核酸环介导等温扩增技术原理和引物设计和实例
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核酸等温扩增技术及其应用一、引言核酸等温扩增技术是一种新兴的分子生物学技术,其在生物医学研究、临床诊断和基因工程等领域具有重要应用价值。
本文将详细介绍核酸等温扩增技术的原理、方法和应用。
二、核酸等温扩增技术的原理核酸等温扩增技术是一种在恒温条件下进行的核酸扩增方法,通过利用逆转录酶和DNA聚合酶的活性,实现核酸的扩增。
其基本原理是通过逆转录酶将RNA模板转录成互补的DNA链,然后利用DNA聚合酶在恒温条件下合成新的DNA链。
这种等温扩增方法不需要复杂的温度变化,且具有较高的特异性和敏感性。
三、核酸等温扩增技术的方法核酸等温扩增技术主要包括RT-LAMP(逆转录环介导等温扩增法)和RPA(等温扩增法)。
RT-LAMP方法利用4-6个特异性的引物,在同一温度下通过逆转录酶和DNA聚合酶的协同作用,在短时间内扩增目标核酸。
RPA方法则利用DNA聚合酶和DNA单链结合蛋白在等温条件下,通过引物结合、DNA解旋、DNA聚合等步骤,实现核酸的扩增。
四、核酸等温扩增技术的应用1. 医学诊断:核酸等温扩增技术在医学诊断中有广泛应用。
例如,可以通过核酸等温扩增技术检测病毒、细菌和真菌等病原体,快速确认感染病原体的种类和数量,为临床治疗提供依据。
此外,核酸等温扩增技术还可以用于检测肿瘤标志物、遗传病突变等,为早期癌症和遗传病的筛查提供技术支持。
2. 食品安全检测:核酸等温扩增技术可以应用于食品安全检测领域。
例如,可以利用核酸等温扩增技术检测食品中的病原菌、转基因成分和食品中的传染性病毒等。
这种技术具有快速、灵敏和高效的特点,可以为食品安全监管提供重要依据。
3. 环境监测:核酸等温扩增技术在环境监测中也有广泛应用。
例如,可以利用核酸等温扩增技术检测水体、土壤和空气中的微生物,了解环境中的微生物多样性和污染程度。
此外,核酸等温扩增技术还可以用于环境污染源的追踪和监测。
4. 生物工程:核酸等温扩增技术在生物工程领域也有重要应用。
lamp原理和应用情况
LAMP 原理:
环介导等温扩增法(loop-mediated isothermal amplification,LAMP),是一种新型的核酸扩增方法,其特点是针对靶基因的6个区域设计4种特异引物,在链置换DNA聚合酶(Bst DNA polymerasc)的作用下,60--65℃恒温扩增,15-60rain左右即可核酸扩增,效率可达109~10m个数量级,具有操作简单、特异性强、产物易检测等特点。
在DNA合成时,从脱氧核酸三磷酸基质(dNTPs) 中析出的焦磷酸根离子与反应溶液中的镁离子反应,产生大量焦磷酸镁沉淀,呈现白色。
因此,可以把浑浊度作为反应的指标,只用肉眼观察白色浑浊沉淀,就能鉴定扩增与否,而不需要繁琐的电泳和紫外观察。
由于LAMP反应不需要PCR 仪和昂贵的试剂,有着广泛的应用前景。
LAMP法的应用领域:
灵活运用能够简单、快速地进行基因扩增的特征,在各个领域得到广泛应用
食品领域:食物中毒致病菌的检测,食品的卫生管理,食物中毒的防止;
临床领域:病原菌、病毒的检测及鉴定,通过SNP多态性分型决定用药量;
农业领域:植物病害的早期发现及蔓延防止,转基因作物的检测;
环境领域:环境、水中病原微生物的检测;
工业领域:工业产品用大量DNA的生产成为可能;
畜牧业领域:雌雄性别判断,病原微生物的检测,遗传病的发现.。
环介导等温扩增技术及其在病原微生物检测中的应用循环介导温扩增技术(Cycling Primer Extension, CPE)是一种高效的分子生物学技术,主要用于基因、控制序列、表达调控物质和相关蛋白质之间的相互作用分析。
它常被应用于病原性微生物检测以及病毒基因分子变异分析等方面。
一、循环介导温扩增技术的原理循环介导温扩增技术是一种改良的PCR技术,它能将DNA模板扩增成上百万亿倍左右的数量,以满足分子生物学研究的需要。
