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细胞分离常用方法细胞分离是生物学和医学研究中的基础技术之一，它可以将复杂的生物样品中的细胞分离出来，进而进行单细胞研究、细胞培养、细胞分析等进一步实验。
细胞分离的方法有很多种，可以根据研究目的和实验要求来选择合适的方法。
下面将介绍几种常用的细胞分离方法。
1.酶消化分离法：这种方法是通过使用特定的酶来消化组织或细胞间的连接物质，使细胞从组织中解离出来。
常用的酶有胰蛋白酶、胰酶、胶原酶、玉米胚胎蛋白酶等。
该方法适用于从组织中分离细胞，如从肝脏中分离肝细胞。
2.离心法：离心法是利用离心仪的离心力来分离细胞。
一般分为差速离心和密度梯度离心两种。
差速离心适用于分离不同大小和形状的细胞，如红细胞和白细胞的分离；而密度梯度离心适用于细胞的分子量和密度有明显差异的情况，如分离淋巴细胞、单核细胞等。
3.过滤法：过滤法是利用不同孔径的滤膜将样品中的细胞分离出来。
根据细胞大小的不同，可以选择不同孔径大小的滤膜，常见的有0.22μm的滤膜。
过滤法适用于细胞数目较多且大小相似的情况，如血液中的白细胞。
4.磁珠分离法：磁珠分离法是利用磁珠的特殊性质和磁场来分离细胞。
磁珠表面可以特异性地结合上其中一种特定分子，如抗体。
通过与标记有磁珠的抗体的结合，可以选择性地将含有特定表面标记的细胞分离出来。
这种方法可以用于对细胞表面标记的特异性分离，如肿瘤细胞的分离。
5.流式细胞术：流式细胞术是通过细胞在流动溶液中的特定速度和流体动力学效应来分离细胞。
这种方法需要将细胞样品悬浮在含有细胞染料的缓冲液中，经过专用的流式细胞术仪器进行分析。
根据细胞性状、大小和表面标记的不同，可以选择性地将不同细胞分离出来。
上述方法是几种常见的细胞分离方法，不同的方法适用于不同的细胞类型和实验要求。
除了上述方法外，还有其他一些特殊的细胞分离方法，如电泳法、免疫磁珠法等。
在选择细胞分离方法时，需要综合考虑细胞类型、实验目的和设备条件等因素，选择合适的分离方法。
分离细胞器的方法
离心法是一种分离细胞器的常用方法，通过离心将细胞器分离出来。
离心机是个常用的器械，可根据不同的离心速度和时间来分离不同大小和密度的细胞器。
超声破碎法也是一种分离细胞器的方法，通过超声波的作用将细胞器破碎，然后通过离心将细胞器分离出来。
密度梯度离心法是一种根据细胞器的密度差异来分离的方法，将细胞器悬浮在密度梯度离心后，不同密度的细胞器会在不同位置形成带状层，然后可以采集到不同位置的细胞器。
细胞分离的方法细胞分离是生物学和医学研究中的重要步骤，它可以帮助科研人员纯化和分离不同类型的细胞，为后续的实验和研究提供可靠的样本。
在细胞分离的过程中，我们需要根据不同的细胞类型和实验需求选择合适的分离方法。
本文将介绍几种常见的细胞分离方法，希望能为科研工作者提供一些参考和帮助。
首先，最常见的细胞分离方法之一是密度梯度离心。
这种方法利用不同细胞类型的密度差异来分离细胞。
通常情况下，我们会将细胞悬浮液均匀地加到离心管中，然后进行离心过程。
离心过程中，密度较大的细胞会沉积到离心管底部，而密度较小的细胞会浮在上层。
通过调整离心参数，我们可以将不同密度的细胞有效地分离开来。
其次，磁性珠分离法也是一种常用的细胞分离方法。
这种方法利用表面带有特定功能基团的磁性珠与细胞表面的特异性结合来实现对目标细胞的分离。
在实验中，我们可以选择合适的磁性珠，使其能够与目标细胞特异性结合，然后利用磁场将目标细胞与其他细胞有效地分离开来。
