临床检验标本的采集规范

临床检验标本采集、运输、保存操作规程临床检验标本采集、运输和保存操作规程第一章体液标本的采集、运输和保存操作规程一、尿液标本的采集、运输和保存尿液标本的采集、运输和保存是临床检验中非常重要的一环。

尿液干化学测定的检查项目包括尿液比重、pH值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖和抗坏血酸等。

同时也需要检测尿液有形成份，如红细胞和白细胞形态等。

此外，还需要检测24小时尿总蛋白、尿肌酐和尿尿酸等。

二、脑脊液标本的采集、运输和保存脑脊液标本的采集、运输和保存也是非常重要的。

在采集脑脊液标本时，需要注意消毒和无菌操作。

运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。

三、浆膜腔积液标本的采集、运输和保存浆膜腔积液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。

四、分泌物标本的采集、运输分泌物标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温。

五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温。

六、标本的采集、运输和保存标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。

七、前列腺液标本的采集、运输和保存前列腺液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。

八、粪便采集、运输和保存粪便采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。

第二章血液一般检验的标本采集、运输和保存操作规程一、未梢血标本采集未梢血标本采集需要注意消毒和无菌操作。

医院关于临床实验(检验、病理)标本采集、运送管理制度第一章总则第一条为了规范临床实验（检验、病理）标本的采集、运送和管理，确保检验结果的准确性和患者安全，根据《医疗机构临床实验室管理办法》、《医疗机构标本采集、运送和检测规范》等规定，制定本制度。

第二条本制度适用于本院临床实验（检验、病理）标本的采集、运送、接收、处理、储存、分发、废弃等环节的管理。

第三条临床实验（检验、病理）标本采集、运送工作应遵循科学、规范、安全、高效的原则，确保标本质量，为临床诊断、治疗和科研提供准确、及时的信息。

第四条医院设立临床实验（检验、病理）标本采集、运送管理领导小组，负责全院临床实验（检验、病理）标本采集、运送工作的组织、协调和监督。

第二章组织机构与职责第五条临床实验（检验、病理）标本采集、运送管理领导小组由院长、副院长、医务科、护理部、检验科、病理科、放射科等相关科室负责人组成。

第六条临床实验（检验、病理）标本采集、运送管理领导小组职责：（一）制定和完善临床实验（检验、病理）标本采集、运送管理制度；（二）监督和检查临床实验（检验、病理）标本采集、运送工作的实施情况；（三）协调解决临床实验（检验、病理）标本采集、运送过程中出现的问题；（四）组织培训和考核临床实验（检验、病理）标本采集、运送相关人员；（五）定期评估临床实验（检验、病理）标本采集、运送工作的质量和效率。

第七条临床实验（检验、病理）标本采集、运送工作人员职责：（一）严格按照规定程序和操作规程进行标本采集、运送；（二）确保标本质量和完整性，防止标本污染、损坏和丢失；（三）及时、准确地将标本送达实验室，确保检验结果的及时性；（四）参与临床实验（检验、病理）标本采集、运送相关培训和考核；（五）报告临床实验（检验、病理）标本采集、运送过程中出现的问题，并提出改进建议。

第三章标本采集与运送第八条临床实验（检验、病理）标本的采集应由具备相应资质的医护人员负责，严格按照国家相关规定和医院操作规程进行。

临床检验标本采集规范1. 引言临床检验是医生诊断和治疗疾病的重要工具之一，而标本的采集过程和质量直接影响到检验结果的准确性和可靠性。

为了确保标本采集的规范性，提高临床检验的质量和准确度，本文将介绍临床检验中常见标本的采集规范。

2. 血液标本的采集规范2.1 静脉血采集规范•患者应保持安静，并在采集前至少休息15分钟。

•采用专业护士或技术人员进行采集，必须消毒皮肤。

•选择适当的静脉穿刺部位，并确保穿刺点干燥。

•使用无菌注射器和采血针采血，遵循穿刺技术和穿刺角度要求。

•采血时要逐渐放开缚带，以防止血液淤积。

•采血管要避免细菌污染和血栓形成，不得抽血过多。

•血液采集完成后，立即停止采血，并正确处理采血设备。

2.2 动脉血采集规范•动脉血的采集通常由经验丰富的医生或专业技术人员进行。

•应仔细选择采集部位，并确保部位皮肤无明显感染或瘢痕。

•采用无菌采血针和注射器采集动脉血。

•术前与患者说明术前准备和可能的疼痛感。

•采集动脉血时要注意采血针的角度和深度，避免损伤周围组织。

3. 尿液标本的采集规范3.1 一般尿液采集规范•使用干净的尿杯进行尿液采集。

•慎重选择采集时间和采集方式。

•严禁将外界杂质或水分进入尿液标本。

•采集前要进行适当的局部清洁，女性要避免采集期间的经期。

3.2 尿液分析标本的采集规范•采集首末尿，即排尿前尿与排尿后尿。

•采集的尿样应在2小时内送达实验室进行检测。

•采集时尽量收集尿液中段部分，以避免采集过多的表皮细胞或残留尿液。

4. 粪便标本的采集规范4.1 粪便标本的采集方法•采用无菌容器收集粪便标本。

•采集前要确保患者肛门及周围清洁，避免尿液和外用药物污染。

•采集粪便时要避免掉落和外界污染。

•采集的粪便标本应尽快送达实验室进行检测。

5. 结论临床检验标本的采集规范对于确保检验结果的准确性和可靠性至关重要。

本文介绍了常见标本（血液、尿液、粪便）的采集规范，并提供了一些基本的操作指导。

作为临床医生或检验人员，必须严格按照标本采集规范来进行操作，以确保检验结果的可靠性和准确性。

临床试验检验标本采集及运输标准操作规程全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：一、前言临床试验是评价药物安全性和有效性的重要手段，而标本采集及运输是临床试验的重要环节之一。

