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中国肝病诊疗指南(2024版)中国肝病诊疗指南（2024版）前言肝脏是人体的重要器官，肝病的防治工作在我国公共卫生领域具有重要地位。
为了提高肝病的诊疗水平，规范临床实践，我们根据国内外最新研究成果和我国实际情况，编写了《中国肝病诊疗指南（2024版）》。
本指南旨在为临床医生提供一部权威、实用、更新的肝病诊疗参考书。
本指南编写组成员均为我国肝病领域的权威专家，力求保证指南的科学性、权威性和实用性。
本指南涵盖肝病的预防、诊断、治疗和康复等方面内容，包括病毒性肝炎、肝硬化、肝衰竭、肝肿瘤等常见肝病。
我们期望本指南的发布能为我国肝病防治工作提供有力支持，促进肝病诊疗水平的提高，为广大患者带来福音。
1. 肝病的预防1.1 病毒性肝炎的预防1.1.1 乙型肝炎病毒（HBV）- 疫苗接种：新生儿出生后24小时内、1个月和6个月分别接种乙肝疫苗。
- 乙肝免疫球蛋白的应用：用于预防HBV母婴传播和暴露后预防。
- 严格血液制品管理：加强血液制品的筛查和监管，降低HBV 传播风险。
1.1.2 丙型肝炎病毒（HCV）- 疫苗接种：目前尚无批准使用的丙肝疫苗，需采取其他预防措施。
- 严格医疗器械消毒：避免交叉感染。
- 加强对药物依赖者的干预：降低HCV感染风险。
1.1.3 丁型肝炎病毒（HDV）- 疫苗接种：加强乙肝疫苗普及，降低HDV感染风险。
- 严格血液制品管理：同HBV。
1.1.4 戊型肝炎病毒（HEV）- 水源性预防：加强饮用水卫生管理，提高粪便污水处理水平。
- 食物性预防：加强食品安全监管，预防食源性HEV感染。
1.2 非病毒性肝病的预防1.2.1 肝硬化- 预防酒精性肝病：限酒、戒酒，避免长期大量饮酒。
- 预防非酒精性脂肪性肝病：控制体重、合理膳食、增加体育锻炼。
1.2.2 肝衰竭- 早期发现并治疗肝病基础病因：如病毒性肝炎、肝硬化等。
- 加强肝功能监测：及时发现肝功能衰竭的早期迹象。
1.2.3 肝肿瘤- 定期体检：高危人群（如乙肝病毒感染者、肝硬化患者等）应定期进行肝脏B超、甲胎蛋白（AFP）等检查。
最新肝炎病例报告简介肝炎是指由病毒感染引起的肝脏炎症，其中最为常见的是乙型肝炎和丙型肝炎。
肝炎病例一直是公共卫生关注的焦点，了解最新肝炎病例的情况对于预防和控制肝炎具有重要意义。
乙型肝炎病例报告乙型肝炎是由乙型肝炎病毒（HBV）感染引起的肝脏炎症。
根据最新的乙型肝炎病例报告数据，乙型肝炎病例的发病率呈现下降趋势。
据统计，截至今年10月底，全球乙型肝炎病例总数达到了2.5亿人。
其中，中国是乙型肝炎病例的高发地区，约有1.1亿乙型肝炎携带者。
幸运的是，乙型肝炎的治疗手段不断进步，疫苗接种率也在逐渐提高，这有助于控制乙型肝炎的传播。
丙型肝炎病例报告丙型肝炎是由丙型肝炎病毒（HCV）感染引起的肝脏炎症。
与乙型肝炎不同，丙型肝炎目前尚没有有效的疫苗。
据最新的丙型肝炎病例报告数据显示，丙型肝炎病例的发病率在全球范围内仍然较高。
据统计，全球范围内有约5800万人感染了丙型肝炎病毒，其中大部分人未能及时发现和接受治疗。
丙型肝炎的治疗手段也在不断改进，但由于病毒的变异性，对丙型肝炎的治疗仍然具有挑战性。