磁性珠分离法具有操作简便、高效率和高纯度的优点，因此在细胞分离领域得到了广泛的应用。
另外，流式细胞仪也是一种常用的细胞分离工具。
流式细胞仪通过对细胞悬浮液进行单个细胞的快速分析和分选，实现对不同细胞的高效分离。
在流式细胞仪中，细胞悬浮液经过激光器的激发后，会产生荧光信号和散射信号，通过检测这些信号的强度和特性，我们可以对细胞进行快速、准确的分析和分选。
流式细胞仪在细胞分离和分析方面具有高通量、高灵敏度和高精度的优点，因此被广泛应用于细胞生物学和免疫学研究领域。
除了上述的方法外，还有许多其他的细胞分离方法，如磁流体分离法、免疫磁珠分离法、微流控芯片分离法等。
在选择细胞分离方法时，我们需要根据实验的具体要求和目标细胞的特性来进行选择，以确保分离效果和分离纯度能够满足实验的需求。
总之，细胞分离是生物学和医学研究中不可或缺的重要步骤，选择合适的分离方法对于后续的实验和研究具有至关重要的意义。
希望本文介绍的几种常见的细胞分离方法能够为科研工作者提供一些参考和帮助，使他们能够更加准确、高效地进行细胞分离工作。
分离各种细胞器的方法是
有多种方法可以分离和纯化细胞器，其中一些常用的方法包括：
1. 差速离心法：通过不同细胞器的离心沉淀速度差异，将细胞破碎后的组织液经过一系列离心步骤，最终达到分离不同细胞器的目的。
2. 密度梯度离心法：将细胞破碎后的组织液通过离心在稀溶液和浓溶液的梯度之间分层，不同密度的细胞器会沉降到不同的位置，从而实现分离。
3. 断续梯度离心法：通过逐渐增加或减少离心机转速来做到细胞器的分离。
在不同速度下，不同细胞器会在不同离心机转速时分离出来。
4. 亲和层析法：利用特定化合物与细胞器的结构或功能特异性结合，通过将混合细胞器溶液通入预先固定某种化合物的树脂，然后洗脱其他细胞器，最终纯化目标细胞器。
5. 膜分离法：利用不同细胞器的膜特性，通过破碎和离心等步骤将膜分离出来，并进行纯化。
6. 免疫沉淀法：利用特异性抗体与特定抗原结合，使用磁珠或纳米粒子等辅助载体将目标细胞器选择性地沉淀下来。
7. 光学分选法：利用显微镜观察细胞器的形态和荧光标记，通过脉冲激光和光散射等方法，将不同细胞器分离出来。
这些方法可以根据需要的分离纯化细胞器的目的和细胞类型进行选择和结合使用。
细胞分离的方法
1. 离心分离法呀，就好比把不同的东西扔到一个高速旋转的大轮子上，重的就被甩到外面啦！像血液经过离心，红细胞、白细胞啥的不就分开了嘛。
2. 磁珠分离法呢，这就像是有魔法的小珠子哟，能把特定的细胞给吸过来！比如要分离某种带标记的细胞，磁珠一靠近，“嗖”的一下就吸住啦！
3. 流式细胞术分离法可是很厉害的哦！它就像是一个超级精准的筛选机器，能把你想要的细胞一个一个挑出来呢！比如想分离特定类型的免疫细胞，它就能准确做到。
4. 梯度离心分离法呀，就好像在爬一个有不同层次的楼梯，不同的细胞会停在不同的台阶上！像细胞器的分离就常用这个办法。
5. 免疫亲和分离法，那简直就是细胞的“好朋友识别器”呀！通过抗体去找到特定的细胞，然后紧紧抓住它们呢！
6. 贴壁分离法，嘿嘿，这就像有些细胞喜欢“贴墙站”一样，利用它们这个特点就能把它们分出来啦！培养细胞的时候经常会用哦。
7. 筛网分离法，不就像是用筛子筛东西嘛，让小的细胞通过，大的就留下啦！比如分离一些组织里的细胞。
8. 亲和层析分离法也很不错哟！它就像是给细胞准备的专属通道，只有特定的细胞能通过呢！
9. 电击分离法听起来好酷吧！给细胞来点电刺激，它们就会有不一样的表现，从而能分离开来啦！
我的观点结论就是：这些细胞分离的方法都各有神通，能帮助我们更好地研究和利用细胞呢！。