合理的标本采集和运输操作规程对于保证临床试验数据的准确性和可靠性至关重要。

为了规范标本采集及运输工作，提高临床试验的质量，特制定本标准操作规程。

二、术语定义1. 临床试验：指对人体进行的药物安全性和有效性评价的研究。

2. 标本：指用于生化检测、药物浓度测定等分析的生物组织或体液。

3. 采集者：指从受试者身上采集标本的人员。

4. 运输者：指将标本从采集点送至检验点的人员。

三、采集操作规程1. 采集前准备（1）采集者应接受相关培训，了解采集标本的目的、方法和注意事项。

（2）采集器具应事先消毒，并准备好采集所需的标本管、采血针等工具。

（3）标本采集应在合适的环境中进行，保证采集者和受试者的安全和舒适。

2. 采集过程（1）根据临床试验方案要求，确保采集正确的标本类型和数量。

（2）遵循标本采集的标准流程，依次进行手部消毒、标本采集、采集管标记等操作。

（3）采血时应注意选择适当的采血部位和针头，避免造成受试者不必要的疼痛和伤害。

3. 采集后处理（1）采集完毕后，采集者应及时将标本管密封并标记好受试者信息。

（2）遵守标本储存和运输的规定，确保标本的稳定性和完整性。

1. 运输前准备（1）运输者应对标本进行分类和包装，确保标本的准确性和完整性。

（2）运输前应检查标本信息是否完整，并与采样者信息进行核对。

2. 运输过程（1）运输标本应选择符合要求的运输工具和容器，避免标本泄漏和污染。

（2）在运输途中应避免标本受到振动和温度变化，保证标本的稳定性和质量。

（3）运输者应妥善保管标本，避免与其他物品混杂，并遵守相关安全规定。

3. 运输后处理（1）标本送达检验点后，应立即进行登记和接收，确保标本信息准确无误。

（2）对标本进行处理时应遵守相关规程，确保标本能够及时送检并得到准确分析。

检验标本的采集与运送规范检验标本的采集与运送是医学检验过程中的重要环节，直接关系到检验结果的准确性。

为了确保检验结果的科学性、准确性和可靠性，必须严格按照规范进行标本的采集和运送。

以下是关于检验标本的采集与运送的详细规范。

一、标本采集规范1. 采集前的准备（1）采集人员应具备专业的采集技能和知识，了解检验项目的相关要求。

（2）准备所需的采集工具，如注射器、试管、棉签、消毒液等，并确保工具的清洁、无菌。

（3）核对患者信息，确保采集的标本与患者信息相符。

2. 采集方法（1）采集血液标本时，应根据检验项目选择合适的采血部位，如空腹采血选择肘正中静脉，非空腹采血选择股静脉或头皮静脉等。

（2）采集过程中，注意止血带的使用，避免过度压迫血管。

（3）采集尿液标本时，应确保尿液标本来自清洁的尿道，避免污染。

（4）采集粪便标本时，应使用无菌棉签或试管进行采集，避免标本污染。

（5）采集唾液标本时，使用无菌试管，指导患者在采集前避免进食和口腔清洁。

3. 采集注意事项（1）采集标本时，应严格遵守无菌操作原则，防止交叉感染。

（2）采集过程中，注意保护患者的隐私和权益。

（3）采集血液标本时，注意观察患者的反应，如出现晕血、过敏等情况，应立即采取相应措施。

（4）采集标本时，应详细记录患者的病情、服用药物等信息，以便检验人员分析检验结果。

二、标本运送规范1. 运送前的准备（1）将采集好的标本放入合适的容器中，确保容器密封、防漏。

（2）根据检验项目的要求，选择合适的运送方式，如冷链、常温等。

（3）填写标本运送单，包括患者信息、标本类型、采集时间等。

2. 运送过程（1）标本的运送应尽快进行，避免延迟。

（2）运送过程中，注意保持标本的稳定性，避免剧烈震动、温度变化等。

（3）对于特殊标本，如细胞学标本、微生物标本等，应严格按照要求进行运送。

（4）运送人员应具备相关的专业知识，了解标本的运送要求。

3. 运送注意事项（1）运送过程中，确保标本的安全，防止标本丢失、损坏等。

临床检验标本的采集规范第一部分各类检验标本容器类型及要求第二部分患者准备病人在采血前24h 内应避免运动和饮酒,避免情绪激动,注意合理饮食除了急诊或其它特殊原因外,一般主张正常饮食 3 天后采血,应避免暴饮暴食及刻意控制饮食;静脉血标本采集最好在起床后1h 内进行;应在空腹10～14 小时后第二天清晨采血;餐后或延长空腹时间饥饿均可引起血液化学成分的改变;门诊病人提倡静坐15 分钟后再采血;另外饮食的量及质对检验结果也有影响,如高蛋白饮食可使血清尿素氮、血氨、尿酸升高；高脂肪饮食引起乳糜微粒血症,导致血清脂血混浊；饮水过多或过少可使血清稀释或浓缩；含咖啡因的饮料可使儿茶酚胺释放等;采血时间：有些血液成份日间生理变化较大,因此应相对固定采血时间,一般以清晨空腹抽血为宜〈急症项目除外〉;患者体位：体位影响血液循环,由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变,则细胞成分和大分子物质的改变较为明显,例如由卧位改为站位,血浆ALB、TP、酶、Ca、胆红素、Tch 及TG 等浓度增高；Hb、HCT、RBC 等亦可增加;由于体位的因素,在确立参考值时,应考虑门诊和住院病人可能存在的结果差异,故采集标本时要注意保持正确的体位和保持体位的相对一致性;药物影响：很多药物进入人体后可使某些化验项目的结果增高或降低,如咖啡因可使血糖和胆固醇增高；冠心平可使甘油三酯和乳酸脱氢酶降低；维生素C 可使乳酸脱氢酶降低；口服避孕药可使转氨酶升高等;故病人在化验前应尽可能停服对检验有干扰的药物;输液的影响：不能在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采血;输液时应在输液的另一侧手臂取血;生活方式的影响：烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食,可使血液中某些成份高于正常,需与一般病理情况相区别,取血前几日应注意避免;生理差别的影响：不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经期,血液成份有一定的生理差异,应注意与病理情况区别;第三部分标本采集及注意事项1. 