链霉菌NEAU6固体发酵条件优化及其对四种蔬菜的促生作用研究

生物链霉菌的生产及其在农业上的应用链霉菌是一种重要的土壤微生物，对于农业生产起到了重要的作用。

作为一种产生土壤杀菌物质的细菌，它可以在农业生产中发挥重要的生态作用。

生物链霉菌的生产及其在农业上的应用是农业发展的一个重要方向，对于推动农业生产方式的转变和提升农业生产效率有着重要意义。

一、链霉菌的生产1、链霉菌的分离与鉴定生物链霉菌的生产需要首先从土壤中将其分离与培养，经过鉴定后，才能进行后续的操作。

在分离链霉菌时需要注意避免细菌的污染，同时要选择培养基、温度、pH值等等因素。

2、链霉菌的培养与发酵种植链霉菌需要进行发酵操作，选定培养基成分和浓度后，进行发酵操作，通常需要进行氧气调节、加入生长因子等等，使得链霉菌的生长繁殖达到最佳。

3、链霉菌代谢产物的提取和纯化链霉菌的代谢物质是其重要的生物活性物质。

在产物提取时需要注意避免对链霉菌造成不良影响，同时要使用特定的提取剂来进行萃取，并进行纯化处理。

二、链霉菌在农业上的应用1、农药链霉菌能够产生一系列的生物杀菌物质，这些杀菌物质对土壤中的病原菌具有很强的杀灭作用，可以用于制备农药。

与传统化学农药相比，使用链霉菌制备的农药具有无毒、可降解、对人体和环境影响小等优点，可以在农业生产中起到安全、高效的杀菌作用。

2、生物肥料链霉菌还可以促进植物的生长，可以应用于生物肥料的制备中。

链霉菌发酵液中含有多种微量元素、氨基酸等生长因子，可以在植物生长时促进植物生长，提高作物的产量和品质。

3、生物调节剂链霉菌中还产生一些激素类物质，这些激素可以促进植物在晚期生长时的代谢和发育，可以应用于生物调节剂的制备中。

4、减少化肥使用量链霉菌可以固定空气中的氮，使得土壤中氮的含量增多，从而减少了对化肥的依赖。

同时在使用化肥时，也可以考虑使用链霉菌作为化肥的引子。

总之，生物链霉菌是一种重要的土壤微生物，对于农业生产起到了重要的作用。

链霉菌可以应用于农药制备、生物肥料、生物调节剂等多个领域，可以推动农业生产方式的转变，提升农业生产效率。

“发酵条件优化”资料合集目录一、一株高产乙偶姻芽孢杆菌菌株筛选及发酵条件优化二、产灵菌红素粘质沙雷氏菌发酵条件优化及色素性质的研究三、黄曲霉毒素B1降解菌的筛选鉴定及发酵条件优化四、绿色木霉的筛选与产纤维素酶发酵条件优化及部分酶学性质研究五、埃博霉素高产菌株选育、发酵条件优化及抗肿瘤活性研究六、树莓果酒酵母的筛选与发酵条件优化一株高产乙偶姻芽孢杆菌菌株筛选及发酵条件优化在生物技术领域，菌株的筛选和发酵条件的优化是提高微生物产物的关键步骤。

乙偶姻是一种重要的化学品，广泛应用于食品、化妆品和制药行业。

因此，筛选高产乙偶姻的菌株并优化其发酵条件具有重要意义。

筛选高产乙偶姻的菌株是研究的第一步。

常用的筛选方法包括：单菌落分离、平板梯度稀释法和基因工程技术。

这些方法可以根据菌株的生长速度、产物产量和其他特性进行筛选。

在筛选过程中，需要设置对照组，以便比较和评估各菌株的性能。

一旦获得高产乙偶姻的菌株，就需要对发酵条件进行优化。

这包括培养基成分、温度、pH值、溶氧浓度和发酵时间等参数的调整。

通过单因素实验和正交实验，可以确定最佳的发酵条件组合。

还可以使用响应面分析法、遗传算法和人工神经网络等高级方法来进一步优化发酵条件。

优化后的菌株和发酵条件可以提高乙偶姻的产量，降低生产成本，并促进其在各个领域的应用。

通过进一步研究，还可以发现新的用途和应用领域，推动乙偶姻的可持续发展。

高产乙偶姻芽孢杆菌菌株的筛选和发酵条件优化是提高乙偶姻产量的关键步骤。

通过科学的方法和技术手段，可以获得性能优越的菌株并优化其发酵条件，为乙偶姻的生产和应用提供有力支持。

产灵菌红素粘质沙雷氏菌发酵条件优化及色素性质的研究粘质沙雷氏菌是一种常见的土壤细菌，具有产生多种代谢产物的特性。

其中，灵菌红素是一种具有广泛生物活性的红色素，被广泛应用于食品、医药和化妆品等领域。

为了提高灵菌红素的产量，优化其发酵条件是十分必要的。

本文旨在探讨粘质沙雷氏菌发酵产灵菌红素的优化条件，并对其色素性质进行分析。

液固两相高密度链霉菌S506菌剂制剂发酵条件研究的开题报告一、研究背景及意义链霉菌是一类广泛存在于环境中的细菌，被广泛应用于发酵工业中。

其中，高密度链霉菌是指链霉菌在发酵过程中通过适当处理，获得较高的菌体密度，从而提高生产效率的一种技术。

高密度链霉菌可用于制备许多重要的生物制品，如抗生素、酶等，具有广泛的应用前景。

然而，目前高密度链霉菌的制备过程仍存在一些问题，如菌株稳定性、培养基配方的优化、发酵工艺参数的合理调整等。

因此，针对链霉菌菌剂的培养及其发酵条件的研究，对于提高其生产力具有重要的意义。

本研究旨在探究液固两相高密度链霉菌S506菌剂制剂发酵条件，并为其制备提供理论和实践指导。

二、研究内容及方案1. 研究对象本研究的研究对象为液固两相发酵过程中的高密度链霉菌S506菌剂制剂。

2. 研究内容（1）筛选琼脂含量、甜菜碱含量、乳糖含量对S506菌的影响，优选适宜的培养基。

（2）探究发酵时间、温度、初始pH值、接种量等因素对S506菌的菌体生长和活性代谢产物的影响。

（3）优化发酵工艺参数，获得高密度链霉菌S506菌剂制剂，分析其理化指标和微生物特性。

3. 研究方案（1）细菌菌株的预处理选用高密度链霉菌S506菌剂制剂作为研究对象，进行预处理，包括细胞极化和活化过程。

（2）培养基配方的选择和优化筛选琼脂含量、甜菜碱含量、乳糖含量对S506菌的影响，优选适宜的培养基。

（3）发酵条件优化探究发酵时间、温度、初始pH值、接种量等因素对S506菌的菌体生长和活性代谢产物的影响。

（4）制剂分析优化发酵工艺参数，获得高密度链霉菌S506菌剂制剂，分析其理化指标和微生物特性。

三、研究预期成果本研究的预期成果包括：（1）筛选适宜的培养基，探究发酵条件对S506菌生长的影响，为高密度链霉菌的培养提供理论和实践支持。

（2）优化发酵工艺，制备出高密度链霉菌S506菌剂制剂，并对其理化指标和微生物特性进行分析。

（3）为高密度链霉菌制剂的产业化生产奠定理论基础。

链霉菌JD211发酵条件优化作者：黄国强李红吴姚平李庆蒙韩顺魏赛金来源：《湖北农业科学》2015年第10期摘要：以戊二酰亚胺类抗生素菌株链霉菌（Streptomyces）JD211为研究对象，研究其发酵培养基和发酵条件，得出最佳培养基组成是甘油30 g/L、酵母膏10 g/L、硫酸铵5 g/L、NaCl 5 g/L、CaCO3 3.5 g/L。

优化后的发酵条件为装液量50 mL/250 mL，初始pH 7.0，接种量7.5%，培养温度30 ℃，培养时间为144 h。

培养基优化后菌丝体干重较优化前提高了166.61%，抑菌圈提高了30.77%。

关键词：链霉菌（Streptomyces）JD211；发酵培养基；发酵条件；优化中图分类号：S476+.11 文献标识码：A 文章编号：0439-8114（2015）10-2470-03DOI：10.14088/ki.issn0439-8114.2015.10.044链霉菌（Streptomyces）JD211菌株是江西农业大学生物科学与工程学院从江西庐山珙桐树中分离筛选得到。