分离细胞器的方法是
分离细胞器的方法可以根据细胞器的特性和大小选用不同的技术，常用的方法包括：
1. 离心法：通过不同离心速度和时间的调整，根据细胞器的密度和大小差异，使细胞器在不同位置沉淀下来，从而实现细胞器的分离。
2. 超声破碎法：利用超声波的机械效应和热效应对细胞进行破碎，然后通过离心法将细胞器与碎片分离。
3. 圣戈浦瑞离心法：通过在高浓度的蔗糖溶液中离心，不同细胞器会在不同浓度蔗糖溶液的不同层次上沉淀，从而分离细胞器。
4. 差速离心法：根据细胞器的大小、形状和密度等特性，设置不同的转速和离心时间，利用离心的力学作用使细胞器在梯度密度离心管中分层沉淀下来。
5. 亲和纯化法：利用特定的抗体或亲和剂与目标细胞器结合，然后通过洗涤和离心等操作将目标细胞器分离出来。
6. 高压细胞破碎法：通过高压力将细胞破碎，然后通过离心将细胞器与碎片分离。
这些方法可以根据不同的需要进行组合使用，以获得特定细胞器的纯度和活性。
细胞核的分离与鉴定
细胞核是细胞中的重要组成部分，它包含了细胞所有的遗传信息。
因此，分离和鉴定细胞核对于研究细胞生物学极为重要。
本文将介绍细胞核的分离和鉴定的方法。
1. 利用离心法分离细胞核
离心法是将混合物沉淀分离出不同密度组分的方法。
分离细胞核的常见离心法有两种：
(1) 不同速度离心分离法：此方法中，首先将细胞用生理盐水洗涤后，用一定浓度的卵白酶消化除了细胞表面的蛋白质。
接下来，用卵白酶抑制剂中和卵白酶的作用，以避免对细胞核的影响。
然后，将细胞用离心管离心，分离出胞浆和细胞核，离心速度根据细胞类型和实验目的来定。
(2) 密度梯度离心分离法：此方法中，首先制备密度梯度液，将细胞悬液添加到密度梯度液上层，离心分离，从而得到不同密度的细胞组分。
具体实验步骤可参考文献。
染色质是细胞核中的主要成分，其中包括染色体。
因此，利用染色体分离技术可以鉴定细胞核。
常见的染色体分离方法有两种：
(1) 干切片染色体分离法：此方法中，将细胞用生理盐水洗涤，再用一定比例的低渗盐溶液或isotonic KCl溶液处理，使其肿胀和膨胀，然后涂在玻璃片上，用过的废染液或乙醇固定。
接着，将涂有细胞的玻片在高温下加热，使其变薄，再进行染色和观察。
(2) 体外染色体分离法：此方法中，取同种细胞制备成细胞核悬液，再加入5倍体积的低渗盐溶液，使染色质膨胀，不同染色体在离心过程中分离。
然后，制备成干片，进行染色和观察。
细胞器的分离方法
细胞器的分离主要分为物理法和化学法两类。
1、物理法：该方法主要是通过改变细胞内外环境的渗透压，使细胞器发生变形或破裂，使细胞器和细胞质分离。
其中普遍采用的有浓缩法、磁选法、离心法和拆离弹簧杆法等。
2、化学法：利用人工合成的表面活性剂，改变细胞表面电荷，使细胞器和细胞质分离。
其中普遍采用的有抑制剂法、蛋白质酶共沉淀法、离子交换法、反相色谱法、聚丙烯酰胺树脂快速层析法等。
总的来说，细胞器的分离依赖于细胞内外环境的变化，从而起到分离细胞器和细胞质的作用。
只要根据不同的细胞类型和要求，正确选择适当的分离方法，就可以获得足够纯度的细胞器样品。
分离肾小管细胞的方法主要有以下几种：
1. 酶分离法：利用特定的酶分解细胞间质的蛋白质，从而将肾小管细胞从组织中分离出来。
常用的酶包括胶原酶、胰蛋白酶、链霉素酶等。
2. 化学分离法：通过改变细胞表面的电荷或化学性质，使肾小管细胞与其他细胞分离。
常用的化学分离法包括离心法、密度梯度离心法等。
3. 筛网分离法：通过不同孔径的筛网将肾小管细胞与其他细胞分离。
这种方法适用于分离较大的肾小管细胞。