静脉血液采集采血注意事项：严格按照无菌技术操作,无论医生、护士、检验人员除穿戴工作服外,还应戴帽子、口罩和一次性医用乳胶手套,同时严格做好采血者手和患者采血部位的消毒,防止患者采血部位感染;保证一人一针一管一带,杜绝交叉感染;真空采血过程如有血液外溢和污染,立即用%消毒灵或其它消毒液进行消毒处理;对所有的采血材料严格执行使用前再次检查,保证安全;采血人员对所采集的标本做好登记工作,并签名;样品采集完后,对所使用的材料做好无害化处置,保证环境和人员安全;采集流程门诊静脉血采集流程检验人员收取检验申请单→审查合格核对检验单上费用,姓名、科别、检验项目等是否填写清晰,能正确辨认→按申请单上的病人姓名呼唤其姓名再次确认病人→确认采血静脉并严格消毒→按照采血管顺序采取静脉血→采血完成嘱咐患者用棉签压迫伤口→采血人员充分混匀样品→送至相关部门检测由运送部人员完成;住院部静脉血采集流程护士收取检验申请单→审查合格核对检验单上姓名、住院号、科别、床号、检验项目等是否填写清晰,能正确辨认→按申请单上的病人姓名呼唤其姓名以再次确认病人→确认采血静脉并消毒→按照采血管顺序采取静脉血→采血完成用棉签压迫伤口→充分混匀样品在采血单上填上采血时间→送至检验科检测由临床医护人员完成; 静脉采血时,止血带离抽血扎针部位上方约5cm 距离,注意袖筒不要太紧;通常选择手肘中央部分较粗的静脉血管,用食指触摸,是否为有弹性的血管肌肉较无弹性,若该部位不明显,可改用手背处静脉请患者手轻握;确定穿刺部位后,以安尔碘或者爱尔碘等混合消毒液作为消毒剂,以选定之静脉穿刺部位为中心点,由内往外以环状涂拭消毒,消毒直径约 cm 左右,稍待干躁后进行标本采集;消毒后用一次性采血针穿刺,回血后将另一端的硬插管插入真空定量采血管内,松开止血带,采血足量后,拔出硬插管,可插入另一支真空采血管继续采血;整个采血过程无血液溢出和污染,采血完成后,请病人手指压住棉签,手伸直抬高于心脏,保持5 分钟,有出血倾向者如紫癜,ITP,血液病等宜按压10 分钟以上至无血液渗出;把针头放入专用利器废弃桶内;静脉采血的注意事项：在肌肉注射或静脉输含有葡萄糖或电解质含钾、钠、氯离子的液体时,建议3小时以后采集静脉血标本进行这些项目的检验,以防止上述检验项目因输液引起的假性升高;如因抢救等原因需要在输液同时采血的,一定要在输液对侧采集标本,医生应正确评价检测结果;禁止从中心静脉插管、肝素帽等保留的治疗通道中采集血液标本;止血带使用时间应少于1 分钟建议在针头穿刺进入血管后即放松止血带,以免引起血液淤滞,局部组织缺氧,造成血液某些成分的改变,特别是测定乳酸时不可使用止血带,否则结果偏高; 血标本应防止溶血;引起溶血的原因有：容器不清洁、不干燥；淤血时间过长；穿刺不顺利；组织损伤过多；抽血速度过快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快时产生大量泡沫；震荡过于剧烈等;若用普通注射器采血后,未取下针头直接将血液注入真空管内,也易造成溶血;必须正确选择采血管;不同检验项目对采血管有各自要求,错误的使用采血管可能导致检验结果较大出入;采集凝血管和血沉管时注意抗凝剂与血液的比例,具体使用情况参照本手册;采血后,同一病人不同抗凝剂之间的血液禁止相互倾倒,否则可能造成难以解释的检验结果;采完血后,无抗凝剂的管无需颠倒,有抗凝剂或分离胶的血标本采集后立即轻轻混匀;手法：上下完全颠倒5~8 次,手法轻柔,迅速;勿左右晃动、勿剧烈震荡,以防凝血发生;真空管采血顺序：血标本采集时建议的真空管使用顺序如下血培养先需氧瓶,后厌氧瓶凝血管蓝→血清管红→肝素管绿→EDTA 管紫→血沉管黑→ACD 管灰→其它管;2. 末梢血采集常用选择无名指婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血,先用酒精棉球消毒,然后用一次性采血针穿刺,让血液自然流出,用消毒棉球轻拭去第一滴后,将血液收集在毫升eppendorf 离心管内加EDTAK2 抗凝剂,约毫升;用干棉球压住穿刺部位,嘱采血对象按压2-3 分钟;用手指轻弹离心管底部8 至10 次,或在微型震荡器混匀,让血液与抗凝剂充分混匀;3. 尿液标本采集尿液标本类型;首次晨尿：即留取清晨第一次尿,能真实的反映肾脏病情况,尿液化学成分的检测最好采用晨尿;随机尿：不为条件所限,适于门诊、急诊病人,但受多种因素,如饮水量、饮食等的影响;收集首次晨尿排泄后2-4 小时内的尿液标本作为第二次晨尿有利于尿液有形成分的检测;午后尿：午餐后2h 尿中尿胆原和糖含量高,适于这两种成分的检验,可提高阳性检出率;中段尿：微生物检验的样本应取中段尿并立即送检;采集方法：女性病人先以肥皂水冲洗外阴部及尿道口；男性病人应翻转包皮,用肥皂水冲洗或消毒尿道口,再用灭菌纱布擦干,让病人排尿,弃去前段尿,收集中段尿10-20ml,盛于无菌容器内立即加盖送检 12h 尿：需甲醛防腐患者到门诊二楼化验室领取,100ml 尿液中加;头晚8 时排空膀胱并弃去此次尿液,再收集至翌晨8 时前的全部尿液,适用于Addis 尿沉渣计数;24h 尿：适于代谢产物24h 定量测定,如尿蛋白、糖、钠、钾、氯、钙、尿酸等;应准确的收集24h 尿液,采集方法：早上8 点到第二天早上8 点,早上8 时排空膀胱并弃去此次尿液,再收集,直到第二天早上8 点将小便全部收集在容器中,并测尿量,从混匀尿液中采集30ml 