研究发现，该菌株的粗提代谢物对水稻纹枯病菌、西瓜枯萎病菌等多種植物病原真菌具有显著的抑制效果[1]。

其次生代谢物主要为戊二酰亚胺类抗生素，具有研发成新型友好生物农药的潜力和价值。

本研究对链霉菌JD211培养基和培养条件进行初步研究，以此了解该菌适宜的发酵环境，提高抑菌活性物质的产量。

1 材料与方法1.1 材料链霉菌JD211、意大利青霉由江西农业大学生物工程实训基地提供。

蔗糖马铃薯培养基（PDA）：蔗糖20 g，去皮马铃薯200 g，琼脂20.0 g，去离子水1 000 mL，pH 7.0。

种子培养基：葡萄糖10.0 g，甘油20.0 g，酵母膏10.0 g，碳酸钙5.0 g，硫酸铵5.0 g，去离子水1 000 mL，pH 7.0～7.2。

PDB培养基：去皮土豆200 g，蔗糖20 g，去离子水1 000 mL，pH自然。

㊀南京农业大学学报㊀２０２１ꎬ４４(２):２０８－２１６ｈｔｔｐ://ｎａｕｘｂ.ｎｊａｕ.ｅｄｕ.ｃｎ㊀ＪｏｕｒｎａｌｏｆＮａｎｊｉｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙＤＯＩ:１０.７６８５/ｊｎａｕ.２０２０１００３４收稿日期:２０２０－１０－２９基金项目:国家自然科学基金项目(３２０７００２７ꎬ３２０００１０１ꎬ３１７０００５４)ꎻ江苏省现代农业面上项目(ＢＥ２０２０３４０)ꎻ中国博士后科学基金项目(２０２０Ｍ６７１５１３)作者简介:李周坤ꎬ副研究员ꎬＥ￣ｍａｉｌ:ｚｋｌ＠ｎｊａｕ.ｅｄｕ.ｃｎꎮ∗通信作者:崔中利ꎬ教授ꎬ研究方向为环境微生物学ꎬＥ￣ｍａｉｌ:ｃｚｌ＠ｎｊａｕ.ｅｄｕ.ｃｎꎮ李周坤ꎬ叶现丰ꎬ杨帆ꎬ等.黏细菌捕食生物学研究进展及其在农业领域的应用潜力[Ｊ].南京农业大学学报ꎬ２０２１ꎬ４４(２):２０８－２１６.ＬＩＺｈｏｕｋｕｎꎬＹＥＸｉａｎｆｅｎｇꎬＹＡＮＧＦａｎꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅｐｒｅｄａｔｉｏｎｂｉｏｌｏｇｙｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｎｄｉｔｓａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｉｎａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌｆｉｅｌｄ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＮａｎｊｉｎｇＡｇｒｉ￣ｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ２０２１ꎬ４４(２):２０８－２１６.特约综述黏细菌捕食生物学研究进展及其在农业领域的应用潜力李周坤１ꎬ叶现丰１ꎬ杨帆１ꎬ黄彦１ꎬ范加勤２ꎬ王辉４ꎬ崔中利１ꎬ３∗(１.南京农业大学生命科学学院/农业农村部农业环境微生物重点实验室ꎬ江苏南京２１００９５ꎻ２.南京农业大学植物保护学院ꎬ江苏南京２１００９５ꎻ３.南京农业大学作物免疫学重点实验室ꎬ江苏南京２１００９５ꎻ４.中国科学院南京土壤研究所土壤环境与污染修复重点实验室ꎬ江苏南京２１０００８)摘要:黏细菌(ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ)是一类具有多细胞群体行为特征的捕食性微生物类群ꎬ能够以活的微生物细胞或者其他生物大分子作为食物获取营养ꎬ同时能够形成抗逆性强的子实体和黏孢子ꎬ从而使黏细菌具有良好的环境适应性ꎮ黏细菌对于植物病原真菌和细菌的捕食特性使其在植物病害防治方面具有重要的应用潜力ꎬ被视为是新的生防微生物类型ꎮ本文综述黏细菌对于微生物的捕食机制以及捕食行为的生态学功能ꎬ概述捕食性黏细菌作为一种新型的生防微生物在病害防治方面的应用潜力ꎮ在此基础上ꎬ也讨论目前黏细菌捕食生物学研究存在的问题ꎬ旨在为黏细菌捕食作用的深入研究及其在农业生产上的实际应用提供参考ꎮ关键词:黏细菌ꎻ捕食性微生物ꎻ生防微生物ꎻ植物病害防治中图分类号:Ｑ９３９.９６㊀㊀㊀㊀文献标志码:Ａ㊀㊀㊀㊀文章编号:１０００－２０３０(２０２１)０２－０２０８－０９ＴｈｅｐｒｅｄａｔｉｏｎｂｉｏｌｏｇｙｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｎｄｉｔｓａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｉｎａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌｆｉｅｌｄＬＩＺｈｏｕｋｕｎ１ꎬＹＥＸｉａｎｆｅｎｇ１ꎬＹＡＮＧＦａｎ１ꎬＨＵＡＮＧＹａｎ１ꎬＦＡＮＪｉａｑｉｎ２ꎬＷＡＮＧＨｕｉ４ꎬＣＵＩＺｈｏｎｇｌｉ１ꎬ３∗(１.ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＬｉｆｅＳｃｉｅｎｃｅ/ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬＭｉｎｉｓｔｒｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅａｎｄＲｕｒａｌＡｆｆａｉｒｓꎬＮａｎｊｉｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＮａｎｊｉｎｇ２１００９５ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＰｌａｎｔＰｒｏｔｅｃｔｉｏｎꎬＮａｎｊｉｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＮａｎｊｉｎｇ２１００９５ꎬＣｈｉｎａꎻ３.ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＰｌａｎｔＩｍｍｕｎｉｔｙꎬＮａｎｊｉｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＮａｎｊｉｎｇ２１００９５ꎬＣｈｉｎａꎻ４.ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＳｏｉｌＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｎｄＰｏｌｌｕｔｉｏｎＲｅｍｅｄｉａｔｉｏｎꎬＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＳｏｉｌＳｃｉｅｎｃｅꎬＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓꎬＮａｎｊｉｎｇ２１０００８ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ:ＭｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｒｅＧｒａｍ￣ｎｅｇａｔｉｖｅｂａｃｔｅｒｉａｕｂｉｑｕｉｔｏｕｓｄｅｔｅｃｔｅｄｉｎｓｏｉｌｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ.Ｔｈｅｙａｒｅｈｉｇｈｌｙｓｏｃｉａｌｍｉｃｒｏｂｅｓｗｉｔｈａｃｏｍｐｌｅｘｍｕｌｔｉｃｅｌｌｕｌａｒｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｂｅｈａｖｉｏｒｗｈｉｃｈａｒｅａｓｓｏｃｉａｔｅｄｗｉｔｈｆｅｅｄｉｎｇｏｎａｂｒｏａｄｒａｎｇｅｏｆｓｏｉｌｂａｃｔｅｒｉａａｎｄｆｕｎｇｉｔｏａｃｈｉｅｖｅｎｕｔｒｉ￣ｔｉｏｎ.Ｔｈｅｆｏｒｍａｔｉｏｎｏｆｆｒｕｉｔｉｎｇｂｏｄｙａｎｄｍｙｘｏｓｐｏｒｅｓｆｒｏｍｖｅｇｅｔａｔｉｖｅｃｅｌｌｓｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｔｈａｔｒｅｓｐｏｎｄｓｔｏｓｔａｒｖａｔｉｏｎｍａｙｍａｋｅｍｙｘｏｂａｃ￣ｔｅｒｉａｅｘｃｅｌｌｅｎｔａｄａｐｔａｔｉｏｎｉｎｎａｔｕｒａｌｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｒｅｖｅｒｓａｔｉｌｅｐｒｅｄａｔｏｒｓｔｈａｔｐｒｅｙｏｎｍｉｃｒｏｂｅｓａｓｅｘｃｅｌｌｅｎｔｃａｎｄｉｄａｔｅｓｆｏｒｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｃｏｎｔｒｏｌａｇｅｎｔｓ(ＢＣＡｓ).Ｈｅｒｅꎬｗｅｄｉｓｃｕｓｓｅｄｔｈｅｍｅｃｈａｎｉｓｍｓａｎｄｅｃｏｌｏｇｉｃａｌｆｕｎｃｔｉｏｎｓｏｆｔｈｅｕｂｉｑｕｉｔｏｕｓａｎｄａｃｃｏｍｐｌｉｓｈｅｄｇｅｎｅｒａｌｉｓｔｐｒｅｄａｔｏｒꎬａｎｄｔｈｅｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆｐｌａｎｔｄｉｓｅａｓｅｕｓｉｎｇｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｗａｓａｌｓｏｓｕｍｍａｒｉｚｅｄ.Ｏｎｔｈｉｓｂａｓｉｓꎬｔｈｅｆｕｔｕｒｅｃｈａｌ￣ｌｅｎｇｅｓｆｏｒｔｈｅｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｏｆｐｒｅｄａｔｏｒｙｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｉｎｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇｐｌａｎｔｐａｔｈｏｇｅｎｓｗｅｒｅｐｒｏｖｉｄｅｄꎬｗｈｉｃｈｍｉｇｈｔｐｒｏｖｉｄｅｉｎｓｉｇｈｔｓｆｏｒｔｈｅｐｒａｃｔｉｃａｌａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｉｎａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌｆｉｅｌｄ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ:ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａꎻｐｒｅｄａｔｏｒｙｍｉｃｒｏｂｅｓꎻｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｃｏｎｔｒｏｌａｇｅｎｔｓꎻｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌｏｆｐｌａｎｔｄｉｓｅａｓｅ植物病害是制约农作物优质高产的重要因素之一ꎬ据统计全球主要农作物的病害损失约占作物总产量的２０％~４０％ꎬ每年直接经济损失高达数十亿美元[１－２]ꎬ其中７０％~８０％的病害是病原真菌所致[３－４]ꎮ至２０５０年全球粮食产量需要增加７０％以满足日益增长的人口需求ꎬ令人担忧的是自２０００年以来ꎬ新的真菌类型或者真菌类植物病原菌(ｆｕｎｇａｌ￣ｌｉｋｅｐｌａｎｔｐａｔｈｏｇｅｎ)呈现逐年增加的趋势[５]ꎬ粮食生产安全问题越来越受到关注ꎬ已成为最重要的国际问题之一[６]ꎮ９０２㊀第２期李周坤ꎬ等:黏细菌捕食生物学研究进展及其在农业领域的应用潜力目前ꎬ农业生产上的植物病害主要以化学防治为主ꎬ而过度依赖和滥用化学农药产生了有害生物抗药性㊁农药残留超标㊁环境污染等一系列问题ꎬ严重影响我国农业的绿色可持续发展[７]ꎮ为了避免过度依赖化学农药的农业病害防治现状ꎬ近年来利用微生物的抗菌㊁植物免疫调节以及根际或叶际微生物组调控作用ꎬ阻止病原菌入侵植物已成为有效策略[８－１０]ꎮ生防微生物的抗菌方式具有多样性ꎬ目前ꎬ受到关注比较多的生防微生物主要来自于假单胞菌(Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ)㊁芽胞杆菌(Ｂａｃｉｌｌｕｓ)㊁伯克氏菌(Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ)㊁溶杆菌(Ｌｙｓｏｂａｃｔｅｒ)㊁木霉(Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ)和腐霉(Ｐｙｔｈｉｕｍ)等属[１１－１２]ꎬ其中以枯草芽胞杆菌㊁哈茨木霉和寡雄腐霉等为代表的生防菌已被开发成商业化微生物菌剂ꎬ应用于农业生产的病害控制ꎬ其主要作用机制包括拮抗作用㊁竞争作用㊁诱导植物系统抗性等ꎬ且孢子形成特性使其在菌剂长效保存和土壤生存方面具有一定的优势ꎮ生防微生物进入环境中受到环境因子的多变性[１３]㊁植物与微生物互作过程中的免疫识别[１４]以及植物根际调控[１５]等因素的影响ꎬ生防微生物在开放环境中难以定殖且防治效果不稳定ꎬ导致生物菌剂的实际应用受到一定程度的限制ꎮ在自然生态系统中ꎬ存在着大量不同类型的生物体ꎬ这些生物个体之间为争夺养分和空间形成了复杂的生态网络结构ꎮ捕食是生物体之间广泛存在的一种相互作用模式ꎬ是构建生态系统群落结构和维持生物多样性的关键过程[１６]ꎮ目前ꎬ捕食性微生物包括吸血球菌(Ｖａｍｐｉｒｏｃｏｃｃｕｓ)㊁蛭弧菌(Ｂｄｅｌｌｏｖｉｂｒｉｏ)㊁噬菌弧菌(Ｂａｃｔｅｒｉｏｖｏｒａｘ)㊁Ｍｉｃａｖｉｂｒｉｏ㊁Ｄａｐｔｏｂａｃｔｅｒ㊁拟杆菌(Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｔｅｓ)和黏细菌(ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ)等[１７－１８]ꎮ其中ꎬ蛭弧菌能够直接入侵细胞周质空间实现对革兰氏阴性细菌的捕食ꎬ被广泛应用于养殖产业中改善水质和治疗水生动物细菌性疾病等方面[１９]ꎮ此外ꎬ研究人员发现Ｍｉｃａｖｉｂｒｉｏａｅｒｕｇｉｎｏｓａｖｏｒｕｓ可通过黏附到细菌的细胞壁上ꎬ掠夺它们的养分来维持自身的生存和繁殖ꎬ研究成果为治疗多种传染性疾病提供了依据ꎬ从而减缓了微生物耐药性问题[２０]ꎮ利用微生物的捕食作用能实现对病原微生物的控制ꎬ为农业病害防治提供策略ꎮ黏细菌是一类具有多细胞群体行为特征的革兰氏阴性细菌ꎬ可以捕食包括细菌和真菌在内的多种微生物ꎬ存在于土壤㊁树皮㊁朽木㊁动物粪便㊁地衣和昆虫等不同类型的环境中[２１]ꎮ黏细菌具有超大的基因组(大约１０Ｍｂ)ꎬ能形成类似真菌的不同形态的子实体结构ꎬ被称为 