4. 显微解剖分离法：通过显微镜观察和操作，将肾小管细胞逐个分离出来。
这种方法操作较繁琐，但可获得较为纯净的肾小管细胞。
5. 流式细胞仪分离法：利用流式细胞仪的特异性抗体标记肾小管细胞，并通过荧光信号将其与其他细胞分离。
该方法具有快速、准确、高通量的优点。
6. 免疫分离法：利用特异性抗体与肾小管细胞表面抗原的结合力，将肾小管细胞从组织中分离出来。
常用的免疫分离法包括免疫磁珠法、免疫亲和柱法等。
以上方法各有优缺点，应根据实验需求和实际情况选择适合的分离方法。
淋巴细胞分离方法淋巴细胞是免疫系统中的一类重要细胞，它们在保护机体免受病原体和其他外部侵袭物的侵害中起着重要作用。
为了研究和理解淋巴细胞的功能和特性，需要从体内样本中分离出淋巴细胞。
本文将介绍几种分离淋巴细胞的常用方法。
1. 密度梯度离心法密度梯度离心法是最常用的分离淋巴细胞的方法之一。
该方法基于淋巴细胞与其他细胞（如红细胞和中性粒细胞）在离心过程中在不同密度梯度下沉降速度的不同。
一种常用的密度梯度离心介质是Ficoll-Hypaque，它是一种高渗透压溶液。
将全血或其他样本与Ficoll-Hypaque混合后离心，淋巴细胞会沉积在密度梯度下层，其他细胞则沉积在上层或底层。
通过取得下层液体，可分离得到富含淋巴细胞的悬浮液。
2. 黏附法黏附法是一种常用的非离心方法。
它基于淋巴细胞与塑料或玻璃表面的亲和性差异。
将样本与普通培养皿等容器接触，淋巴细胞会黏附在容器表面，而其他细胞则较少或不黏附。
在培养过程中，淋巴细胞会逐渐扩增，并可以通过洗涤等步骤分离得到。
3. 磁珠法磁珠法是一种利用磁性特性分离淋巴细胞的方法。
通过将淋巴细胞表面标记上磁珠特异抗体，使其与抗体携带的磁珠结合，然后通过磁场使磁珠和与其结合的淋巴细胞沉降在一侧，从而分离出淋巴细胞。
这种方法可以非常精确地分离出特定类型的淋巴细胞。
4. 细胞排序法细胞排序法是一种高级的分离淋巴细胞的方法，它基于流式细胞术或荧光激光共聚焦显微镜等技术。
这种方法通过在淋巴细胞表面标记上荧光染料或抗体，然后使用器械和设备进行精确的细胞分选。
这种方法可以快速准确地分离出不同类型的淋巴细胞，并可以进一步进行功能和表型分析。
尽管以上方法在分离淋巴细胞中非常有效，但每种方法都有其局限性。
例如，密度梯度离心法在操作过程中可能会对淋巴细胞产生一定的损伤；黏附法可能对特定类型的淋巴细胞选择性较差；磁珠法和细胞排序法则需要较为复杂的设备和技术。
因此，在具体选择方法时需要综合考虑研究的目的、操作难度和资源条件等因素。
细胞分离常用方法
一、悬浮细胞的分离方法
组织材料若来自血液、羊水、胸水或腹水的悬液材料，最简单的方法是采用1000r/min的TD4A低速离心机离心10分钟，若悬液量大，可适当延长离心时间，但速度不能太高，延时也不能太长，以避免挤压或机械损伤细胞，离心沉淀用无钙、镁PBS洗两次，用培养基洗一次后，调整适当细胞浓度后再分瓶培养，若选用悬液中某些细胞，常采用离心后的细胞分层液，因为，经离心后由于各种细胞的比重不同可在分层液中形成不同层，这样可根据需要收获目的细胞。
不同比重的分层液的配制和具体分离方法详见淋巴细胞分离培养的章节。
二、实体组织材料的细胞分离方法
对于实体组织材料，由于细胞间结合紧密，为了使组织中的细胞充分分散，形成细胞悬液，可采用机械分散法(物理裂解)和消化分离法。
(一)机械分散法
所取材料若纤维成分很少，如脑组织，部分胚胎组织可采用剪刀剪切、用吸管吹打分散组织细胞或将已充分剪碎分散的组织放在注射器内(用九号针)，使细胞通过针头压出，或在不锈钢纱网内用钝物压挤(常用注射器钝端)使细胞从网孔中压挤出。