送检;收集24h 尿液根据检验目的加入适当防腐剂;24h 尿液沉渣还可用于找抗酸杆菌;收集24 小时尿液,原则上应首选0～4℃冷藏,必要时可添加化学防腐剂;特殊体位采集标本：如分别采集直立或运动后尿标本与平卧8h 后尿标本,对体位性蛋白尿、运动性血尿诊断有帮助;午2 点钟至4 点钟留取尿标本：适于尿胆原检查;清洁尿中段尿、导尿、膀胱穿刺尿等：适于细菌培养,应注意无菌操作;注意事项应用清洁、有盖、干燥的一次性容器,防止日照与污染;采集尿液量：尿常规与一般定性检查留取尿液约30ml;容器应贴上标签,标签内容应包括：姓名/科室/床号/标本采集时间;一般尿液检查要求标本要新鲜,留取后立即送检;放置2h 以上尿中成分可发生变化,如红细胞、白细胞溶解等;尿标本要防止月经血、白带、精液、前列腺液、粪便、烟灰等异物混入;为此应尽量避免月经期检验尿;尿胆原等化学物质因光分解或氧化,需要避光;4 粪便标本采集标本采集用专用的一次性大便标本采集瓶采集粪便标本;避免受到尿液及其它污染;一般检查留取约5g 左右的新鲜便即可;采集时应该采集有脓液、粘液、血液等异常的部分;注意事项和要求标本采集后需要密闭保存并立即送检;检查阿米巴滋养体,应该采集后立即送检,立即检查;冬季需采取保温措施;血吸虫毛蚴孵化需全量新鲜标本不少于30g;对粪便标本放置时间＞2 小时,拒绝接收,在申请单注明“标本放置时间过长,请重留标本送检”;5 阴道分泌物常规检查标本采集标本采集分泌物清洁度及微生态检查时,由临床医生操作,用灭菌拭子或吸管从阴道穹隆粘膜采取分泌物;线索细胞及加德纳菌检查时要采集阴道壁表面的分泌物送检;注意事项取阴道分泌物之前应避免性生活、阴道冲洗和上药;标本采集后尽快送检,如果做滴虫检查时冬季要注意保暖;6. 前列腺液采集标本采集：由临床医生采用前列腺按摩术,采集前列腺液于清洁玻片上或容器内立即送检;注意事项：标本采集时尽量避免精液的混入,采集后标本应立即送检;7. 精液采集标本采集采集精液的最好方法是让患者本人手淫采集,如有困难可用取精器电按摩法采集;将一次射出的全部精液直接排入清洁、干燥容器内;注意事项：采集精液标本前必须禁欲 3 天,25～35 岁禁欲 5 天,35～45 岁禁欲7 天;禁止用性交中断法采集精液,因为这种方法会失掉射精前的一部分;不能用乳胶避孕套采集,因避孕套内含有滑石粉可影响精子活力; 精液标本留取后应立即送检如送检时间过长,超过 2 小时或容器有溢漏,均不能作精液检查;8. 脑脊液采集采集方法标本由临床医生按照脑脊液采集相关规范要求进行采集;收集脑脊液2-5ml 至红头空白管无添加剂送检；一般脑脊液采集三管,第一管用于细菌培养检查无菌操作,第二管用于常规检查,第三管用于生化检查;术毕,将针芯插入后一起拔出穿刺针,覆盖消毒纱布,胶布固定;去枕平卧4～6 小时,以免引起术后低颅压头痛;注意事项严格掌握禁忌症;收集标本后,必须立即送检;久置可致细胞破坏,葡萄糖分解,病原菌破坏或溶解;细胞计数标本应注意防止凝集;用于细菌培养的标本不可置冰箱冷藏或低温保存,否则会使病原微生物死亡,尤其是脑膜炎奈瑟氏菌、肺炎链球菌和流感嗜血杆菌;9. 浆膜腔积液胸、腹水采集标本采集标本由临床医生按照胸、腹水采集相关规范要求进行采集;收集胸或腹水2-5ml 至红头空白管无添加剂送检;. 注意事项严格无菌操作收集标本后,为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等,必须立即送检;用于微生物检验标本不应置于冰箱内,以免细菌死亡而使培养阴性;10. 滑膜液采集标本采集标本由临床医生按照采集相关规范要求进行采集;显微镜镜检应用肝素抗凝标本,每毫升约肝素钠25 单位不可采用肝素锂、草酸盐或EDTA 干粉,采集标本1-2ml,颠倒混匀5-8 次,防止标本凝固;注意事项收集标本后,必须立即送检;11. 骨髓采集标本采集骨髓细胞涂片需临床医生与检验科血液病诊断实验室事先预约,检验科人员到场后方可进行;骨髓采集由临床医生按照相关操作规程进行;骨髓涂片检查的骨髓液量不宜过多,一般不超过,取出后由检验科人员迅速涂片,避免骨髓液凝固,每份标本涂片5~8 张;;用于流式细胞术分析的骨髓标本一般不超过1ml,取下针头后注入EDTA-K2 抗凝管,充分混匀;骨髓活检标本采集后立即放置于固定液中;注意事项取材过程中如遇取材不佳或干抽,可换位取材;必要时应多部位取材,以便全面了解骨髓造血情况;骨髓涂片由检验科人员带回实验室;于流式细胞术分析的标本在采样后及时送检;若不能马上送检,室温可放置24 小时,不能冷冻或冷藏保存;骨髓活检标本由检验科人员带回实验室;若取材时无检验科人员在场,可由临床科室工作人员或患者、患者家属与申请单一起送至实验室;12. 宫颈脱落细胞标本采集标本采集由医生以窥阴器或阴道张开器暴露宫颈,最好在取样前先用棉签擦去宫颈分泌物；将宫颈刷置于宫颈口,轻轻搓动宫颈刷使其顺时针旋转5 圈；慢慢取出宫颈刷,将其放入标有病人姓名的取样管中,取样管内已加有专用细胞保存液,拧紧瓶盖;注意事项不可在碘试验和醋酸试验之后采集样本采样前24 小时内不应有性生活采样前 3 天不要使用用避孕药膏等阴道内药物或对阴道进行冲洗;月经期不可采集标本13. 