高等原核生物 ꎮ该类群大多具有复杂的生活史和生长代谢调控过程以及较强的环境适应能力[２２]ꎮ然而ꎬ黏细菌作为一类具有捕食特性的新型生防微生物ꎬ其在农业生产过程中植物病害控制方面的应用并未引起太多的关注ꎮ本文综述黏细菌对于微生物的捕食策略㊁抗菌机制㊁捕食的生态学功能等方面的研究进展ꎬ评估捕食性黏细菌在病害防治方面的应用潜力ꎮ同时ꎬ讨论目前黏细菌对于微生物的捕食研究方面所存在的问题及其应对策略ꎬ为黏细菌应用于农业生产过程的病害控制提供理论依据和策略ꎮ１㊀黏细菌是一类通才型(ｇｅｎｅｒａｌｉｓｔｐｒｅｄａｔｏｒ)的微生物捕食者捕食性微生物分布广泛ꎬ在５个门(Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ㊁Ｃｈｌｏｒｏｆｌｅｘｉ㊁Ｃｙｔｏｐｈａｇａｃｅａｅ㊁Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ和Ｎａｎｏａｒ￣ｃｈａｅｏｔａ)中的１５个科均发现了捕食性细菌ꎬ包括寄生于硬蜱属的立克次氏体(Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ)等[２３]ꎮ除细菌外ꎬ真菌中也存在具有捕食能力的类群ꎬ如Ａｒｔｈｒｏｂｏｔｒｙｓ等可以捕食线虫和一些微生物[２４]ꎮ微生物的捕食作用可能是通才型的(ｇｅｎｅｒａｌｉｓｔｐｒｅｄａｔｏｒ)ꎬ如黏细菌ꎬ对不同类型的细菌和真菌均具有捕食作用[２５－２６]ꎻ也可能是专性的(ｏｂｌｉｇａｔｅｐｒｅｄａｔｏｒ)ꎬ如蛭弧菌ꎬ通过侵入革兰氏阴性细菌的周质空间进而实现对猎物细胞的分解[２７]ꎮ然而ꎬ黏细菌和蛭弧菌都可以在固体界面上滑行运动实现捕食ꎬ但是所涉及的分子机制是相互独立的[２８]ꎮ对于黏细菌的捕食研究开展的较早[２９]ꎬ其捕食作用与已报道的几种捕食性微生物的作用方式不同ꎮ相对于以盘基网柄菌(Ｄｉｃｔｙｏｓｔｅｌｉｕｍｄｉｓｃｏｉｄｅｕｍ)为代表的细胞吞噬作用㊁蛭弧菌(Ｂｄｅｌｌｏｖｉｂｒｉｏｂａｃ￣ｔｅｒｉｏｖｏｒｕｓ)为代表的胞质入侵作用㊁溶杆菌(Ｌｙｓｏｂａｃｔｅｒ)为代表的分泌扩散性抗菌物质以及腐生螺旋体属(Ｓａｐｒｏｓｐｉｒａ)为代表的通过黏性物质捕捉猎物(Ｉｘｏｔｒｏｐｈｙ)等方式[３０]ꎬ黏细菌利用一种特殊的胞外猎杀机制入侵猎物菌落ꎮ黏细菌的捕食策略类型分为:１)直接攻击模式(ｆｒｏｎｔａｌａｔｔａｃｋ)ꎮ黏细菌细胞间相互合作形成直接攻击模式ꎬ如黏细菌Ｍｙｘｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＢＳ对软腐果胶杆菌等病原细菌的捕食作用[２６]ꎮ２)狼群围捕攻击模式(ｗｏｌｆｐａｃｋａｔｔａｃｋ)ꎮ黄色黏球菌(Ｍｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ)ＤＺ２对苜蓿中华根瘤菌(Ｓｉｎｏｒｈｉｚｏｂｉｕｍｍｅｄｉｃａｅ)ＡＫ２１的捕食过程中ꎬ由于菌株ＡＫ２１产生大量的胞外半乳葡聚糖抵御捕食ꎬ因此黏细菌ＤＺ２采取一种先围捕后猎杀的方式实现对猎物的捕食[３１]ꎮ３)孤立捕食模式(ｓｏｌｉｔａｒｙｐｒｅｄａｔｉｏｎ)ꎮ通常认为黏细菌通过类似群体狩猎南㊀京㊀农㊀业㊀大㊀学㊀学㊀报第４４卷的策略捕食猎物[３０]ꎬ然而研究者也发现黏细菌单个细胞的孤立捕食也能实现对猎物细胞的猎杀[３２－３４]ꎮ基于自然环境中可获取资源的局限性ꎬ多样化的捕食策略有助于黏细菌类群在环境中的适应能力ꎮ２㊀捕食性黏细菌(ｐｒｅｄａｔｏｒ)与猎物(ｐｒｅｙ)之间的多重博弈关系目前ꎬ关于黏细菌捕食作用的研究主要集中在细菌捕食方面ꎬ包括黏细菌产生的次级代谢物㊁裂解酶㊁外膜囊泡(ＯＭＶｓ)等[３０ꎬ３５－３６]ꎬ其中次级代谢物的抗菌活性被认为在黏细菌捕食过程中发挥着重要的作用[３７－３８]ꎬ而外膜囊泡被认为是黏细菌攻击猎物的短距离 运输机 [３９]ꎮ此外ꎬ黏细菌分泌的蛋白酶或肽酶㊁溶菌酶等裂解酶可能参与黏细菌的捕食作用[３０ꎬ４０]ꎬ但到目前为止并无直接的证据ꎮ在黏细菌捕食大肠杆菌的研究中ꎬ转录组学分析发现上千个基因响应捕食过程ꎬ同时推测猎物细胞壁和蛋白质是黏细菌攻击的首要目标[４１]ꎮ与对细菌的捕食研究相比ꎬ黏细菌对真菌的捕食研究较少ꎬ仅涉及具有抗真菌活性的几丁质酶㊁β－１ꎬ３－葡聚糖酶等细胞壁裂解酶[４２－４４]以及抗真菌活性的次级代谢物[４５]等ꎮ在细菌与真菌互作关系研究中ꎬ伯克霍尔德菌和沙雷氏菌分别进化出三型分泌系统(Ｔ３ＳＳ)和六型分泌系统(Ｔ６ＳＳ)ꎬ将毒性蛋白直接注入真菌细胞内实现对真菌的猎杀[４６－４７]ꎮ与之不同的是ꎬ黏细菌通过分泌一种新型外膜型β－１ꎬ６－葡聚糖酶分解真菌细胞壁中的β－１ꎬ６－葡聚糖组分ꎬ进而实现对植物病原真菌的捕食(图１)[４８]ꎮ目前具有酶活性的外膜蛋白主要包括膜结合蛋白酶或酯酶等[４９－５０]ꎬ黏细菌来源的外膜型β－１ꎬ６－葡聚糖酶是目前已报道的唯一具有糖苷水解酶活性的外膜蛋白ꎬ具有广谱的抗真菌活性ꎬ是黏细菌捕食真菌的关键因子[４８]ꎮ图１㊀黏细菌与猎物细胞之间的捕食与防御策略Ｆｉｇ １㊀Ｔｈｅａｔｔａｃｋ￣ｄｅｆｅｎｓｅｍｏｄｅｌｂｅｔｗｅｅｎｐｒｅｄａｔｏｒｙｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｎｄｐｒｅｙ捕食性黏细菌通过多种模式攻击猎物以获取营养并建立竞争优势ꎬ而猎物群体面对捕食者的攻击进化出相应的防御策略抵御微生物的捕食ꎬ从而实现种群的自我保护(图１)ꎮ猎物抵御黏细菌捕食的防御策略类型主要分为:１)产生抑菌物质ꎮ黏细菌可以分泌抗生素杀死猎物ꎬ而猎物也可以分泌抗菌物质抑制黏细菌的生长ꎮ在黄色黏球菌(Ｍ.ｘａｎｔｈｕｓ)ＤＫ１６２２与天蓝色链霉菌(Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓｃｏｅｌｉｃｏｌｏｒ)Ｍ４５的互作研究中ꎬ链霉菌Ｍ４５通过气生菌丝和抗菌物质抵御黏细菌的捕食[１８]ꎬ在黏细菌与芽胞杆菌的互作研究中也有类似的抑制作用报道[５１]ꎮ此外ꎬ真菌也能够产生具有生物活性的次级代谢物ꎬ如青霉菌产生的抗生素能够抑制炭疽杆菌的生长[５２]ꎬ具有抑制黏细菌生长的可能ꎮ２)形成外围屏障ꎮ枯草芽胞杆菌(Ｂａｃｉｌｌｕｓ０１２１１２㊀第２期李周坤ꎬ等:黏细菌捕食生物学研究进展及其在农业领域的应用潜力ｓｕｂｔｉｌｉｓ)ＮＣＩＢ３６１０和大肠杆菌与黄色黏球菌(Ｍ.ｘａｎｔｈｕｓ)ＤＫ１６２２的互作研究中ꎬ芽胞杆菌和大肠杆菌作为猎物类群通过产生胞外基质和生物膜抵御黏细菌的入侵[５３－５４]ꎻ根瘤菌利用分泌的胞外半乳葡聚糖保护细胞免受黏细菌的攻击[３１]ꎮ３)修饰捕食因子结构ꎮ黏细菌捕食细菌的一个重要武器是抗生素ｍｙｘｏｖｉｒｅｓｃｉｎ(ＴＡ)ꎬ地衣芽胞杆菌通过分泌糖基转移酶(ＹｊｉＣ)对黏细菌分泌的抗生素ＴＡ进行葡萄糖糖基化修饰ꎬ减弱其对自身细胞的毒性ꎬ进而逃脱黏细菌的捕食[５５](图１)ꎮ４)共进化ꎮ地衣芽胞杆菌在黏细菌的捕食压力下进化出对抗生素ＴＡ的修饰能力[５５]ꎻ在黏细菌与大肠杆菌共进化研究中发现ꎬ大肠杆菌通过增加黏液量降低黏细菌的运动速度ꎬ同时通过突变自身的毒力蛋白－外膜蛋白酶(ＯｍｐＴ)以适应捕食的压力ꎬ而黏细菌则通过突变１个未知的ｅａｔＢ基因从而增强对细菌捕食的适应性[５６]ꎮ５)改变细胞壁结构组成ꎮ黏细菌通过分泌抗菌蛋白β－１ꎬ６－葡聚糖酶实现对真菌的猎杀ꎬ然而粗糙脉孢菌等微生物细胞壁不含β－１ꎬ６－葡聚糖ꎬ进而避免了黏细菌的捕食[４８ꎬ５７]ꎮ６)其他类型ꎮ改变猎物细胞表面成分与细胞形态(如丝状细胞)和增加游动速度等也能够保护猎物逃避捕食[５８]ꎮ３㊀黏细菌捕食行为在土壤菌群生态调控中的功能微生物群落中的捕食涉及原生生物㊁噬菌体以及具有捕食能力的细菌和真菌等[５９]ꎮ黏细菌作为微生物食物网结构中的捕食者ꎬ在土壤微生物食物网中代谢活跃ꎬ在土壤生态系统碳循环中起着关键作用[６０]ꎮ土壤中黏细菌占总细菌群落的比例为０.４％~４.５％ꎬ几乎包含了所有黏细菌科或属ꎬ因此ꎬ黏细菌被认为是土壤细菌群落的重要组成部分[６１]ꎮ此外ꎬ黏细菌在农田土壤环境中与捕食性细菌存在显著的正相关性ꎬ推测其在农田土壤细菌群落调控方面具有重要的作用[６２]ꎮ尽管黏细菌广泛分布ꎬ并且在微生物生态调控中发挥着重要的作用ꎬ但对具体的影响或控制机制的研究并不统一ꎮ研究者在开展土壤微生物与植物互作关系研究中发现ꎬ黏细菌Ｃｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢ能够对植物根际分泌物中麦芽糖和麦芽糖醇具有较强的趋化作用ꎬ使黏细菌向根部定向迁移并定殖ꎮ由于黏细菌ＥＧＢ对包括尖孢镰刀菌在内的多种植物病原真菌和细菌均表现良好的捕食作用[２５ꎬ４８]ꎬ在向根部迁移的过程中ꎬ黏细菌通过捕食作用调控土壤微生物群落结构ꎮ其中ꎬＢａｃｉｌｌｕｓ和Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ等潜在的病害生防菌以及植物促生菌(ＰＧＰＲ)等丰度上升ꎬ尖孢镰刀菌黄瓜专化型(Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍｆ.ｓｐ.ｃｕｃｕｍｅｒｉｎｕｍꎬＦＯＣ)数量明显下降ꎬ从而抑制病害的发生[６３]ꎮ研究结果为利用捕食性黏细菌调控土壤微生物菌落进而实现植物病害的控制提供了新思路ꎬ同时也暗示着捕食性微生物作为土壤食物网的重要组成部分[６４]ꎬ在微生物生态系统动态过程调控中起着重要的作用ꎮ４㊀捕食性黏细菌在植物病害控制方面的应用潜力研究发现来源于不同种属的黏细菌菌株对不同类型的植物病原菌均表现良好的抗菌活性[３８ꎬ６５－６６]ꎬ在植物病害生物防治方面表现出潜在的应用价值ꎮ盆栽试验中ꎬ黏细菌对病原细菌㊁真菌和卵菌等造成的植物病害具有良好的生防效果ꎬ表现出较好的土壤定殖能力ꎬ从而保护植物免受病原菌的危害[２５ꎬ６３ꎬ６７－６８]ꎮ此外ꎬ在水果采后病害控制方面ꎬ黏细菌Ｃｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢ产生的多种挥发性抗真菌次级代谢物(ＶＯＣ)ꎬ能够有效抑制青霉菌对橘子的侵染[６９]ꎬ延长水果采后货架期(图２)ꎮ基于黏细菌潜在的生防效果ꎬ研究者进一步开展了田间试验ꎮ黏细菌ＳｏｒａｎｇｉｕｍｃｅｌｌｕｌｏｓｕｍＫＹＣ３２６２在辣椒炭疽病的防控试验中连续３年表现出稳定的生防效果ꎬ防控效率与化学杀菌剂相当[７０]ꎮ黏细菌Ｃｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢ在连续２年的黄瓜和香蕉枯萎病田间防控试验中也表现出良好的生防效果ꎬ并优于化学药剂处理ꎬ显著提高作物产量[６３] (图２)ꎮ与目前已报道的生防微生物相比ꎬ黏细菌在植物病害控制方面具有显著的特点:１)能在固体表面滑行运动ꎮ黏细菌利用２种不同类型的运动系统(Ａ运动:ＡｄｖｅｎｔｕｒｏｕｓｍｏｔｉｌｉｔｙꎻＳ运动:Ｓｏｃｉａｌｍｏｔｉｌｉｔｙ)实现在固体界面的滑行运动[７１]ꎬ降低微生物对土壤水分的要求[７２]ꎬ而土壤水分含量是生防微生物在土壤中运动的限制因素之一[１３]ꎮ２)产生丰富的抗菌物质ꎮ从黏细菌中已经发现了大量具有抗菌活性的次级代谢产物和酶类[４３ꎬ７３－７４]ꎬ是原核生物中仅次于放线菌的第二大次级代谢物来源菌ꎮ３)发育形成抗性黏孢子ꎮ黏细菌是革兰氏阴性细菌ꎬ但可以分化或诱导分化形成具有抗逆性的孢子[７５]ꎬ有利于生防菌剂的研发和保存ꎮ４)环境适应性强ꎮ黏细菌广泛分布于土壤㊁水体㊁腐败的树木枯枝落叶㊁草食类动物的粪便等不同的环境ꎬ具有较强的环境适应力[７６－７７]ꎮ５)能通过多样化的策略捕食真菌和细菌[３０ꎬ７８]ꎮ黏细菌通才型的南㊀京㊀农㊀业㊀大㊀学㊀学㊀报第４４卷图２㊀黏细菌Ｃｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢ在植物真菌病害控制方面的应用性评估Ｆｉｇ ２㊀ＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｏｆＣｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢｉｎｔｈｅｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌｏｆｐｌａｎｔｆｕｎｇａｌｄｉｓｅａｓｅ㊀㊀ａ.黏细菌利用挥发性抗菌物质(ＶＯＣ)抑制气传性植物病原菌的生长[６９](ＶＯＣ:抑制灰霉病菌对橘子的侵染)ꎻｂ.黏细菌通过捕食和土壤微生物调控作用控制土传枯萎病害的发生[６３](捕食与调控:抑制黄瓜枯萎病菌对黄瓜的侵染)ꎮａ.Ｂｉｏｃｉｄａｌｅｆｆｅｃｔｓｏｆｖｏｌａｔｉｌｅｏｒｇａｎｉｃｃｏｍｐｏｕｎｄｓ(ＶＯＣ)ｐｒｏｄｕｃｅｄｂｙｔｈｅｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｇａｉｎｓｔｆｕｎｇａｌｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｇｅｎｓ[６９]ꎻｂ.Ｐｒｅｄａｔｉｏｎａｎｄｍｉｃｒｏｂｉａｌｃｏｍｍｕｎｉｔｙｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｒｅｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌｏｆｓｏｉｌ￣ｂｏｒｎｅＦｕｓａｒｉｕｍｗｉｌｔ[６３].捕食特性㊁良好的环境适应性㊁土壤微生物群落调控能力ꎬ使其被视为是一类新型的生防微生物ꎬ可应用于农业生产过程中植物病害的生防控制ꎮ除了在植物病害生物防治方面ꎬ黏细菌在动物病害控制方面也表现一定的应用潜力ꎮ研究人员发现包含不同种属的１１３株黏细菌对多种动物致病菌均具有高效的捕食作用ꎬ包括肺炎克雷伯菌(Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ)㊁奇异变形杆菌(Ｐｒｏｔｅｕｓｍｉｒａｂｉｌｉｓ)㊁白色念珠菌(Ｃａｎｄｉｄａａｌｂｉｃａｎｓ)㊁肠球菌(Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ)㊁葡萄球菌(Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ)等[７９]ꎮ此外ꎬ黏细菌分泌的具有生物活性的次级代谢物在保护动物健康方面也具有应用潜力ꎬ如Ｓ.