该技术的基本原理是将待检测模板上特异性引物结合,并施加高温、低温及中间温度等三种温度环境,在低温下用引物扩增模板,并在特定温度中支配引物限制片段扩增,最后在v高温环境中扩增产物释放,从而通过三种温度环境积累构建双螺旋样的DNA桥梁而达到扩增的目的。
二、循环介导温扩增技术的优势(1)快速、灵敏:循环介导温扩增技术利用低温度和高温度振荡循环,大大提高了扩增速度,并且增强了信号效率,可以充分利用模板,进而提高检测灵敏度。
(2)省时省钱:循环介导温扩增技术使用到的耗材比PCR来得少,扩增速度更快,是一种省时省钱的技术。
(3)容易操作:CPE程序简单,操作过程相对PCR要简单,与实验室常规仪器一般可以完成,且实验室中的反应条件也相对简单,不存在PCR实验中的活性危险,也不存在贴壁细菌和操作技术考验棘手的问题。
三、循环介导温扩增技术在病原微生物检测中的应用(1)病毒检测:CPE技术可以快速灵敏地检测SARS-CoV-2病毒,从而帮助监测新型冠状病毒的传播趋势。
(2)细菌检测:CPE技术可以检测各种细菌产生的毒力因子,如真菌毒素和E. Coli有毒因子。
(3)NDM-1耐药基因及AMR的表型检测:NDM-1耐药基因和AMR 抗药菌的表型检测,可以快速确定环境中微生物的耐药基因断裂和AMR抗药菌表型,为后续的抗药策略的分析提供了依据。
四、总结循环介导温扩增技术灵活、方便,既可以用于病毒检测,也可以用于细菌检测,此外,它还可以用于耐药基因及抗药性表型的检测。
环介导等温扩增技术原理引言随着生物技术的快速发展,分子生物学中的核酸扩增技术逐渐成为研究的重要工具之一。
而环介导等温扩增技术作为一种新的核酸扩增方法,具有快速、简便、高效等优点,在生物医学研究、临床诊断、食品安全等领域发挥着重要的作用。
等温扩增技术的背景传统的PCR(聚合酶链式反应)技术是通过循环升温、降温的方法来完成DNA扩增过程。
然而,该技术要求精确的温度控制,对设备和试剂的稳定性要求很高。
此外,传统PCR扩增过程中存在高温引起的扩增产物降解等问题。
因此,研究人员不断寻求一种更为简便、高效的核酸扩增方法。
等温扩增技术由此应运而生。
等温扩增技术的原理等温扩增是指在恒定的温度下,通过酶的作用,在核酸模板的辅助下,使扩增产物逐渐积累的过程。
其中,环介导等温扩增技术作为一种新兴的等温扩增方法,与其他方法相比具有更高的特异性和敏感性。
环介导等温扩增技术的反应体系环介导等温扩增技术通常包括三个主要组分:核酸模板、引物和酶。
核酸模板核酸模板是等温扩增的起始物质,可以是DNA或RNA。
在反应过程中,核酸模板会经历多次复制,从而实现扩增。
引物引物是用来引导扩增反应的小片段核酸序列。
在环介导等温扩增技术中,引物会与核酸模板序列互补结合,作为复制的起始点。
酶环介导等温扩增技术中主要使用的酶是DNA环介导聚合酶(Bst DNA polymerase)。
该酶具有良好的耐热性,可以在高温条件下活性稳定,并且具有DNA依赖性DNA聚合酶和脱氧核苷酸酶活性。
环介导等温扩增技术的具体过程环介导等温扩增技术主要通过以下几个步骤完成扩增过程:1. 首先,将反应体系中的DNA模板加热至解链温度,使DNA模板解链成两条单链。
2. 然后,引物与DNA模板序列互补结合,形成引物-模板复合物。
3. 酶(Bst DNA polymerase)结合在引物-模板复合物上,并且开始在DNA模板的3’端进行DNA合成。
该酶具有脱氧核苷酸酶活性,可以在DNA合成过程中消除RNA、DNA杂质。
环介导等温扩增技术检测小苍兰花叶病毒小苍兰花叶病毒是一种重要的植物病毒,对小苍兰的生长发育和繁殖均有影响。
因此,准确、快速地检测小苍兰花叶病毒对于保护和促进小苍兰产业的发展非常重要。
本文介绍了一种基于环介导等温扩增技术的小苍兰花叶病毒检测方法。
该方法具有快速、易操作、灵敏度高、特异性好等优点,适用于小苍兰花叶病毒的快速检测和监测。
一、环介导等温扩增技术的原理环介导等温扩增技术是一种新兴的核酸扩增技术,其基本原理是利用引物和环介导酶作用引起DNA或RNA链的等温扩增。