临床微生物标本采集血骨髓培养标本的采集：采集容器根据患者使用抗生素情况选用相应的血培养瓶;未使用抗生素的患者：蓝瓶需氧+红瓶厌氧；使用过抗生素的患者：绿瓶需氧+红瓶厌氧;婴幼儿患者血及骨髓标本、成人骨髓标本均只选用黄瓶需氧;皮肤消毒程序同血液常规采集消毒方法;骨髓采集由临床医生按照相关操作规程进行;培养瓶用消毒剂檫拭血培养瓶橡皮塞,作用60 秒,然后将采集的血液或骨髓注入瓶内,并轻轻摇匀,以防凝固;采血量：成人患者一般以5～10ml/瓶为宜,婴幼儿患者一般不少于2ml,骨髓量一般为1～2ml;血培养份数和采血时间小时采集血液;a 急性发热怀疑菌血症者,应尽量在抗菌药使用之前,在10 分钟内于不同部位采集两套血标本,每一套血标本接种需氧和厌氧培养瓶各一个;b 对于非急性感染,怀疑有菌血症者,应在24h 内于不同部位采集2-3 套血标本,每次采血的间隔不应小于3h,并应于抗菌给药前或两次用药间隔期间采血;c 急性细菌性心内膜炎患者,应在1-2 小时内采集3 套血标本,并尽量在使用抗菌药前采血；如果24 小时培养阴性,可再采集3 套以上的血标本;入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者,连续 3 天,每天采集 2 套,可选用中和或吸附抗菌药物的培养瓶;d 亚急性细菌性心内膜炎患者,在24 小时内不同部位采集血液标本2 或3 套,每次间隔大于1h；如果24 小时培养阴性,可再采集2 或3 套以上的血标本进行培养;e 不明原因发热,可在24 小时内不同部位采集血液标本2 或3 套,每次间隔大于1h；如果24-48 小时培养阴性,可再采集2 或3 套以上的血标本;f 可疑菌血症或真菌菌血症,但血培养持续阴性,改变血培养条件和方法,以获得罕见的或苛养的微生物;g儿童菌血症患者在24 小时只需要采一次血标本进行培养,需特别注意穿刺部位的消毒,以区别感染菌和污染菌;由于儿童厌氧菌菌血症罕见,常规血培养不做厌氧培养;注意事项℃孵箱中,切勿冷藏;尿液培养标本采集：患者准备：尿标本采集应在未使用抗生素之前,注意避免消毒剂污染标本,应保证尿液在膀胱内至少停留 4 小时以上;最好留取早晨清洁中段尿,患者睡前少饮水;送检容器：微生物培养专用的一次性无菌尿杯;采集方法—20ml,直接排入专用的无菌容器中,立即送检,2 小时内接种;标本由医护人员采集或医护人员指导由患者正确留取;注意事项：标本采集后应及时送检,及时接种,室温下保存时间不超过 2 小时,40℃保存不超过8 小时冷藏保存不能用于淋病奈瑟菌培养;粪便培养标本的采集标本采集：注意事项脑脊液标本的采集送检容器：无菌、干燥、无添加剂、带盖的试管、小瓶或无菌注射器;采集方法：由临床医生按照脑脊液采集相关规范要求进行采集; 用一次性注射器采集脑脊液1-2ml,注入无菌试管或防渗漏的无菌小瓶中,立即送检；也可直接用带针头帽的注射器送检;用于检测细菌,脑脊液量应大于或等于1ml；用于检测抗酸杆菌,脑脊液量应大于或等于2ml；用于真菌培养,脑脊液量应大于或等于2ml;注意事项痰液及支气管分泌物标本的采集：标本采集采集应在临床工作人员指导下进行,并尽可能在抗菌药物使用之前采集；对可疑烈性呼吸道传染病如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等的患者采集检验标本时必须注意生物安全防护,一般采用以下几种方法：≥1ml,立即送检;对于痰量少、无痰或咳痰困难者可雾化吸入加温至45℃的100g/L 无菌NaCl 水溶液,使痰液易于排出;本放入痰杯中,标本量应大于1ml,立即送检,必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染;注意事项标本采集后尽快送检,不能及时送检的标本,室温保存不超过 2 小时;脓液及创面分泌物标本的采集标本采集,常见类型如下：≥1 ml;a 蜂窝组织炎以无菌生理盐水或75%乙醇清洁局部后,用注射器自炎症中央而非边缘抽吸;未形成脓肿时,标本难以采集,可用小量无菌生理盐水灌洗,注入无菌杯送检;b 耳部感染包括内耳及外耳感染;鼓膜穿刺术适用于复杂的、复发的或慢性持续性中耳炎;①鼓膜破裂时,通过反射镜,用柔软拭子采集,置配套的无菌拭子管内送检;②外耳炎时,以湿棉签清洁耳道,用力转动拭子采集标本,以免漏检链球菌;c 眼部感染包括结膜、角膜、玻璃体感染;由于标本量小,推荐在床边接种平板及涂片;①以无菌生理盐水湿润拭子,两侧分别以不同的拭子在结膜上滚动,直接接种血平板及巧克力平板,也可将拭子送实验室接种;应注意即使只有一侧发生结膜炎,亦尽能采集双侧标本,以确定局部菌群,与患侧分离菌比较;②角膜刮取物由眼科医生在麻醉下采取麻醉剂可能抑制某些细菌生长,尽量在麻醉前采集结膜标本;用无菌刮匙刮取溃疡或损伤处,刮取物直接接种血平板及巧克力平板及真菌培养基;③玻璃体抽吸液注入无菌杯送检,若标本量小,可直接接种培养基;注意事项℃环境下,最长不超过24 小时送达实验室;℃保存,最长不超过24 小时;℃环境下,2 小时内送达实验室;穿刺引流液标本的采集标本采集注意事项℃环境下,不超过24 小时送到实验室;生殖器官标本的采集标本采集根据感染的部位和可能的病原体确定病原学诊断的标本种类、采集部位和采集方法等;由于外生殖器存在有正常菌群,所以在采集标本时应注意尽量减少或避免正常菌群的污染;a 男性标本：清洗外尿道,将灭菌拭子插入尿道内2～4cm,转动并停留2s 采集标本;b 女性标本：清洗外尿道,用灭菌拭子经阴道在耻骨联合处按摩尿道采集排出物;注意事项采集标本后应立即室温送检,否则会影响检出率;临床真菌感染标本的采集详见表标本采集的类别,具体标本采集方法和运送见下表注：RT为室温1采集的标本量要足,血液和脑脊液标本5mL,胸腔液20 mL,并且应立即送检,深部真菌标本最长不超过2h;2对于高度怀疑深部真菌感染的病人如果静脉血培养不成功,应采用动脉血培养;3对于引流脓肿或溃疡脓液,最好不用拭子取材,应尽可能从损害的深部取材,非引流的皮下脓肿或窦道中的脓液要用无菌注射器抽吸;第六部分临床常见不规范操作1、抽错试管2、不同类型试管间标本互倒,比如：EDTA抗凝管中标本到入生化管中3、输液时在同一侧抽血,血液被稀释4、标本留取不合格,比如5、抗凝血抽取后没有及时混匀,导致血液凝固6、标本量过少7、标本抽取后未及时送检。