ｃｅｌｌｕｌｏｓｕｍ来源的Ａｍｂｒｕｔｉｃｉｎ等可以有效抑制多种动物致病菌的生长ꎻ来源于Ｍｙｘｏｃｏｃｃｕｓｓｔｉｐｉｔａｔｕｓ的Ｒｈｉｚｏｐｏｄｉｎ㊁Ｓ ｃｅｌｌｕｌｏｓｕｍ的Ｅｐｏｔｈｉｌｏｎｅ被认为在抗肿瘤方面具有重要的作用[３５ꎬ８０]ꎮ黏细菌通过捕食作用和次级代谢物的抗菌作用使其在致病性微生物引起的动物病害控制方面也具有一定的应用潜力ꎮ然而ꎬ目前黏细菌在病害防控中的作用还未引起足够的关注和重视ꎮ５㊀捕食性黏细菌在植物病害控制方面所面临的问题目前ꎬ捕食性黏细菌通过多种模式对植物病原菌进行捕食或者抑制ꎬ在病害控制方面具有良好的应用潜力ꎬ然而黏细菌捕食生物学研究中还存在一些瓶颈直接制约黏细菌的实际应用ꎮ例如:１)黏细菌捕食行为的复杂性ꎮ目前对于黏细菌的捕食相关研究多数集中在行为特征的描述等方面ꎬ已确定的黏细菌捕食因子只有抗生素ＴＡ和外膜型β－１ꎬ６－葡聚糖水解酶等ꎬ而黏细菌在捕食过程中降解酶与代谢调控㊁互作关键因子㊁感知与猎物响应㊁细胞依赖㊁群体捕食效率等方面的机制未知ꎬ限制了研究者对黏细菌捕食行为的深入了解ꎮ２)黏细菌生长与营养需求的特殊性ꎮ黏细菌特殊的生长发育方式导致黏细菌的分离周期长ꎬ且可培养性黏细菌资源有限ꎬ我国只有山东大学㊁广东省微生物研究所㊁内蒙古大学㊁河北大学等在黏细菌菌种资源收集方面建立了良好的基础ꎮ同时ꎬ黏细菌生长聚集成团和丰富的胞外多糖等特性使野生型黏细菌的遗传操作难以建立ꎬ具有优良特性的野生型黏细菌的作用机制研究存在瓶颈ꎮ此外ꎬ黏细菌生长过程中的自溶特性也导致扩大培养黏细菌受限ꎬ直接限制了黏细菌的实际应用和菌剂的规模化制备ꎮ３)研究材料的单一性ꎮ目前对于黏细菌的基础研究主要是以黄色黏球菌(Ｍ.ｘａｎｔｈｕｓ)ＤＫ１６２２为材料ꎬ然而黏细菌与植物㊁微生物共进化过程中ꎬ不同种属之间的特性差异较大ꎬ如黄色黏球菌ＤＫ１６２２分泌的次级代谢物具有良好的抗菌作用ꎬ而黏细菌ＥＧＢ主要是通过分泌真菌细胞壁裂解酶实现对真菌的抗性作２１２３１２㊀第２期李周坤ꎬ等:黏细菌捕食生物学研究进展及其在农业领域的应用潜力用ꎬ研究材料的单一性直接导致黏细菌捕食研究的进展较为缓慢ꎮ６　研究展望目前ꎬ黏细菌的基础研究主要是以黏细菌为模式生物ꎬ开展发育生物学㊁种群识别㊁进化生物学以及生态学等研究ꎬ包括黏细菌子实体的形成㊁运动性ꎬ多糖的生物合成ꎬ多形态细胞表面受体蛋白ＴｒａＡ(ｐｏｌｙ￣ｍｏｒｐｈｉｃｃｅｌｌｓｕｒｆａｃｅｒｅｃｅｐｔｏｒ)及其互作蛋白ＴｒａＢ(ｃｏｈｏｒｔｐｒｏｔｅｉｎ)依赖的外膜融合参与黏细菌细胞识别的作用以及生物多样性等[８１－８２]ꎮ此外ꎬ以黏细菌为种质资源库ꎬ分离筛选一系列具有生物活性的次级代谢物ꎬ黏细菌已成为重要的生物活性物质来源菌[８３]ꎮ黏细菌早在１９４１年就被报道具有捕食细菌的能力ꎬ然而黏细菌是如何完成对细菌和真菌的捕食这一关键科学问题至今未知ꎮ因此ꎬ解析黏细菌的捕食机制是未来黏细菌研究的重要方向ꎮ黏细菌在自然环境中分布广泛ꎬ具有较高的丰度ꎬ然而已分离培养的黏细菌资源依然较少ꎮ广东省微生物研究所科研人员利用病原菌作为被捕食菌构建了直接面向生物防治用途的黏细菌筛选模型[３８]ꎬ为未来黏细菌分离方法的优化提供了方向ꎮ同时ꎬ２０１０年启动的地球微生物组计划(ＥａｒｔｈＭｉｃｒｏｂｉｏｍｅＰｒｏｊｅｃｔ)ꎬ也为获取不同黏细菌的基因组信息ꎬ构建基因资源库提供了可能ꎮ此外ꎬ野生型黏细菌的分子生物学研究体系对于黏细菌研究的深入开展至关重要ꎮ研究者前期发现黏细菌细胞分散性㊁胞外多糖(ｅｘｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅꎬＥＰＳ)㊁限制－修饰系统(ｒｅｓｔｒｉｃｔｉｏｎ￣ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓｙｓｔｅｍꎬＲ￣Ｍｓｙｓｔｅｍ)以及分泌系统等在黏细菌转化过程中起着重要的作用[８４]ꎮ突破黏细菌胞外多糖的物理屏障ꎬ强化黏细菌生长过程细胞分散性ꎬ建立高效的遗传转化体系对于深入了解黏细菌的抗菌机制具有重要的作用ꎮ因此ꎬ为了促进捕食性黏细菌在农业生产过程中的实际应用ꎬ需要深入了解黏细菌捕食的作用机制和生态学功能ꎬ通过基因组学和培养组学等方法获取具有良好抗菌活性的优良菌株ꎻ利用代谢组学㊁蛋白和转录组学等鉴定参与黏细菌捕食行为的关键因子ꎬ系统解析黏细菌的捕食和代谢调控机制ꎻ结合微生物学㊁生态学㊁植物保护等多学科交叉阐明捕食性黏细菌在自然环境中的生态学功能以及与植物㊁土壤微生物菌群之间的互作关系ꎻ同时ꎬ建立和优化黏细菌规模化培养工艺ꎬ为黏细菌的实际应用提供依据ꎮ参考文献Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:[１]㊀ＳａｖａｒｙＳꎬＷｉｌｌｏｃｑｕｅｔＬꎬＰｅｔｈｙｂｒｉｄｇｅＳＪꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅｇｌｏｂａｌｂｕｒｄｅｎｏｆｐａｔｈｏｇｅｎｓａｎｄｐｅｓｔｓｏｎｍａｊｏｒｆｏｏｄｃｒｏｐｓ[Ｊ].ＮａｔｕｒｅＥｃｏｌｏｇｙ＆Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ２０１９ꎬ３(３):４３０－４３９.[２]ＳａｖａｒｙＳꎬＦｉｃｋｅＡꎬＡｕｂｅｒｔｏｔＪＮꎬｅｔａｌ.Ｃｒｏｐｌｏｓｓｅｓｄｕｅｔｏｄｉｓｅａｓｅｓａｎｄｔｈｅｉｒｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｆｏｒｇｌｏｂａｌｆｏｏｄｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎｌｏｓｓｅｓａｎｄｆｏｏｄｓｅｃｕｒｉｔｙ[Ｊ].ＦｏｏｄＳｅｃｕｒｉｔｙꎬ２０１２ꎬ４(４):５１９－５３７.[３]康振生.我国植物真菌病害的研究现状及发展策略[Ｊ].植物保护ꎬ２０１０ꎬ３６(３):９－１２.ＫａｎｇＺＳ.ＣｕｒｒｅｎｔｓｔａｔｕｓａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｓｔｒａｔｅｇｙｆｏｒｒｅｓｅａｒｃｈｏｎｐｌａｎｔｆｕｎｇａｌｄｉｓｅａｓｅｓｉｎＣｈｉｎａ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｒｏｔｅｃｔｉｏｎꎬ２０１０ꎬ３６(３):９－１２(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[４]ＣａｓａｄｅｖａｌｌＡ.Ｆｕｎｇａｌｄｉｓｅａｓｅｓｉｎｔｈｅ２１ｓｔｃｅｎｔｕｒｙ:ｔｈｅｎｅａｒａｎｄｆａｒｈｏｒｉｚｏｎｓ[Ｊ].Ｐａｔｈｏｇｅｎｓ＆Ｉｍｍｕｎｉｔｙꎬ２０１８ꎬ３(２):１８３－１９６. [５]ＦｉｓｈｅｒＭＣꎬＨｅｎｋＤＡꎬＢｒｉｇｇｓＣＪꎬｅｔａｌ.Ｅｍｅｒｇｉｎｇｆｕｎｇａｌｔｈｒｅａｔｓｔｏａｎｉｍａｌꎬｐｌａｎｔａｎｄｅｃｏｓｙｓｔｅｍｈｅａｌｔｈ[Ｊ].Ｎａｔｕｒｅꎬ２０１２ꎬ４８４(７３９３):１８６－１９４.[６]ＫｅｉｎａｎＡꎬＣｌａｒｋＡＧ.Ｒｅｃｅｎｔｅｘｐｌｏｓｉｖｅｈｕｍａｎｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｇｒｏｗｔｈｈａｓｒｅｓｕｌｔｅｄｉｎａｎｅｘｃｅｓｓｏｆｒａｒｅｇｅｎｅｔｉｃｖａｒｉａｎｔｓ[Ｊ].Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ２０１２ꎬ３３６(６０８２):７４０－７４３.[７]王桂荣ꎬ王源超ꎬ杨光富ꎬ等.农业病虫害绿色防控基础的前沿科学问题[Ｊ].中国科学基金ꎬ２０２０ꎬ３４(４):３７４－３８０.ＷａｎｇＧＲꎬＷａｎｇＹＣꎬＹａｎｇＧＦꎬｅｔａｌ.Ｆｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃｉｓｓｕｅｓｏｆｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌｐｅｓｔｓａｎｄｄｉｓｅａｓｅｓｂｙｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ￣ｆｒｉｅｎｄｌｙｍｅｔｈｏｄｓ[Ｊ].ＢｕｌｌｅｔｉｎｏｆＮａｔｉｏｎａｌＮａｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅＦｏｕｎｄａｔｉｏｎｏｆＣｈｉｎａꎬ２０２０ꎬ３４(４):３７４－３８０(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ). [８]ＣｈｅｎＴꎬＮｏｍｕｒａＫꎬＷａｎｇＸＬꎬｅｔａｌ.Ａｐｌａｎｔｇｅｎｅｔｉｃｎｅｔｗｏｒｋｆｏｒｐｒｅｖｅｎｔｉｎｇｄｙｓｂｉｏｓｉｓｉｎｔｈｅｐｈｙｌｌｏｓｐｈｅｒｅ[Ｊ].Ｎａｔｕｒｅꎬ２０２０ꎬ５８０(７８０５):６５３－６５７.[９]ＷｅｉＺꎬＧｕＹＡꎬＦｒｉｍａｎＶＰꎬｅｔａｌ.Ｉｎｉｔｉａｌｓｏｉｌｍｉｃｒｏｂｉｏｍｅｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｇｐｒｅｄｅｔｅｒｍｉｎｅｆｕｔｕｒｅｐｌａｎｔｈｅａｌｔｈ[Ｊ].ＳｃｉｅｎｃｅＡｄｖａｎｃｅｓꎬ２０１９ꎬ５(９):ｅａａｗ０７５９.[１０]ＴｒｉｎｇｅＳＧ.Ａｌａｙｅｒｅｄｄｅｆｅｎｓｅａｇａｉｎｓｔｐｌａｎｔｐａｔｈｏｇｅｎｓ[Ｊ].Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ２０１９ꎬ３６６(６４６５):５６８－５６９.[１１]ＬｅｇｅｉｎＭꎬＳｍｅｔｓＷꎬＶａｎｄｅｎｈｅｕｖｅｌＤꎬｅｔａｌ.Ｍｏｄｅｓｏｆａｃｔｉｏｎｏｆｍｉｃｒｏｂｉａｌｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌｉｎｔｈｅｐｈｙｌｌｏｓｐｈｅｒｅ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０２０ꎬ１１:１６１９.[１２]ＲａｈｍａｎＳＦＳＡꎬＳｉｎｇｈＥꎬＰｉｅｔｅｒｓｅＣＭＪꎬｅｔａｌ.Ｅｍｅｒｇｉｎｇｍｉｃｒｏｂｉａｌｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌｓｔｒａｔｅｇｉｅｓｆｏｒｐｌａｎｔｐａｔｈｏｇｅｎｓ[Ｊ].ＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０１８ꎬ２６７:１０２－１１１.[１３]ＢａｂａｌｏｌａＯＯ.Ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌｂａｃｔｅｒｉａｏｆａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌｉｍｐｏｒｔａｎｃｅ[Ｊ].ＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙＬｅｔｔｅｒｓꎬ２０１０ꎬ３２(１１):１５５９－１５７０.４１２南㊀京㊀农㊀业㊀大㊀学㊀学㊀报第４４卷[１４]Ｔｒｄ ＬꎬＢｏｕｔｒｏｔＦꎬＣｌａｖｅｒｉｅＪꎬｅｔａｌ.Ｐｅｒｃｅｐｔｉｏｎｏｆｐａｔｈｏｇｅｎｉｃｏｒｂｅｎｅｆｉｃｉａｌｂａｃｔｅｒｉａａｎｄｔｈｅｉｒｅｖａｓｉｏｎｏｆｈｏｓｔｉｍｍｕｎｉｔｙ:ｐａｔｔｅｒｎｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎｒｅｃｅｐｔｏｒｓｉｎｔｈｅｆｒｏｎｔｌｉｎｅ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０１５ꎬ６:２１９.[１５]ＺｈａｌｎｉｎａＫꎬＬｏｕｉｅＫＢꎬＨａｏＺꎬｅｔａｌ.Ｄｙｎａｍｉｃｒｏｏｔｅｘｕｄａｔｅｃｈｅｍｉｓｔｒｙａｎｄｍｉｃｒｏｂｉａｌｓｕｂｓｔｒａｔｅｐｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓｄｒｉｖｅｐａｔｔｅｒｎｓｉｎｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅｍｉｃｒｏｂｉａｌｃｏｍｍｕｎｉｔｙａｓｓｅｍｂｌｙ[Ｊ].ＮａｔｕｒｅＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１８ꎬ３(４):４７０－４８０.[１６]ＥｒｋｅｎＭꎬＬｕｔｚＣꎬＭｃＤｏｕｇａｌｄＤ.Ｔｈｅｒｉｓｅｏｆｐａｔｈｏｇｅｎｓ:ｐｒｅｄａｔｉｏｎａｓａｆａｃｔｏｒｄｒｉｖｉｎｇｔｈｅｅｖｏｌｕｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｐａｔｈｏｇｅｎｓｉｎｔｈｅｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉａｌＥｃｏｌｏｇｙꎬ２０１３ꎬ６５(４):８６０－８６８.[１７]ＧｕｅｒｒｅｒｏＲꎬＰｅｄｒｏｓ￣ＡｌｉｏＣꎬＥｓｔｅｖｅＩꎬｅｔａｌ.Ｐｒｅｄａｔｏｒｙｐｒｏｋａｒｙｏｔｅｓ:ｐｒｅｄａｔｉｏｎａｎｄｐｒｉｍａｒｙｃｏｎｓｕｍｐｔｉｏｎｅｖｏｌｖｅｄｉｎｂａｃｔｅｒｉａ[Ｊ].ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡꎬ１９８６ꎬ８３(７):２１３８－２１４２.[１８]ＰéｒｅｚＪꎬＭｏｒａｌｅｄａ￣ＭｕñｏｚＡꎬＭａｒｃｏｓ￣ＴｏｒｒｅｓＦＪꎬｅｔａｌ.Ｂａｃｔｅｒｉａｌｐｒｅｄａｔｉｏｎ:７５ｙｅａｒｓａｎｄｃｏｕｎｔｉｎｇ![Ｊ].ＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１６ꎬ１８(３):７６６－７７９.