此法分离细胞虽然简便、快速，但对组织机械损伤大，而且细胞分散效果差。
此法仅适用于处理纤维成分少的软组织。
(二)消化分离法
组织消化法是把组织剪切成较小团块(或糊状)，应用酶的生化作用和非酶的化学作用进一步使细胞间的桥连结构松动，使团块膨松，由块状变成絮状，此时再采用机械法，用吸管吹打分散或电磁搅拌或在摇珠瓶中振荡，使细胞团块得以较充分的分散，制成少量细胞群团和大量单个细胞的细胞悬液，接种培养后，细胞容易贴壁生长。
1、酶消化分离法
酶消化分离法常采用胰蛋白酶和胶原酶，其分离方法如下：
(1)胰蛋白酶分散技术
胰蛋白酶(简称胰酶)是广泛应用的消化剂。
胰蛋白酶是一种胰脏制品，对蛋白质有水介作用，主要作用于赖氨酸或精氨酸相连接的肽键，使细胞间质中的蛋白质水介而使细胞分散开，在常用的蛋白酶中由于产品的活力和纯度不同，对细胞的消化能力也不同，胰蛋白酶对细胞的作用，取决于细胞类型、酶的活力、配制的浓度、消化的温度、无机盐离子、pH以及消化时间的长短等。
①细胞类型胰蛋白酶适于消化细胞间质较少的软组织,能有效地分离肝、肾、甲状腺、羊膜、胚胎组织、上皮组织等。
而对含结缔组织较丰富的组织,如乳腺、滑膜、子宫、纤维肉瘤、肿瘤组织等就无效，但若与胶原酶合用,就能增加其对组织的分离作用。
②酶的活力市售的胰蛋白酶,其活力都经过测定而有效，但配制时必须新鲜，需保存在低温冰箱中，消化时的pH 和温度都要适宜，否则会影响活力，细胞的分散直接与酶的活力有关，最终使用活力为1:200或1:250，56℃pH8.0时活力最强。
该酶为粉剂，保藏时要防潮，室内温度不宜过高，保存时间不能太长，若粉剂结团块,说明该部分受潮或失效。
③酶的浓度胰蛋白酶一般采用的浓度为0.1%-0.25%(活力1:200或1:250),但遇到难消化的组织时，浓度可适当提高，消化时间适当延长。
浓度高对细胞有毒性，而较低浓度的胰蛋白酶在培养液中可促进细胞的增殖，若培养液中加入血清，其少量胰蛋白酶可被血清中抗胰蛋白酶因子所清除。
④温度一般认为胰蛋白酶在56℃时活性最强，但由于对细胞有损害而不能被采用，常使用的温度为37℃，通常在37℃进行消化比室温作用快。
⑤pH pH8~pH9是胰蛋白酶活力适宜范围，但随碱性的增加其活力也随之减少，活性强分散快，细胞也容易被消化下来，消化分离细胞时PH只能选用7.6～8.0之间，否则对细胞有损伤。
⑥无机盐离子若用含有钙和镁的盐类溶液来配制胰蛋白酶时，可以发生抑制胰蛋白的消化作用。
因此,在配制时应采用无钙镁离子的PBS配制。
⑦消化时间如果细胞消化时间过长，可以损害细胞的呼吸酶，从而影响细胞的代谢，一般消化时间为20分钟为宜，冷消化时使用低浓度消化液，于4℃过夜也可。
分离方法如下：
①过夜冷消化将取得的组织用Hanks液洗三次，剪成碎块大小为4毫米左右，用Hanks液洗2~3次以除去血球和脂肪组织，再加入0.25%的胰蛋白酶，摇匀后放4℃过夜，次日再用Hanks液洗涤，弃去上清，共洗2~3次，然后，加入少量营养液吹打分散，细胞计数，按适当的浓度分瓶培养。
②多次提取消化法多次提取消化法有以下三种：
热消化多次提取将剪碎的细胞块加入0.25%胰蛋白酶37℃水浴中消化15~20分钟，然后经洗涤后用营养液分散制成细胞悬液，按合适的浓度分瓶培养，然后将留下的未彻底消化的组织按上述方法操作，再消化提取细胞。
冷消化多次提取方法同上，只是消化温度为4℃。
先热消化后冷消化将组织块先用胰蛋白酶于37℃下消化20分钟经洗涤后用营养液分散，制成悬液，剩余未消化的小组织块经洗涤后用胰酶于4℃下过夜，次日再提取细胞，分散成悬液，分瓶培养。