肝炎防控措施针对肝炎的预防和控制，采取以下措施具有重要意义：1.疫苗接种：乙型肝炎疫苗是预防乙型肝炎的最有效方法，应该推广普及疫苗接种，特别是对于高风险人群。
对于丙型肝炎来说，虽然尚无有效的疫苗，但通过减少风险行为，如注射毒品等，可以降低感染风险。
2.加强宣传教育：加强肝炎预防知识的宣传教育，提高公众的认知水平，让更多的人了解肝炎的危害和预防方法。
3.提高诊治水平：加强医疗机构对肝炎的诊治水平，提高早期发现和诊断的能力，为患者提供及时有效的治疗。
4.加强监测和报告：建立健全的肝炎监测和报告体系，及时获取病例数据，为肝炎防控提供科学依据。
结论肝炎是一种严重威胁人类健康的疾病，乙型肝炎和丙型肝炎是其主要形式。
通过加强肝炎防控措施，包括疫苗接种、宣传教育、诊治水平提高和监测报告等，可以有效预防和控制肝炎的传播。
各国政府和社会各界应共同努力，合作开展肝炎防治工作，为构建健康中国做出贡献。
HIV、HBV、HCV重叠感染研究进展
朱彪;吴南屏
【期刊名称】《国际流行病学传染病学杂志》
【年(卷),期】2002(029)006
【摘要】人免疫缺陷病毒(HIV)、乙型肝炎病毒(HBV)及丙型肝炎病毒(HCV)的传播途径相似,在静脉注射毒品者、性混乱者和血友病患者等人群中可引起严重的重叠感染,并可导致病毒生物学行为改变,使感染者临床表现复杂化,给治疗带来更大的困难.本文对HIV、HBV、HCV重叠感染的流行病学、病毒生物学行为变化、致病机制及治疗等方面的研究进展作了综述.
【总页数】4页(P330-333)
【作者】朱彪;吴南屏
【作者单位】浙江大学医学院附属第一医院传染病研究所,310003;浙江大学医学院附属第一医院传染病研究所,310003
【正文语种】中文
【中图分类】R3
【相关文献】
1.抗HIV阳性患者HBV、HCV、TP重叠感染情况分析 [J], 何晓清;何继宏;黄春花
2.针对2010－2012年中国国家免费抗逆转录病毒治疗项目中HIV、HBV、HCV 重叠感染患者的一项回顾性队列研究 [J], 王承芯;赵旭;报道
3.3560例静脉吸毒者HBV或HCV重叠感染HIV状况分析 [J], 黄红樱
4.凉山州HIV与HBV、HCV、TP重叠感染状况分析 [J], 唐友芬;杨锦云
5.抗HIV阳性患者HBV、HCV、TP重叠感染情况分析 [J], 顾红
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乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒、人类免疫缺陷病毒（1+2型）核酸检测试剂盒（PCR-荧光法）操作规程1.目的规范核酸检测试验操作，确保检测结果的准确性。
2.原理2.1 汇集：吸取8份（或以下）样品到指定的汇集管。
2.2提取：病毒核酸提取的方法为磁珠法。
试剂盒提供之内对照(IC)为不具感染性的假病毒，在进行样品核酸提取前加入样品中，监控提取、扩增和分析的全过程。
标本经裂解液处理后会将病毒外鞘膜破坏，蛋白质变形，使病毒裂解释放出病毒基因组核酸。
加入表面包被有二氧化硅的磁珠颗粒，在高盐环境下带负电荷的核酸吸附到带正电荷的的磁珠颗粒表面。
洗液可以洗去未结合的物质，如变性的蛋白、细胞碎片、PCR抑制物等并降低盐浓度。