[１９]陈康勇ꎬ钟为铭ꎬ高志鹏.蛭弧菌在水产养殖中应用研究进展[Ｊ].水产科学ꎬ２０１８ꎬ３７(２):２８３－２８８.ＣｈｅｎＫＹꎬＺｈｏｎｇＷＭꎬＧａｏＺＰ.ＲｅｓｅａｒｃｈｐｒｏｇｒｅｓｓｏｎｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎｏｆＢｄｅｌｌｏｖｉｂｒｉｏｉｎａｑｕａｃｕｌｔｕｒｅ[Ｊ].ＦｉｓｈｅｒｉｅｓＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０１８ꎬ３７(２):２８３－２８８(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[２０]ＷａｎｇＺꎬＫａｄｏｕｒｉＤＥꎬＷｕＭ.Ｇｅｎｏｍｉｃｉｎｓｉｇｈｔｓｉｎｔｏａｎｏｂｌｉｇａｔｅｅｐｉｂｉｏｔｉｃｂａｃｔｅｒｉａｌｐｒｅｄａｔｏｒ:ＭｉｃａｖｉｂｒｉｏａｅｒｕｇｉｎｏｓａｖｏｒｕｓＡＲＬ￣１３[Ｊ].ＢＭＣＧｅｎｏｍｉｃｓꎬ２０１１ꎬ１２:４５３.[２１]李曙光.黏细菌的环境分布㊁季节演替及其相互作用[Ｄ].济南:山东大学ꎬ２０１４.ＬｉＳＧ.Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎꎬｓｅａｓｏｎａｌｓｕｃｃｅｓｓｉｏｎａｎｄｉｎｔｒａｓｐｅｃｉｅｓｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ[Ｄ].Ｊｉｎａｎ:ＳｈａｎｄｏｎｇＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ２０１４(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[２２]王春玲ꎬ冯广达ꎬ姚青ꎬ等.黏细菌基因组学研究进展[Ｊ].微生物学通报ꎬ２０１９ꎬ４６(９):２３９４－２４０３.ＷａｎｇＣＬꎬＦｅｎｇＧＤꎬＹａｏＱꎬｅｔａｌ.Ｒｅｓｅａｒｃｈｐｒｏｇｒｅｓｓｉｎｇｅｎｏｍｉｃｓｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＣｈｉｎａꎬ２０１９ꎬ４６(９):２３９４－２４０３(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[２３]ＪｕｒｋｅｖｉｔｃｈＥ.Ｐｒｅｄａｔｏｒｙｂｅｈａｖｉｏｒｓｉｎｂａｃｔｅｒｉａ:ｄｉｖｅｒｓｉｔｙａｎｄｔｒａｎｓｉｔｉｏｎｓ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｅＭａｇａｚｉｎｅꎬ２００７ꎬ２(２):６７－７３.[２４]ＢａｒｒｏｎＧＬ.Ｐｒｅｄａｔｏｒｙｆｕｎｇｉꎬｗｏｏｄｄｅｃａｙꎬａｎｄｔｈｅｃａｒｂｏｎｃｙｃｌｅ[Ｊ].Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ２００３ꎬ４(１):３－９.[２５]ＬｉＺＫꎬＹｅＸＦꎬＣｈｅｎＰＬꎬｅｔａｌ.ＡｎｔｉｆｕｎｇａｌｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆＣｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ｓｔｒａｉｎＥＧＢａｇａｉｎｓｔｐｌａｎｔｐａｔｈｏｇｅｎｉｃｆｕｎｇｉ[Ｊ].ＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｏｎｔｒｏｌꎬ２０１７ꎬ１１０:１０－１７.[２６]ＬｉＺＫꎬＷａｎｇＴꎬＬｕｏＸꎬｅｔａｌ.ＢｉｏｃｏｎｔｒｏｌｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ｓｔｒａｉｎＢＳａｇａｉｎｓｔｂａｃｔｅｒｉａｌｓｏｆｔｒｏｔｏｆＣａｌｌａｌｉｌｙｃａｕｓｅｄｂｙＰｅｃｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｃａｒｏｔｏｖｏｒｕｍ[Ｊ].ＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｏｎｔｒｏｌꎬ２０１８ꎬ１２６:３６－４４.[２７]ＤａｖｉｄｏｖＹꎬＨｕｃｈｏｎＤꎬＫｏｖａｌＳＦꎬｅｔａｌ.Ａｎｅｗａｌｐｈａ￣ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａｌｃｌａｄｅｏｆＢｄｅｌｌｏｖｉｂｒｉｏ￣ｌｉｋｅｐｒｅｄａｔｏｒｓ:ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｆｏｒｔｈｅｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌｅｎｄｏ￣ｓｙｍｂｉｏｔｉｃｔｈｅｏｒｙ[Ｊ].ＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２００６ꎬ８(１２):２１７９－２１８８.[２８]ＺｈａｎｇＹꎬＧｕｚｚｏＭꎬＤｕｃｒｅｔＡꎬｅｔａｌ.ＡｄｙｎａｍｉｃｒｅｓｐｏｎｓｅｒｅｇｕｌａｔｏｒｐｒｏｔｅｉｎｍｏｄｕｌａｔｅｓＧ￣ｐｒｏｔｅｉｎ￣ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｐｏｌａｒｉｔｙｉｎｔｈｅｂａｃｔｅｒｉｕｍＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ[Ｊ].ＰＬｏＳＧｅｎｅｔｉｃｓꎬ２０１２ꎬ８(８):ｅ１００２８７２.[２９]ＢｅｅｂｅＪＭ.Ｓｔｕｄｉｅｓｏｎｔｈｅｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ:ⅠꎬｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｉｎＩｏｗａｓｏｉｌｓａｎｄｄｅｓｃｒｉｐｔｉｏｎｏｆａｎｅｗｓｐｅｃｉｅｓꎻⅡꎬＭｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｓｂａｃｔｅｒｉａｌｐａｒａｓｉｔｅｓꎻⅢꎬｔｈｅｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙａｎｄｃｙｔｏｌｏｇｙｏｆＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ[Ｄ].Ｉｏｗａ:ＩｏｗａＳｔａｔｅＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ１９４１.[３０]ＢｅｒｌｅｍａｎＪＥꎬＫｉｒｂｙＪＲ.Ｄｅｃｉｐｈｅｒｉｎｇｔｈｅｈｕｎｔｉｎｇｓｔｒａｔｅｇｙｏｆａｂａｃｔｅｒｉａｌｗｏｌｆｐａｃｋ[Ｊ].ＦＥＭＳＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＲｅｖｉｅｗｓꎬ２００９ꎬ３３(５):９４２－９５７. [３１]ＰéｒｅｚＪꎬＪｉｍéｎｅｚ￣ＺｕｒｄｏＪＩꎬＭａｒｔíｎｅｚ￣ＡｂａｒｃａＦꎬｅｔａｌ.ＲｈｉｚｏｂｉａｌｇａｌａｃｔｏｇｌｕｃａｎｄｅｔｅｒｍｉｎｅｓｔｈｅｐｒｅｄａｔｏｒｙｐａｔｔｅｒｎｏｆＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓａｎｄｐｒｏｔｅｃｔｓＳｉｎｏｒｈｉｚｏｂｉｕｍｍｅｌｉｌｏｔｉｆｒｏｍｐｒｅｄａｔｉｏｎ[Ｊ].ＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１４ꎬ１６(７):２３４１－２３５０.[３２]ＺｈａｎｇＷＣꎬＷａｎｇＹꎬＬｕＨＮꎬｅｔａｌ.ＤｙｎａｍｉｃｓｏｆｓｏｌｉｔａｒｙｐｒｅｄａｔｉｏｎｂｙＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓｏｎＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉｏｂｓｅｒｖｅｄａｔｔｈｅｓｉｎｇｌｅ￣ｃｅｌｌｌｅｖｅｌ[Ｊ].ＡｐｐｌｉｅｄａｎｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１９ꎬ８６(３):ｅ０２２８６－１９.[３３]ＭｃＢｒｉｄｅＭＪꎬＺｕｓｍａｎＤＲ.ＢｅｈａｖｉｏｒａｌａｎａｌｙｓｉｓｏｆｓｉｎｇｌｅｃｅｌｌｓｏｆＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｐｒｅｙｃｅｌｌｓｏｆＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ[Ｊ].ＦＥＭＳＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＬｅｔｔｅｒｓꎬ１９９６ꎬ１３７(２/３):２２７－２３１.[３４]ＳｈｉｌｏＭ.Ｌｙｓｉｓｏｆｂｌｕｅ￣ｇｒｅｅｎａｌｇａｅｂｙｍｙｘｏｂａｃｔｅｒ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙꎬ１９７０ꎬ１０４(１):４５３－４６１.[３５]ＫａｕｒＲꎬＫｕｍａｒｉＡꎬＫａｕｒＲꎬｅｔａｌ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ:ｐｒｏｄｕｃｅｒｓｏｆｅｎｏｒｍｏｕｓｂｉｏａｃｔｉｖｅｓｅｃｏｎｄａｒｙｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ[Ｊ].ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＲｅｓｅａｒｃｈｉｎＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓꎬ２０１８ꎬ９(１):３０９－３１３.[３６]ＥｖａｎｓＡＧＬꎬＤａｖｅｙＨＭꎬＣｏｏｋｓｏｎＡꎬｅｔａｌ.ＰｒｅｄａｔｏｒｙａｃｔｉｖｉｔｙｏｆＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓｏｕｔｅｒ￣ｍｅｍｂｒａｎｅｖｅｓｉｃｌｅｓａｎｄｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆｔｈｅｉｒｈｙｄｒｏｌａｓｅｃａｒｇｏ[Ｊ].Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１２ꎬ１５８(１１):２７４２－２７５２.[３７]ＸｉａｏＹꎬＷｅｉＸＭꎬＥｂｒｉｇｈｔＲꎬｅｔａｌ.Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎｂｙｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｐｌａｙｓａｒｏｌｅｉｎｐｒｅｄａｔｉｏｎ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙꎬ２０１１ꎬ１９３(１８):４６２６－４６３３.[３８]代京莎ꎬ李安章ꎬ朱红惠.黏细菌在植物病害生物防治中的作用[Ｊ].生物技术进展ꎬ２０１６ꎬ６(４):２２９－２３４.ＤａｉＪＳꎬＬｉＡＺꎬＺｈｕＨＨ.Ｔｈｅｆｕｎｃｔｉｏｎｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｉｎｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｃｏｎｔｒｏｌｏｆｐｌａｎｔｄｉｓｅａｓｅ[Ｊ].ＣｕｒｒｅｎｔＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ２０１６ꎬ６(４):２２９－２３４(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[３９]ＫｅａｎｅＲꎬＢｅｒｌｅｍａｎＪ.ＴｈｅｐｒｅｄａｔｏｒｙｌｉｆｅｃｙｃｌｅｏｆＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ[Ｊ].Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１６ꎬ１６２(１):１－１１.[４０]ＥｎｓｉｇｎＪꎬＷｏｌｆｅＲ.Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆａｓｍａｌｌｐｒｏｔｅｏｌｙｔｉｃｅｎｚｙｍｅｗｈｉｃｈｌｙｓｅｓｂａｃｔｅｒｉａｌｃｅｌｌｗａｌｌｓ[Ｊ].Ｊｏｕｒｎａｌｏｆｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙꎬ１９６６ꎬ９１(２):５２４－５３４.[４１]ＬｉｖｉｎｇｓｔｏｎｅＰＧꎬＭｉｌｌａｒｄＡＤꎬＳｗａｉｎＭＴꎬｅｔａｌ.ＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌｃｈａｎｇｅｓｗｈｅｎＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓｐｒｅｙｓｏｎＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉｓｕｇｇｅｓｔｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｌｐｒｅｄａｔｏｒｓａｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅｌｙｔｏｘｉｃｂｕｔｒｅｇｕｌａｔｅｔｈｅｉｒｆｅｅｄｉｎｇ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉａｌＧｅｎｏｍｉｃｓꎬ２０１８ꎬ４(２):ｅ０００１５２.