临床检验标本采集指南临床检验标本采集是指根据医生的指示，采集患者体内的生物物质（如血液、尿液、粪便、脑脊液等），用于进行各项检验项目的分析和诊断。

标本采集是临床诊断和治疗的重要环节，标本的采集质量直接影响到检验结果的准确性和临床诊断的准确性。

为了确保标本采集的规范和准确性，以下是一些临床检验标本采集的指南：1.术前禁食：一些检验项目需要空腹标本，患者在采集血液、尿液等样本之前通常需要至少8小时的禁食。

2.采集工具和容器选择：根据不同的标本类型选择合适的采集工具，如血液采集针、尿液采集杯、粪便采集器等。

同时，选择干净、无菌的容器，以确保采集的标本不被污染。

3.采集前的准备：在采集血液标本前，患者应该静坐或卧床休息数分钟，避免剧烈运动和情绪激动，以防止对血液成分的影响。

在采集尿液标本前，应先进行外阴清洁，以避免细菌的污染。

4.采集步骤：在采集时要求医务人员佩戴手套，以防止交叉感染。

采集血液标本时，应选择适当的静脉，使用干净、无菌的血液采集针进行穿刺，采集适量的血液。

采集尿液标本时，应注意将尿液标本采集至尿液采集杯中，并确保杯盖紧闭，以防止尿液的污染。

5.标本保存和运输：采集后的标本应及时送到检验科室进行分析，以避免标本质量的变化对检验结果的影响。

在运输过程中，应尽量避免剧烈震动和温度变化，以确保标本的稳定性。

6.记录标本信息：在采集标本时，应准确记录标本的相关信息，包括患者的个人信息（如姓名、年龄、性别）、采集标本的日期和时间、采样部位等，以便于后续的标本追踪和分析。