纯化的病毒在特定的环境下从磁珠颗粒表面洗脱下来成为扩增的模板。
2.3扩增：采用PCR扩增TaqMan荧光探针标定技术同时对HBV（DNA）、HCV（RNA）、HIV（RNA）进行检测。
在反转录酶的作用下HCVRNA、HIVRNA反转录成cDNA，再与HBVDNA一同通过TaqDNA聚合酶的作用扩增病毒核酸的保守区域，TaqDNA聚合酶5`—3`外切酶活性切割反应系统中带荧光标记的TaqMan探针，随着PCR的进行，荧光信号不断积累。
通过PCR仪的检测血液标本达到和超过荧光阈值的信号给出样品的阴阳性结果。
选择性PCR扩增：采用UNG-dUTP抗污染系统。
在PCR扩增系统中采用UTP代替TTP，产生大量U-DNA片段。
UNG酶特异识别U-DNA片段中含UTP的位点并进行切割，U-DNA被降解后不能作为再次扩增的模板，系统选择性的扩增天然的核酸分子，从而防止了PCR扩增产物的污染。
2.4 质量控制原理为监控实验进行，保证实验结果的准确，在每次检测过程依靠阳性、阴性质控品以及内标进行监测。
2.4.1阴性质控品监控系统性假阳性，如果阴性质控品检测结果为阳性，说明实验存在假阳性的风险，因此实验中的阳性结果需复查。
丙型病毒性肝炎诊断标准(WS213-2022)1范围本标准规定了丙型病毒性肝炎的诊断依据、诊断原那么、诊断和鉴别诊断。
本标准适用于全国各级各类医疗卫生机构及其工作人员对丙型病毒性肝炎的诊断、报告。
2缩略语HCV:丙型病毒性肝炎病毒抗-HCV：抗丙型病毒性肝炎病毒抗体HCVRNA:丙型病毒性肝炎病毒核糖核酸RT-PCR:逆转录聚合酶链反响EI・ISA：酶联免疫吸附试验EIA:酶免疫检测ALT:丙氨酸氨基转移酶AST:门冬氨酸氨基转移酶B超：腹部超声显像CT:计算机断层扫描MRI:磁共振成像3诊断依据3・1流行病学史3.1.1曾接受过血液、血液制品或其他人体组织、细胞成分治疗，或器官移植。
3.1.2有血液透析史、不洁注射史，或其他消毒不严格的有创检查、治疗史，有静脉注射毒品史。
3.1.3职业供血者，特别是接受过成分血单采回输者。
3.1.4与HCV感染者有性接触史，或HCV感染者〔母亲〕所生的婴儿。
3.2临床表现3.2.1急性丙型病毒性肝炎3.2.1.1病程在6个月以内，全身乏力、食欲减退、恶心和右季肋部疼痛或不适等。
3.2.1.2可有轻度肝肿大、局部患者可出现脾肿大；少数患者可伴低热或出现黄疽。
3.2.1.3局部患者可有关节疼痛等肝外表现。
3.2.1.4局部患者可无明显病症和体征。
3.2.2慢性丙型病毒性肝炎3.2.2.1病程超过6个月，全身乏力、食欲减退、恶心和右季肋部疼痛或不适等。
3・2・2.2局部患者可有肝病面容、肝掌、蜘蛛痣及轻度肝、脾肿大。
3・2・2.3局部患者可无明显病症和体征。
3・2・3丙型病毒性肝炎肝硬化3.2.3.1可有全身乏力、食欲减退、恶心和右季肋部疼痛或不适等。
3・2・3・2可有肝病面容、肝掌、蜘蛛痣及腹壁或食管、胃底静脉曲张及脾脏肿大和脾功能亢进。
3・2・3・3失代偿期患者可有腹水、肝性脑病及消化道出血史。
3.3实验室检查3・3・1急性丙型病毒性肝炎有血清ALT、AST升高，局部病例可有血清胆红素升高。
最新《乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒...
乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒、人类免疫缺陷病毒（1+2型）核酸检测
试剂盒（PCR-荧光法）操作规程
1.目的
规范核酸检测试验操作，确保检测结果的准确性。
2.原理
2.1 汇集：吸取8份（或以下）样品到指定的汇集管。
2.2提取：病毒核酸提取的方法为磁珠法。
试剂盒提供之内对照(IC)为不具感染性的假病毒，在进行样品核酸提取前加入样品中，监控提取、扩增和分析的全过程。
标本经裂解液处理后会将病毒外鞘膜破坏，蛋白质变形，使病毒裂解释放出病毒基因组核酸。
加入表面包被有二氧化硅的磁珠颗粒，在高盐环境下带负电荷的核酸吸附到带正电荷的的磁珠颗粒表面。
洗液可以洗去未结合的物质，如变性的蛋白、细胞碎片、PCR抑制物等并降低盐浓度。
纯化的病毒在特定的环境下从磁珠颗粒表面洗脱下来成为扩增的模板。
2.3扩增：采用PCR扩增TaqMan荧光探针标定技术同时对HBV （DNA）、HCV
（RNA）、HIV（RNA）进行检测。
在反转录酶的作用下HCVRNA、HIVRNA反转录成cDNA，再与HBVDNA一同通过TaqDNA聚合酶的作用扩增病毒核酸的保守区域，TaqDNA聚合酶5`—3`外切酶活性切割反应系统中带荧光标记的
TaqMan探针，随着PCR的进行，荧光信号不断积累。
通过PCR 仪的检测血液标本达到和超过荧光阈值的信号给出样品的阴阳性结果。
选择性PCR扩增：采用UNG-dUTP抗污染系统。
在PCR扩增系统中采用UTP代替TTP，产生大量U-DNA片段。
UNG酶特异识别U-DNA片段中含UTP的位点并进行切割，U-DNA被降解后不能作为再次扩增的模板，系统选择性的扩增天然的核酸分子，从而防止了PCR扩增产物的污染。
2.4 质量控制原理
为监控实验进行，保证实验结果的准确，在每次检测过程依靠阳性、阴性质控品以及内标进行监测。
2.4.1阴性质控品监控系统性假阳性，如果阴性质控品检测结果为阳性，说明实验存在假阳性的风险，因此实验中的阳性结果需复查。
2.4.2低浓度阳性质控品监控系统假阴性，如果低浓度阳性质控品检测结果为阴性，说明实验存在假阴性或灵敏度下降的风险，因此实验中的阴性结果均需复测。
2.4.3内对照分为DNA内对照和RNA内对照，是每个反应管中的阳性质控，用
于监控单个反应管中DNA与RNA的假阴性风险，如果标本检测结果为阴性，其DNA内对照与RNA内对照结果必须为阳性，否则提示该标本的扩增受到抑制，该阴性检测结果有假阴性风险，需要复测。
3.适用范围
适用于核酸实验室采用核酸技术进行的HBV、HCV、HIV三项单管混样检测。
4.职责
4.1 授权的检验人员负责试验操作、结果判读，作好相关记录，对检测结果的真实性和有效性负责。
4.2 授权的监督人员负责监督该规程执行。
5.原始样品系统
血浆
6.材料与设备
6.1 消耗品
6.1.1乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒、人类免疫缺陷病毒（1+2型）核酸检测试剂盒（PCR-荧光法），苏州华益美生物科技有限公司；
6.1.2 96孔深孔板
6.1.3 1.5ml离心管（手工实验用）和2mlAxgen离心管（用于配置PCR反应液）；
6.1.4 5ml汇集管；
6.1.5 96孔扩增板或八连管；
6.1.6 带滤芯并经灭菌处理的Tip头；
6.1.7 自封袋；
6.1.8 磁棒套管；
6.1.9留样板和封膜
6.2 设备
6.2.1 HAMILTON STAR全自动样品处理系统；
6.2.2 MeDiPro SuperPure System-32核酸萃取仪；
6.2.3 ABI7500荧光定量PCR仪；
7.检测环境
7.1 符合二级生物安全实验室条件。
工作环境要求空气流通、照明充足；室内环境整洁、干净并配有消毒设备。
7.2 实验室温度：20-30℃；湿度40-60%。
8.程序步骤
8.1 试剂准备区操作