５１２㊀第２期李周坤ꎬ等:黏细菌捕食生物学研究进展及其在农业领域的应用潜力[４２]ＨｏｃｋｉｎｇＤꎬＣｏｏｋＦＤ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｅｘｅｒｔｐａｒｔｉａｌｃｏｎｔｒｏｌｏｆｄａｍｐｉｎｇ￣ｏｆｆａｎｄｒｏｏｔｄｉｓｅａｓｅｉｎｃｏｎｔａｉｎｅｒ￣ｇｒｏｗｎｔｒｅｅｓｅｅｄｌｉｎｇｓ[Ｊ].ＣａｎａｄｉａｎＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ１９７２ꎬ１８(１０):１５５７－１５６０.[４３]ＬｉＺＫꎬＸｉａＣＹꎬＷａｎｇＹＸꎬｅｔａｌ.Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆａｎｅｎｄｏ￣ｃｈｉｔｉｎａｓｅｆｒｏｍＣｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢａｎｄｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｉｔｓａｎｔｉｆｕｎｇａｌｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ[Ｊ].ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＭａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓꎬ２０１９ꎬ１３２:１２３５－１２４３.[４４]ＺｈｏｕＪꎬＣｈｅｎＪＨꎬＬｉＺＫꎬｅｔａｌ.Ｅｎｚｙｍａｔｉｃｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆａｍｕｌｔｉ￣ｓｐｅｃｉｆｉｃβ￣(１ꎬ３)￣ｇｌｕｃａｎａｓｅｆｒｏｍＣｏｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢａｎｄｉｔｓｐｏｔｅｎｔｉａｌａｎｔｉｆｕｎｇａｌａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ[Ｊ].ＰｒｏｔｅｉｎＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎａｎｄＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎꎬ２０１９ꎬ１６４:１０５４８１.[４５]ＫｕｎｚｅＢꎬＳｔｅｉｎｍｅｔｚＨꎬＨöｆｌｅＧꎬｅｔａｌ.Ｃｒｕｅｎｔａｒｅｎꎬａｎｅｗａｎｔｉｆｕｎｇａｌｓａｌｉｃｙｌａｔｅ￣ｔｙｐｅｍａｃｒｏｌｉｄｅｆｒｏｍＢｙｓｓｏｖｏｒａｘｃｒｕｅｎｔａ(Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ)ｗｉｔｈｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙｅｆｆｅｃｔｏｎｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌＡＴＰａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙ[Ｊ].ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓꎬ２００６ꎬ５９(１０):６６４－６６８.[４６]ＳｗａｉｎＤＭꎬＹａｄａｖＳＫꎬＴｙａｇｉＩꎬｅｔａｌ.Ａｐｒｏｐｈａｇｅｔａｉｌ￣ｌｉｋｅｐｒｏｔｅｉｎｉｓｄｅｐｌｏｙｅｄｂｙＢｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａｂａｃｔｅｒｉａｔｏｆｅｅｄｏｎｆｕｎｇｉ[Ｊ].ＮａｔｕｒｅＣｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓꎬ２０１７ꎬ８(１):１－９.[４７]ＴｒｕｎｋＫꎬＰｅｌｔｉｅｒＪꎬＬｉｕＹＣꎬｅｔａｌ.ＴｈｅｔｙｐｅⅥｓｅｃｒｅｔｉｏｎｓｙｓｔｅｍｄｅｐｌｏｙｓａｎｔｉｆｕｎｇａｌｅｆｆｅｃｔｏｒｓａｇａｉｎｓｔｍｉｃｒｏｂｉａｌｃｏｍｐｅｔｉｔｏｒｓ[Ｊ].ＮａｔｕｒｅＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１８ꎬ３(８):９２０－９３１.[４８]ＬｉＺＫꎬＹｅＸＦꎬＬｉｕＭＸꎬｅｔａｌ.Ａｎｏｖｅｌｏｕｔｅｒｍｅｍｂｒａｎｅβ￣１ꎬ６￣ｇｌｕｃａｎａｓｅｉｓｄｅｐｌｏｙｅｄｉｎｔｈｅｐｒｅｄａｔｉｏｎｏｆｆｕｎｇｉｂｙｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ[Ｊ].ＴｈｅＩＳＭＥＪｏｕｒｎａｌꎬ２０１９ꎬ１３(９):２２２３－２２３５.[４９]ＲｕｔｔｅｎＬꎬＭａｎｎｉｅＪＰＢＡꎬＳｔｅａｄＣＭꎬｅｔａｌ.Ａｃｔｉｖｅ￣ｓｉｔｅａｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅａｎｄｃａｔａｌｙｔｉｃｍｅｃｈａｎｉｓｍｏｆｔｈｅｌｉｐｉｄＡｄｅａｃｙｌａｓｅＬｐｘＲｏｆＳａｌｍｏｎｅｌｌａｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ[Ｊ].ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡꎬ２００９ꎬ１０６(６):１９６０－１９６.[５０]ＦａｉｒｍａｎＪＷꎬＮｏｉｎａｊＮꎬＢｕｃｈａｎａｎＳＫ.Ｔｈｅｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｂｉｏｌｏｇｙｏｆβ￣ｂａｒｒｅｌｍｅｍｂｒａｎｅｐｒｏｔｅｉｎｓ:ａｓｕｍｍａｒｙｏｆｒｅｃｅｎｔｒｅｐｏｒｔｓ[Ｊ].ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＳｔｒｕｃｔｕｒａｌＢｉｏｌｏｇｙꎬ２０１１ꎬ２１(４):５２３－５３１.[５１]ＭüｌｌｅｒＳꎬＳｔｒａｃｋＳＮꎬＨｏｅｆｌｅｒＢＣꎬｅｔａｌ.ＢａｃｉｌｌａｅｎｅａｎｄｓｐｏｒｕｌａｔｉｏｎｐｒｏｔｅｃｔＢａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓｆｒｏｍｐｒｅｄａｔｉｏｎｂｙＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ[Ｊ].ＡｐｐｌｉｅｄａｎｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１４ꎬ８０(１８):５６０３－５６１０.[５２]ＢｉｌｌｓＧＦꎬＧｌｏｅｒＪＢ.Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｌｙａｃｔｉｖｅｓｅｃｏｎｄａｒｙｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓｆｒｏｍｔｈｅｆｕｎｇｉ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＳｐｅｃｔｒｕｍꎬ２０１６ꎬ４(６):１－３２.[５３]ＭüｌｌｅｒＳꎬＳｔｒａｃｋＳＮꎬＲｙａｎＳＥꎬｅｔａｌ.ＰｒｅｄａｔｉｏｎｂｙＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓｉｎｄｕｃｅｓＢａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓｔｏｆｏｒｍｓｐｏｒｅ￣ｆｉｌｌｅｄｍｅｇａｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ[Ｊ].ＡｐｐｌｉｅｄａｎｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１５ꎬ８１(１):２０３－２１０.[５４]ＤｅｐａｓＷＨꎬＳｙｅｄＡＫꎬＳｉｆｕｅｎｔｅｓＭꎬｅｔａｌ.ＢｉｏｆｉｌｍｆｏｒｍａｔｉｏｎｐｒｏｔｅｃｔｓＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉａｇａｉｎｓｔｋｉｌｌｉｎｇｂｙＣａｅｎｏｒｈａｂｄｉｔｉｓｅｌｅｇａｎｓａｎｄＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ[Ｊ].ＡｐｐｌｉｅｄａｎｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１４ꎬ８０(２２):７０７９－７０８７.[５５]ＷａｎｇＣꎬＬｉｕＸꎬＺｈａｎｇＰꎬｅｔａｌ.ＢａｃｉｌｌｕｓｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓｅｓｃａｐｅｓｆｒｏｍＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓｐｒｅｄａｔｉｏｎｂｙｄｅａｃｔｉｖａｔｉｎｇｍｙｘｏｖｉｒｅｓｃｉｎＡｔｈｒｏｕｇｈｅｎｚｙｍａｔｉｃｇｌｕｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ[Ｊ].ＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１９ꎬ２１(１２):４７５５－４７７２.[５６]ＮａｉｒＲＲꎬＶａｓｓｅＭꎬＷｉｅｌｇｏｓｓＳꎬｅｔａｌ.Ｂａｃｔｅｒｉａｌｐｒｅｄａｔｏｒ￣ｐｒｅｙｃｏｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｃｃｅｌｅｒａｔｅｓｇｅｎｏｍｅｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｎｄｓｅｌｅｃｔｓｏｎｖｉｒｕｌｅｎｃｅ￣ａｓｓｏｃｉａｔｅｄｐｒｅｙｄｅｆｅｎｃｅｓ[Ｊ].ＮａｔｕｒｅＣｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓꎬ２０１９ꎬ１０(１):１－１０.[５７]ＭａｄｄｉＡꎬＤｅｔｔｍａｎＡꎬＦｕＣꎬｅｔａｌ.ＷＳＣ￣１ａｎｄＨＡＭ￣７ａｒｅＭＡＫ￣１ＭＡＰｋｉｎａｓｅｐａｔｈｗａｙｓｅｎｓｏｒｓｒｅｑｕｉｒｅｄｆｏｒｃｅｌｌｗａｌｌｉｎｔｅｇｒｉｔｙａｎｄｈｙｐｈａｌｆｕｓｉｏｎｉｎＮｅｕｒｏｓｐｏｒａｃｒａｓｓａ[Ｊ].ＰＬｏＳＯｎｅꎬ２０１２ꎬ７(８):ｅ４２３７４.[５８]ＪｏｕｓｓｅｔＡ.Ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌａｎｄｅｖｏｌｕｔｉｖｅｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｏｆｂａｃｔｅｒｉａｌｄｅｆｅｎｃｅｓａｇａｉｎｓｔｐｒｅｄａｔｏｒｓ[Ｊ].ＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１２ꎬ１４(８):１８３０－１８４３. [５９]ＴｈａｋｕｒＭＰꎬＧｅｉｓｅｎＳ.Ｔｒｏｐｈｉｃｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｓｏｆｔｈｅｓｏｉｌｍｉｃｒｏｂｉｏｍｅ[Ｊ].ＴｒｅｎｄｓｉｎＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１９ꎬ２７(９):７７１－７８０.[６０]ＬｕｅｄｅｒｓＴꎬＫｉｎｄｌｅｒＲꎬＭｉｌｔｎｅｒＡꎬｅｔａｌ.Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｂａｃｔｅｒｉａｌｍｉｃｒｏｐｒｅｄａｔｏｒｓｄｉｓｔｉｎｃｔｉｖｅｌｙａｃｔｉｖｅｉｎａｓｏｉｌｍｉｃｒｏｂｉａｌｆｏｏｄｗｅｂ[Ｊ].ＡｐｐｌｉｅｄａｎｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２００６ꎬ７２(８):５３４２－５３４８.[６１]ＺｈｏｕＸＷꎬＬｉＳＧꎬＬｉＷꎬｅｔａｌ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｌｃｏｍｍｕｎｉｔｙｉｓａｐｒｅｄｏｍｉｎａｎｔａｎｄｈｉｇｈｌｙｄｉｖｅｒｓｅｂａｃｔｅｒｉａｌｇｒｏｕｐｉｎｓｏｉｌｎｉｃｈｅｓ[Ｊ].ＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＲｅｐｏｒｔｓꎬ２０１４ꎬ６(１):４５－５６.[６２]ＷａｎｇＷＨꎬＬｕｏＸꎬＹｅＸＦꎬｅｔａｌ.ＰｒｅｄａｔｏｒｙＭｙｘｏｃｏｃｃａｌｅｓａｒｅｗｉｄｅｌｙｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄｉｎａｎｄｃｌｏｓｅｌｙｃｏｒｒｅｌａｔｅｄｗｉｔｈｔｈｅｂａｃｔｅｒｉａｌｃｏｍｍｕｎｉｔｙｓｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌｌａｎｄ[Ｊ].ＡｐｐｌｉｅｄＳｏｉｌＥｃｏｌｏｇｙꎬ２０２０ꎬ１４６:１０３３６５.[６３]ＹｅＸＦꎬＬｉＺＫꎬＬｕｏＸꎬｅｔａｌ.ＡｐｒｅｄａｔｏｒｙｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｃｏｎｔｒｏｌｓｃｕｃｕｍｂｅｒＦｕｓａｒｉｕｍｗｉｌｔｂｙｒｅｇｕｌａｔｉｎｇｔｈｅｓｏｉｌｍｉｃｒｏｂｉａｌｃｏｍｍｕｎｉｔｙ[Ｊ].Ｍｉｃｒｏｂｉｏｍｅꎬ２０２０ꎬ８(１):４９.[６４]Ｍｅｎｄｅｓ￣ＳｏａｒｅｓＨꎬＶｅｌｉｃｅｒＧＪ.Ｄｅｃｏｍｐｏｓｉｎｇｐｒｅｄａｔｉｏｎ:ｔｅｓｔｉｎｇｆｏｒｐａｒａｍｅｔｅｒｓｔｈａｔｃｏｒｒｅｌａｔｅｗｉｔｈｐｒｅｄａｔｏｒｙｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅｂｙａｓｏｃｉａｌｂａｃｔｅｒｉｕｍ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉａｌＥｃｏｌｏｇｙꎬ２０１３ꎬ６５(２):４１５－４２３.