7.标本处理规范：不同的标本类型有不同的处理规范，如血液标本需要抗凝剂处理，一些标本需要稀释或离心等。

医务人员需要根据标本类型和检验项目的要求，进行相应的标本处理。

总之，临床检验标本采集是确诊和治疗过程中不可或缺的步骤，采集的标本质量和准确性对于临床诊断至关重要。

医务人员应该具备相关的知识和技能，严格按照相关指南进行采集操作，并保证标本的准确记录、及时运送和规范处理，以提高检验结果的准确性和可靠性。

1 用 EDTA-2K〔EDTA-K .2H O〕1.5~2.2mg/ml 抗凝〔EDTA 抗凝管、紫色帽〕采血.2 22 注意事项：A 按抗凝管刻度准确采血至 2ml.B 采血后即将上下颠倒混匀 5~10 次,不可用强力震荡,以免造成溶血.C 采血后尽快送检〔为保证结果准确,必须在 2h 内完成检测〕 .1 静脉采集枸橼酸钠〔109mmol/L,即 32.06g/L〕抗凝血〔枸橼酸钠抗凝管、黑色帽〕 .2 注意事项：A 单独采 1 管血,按抗凝管刻度准确采血至 2ml 〔抗凝剂:全血=0.4:1.6〕.B 采血后即将上下颠倒混匀 5~10 次,不可用强力震荡.C 采血后尽快送检〔为保证结果准确,必须在 2h 内完成检测〕 .1 静脉采集枸橼酸钠〔109mmol/L,即 32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8〕抗凝血〔枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽〕 .注意事项：A 单独采 1 管血,按抗凝管刻度准确采血至 2ml.B 采血后即将上下颠倒混匀 5~10 次,不可有凝块.C 采血后尽快送检〔为保证结果准确,必须在 2h 内完成检测〕 .D 空腹采血〔餐后脂血会影响检验结果〕 .1 用 EDTA-2K〔EDTA-K .2H O〕1.5~2.2mg/ml 抗凝〔EDTA 抗凝管、蓝色帽〕采血.2 22 注意事项：A 按抗凝管刻度采血至 2~3ml.最好单独采血,便于标本保存.B 采血后即将上下颠倒混匀 5~10 次,不可用强力震荡,以免造成溶血.1 用肝素钠抗凝管〔肝素钠、绿色帽〕2 注意事项：A 按抗凝管刻度采血至 4~5ml.B 采血后即将上下颠倒混匀 5~10 次,不可用强力震荡,以免造成溶血.1 住院病人尽量留取晨尿〔肃静状态下留取清晨第一次尿〕 .2 门急诊病人可留取随机尿,但结果受多种因素影响.3 尿液采集于洁净尿杯中,不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等.标本留取后尽快送检〔为保证结果准确,必须在 2h 内完成检测〕 .1 尿液成份定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂.A 尿爱迪氏计数或者 3h 计数：甲醛〔40%〕,5ml/L 尿液； 3h 和 12h 尿沉渣计数的留尿时间分别为〔5：30-8：30〕和〔20：00-次日 8：00〕.B 尿蛋白或者尿糖定量：甲苯,5~20ml/L 尿液.C 尿 17-羟、 17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸,10ml/L 尿液.2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐,上午 8 点排尿弃去,没隔 2h 留尿一次,至晚上 8 点共六次标本；晚 8 点至次晨 8 点为夜尿,采集于一个容器中,分别标记时间后送检.1 普通应为新鲜的自然排出的粪便 3~5g,必要时可肛试子取出,但需注明.2 样品置于洁净容器中,最好用带盖塑料盒.3 粪便应选取含脓、血、黏液等异常成份进行检查.4 做隐血试验时,应嘱病人检查前 3 天禁食肉类、含动物血的食物.1 标本普通由临床医师无菌穿刺采取.2 送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取 2ml；细菌学检查用无菌管采集标本,结核菌检查留取 10ml.3 标本采集后必须即将送检,否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或者结果不许确.4 用于细胞学检查时,可在标本中加适量 EDTA 抗凝,但还需留 1 管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性.1 普通生化检查〔肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等〕留取不抗凝血〔红色帽、真空负压管〕 ,采血量视检查项目多少而定,普通为 4~5ml.2 糖化血红蛋白需用 EDTA 抗凝管,操作规程同血常规标本.3 血钾检测标本须即将送检,2h 内完成检测.4 空腹采血.如为餐后标本,应在申请单上注明.1 普通免疫学检验〔乙肝病毒、丙肝病毒、 HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等〕和化学发光检验〔各种激素、肿瘤标志物等〕留取不抗凝血〔红色帽、真空负压管〕 ,采血量视检查项目多少而定,普通为 4~5ml.2 严格按生物安全有关规定采血.3 空腹采血.如为餐后标本,应在申请单上注明.1 标本采集、运送、验收和处理注意事项①标本采集A 申请单标记必须清晰〔##、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等〕 ,以便实验室合理选用培养基.B 尽量在抗生素应用前采集标本.C 标本采集应严格执行无菌操作.D 采集标本的容器必须经灭菌处理或者使用一次性无菌专用容器.②标本运送A 标本采集后尽快送微生物室.B 标本采集后在室温下超过 2h 未送达实验室,视为不合格标本.③标本验收A 实验室只能接受和处理合格标本.B 实验室对不合格标本退回时,须注明原因,并与时与临床联系.2 微生物检验标本采集和处理,与时送检,并保证 2h 内接种；不能与时送检时,标本应置冰箱保存,并于 8h 内送检.怀疑沙门氏菌感染时,应于发病 2 周摆布采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时,应于发病后 2 周摆布采集标本.常用的标本采集方法如下：A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用灭菌水冲洗尿道口,然后排尿弃去前段尿液,于带盖的无菌试管中留取中段尿液 5~10ml.B 导尿法：用导尿管导取 5~10ml 尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿管留尿；留置导尿时,用无菌消毒法消毒导尿管外部与导尿管口,用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检,不可采集尿液采集袋中的尿液送检.C 其它方法：膀胱穿刺或者肾盂尿采集法须由临床医师采集.A 采集时间：腹泻患者处于急性期,尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应即将采集粪便送检.B 采集方法：普通患者,取新鲜粪便的黏液、脓血或者絮状物等故意义成份 2~3g 或者 1~3ml,盛无菌容器内送检；难以获患上粪便或者排便艰难的患者和婴幼儿,可用直肠试子采集标本, 再插入灭菌试管中送检.A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口,清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不患上少于 1ml；咳痰艰难者可先做雾化处理.B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌,将试子深入咽部,小儿因压舌板刺激引起咳嗽,喷出的肺或者气管分泌物粘在试子上送检.C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施.A 抗生素治疗前,严格无菌静脉采血 8~10ml 〔儿童 1~4ml〕；骨髓 1~2ml.B 无菌注入专用培养瓶中送检.C 如已用抗生素不能停用时,可在 48h 内分别于下次抗生素使用前,多次采集血液标本送检.D 疑为心内膜炎时,为提高阳性检出率,可酌情不同部位、不同时间多次采血送检.A 怀疑脑膜炎时应即将采集脑脊液,最好在抗生素使用前采集.B 无菌腰穿采集脑脊液 1~2ml,即将送检.A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等.B 在抗生素使用前采集或者在停用抗生素 2~3 天后采集.C 无菌穿刺采集,标本量不少于 1ml.D 为防标本凝固,可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素.A 采集方法：抽取空腹胃液 5ml,置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或者胆囊穿刺法或者手术中留取胆汁 5ml,置无菌管内送检.B 标本采集后必须即将送检.A 标本采集前,先对病灶周围消毒,然后用无菌方法采取脓汁或者病灶分泌物或者.组织. B 标本采集后即将置无菌管内送检A 用无菌试子常规采集标本.B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染.C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检.A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物,或者用无菌试子插入尿道 2~4cm 处轻轻转动后取出,置无菌试管中即将送检.B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器,用灭菌试子采取阴道口或者宫颈管 1~2cm 处分泌物,置无菌试管中送检.C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中 ,即将送检.D 精液：受检者应 5 天以上未派精,清洗尿道后用手淫或者体外排精法,射精于无菌试管中立即送检.E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处,用无菌试子取其边缘或者基底部的分泌物,置无菌试管中即将送检.败血症,创面取样的同时应采集血样送做血培养.A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤,从皮损边缘刮取鳞屑,置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或者组织；毛发则采集其根部折断处,至少 5~6 根送检；指〔趾〕甲：消毒指〔趾〕甲并去掉其表面部份,取可疑病变部份,用刀片修成小薄片5~6 片,置无菌容器中送检.B 深部真菌感染标本采集：血液：无菌采血 8~10ml,注入血培养瓶中,即将送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温, 但不可超过 8h.脑脊液：采样量不少于 3ml,分别注入两支无菌试管中送检〔一支做真菌培养和墨汁染色,一支做普通培养〕 .呼吸道与泌尿繁殖道标本：采集方法同普通培养.⒀厌氧菌感染培养标本A 标本采集：严格执行无菌操作,避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或者无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气.B 标本运送：标本采集后不患上冰箱储存,必须尽快〔半小时内〕送检；标本运送可采用注射器〔已驱氧〕或者含运送培养基的无氧小瓶或者厌氧罐.。

