个,置无菌室的操作区台面左、中、右位置上,开盖暴露30分钟,在30-35℃培养2天后,计算菌落数。
用于无菌检查的无菌室或微生物限度检查的无菌室,细菌总数应小于3个,浮游菌每立方米应小于5个,否则,不能用于无菌检查和微生物限度检查。
二、培养基的准备1、培养基的制备:配制培养基的蒸馏水或去离子水应符合规定。
再称取需气菌、厌气菌培养基、真菌培养基的干燥培养基,加水溶化后,调节PH值,使灭菌后需气菌、厌气菌培养基的PH值为7.0-7.3,真菌培养基的PH值为6.2-6.6,分装、盖塞、灭菌,待用。
2、培养基灵敏度试验:培养基是无菌试验的基准物质,关系到无菌试验结果的科学、准确、可信度,因此,培养基灵敏度试验是无菌试验的重要组成部分。
只有使用灵敏度试验合格的培养基,才能保证无菌试验结果准确、可靠。
培养基灵敏度试验操作如下:取藤黄微球菌、生孢梭菌、白色念珠菌的新鲜培养液,分别10倍递增稀释,制成每ml 含10-100个菌,并作菌落记数。
将制备好的菌液分别加至需气菌、厌气菌培养基、真菌培养基各3管。
至规定温度培养5天,每株菌接种的培养基不少于2管生长,则改培养基的灵敏度试验合格。
3、培养基用前的检查:(1)无菌检查:各种培养基在规定温度培养3天,应无菌生长。
(2)新鲜程度检查:需气菌、厌气菌培养基氧化层的颜色用前不能超过1/5,否则,不能使用。
应煮沸去氧,只限加热一次。
4、培养基的保存时限:配制好的无菌试验用培养基在2周内用完。
三、菌种复苏和保藏1、菌种复苏:先将冻干菌种的封口端用砂轮刻痕,在刻痕处过火焰数次,用无菌湿棉球炸裂后打开,然后,加入0.3-0.4ml稀释液于菌种管底部,将菌种稀释、混匀,并吸出菌液,接种于适宜的培养基。
培养时间和温度根据不同的菌种而定。
仔细检查菌种的有关特性,如无发现异常,即可传代、使用。
2、药品微生物用的菌种传代方法:取复苏好的菌种一支,接种于规定的培养基数管,培养后,置冰箱中保藏。
取出使用的菌种,经一段时间后即可废弃。
为防止微生物突变,菌种应尽量避免不必要的接种和传代。
3、菌种保藏:常用的菌种保藏方法有多种。
一般微生物实验室常用琼脂斜面和半固体低温保藏法。
大型实验室常用冷冻真空干燥法和液氮超低温保藏法。
4、菌种保藏的注意事项:破伤风梭菌、生孢梭菌选用胞肉培养基;铜绿假单孢菌在冰箱中易发生菌体自溶而死亡,可用半固体法室温保存。
四、阳性对照菌液的制备阳性对照试验的目的是根据阳性菌在加入供试品的培养基中能否生长,以验证供试品有无拟菌活性和试验条件是否符合要求。
中国药典规定,使用的阳性菌为金黄色葡萄球菌(CMCCB26003)、生孢梭菌(CMCCB64941)、白色念珠菌(CMCCF98001)。
所有对照菌液的制备及阳性对照菌试验,必须在另一专用净化台上操作,应与其他无菌室分开。
对照菌液制备方法:通常根据供试品抗需气菌、抗厌氧菌或抗真菌的特性,选取相应的阳性对照菌培养物,制成菌液。
现以金黄色葡萄球菌为例,说明对照菌液配制的方法:取营养琼脂斜面新鲜培养物1白金耳,接种于营养肉汤培养基中,在30-35℃培养18-24小时,用0.9%无菌氯化钠溶液稀释至每ml含10-100个菌作为对照菌液。
同时,分别取对照菌液1ml加至双碟中,倾入适量的营养琼脂培养基,制备两个平板。
培养后,以平均结果记数。
制备的对照菌液应在当日使用。
五、拟细菌拟真菌实验中国药典2000年版增订了拟细菌拟真菌实验,在实验前必须对供试品的拟菌性有一些了解。
取需气菌、厌气菌培养基4管,真菌培养基2管,其中2管需气菌、厌气菌培养基分别加10-100个金黄色葡萄球菌,另2管分别加生孢梭菌。
真菌培养基2管分别加10-100个白色念珠菌,其中1管加定量供试品。
所有培养基管置规定温度培养3-5天,观察结果,如各培养基管24小时内微生物生长良好,则供试品无拟菌作用;如加供试品的培养基管与未加供试品的培养基管对照比较,微生物生长微弱、缓慢或不生长,均判供试品有拟菌作用。
供试品如无拟菌作用,可采用直接接种法。
对有拟菌作用的供试品,可采用稀释法、中和法或薄膜过滤法。
六、操作人员的准备操作人员准备进入无菌室:操作人员关闭紫外灯,用洗手液洗手,进入缓冲间换工作鞋、消毒手、戴帽、穿无菌衣、口罩、手套,不得戴装饰物。
在缓冲间着无菌装时,袖口不能翻转折叠,严防暴露手腕。
七、无菌检查无菌检查法包括直接接种法、薄膜过滤法,前者适用于非抗菌作用的供试品,后者适用于有抗菌作用或大容量的供试品。
1、直接接种法:取供试品11支,用消毒液浸泡或擦拭,划痕,用75%酒精消毒棉球或碘伏棉球擦拭,过火焰,搬断,用无菌玻璃注射器或一次性注射器取规定量供试品,接种至需气菌、厌气菌培养基6管,接种真菌培养基5管,同时取供试品稀释液接种需气菌、厌气菌培养基和真菌培养基各1管做阴性对照,其中1管接种10-100个对照菌作阳性对照。