[６５]任兴波ꎬ张子良ꎬ赵璞钰ꎬ等.马铃薯晚疫病菌拮抗黏细菌ＹＲ￣３５的分离鉴定及其代谢产物稳定性[Ｊ].中国生物防治学报ꎬ２０１６ꎬ３２(３):３７９－３８７.ＲｅｎＸＢꎬＺｈａｎｇＺＬꎬＺｈａｏＰＹꎬｅｔａｌ.ＩｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｔｈｅｓｔｒａｉｎＹＲ￣３５ｒｅｓｉｓｔａｎｔｔｏｐｈｙｔｏｐｈｔｈｏｒａｉｎｆｅｓｔａｎｓａｎｄｉｔｓｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ[Ｊ].ＣｈｉｎｅｓｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｏｎｔｒｏｌꎬ２０１６ꎬ３２(３):３７９－３８７(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[６６]李百元ꎬ谢小林ꎬ张鲜娇ꎬ等.不同被捕食细菌对新疆盐碱地黏细菌分离的影响[Ｊ].微生物学报ꎬ２０１３ꎬ５３(４):３７９－３８９.ＬｉＢＹꎬＸｉｅＸＬꎬＺｈａｎｇＸＪꎬｅｔａｌ.Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｐｒｅｙｓｔｒａｉｎｓｏｎｉｓｏｌａｔｉｏｎｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｉｎｓａｌｉｎｅ￣ａｌｋａｌｉｎｅｓｏｉｌｓｏｆＸｉｎｊｉａｎｇ[Ｊ].ＡｃｔａＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａＳｉｎｉｃａꎬ２０１３ꎬ５３(４):３７９－３８９(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[６７]ＫｉｍＳＴꎬＹｕｎＳＣ.ＢｉｏｃｏｎｔｒｏｌｗｉｔｈＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＫＹＣ１１２６ａｇａｉｎｓｔａｎｔｈｒａｃｎｏｓｅｉｎｈｏｔｐｅｐｐｅｒ[Ｊ].ＴｈｅＰｌａｎｔＰａｔｈｏｌｏｇｙＪｏｕｒｎａｌꎬ２０１１ꎬ２７(２):１５６－１６３.[６８]ＤａｈｍＭꎬＢｒｚｅｚｉńｓｋａＡＪꎬＷｒóｔｎｉａｋ￣ＤｒｚｅｗｉｅｃｋａＷꎬｅｔａｌ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｓａｐｏｔｅｎｔｉａｌｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌａｇｅｎｔｅｆｆｅｃｔｉｖｅａｇａｉｎｓｔｐａｔｈｏｇｅｎｉｃｆｕｎｇｉｏｆｅｃｏｎｏｍｉｃａｌｌｙｉｍｐｏｒｔａｎｔｆｏｒｅｓｔｔｒｅｅｓ[Ｊ].Ｄｅｎｄｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１５ꎬ７４:１３－２４.[６９]ＹｅＸＦꎬＣｈｅｎＹꎬＭａＳＹꎬｅｔａｌ.ＢｉｏｃｉｄａｌｅｆｆｅｃｔｓｏｆｖｏｌａｔｉｌｅｏｒｇａｎｉｃｃｏｍｐｏｕｎｄｓｐｒｏｄｕｃｅｄｂｙｔｈｅｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉｕｍＣｏｒｒａｌｌｏｃｏｃｃｕｓｓｐ.ＥＧＢａｇａｉｎｓｔ６１２南㊀京㊀农㊀业㊀大㊀学㊀学㊀报第４４卷ｆｕｎｇａｌｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｇｅｎｓ[Ｊ].ＦｏｏｄＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０２０ꎬ９１:１０３５０２.[７０]ＹｕｎＳＣ.Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎａｎｄａ３￣ｙｅａｒｆｉｅｌｄｔｒｉａｌｏｆＳｏｒａｎｇｉｕｍｃｅｌｌｕｌｏｓｕｍＫＹＣ３２６２ａｇａｉｎｓｔａｎｔｈｒａｃｎｏｓｅｉｎｈｏｔｐｅｐｐｅｒ[Ｊ].ＴｈｅＰｌａｎｔＰａｔｈｏｌｏｇｙＪｏｕｒｎａｌꎬ２０１４ꎬ３０(３):２７９－２８７.[７１]ＮａｎＢꎬＺｕｓｍａｎＤＲ.Ｕｎｃｏｖｅｒｉｎｇｔｈｅｍｙｓｔｅｒｙｏｆｇｌｉｄｉｎｇｍｏｔｉｌｉｔｙｉｎｔｈｅｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ[Ｊ].ＡｎｎｕａｌＲｅｖｉｅｗｏｆＧｅｎｅｔｉｃｓꎬ２０１１ꎬ４５:２１－３９. [７２]ＳｐｏｒｍａｎｎＡＭ.Ｇｌｉｄｉｎｇｍｏｔｉｌｉｔｙｉｎｂａｃｔｅｒｉａ:ｉｎｓｉｇｈｔｓｆｒｏｍｓｔｕｄｉｅｓｏｆＭｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙａｎｄＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙＲｅｖｉｅｗｓꎬ１９９９ꎬ６３(３):６２１－６４１.[７３]刘新利ꎬ李越中.黏细菌次级代谢产物及其在农业上的应用价值[Ｊ].中国农业科技导报ꎬ２００７ꎬ９(３):４４－５１.ＬｉｕＸＬꎬＬｉＹＺ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｌｓｅｃｏｎｄａｒｙｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓａｎｄｔｈｅｉｒｐｏｔｅｎｔｉａｌａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｉｎａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ２００７ꎬ９(３):４４－５１(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[７４]ＫａｕｒＲꎬＳｉｎｇｈＳꎬＫａｕｒＲꎬｅｔａｌ.Ｍｙｘｏｃｏｃｃｕｓｘａｎｔｈｕｓ:ａｓｏｕｒｃｅｏｆａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌｓａｎｄｎａｔｕｒａｌｂｉｏ￣ｃｏｎｔｒｏｌａｇｅｎｔ[Ｊ].ＴｈｅＰｈａｒｍａＩｎｎｏｖａｔｉｏｎＪｏｕｒ￣ｎａｌꎬ２０１７ꎬ６(１１):２６０－２６２.[７５]ＤｗｏｒｋｉｎＭ.Ｒｅｃｅｎｔａｄｖａｎｃｅｓｉｎｔｈｅｓｏｃｉａｌａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌｂｉｏｌｏｇｙｏｆｔｈｅｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＲｅｖｉｅｗꎬ１９９６ꎬ６０(１):７０－１０２. [７６]ＤａｗｉｄＷ.Ｂｉｏｌｏｇｙａｎｄｇｌｏｂａｌｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｉｎｓｏｉｌｓ[Ｊ].ＦＥＭＳＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＲｅｖｉｅｗｓꎬ２０００ꎬ２４(４):４０３－４２７.[７７]李曙光ꎬ周秀文ꎬ吴志红ꎬ等.黏细菌的种群生态及其生存策略[Ｊ].微生物学通报ꎬ２０１３ꎬ４０(１):１７２－１７９.ＬｉＳＧꎬＺｈｏｕＸＷꎬＷｕＺＨꎬｅｔａｌ.Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｅｃｏｌｏｇｙａｎｄｓｕｒｖｉｖａｌｓｔｒａｔｅｇｙｏｆｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ[Ｊ].ＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＣｈｉｎａꎬ２０１３ꎬ４０(１):１７２－１７９(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅｗｉｔｈＥｎｇｌｉｓｈａｂｓｔｒａｃｔ).[７８]Ｍｕñｏｚ￣ＤｏｒａｄｏＪꎬＭａｒｃｏｓ￣ＴｏｒｒｅｓＦꎬＧａｒｃｉａ￣ＢｒａｖｏＥꎬｅｔａｌ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａ:ｍｏｖｉｎｇꎬｋｉｌｌｉｎｇꎬｆｅｅｄｉｎｇꎬａｎｄｓｕｒｖｉｖｉｎｇｔｏｇｅｔｈｅｒ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１６:７８１.[７９]ＬｉｖｉｎｇｓｔｏｎｅＰＧꎬＭｏｒｐｈｅｗＲＭꎬＷｈｉｔｗｏｒｔｈＤＥ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａａｒｅａｂｌｅｔｏｐｒｅｙｂｒｏａｄｌｙｕｐｏｎｃｌｉｎｉｃａｌｌｙ￣ｒｅｌｅｖａｎｔｐａｔｈｏｇｅｎｓꎬｅｘｈｉｂｉｔｉｎｇａｐｒｅｙｒａｎｇｅｗｈｉｃｈｃａｎｎｏｔｂｅｅｘｐｌａｉｎｅｄｂｙｐｈｙｌｏｇｅｎｙ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ２０１７ꎬ８:１５９３.[８０]刘新利ꎬ李越中.黏细菌资源与埃博霉素研发[Ｊ].生物产业技术ꎬ２０１１(２):２６－３２.ＬｉｕＸＬꎬＬｉＹＺ.Ｍｙｘｏｂａｃｔｅｒｉａｒｅｓｏｕｒｃｅｓａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆｅｐｏｔｈｉｌｏｎｅ[Ｊ].Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ＆Ｂｕｓｉｎｅｓｓꎬ２０１１(２):２６－３２(ｉｎＣｈｉｎｅｓｅ). 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International Journal of Ecology 世界生态学, 2019, 8(3), 167-171Published Online August 2019 in Hans. /journal/ijehttps:///10.12677/ije.2019.83022Study on Antibacterial Activity ofStreptomyces sp. FermentingProductsJuan Hu*, Li Zhao, Yongjun Kan, Chang JiangFujian Academy of Traditional Chinese Medicine, Fuzhou FujianReceived: Jul. 12th, 2019; accepted: Jul. 31st, 2019; published: Aug. 7th, 2019AbstractIn this paper, the antibacterial activity of Streptomyces sp. fermenting products against plant pa-thogenic fungus was studied. The mycelial growth rate method and the crosshair line method were used to determine the diameter of colony expansion and to observe Streptomyces fermentingbroth effect on the activity of Pseudomonas aeruginosa, Thermoascus aurantiacus and Fusariumequiseti. When Streptomyces fermenting broth was co-cultured with pathogenic bacteria for 72 hours, the average inhibition rates were 30.64% (P < 0.01), 51.37% (P < 0.01) and 12.29 (P < 0.05) for Pseudomonas aeruginosa, Fusarium equiseti and Thermoascus aurantiacus, respectively. Strep-tomyces fermenting broth has the strongest inhibitory effect on Fusarium equiseti, and its principle is related to blocking the production of bacterial nucleic acid. Streptomyces fermenting broth had the weakest inhibitory effect on Thermoascus aurantiacus and had no significant effect on nucleic acid content of Pseudomonas aeruginosa and Thermoascus aurantiacus. Streptomyces fermenting broth showed different antibacterial activity against three kinds of plant pathogenic fungus.KeywordsStreptomyces Fermenting Broth, Pseudostellaria heterophylla, Plant Pathogenic Fungus,Inhibitory Action链霉菌发酵产物抗菌活性的研究胡娟*，赵立，阚永军，蒋畅福建省中医药研究院，福建福州收稿日期：2019年7月12日；录用日期：2019年7月31日；发布日期：2019年8月7日*通讯作者。

