感受态细胞的制备
- 格式:doc
- 大小:15.00 KB
- 文档页数:2
(1)L CaCl2溶液
(2)LB液体培养基 在950 ml去离子水中加入: 胰化蛋白胨 10g,酵母提取物 5g,NaCl 10g,
摇动容器直至溶质溶解.用5mol/LNaOH调pH至.用去离子水定容至1L.
(3)30%甘油:30mL甘油溶于100mL蒸馏水,高压灭菌。
主要设备
(1)超净工作台
(2)冷冻离心机
(3)恒温摇床
(4)-70℃冰箱
(5)10mL移液管
(6)吸耳球
(7)1mL、200μL移液枪(配套枪头)
(8)50mL 离心管
(9)离心管
实验材料
(1)大肠杆菌DH5α(R-,M-,Amp-)
实验步骤
(一)受体菌的培养
(1)从LB平板上挑取新活化的E. coli DH5α单菌落,接种于3~5mL LB液体培养基中,37℃
下振荡培养过夜(12h左右)。
(2)将该菌种悬液以1:100的比例接种,取450μL菌液转接到45mL LB液体培养基中,37℃
振荡培养2~3h至OD600=左右。
(二)感受态细胞的制备
(注意:以下操作在超净工作台完成。)
(1)将菌液转入50mL离心管中,冰上放置10min。
(2)在4℃下,4000r/min离心10min。弃去上清,将管倒置1min以便培养液流尽。
(3)用冰上预冷的L的CaCl2 溶液18mL轻轻悬浮细胞,冰上放置30min。
(4)0~4℃ 4000r/min离心10min,弃去上清,加入4mL预冷的L的CaCl2 溶液,轻轻悬浮
细胞,冰上放置(务必冰上放置)。
(注意:以上操作完成了新鲜感受态细胞的制备)
(三)感受态细胞的分装与冻存
(1)在4mL制备好的感受态细胞中加入4mL 30%甘油(即1:1体积,甘油终浓度15%)。
(2)将此感受态细胞分装成每份200μL dorf管),液氮速冻,快速转入-70℃冰箱保存。(如
果没有液氮,可以将分装的感受态细胞直接转入-70℃冰箱保存。)
注意事项
⑴、细胞的生长状态和密度
最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。不要用已 经
过多次转接,及贮存在4℃的培养菌液。细胞生长密度以每毫升培养液中的细胞数在5×107
个左右为佳。即应用对数期或对数生长前期的细菌,可通过测定培养液的OD600控制。对
TG1菌株,OD600为0.5时,细胞密度在5×107个/ml左右。(应注意OD600值与细胞数
之间的关系随菌株的不同而不同)。密度过高或不足均会使转化率下降。 此外,受体细胞
一般应是限制-修饰系统缺陷的突变株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株。并且受
体细胞还应与所转化的载体性质相匹配。
⑵、试剂的质量
所用的CaCl2等试剂均需是最高纯度的,并用最纯净的水配制,最好分装保存于4℃。
⑶、防止杂菌和杂DNA的污染
整个操作过程均应在无菌条件下进行,所用器皿,如离心管,移液枪头等最好是新的,并经
高压灭菌处理。所有的试剂都要灭菌,且注意防止被其它试剂、DNA酶或杂DNA所污染,
否则均会影响转化效率或杂DNA的转入。
⑷、整个操作均需在冰上进行,不能离开冰浴,否则细胞转化率将会降低。
固体LB培养基:在950 ml去离子水
中加入: 胰化蛋白胨 10g,酵母提取物 5g,NaCl 10g,摇动容器直至溶质溶解.用5mol/LNaOH
调pH至.用去离子水定容至1L. 加15g琼脂粉,高压灭菌后,将融化的LB固体培养基置与
55℃的水浴中,待培养基温度降到55℃时(手可触摸)加入抗生素。
精心搜集整理,只
为你的需要