需气菌、厌气菌培养基管置30-35℃,真菌培养基管置20-25℃,培养7天,逐日观察记录结果。
接种供试品后或培养过程中,如培养基中出现浑浊现象,培养7天后,不能从外观上判断有无微生物生长,可取该培养液适量,转种至同种新鲜培养基中或斜面培养基上继续培养,细菌培养2天,真菌培养3天,观察是否再出现浑浊或斜面有无菌生长,或用接种环取培养液涂片、染色,用显微镜观察是否有菌。
2、薄膜过滤法:将灭菌的排液槽安装好,取三元一次性集菌培养器,将滤器导管放在集菌仪的移动泵管槽内,进液导管的双星针头插在0.9%的无菌氯化钠冲洗液的胶塞上,启动集菌仪,将冲洗液瓶倒置在支架上,冲洗液自滤器下孔流出即可。
关集菌器。
取供试品6瓶,用消毒液浸泡或擦拭,去铝盖或塑料盖,瓶塞过火焰,用注射器取氯化钠注射液适量注入瓶中,使供试品充分溶解。
用注射器将供试液分别转移至100ml稀释液中,摇匀,尽快将进液导管上的双星针头插入该瓶塞上,同时启动集菌器,过滤,直到滤膜上无药液。
将6瓶供试品稀释液全部过滤。
用1000ml的氯化钠溶液冲洗薄膜,每冲洗100ml适当摇动滤器,抽滤干净,冲洗3次。
用夹子加紧滤器上一个进液导管的前端,将每个滤器上的排气孔胶帽取下,堵在滤器底部的排液孔上,各加入100ml需气菌、厌气菌培养基于2个滤器内,取下第一个夹子,再用两个夹子加紧另外2个滤器进液导管的前端,加入100ml真菌培养基于第三个滤器内,前两元滤器中的一个要加入金黄色葡萄球菌10-100个,作阳性对照。
另取两元一次性集菌培养器安装于集菌仪上,用200ml氯化钠溶液冲洗薄膜,用夹子加紧一个滤器的进液导管的前端,然后加入100ml需气菌、厌气菌培养基。
取下夹子,再用夹子加紧另一个滤器进液导管的前端,加入100ml真菌培养基,作阴性对照。
需气菌、厌气菌培养基管置30-35℃,真菌培养基管置20-25℃,培养7天,逐日观察记录结果。
3、无菌检查结果判断:当阳性对照管显浑浊并确有菌生长,阴性对照管呈阴性时,可根据观察所得结果判定。
如需气菌、厌气菌及霉菌培养管均为澄清或浑浊,但经证明并非有菌生长,均为供试品合格;如需气菌、厌气菌及霉菌培养基管中任何一管显浑浊,并确有菌生长,应取样并分别依法复试。
除阳性对照管外其他各管均不得有菌生长,否则,应判定供试品为不合格。
八、微生物限度检查1、供试液的制备:(1)固体供试品固体供试品包括片剂、丸剂、胶囊剂。
称取供试品10g放入灭菌好的匀浆杯中,加稀释剂100ml,启动匀浆仪,以每分钟3000转,旋转3分钟,使供试液均匀,制成1:10供试液。
(2)液体供试品取供试品10ml放入已灭菌锥形瓶中,加入90ml稀释剂,使均匀,制成1:10供试液。
(3)非水溶性供试液制备称供试品5g,加入装有已灭菌融化的温度约45℃的司盘-80 5g,单硬脂酸甘油3g和聚山梨酸10g混合物锥形瓶中,摇匀,加0.9%灭菌氯化钠溶液80ml使供试品充分乳化,制成1:20供试液。
2、细菌霉菌(酵母菌)计数:以固体供试液为例,供试液以10倍递增稀释,将匀浆杯中内容物摇匀,取2-3支灭菌中试管,分别加入9ml灭菌稀释剂。
另取一支1ml灭菌吸管,吸取供试液1ml,加入第一支试管中,混匀,制成1:100的供试液,以此类推,作10倍递增稀释。
根据供试品污染的程度可稀释至10-3或10-4,一般取连续三级稀释液检验。
取吸管分别吸取1ml 10-1供试液加入4平皿中。
再取另一支吸管分别取第二级稀释液1ml加入4个平皿中,第三级稀释液同样操作。
将45℃左右的营养琼脂培养基按每一级稀释液倒入2个平皿,每个平皿15-20ml,立即摇匀。
再取玫瑰红钠琼脂培养基按每一级稀释液倒入2个平皿,同样操作。
细菌数和灭菌数的阴性对照试验:分别吸取稀释剂各1ml加入到4个平皿中,再分别加入营养琼脂培养基和玫瑰红钠琼脂培养基各制成2个平板。
检查细菌的平板倒置于30-35℃培养箱中,培养2天。
检查霉菌的平板倒置于25-28℃培养箱中,培养3天。
逐日观察并记录结果。
阴性对照的平板培养后均不得长菌。
3、大肠杆菌检查:取胆盐乳糖培养基3份,每份100ml,两份分别加入规定量的供试液,其中一份加对照菌50-100个作阳性对照。
第三份加入与供试液等量的稀释液作阴性对照,培养18-24小时。
阴性对照应无菌生长。
取上述三份培养物各0.2ml,分别接种至5mlMUG培养基管内培养,分别于5小时与24小时时取未接种的MUG培养基管作本底对照。
将各管置366nm紫外灯下5cm处观察有无蓝白荧光,然后,加靛基质试液4-5滴于上述MUG培养基管内,适当震摇后,观察液面颜色。