临床医学检验科的操作规程一、引言临床医学检验科是医疗机构中重要的科室之一，它承担着临床诊断和治疗过程中的各种实验室检测工作。

为了确保检验结果准确可靠，保障患者的诊疗安全，临床医学检验科有一系列严格的操作规程。

二、标本采集与处理1. 标本采集标本采集是临床医学检验工作的第一步，它直接关系到后续的检验结果。

在标本采集过程中，操作人员应遵循以下原则：（1）严格遵守无菌操作规范，确保采集的标本不受污染；（2）选择合适的标本采集容器和试剂，确保标本的质量；（3）采集标本时要注意采集量、采集时间和采集方法的准确性。

2. 标本处理标本采集后，需要进行适当的处理，以确保标本的稳定性和可靠性。

在标本处理过程中，操作人员应遵循以下原则：（1）根据标本的性质，选择合适的处理方法，如离心、分装、保存等；（2）标本处理时要注意温度、时间和速度的控制，避免对标本造成不良影响；（3）处理后的标本应做好标识和记录，以便后续的检验工作。

三、实验室检验操作1. 试剂准备试剂是临床医学检验中必不可少的物质，它直接影响到检验结果的准确性。

在试剂准备过程中，操作人员应遵循以下原则：（1）检查试剂的有效期和存储条件，确保试剂的质量；（2）按照试剂说明书和操作规程准确配制试剂，避免误差；（3）试剂准备后，应做好标识和记录，确保试剂的使用和追溯。

2. 仪器操作临床医学检验中常用的仪器设备有血球分析仪、生化分析仪、免疫分析仪等。

在仪器操作过程中，操作人员应遵循以下原则：（1）熟悉仪器的使用方法和操作流程，确保仪器的正常运行；（2）仪器操作前应进行仪器的日常质控，确保仪器的准确性；（3）操作人员应定期进行仪器的维护和保养，确保仪器的稳定性和可靠性。

3. 数据分析与结果判读临床医学检验的最终目的是根据实验室检测结果来辅助临床诊断和治疗。

在数据分析与结果判读过程中，操作人员应遵循以下原则：（1）熟悉各项检验指标的参考范围和临床意义，准确判断结果的正常与异常；（2）对于异常结果，应及时与临床医生沟通，提供必要的解释和建议；（3）对于疑难结果，应及时与同行进行讨论，避免误诊和漏诊。