产普那霉素始旋链霉菌发酵的代谢调控、条件优化
及软测量建模研究的开题报告
本课题旨在研究产普那霉素始旋链霉菌的代谢调控、条件优化及软
测量建模，探究其发酵生产过程中的关键因素和优化策略，以提高产普
那霉素的产量和质量。

首先，我们将对产普那霉素始旋链霉菌的代谢途径进行深入研究，
探究不同营养物质对其代谢通路的影响，并通过代谢产物的分析和酶活
性测定等方法，建立代谢通路的数学模型，为后续的代谢调控和条件优
化提供理论支持。

其次，我们将进行发酵条件优化研究，探究不同生长因子、培养基
成分、发酵温度、pH值等因素对产普那霉素的产量和质量的影响，并通
过响应面法等方法得到优化的发酵条件，以提高产普那霉素的产量和质量。

最后，我们将建立基于软测量的模型预测系统，通过对反应物浓度、酵母菌密度、溶氧量、pH值等多个关键指标的实时监测和分析，建立产
普那霉素始旋链霉菌发酵过程的软测量模型，并通过实验数据进行参数
优化和验证，实现对产普那霉素发酵生产过程的实时监测和故障诊断，
为实现产业化生产提供技术支持。

希望此研究能够为产普那霉素的生产和应用提供参考，并对微生物
发酵过程的深入理解和优化具有重要的意义。