(2)胶原酶(Collagenase)消化法
胶原酶是一种从细菌中提取出来的酶，对胶原有很强的消化作用。
适于消化纤维性组织、上皮组织以及癌组织，它对细胞间质有较好的消化作用，对细胞本身影响不大，可使细胞与胶原成分脱离而不受伤害。
该酶分离效果好，即使有钙、镁离子存在仍有活性，故可用PBS和含血清的培养液配制，即操作简便又可提高细胞成活率，最终浓度200u/mL或0.1～0.3mg/mL。
此酶消化作用缓和，无需机械振荡，但胶原酶价格较高，大量使用将增加实验成本。
经过胶原酶消化后的上皮组织，由于上皮细胞对酶有耐受性，可能有一些上皮细胞团块尚未被完全消化开。
成小团块的上皮细胞比分散的单个上皮细胞更易生长，因此不必要再进一步消化处理。
鉴于胰蛋白酶和胶原酶的生物学活性(见表4-1)和在不同浓度下消化各种组织小块所需的时间(小时)有差异(见表4-2)，以及两者价格不等，有人采用胶原酶与胰蛋白酶并用，同时还可加透明质酸酶(对细胞表面糖基有作用)，采用两者的联合消化作用，对分散大鼠和兔肝、癌组织非常有效。
表4-1 胰蛋白酶和胶原酶生物活性的差别
项目胰蛋白酶胶原酶
消化特性适用于消化软组织适用于消化纤维多的组织
用量 0.01%～0.5% 0.1～0.3mg/mL(200u/mL)
消化时间 0.5～2小时(小块) 1～12小时
pH 8～9 6.5～7.0
作用强度强烈缓和
细胞影响时间过长有影响无大影响
血清、钙、镁离子有影响无影响
表4-2 胰蛋白酶和胶原酶在不同温度下消化各种组织小块时所需时间(小时)(0.5～1cm3)
酶种类较硬组织软组织
4℃室温 37℃ 4℃室温 37℃
胰蛋白酶(0.25%) 24～48 1～6 1～2 12～24 1～2 0.5～1
胶原酶(200u/mL) 24 6 6.5 12 3 0.25
两者联合(对冲) 12～46 12～24 4～12 12～24 6～12 1～2
除上述两种最常用的消化酶外，还有链霉蛋白酶、粘蛋白酶、蜗牛酶、弹性蛋白酶、木瓜蛋白酶，近年来，还有一种从灰霉菌中提取的Pronase新酶分散细胞更佳。
2、非酶消化法(EDTA消化法)
EDTA是一种非酶消化物，又称螯合剂或Versene，全名为乙烯二胺四乙酸。
常用不含钙、镁离子的PBS配成0.02%的工作液，对一些组织，尤其是上皮组织分散效果好，该化学物质能与细胞上的钙、镁离子结合形成螯合物，利用结合后的机械力使细胞变圆而分散细胞或使贴壁细胞从瓶壁上脱离，缺点是细胞易裂解或贴壁细胞从瓶壁上脱离时呈片状，有团块，常不单独使用，但可与胰蛋白酶混合使用(1:1或2:1)，不仅利于细胞脱壁又利于细胞分散，可降低胰酶的用量和毒性作用。
消化分离法的操作步骤：
(1)剪切把组织块剪碎，呈1~5mm3大小的组织块。
(2)加液漂洗将碎组织块在平皿(或三角烧瓶)中用无钙镁PBS洗2-3次(采用倾斜，自然沉降法)。
(3)消化加入消化液(胰蛋白酶或胶原酶或EDTA)于37℃水浴中作用适当时间(中间可轻摇1~2次)，若组织块膨松呈絮状可终止，若变化不大可更换一次消化液，继续消化直至膨松絮状为止。
胰蛋白酶消化时间不宜过长。
(4)弃去消化液采用倾斜自然沉降或低速离心法尽量弃去消化液。
(5)漂洗将含有钙、镁离子的培养基沿瓶壁缓缓加入，中止消化反应，采用漂洗法洗2-3次后，加入完全培养基。
(6)机械分散采用吸管吹打或振荡法，使细胞充分散开后用纱网或3~4层无菌纱布过滤后分瓶培养，若要求不高可采用倾斜自然沉降5~10分钟，吸上层细胞悬液进行分瓶培养。