8.1.1消耗品的准备和深孔板反应盘的预分装
8.1.1.1常规实验
清点当日试验所需的消耗品，移送标本制备区，并做好记录。
8.1.1.2手工实验
8.1.1.2.1预分装洗涤液A、洗涤液B、洗脱液，需充分混匀，使用移液器分配至反应盘L-2
8.1.1.2.2 可于前一工作日预分装4.2ml核酸萃取液到5ml管；
8.1.2反应液的配制
8.1.2.1常规操作
8.1.2.1.1从-20℃冰箱取出试剂的反应液A、反应液B、反转录酶、RNA保护剂、
Taq酶；室温溶解、平衡（反应液的配制时间应控制在15—20分钟，则平衡时
间大约10分钟），于震荡器上充分混匀。
8.1.2.1.3 更换无粉手套；标记2ml离心管（配制量、使
用日期），按照下表配制反应液（反应液量为n（标本数量
/8）+4（NC、PC、室内阳性质控品、阴性质控品各一孔）
+2人份（富余量）。
8.1.2.1.4 于震荡器上充分混匀，手动高速（5000转）离心约20秒以消除气泡。
8.1.2.1.5将配制好的反应液送交标本制备区，也可短时（5min之内）存于4℃
冰箱。
8.1.2.2手工操作
8.1.2.2.1同8.1.2.1.1至8.1.2.1.4。
8.1.2.2.2乳胶手套外戴上薄膜手套，取用扩增板或八连管于托盘上。
8.1.2.2.3 将配制好的反应液按照H`-A`固定方向依次分配，每孔20μl（吸头垂
直加样，避免碰壁），分配数量为n（标本数量）+4（NC、PC、室内阳性质控
品、阴性质控品各一孔）。
8.1.2.2.4目测每孔是否足量、超量。
8.1.2.2.5分配好的扩增板或八连管放入自封袋中，于袋上标记，通过传递窗送
交标本制备区，也可短时（5min之内）存于4℃冰箱。
8.2 标本制备区操作
8.2.1标本准备：
8.2.1.1 将标本按顺序转移到32孔样品架,条码面向右侧，使用STAR将标本管献血码扫描入“**/NAT_TEST_RECORD”中；剔除酶免、ALT检测反应性标本。
8.2.1.2在生物安全柜中逐个去除标本管管盖。
8.2.2按照《核酸实验室血液检测标识的管理程序》粘贴汇集管、深孔板、留样板所需条码。
8.2.3 常规试验
8.2.3.1【HAMILTON –MSS系统准备流程】
1.保证仪器正常通电，要求使用不间断电源(UPS)
2.检查废弃吸头收集框是否套有一次性垃圾袋（每次实验后立即清理并更换新
的垃圾袋）
3.启动HAMILTON工作站模块及对应电脑电源，
注：应先开电脑，后开机器
4.启动MeDiPro SuperPure System-32工作站模块电源，开启模块紫外灯自动
照射10分钟
8.2.3.2【HAMILTON–MSS系统实验流程】
1.装载加样尖到HAMILTON工作站模块加样尖区域。
2.装载96孔反应盘到HAMILTON工作站模块反应盘区域。
3.装载PCR扩增反应盘到HAMILTON工作站模块反应盘区域。
4.装载试剂槽到HAMILTON工作站模块试剂区域。
5.取出核酸萃取液、载体RNA和内标，平衡至室温，并充分混匀。
按下表所列方
注：n=待测样本数
6.取出核酸萃取液/载体RNA/内标混合液、洗涤液A、洗涤液B、洗脱液和磁珠悬液，充分混匀，分别加入对应的试剂槽。
7.运行试剂分装程序，将核酸提取试剂分装入96孔反应盘中。
试剂分布见下表。
8.插入标本载架、汇集管载架到HAMILTON工作站模块对应区域。
9.运行标本汇集程序，完成标本汇集。
10.取掉标本管载架，整理标本并2~8℃暂存。
11.运行核酸提取程序，进行汇集标本的裂解，然后分装入96孔反应盘中，具体分装见下表。
目测反应盘（深孔板），检查分配的试剂是否达量；硅胶盖（经75%酒精浸洗，紫外线灯照射）封反应盘L-1，封板膜封反应盘L-2，并压实。
12.96孔反应盘移入MeDiPro SuperPure System-32核酸提取模块中。
13.执行下表所示的MeDiPro SuperPure System-32核酸提取程序，进行核酸提取。