环介导酶是一种新型的酶,可以结合单链DNA或RNA末端,使其形成一个三维的环结构,从而在链的延长方向上持续不断地合成新的DNA或RNA链。
与PCR技术相比,环介导等温扩增技术无需进行多次温度变化,温度保持在65℃左右即可完成扩增反应,因此操作简便,适用于快速、大规模的核酸扩增。
1、建立环介导等温扩增体系本研究利用Oas-RdRp引物和环介导酶的结合作用进行小苍兰花叶病毒的扩增检测。
扩增体系中包括:环介导酶、Oas-RdRp引物、dTTP、dCTP、dGTP、dATP、MgCl2、荧光素分子探针、荧光素释放剂、样品DNA。
具体反应体系如下:环介导酶 25 UOas-RdRp引物0.8 μmol/LdTTP 0.4 mmol/LdCTP 0.4 mmol/LdGTP 0.4 mmol/LdATP 0.4 mmol/LMgCl2 8 mmol/L荧光素分子探针0.1 μmol/L荧光素释放剂0.5 μmol/L样品DNA 1 μL2、优化反应条件反应过程中,可以通过优化反应时间、温度、引物浓度、样品DNA浓度等参数来提高扩增效率和特异性。
本研究通过对反应时间和温度的优化,确定最优反应条件为65℃下反应40 min。
为了验证环介导等温扩增方法的准确性和特异性,本研究还建立了PCR方法检测扩增产物。
PCR反应体系中包括:Taq DNA聚合酶、Oas-RdRp引物、dNTP混合溶液、MgCl2、Taq 缓冲液、ddH2O、扩增产物。
核酸环介导等温扩增技术原理及引物设计与实例
1.LAMP引物的设计:
LAMP引物的设计主要是针对靶基因的六个不同的区域,基于靶基因3’ 端的F 3c、F2c和Flc区以及5’ 端的Bl、B2和B3区等6个不同的位点设计4种引物。
FIP(Forward Inner Primer):上游内部引物,由F2区和F1C区域组成,F2区与靶基因3’端的F2c区域互补,F1C区与靶基因5’端的Flc区域序列相同。
F3引物:上游外部引物(Forward Outer Primer),由F3区组成,并与靶基因
的F3c区域互补。
BIP引物:下游内部引物(Backward Inner Primer ),由B1C和B2区域组成,B2区与靶基因3’ 端的B2c区域互补,B1C域与靶基因5’端的Blc区域序列相同。
B3引物:下游外部引物(Backward Outer Primer ),由B3区域组成,和靶基
因的B3c区域互补。
如图所示:
2.扩增原理
60—65℃是双链DNA复性及延伸的中间温度,DNA在65℃左右处于动态平衡状态。
因此,DNA在此温度下合成是可能的。
利用4种特异引物依靠一种高活性链置换DNA聚合酶。
使得链置换DNA合成在不停地自我循环。
扩增分两个阶段。
第1阶段为起始阶段,任何一个引物向双链DNA的互补部位进行碱基配对延伸时,另一条链就会解离,变成单链。
上游内部引物FIP的F2序列首先与模板F2c 结合(如图B所示),在链置换型DNA聚合酶的作用下向前延伸启动链置换合成。
外部引物F3与模板F3c结合并延伸,置换出完整的FIP连接的互补单链(如图C 所示)。
FIP上的F1c与此单链上的Fl为互补结构。
自我碱基配对形成环状结构(如图C所示)。
以此链为模板。
下游引物BIP与B3先后启动类似于FIP和F3的合成,形成哑铃状结构的单链。
迅速以3’末端的Fl区段为起点.以自身为模板,进行DNA合成延伸形成茎环状结构。
该结构是LAMP基因扩增循环的起始结构。
第2阶段是扩增循环阶段。
以茎环状结构为模板,FIP与茎环的F2c区结合。
开始链置换合成,解离出的单链核酸上也会形成环状结构。
迅速以3’末端的B1区段为起点,以自身为模板。
进行DNA合成延伸及链置换.形成长短不一的2条新茎环状结构的DNA,BIP引物上的B2与其杂交。
启动新一轮扩增。
且产物DNA 长度增加一倍。
在反应体系中添加2条环状引物LF和LB,它们也分别与茎环状结
构结合启动链置换合成,周而复始。
扩增的最后产物是具有不同个数茎环结构、不同长度DNA的混合物。
且产物DNA为扩增靶序列的交替反向重复序列。
3 LAMP的特点
LAMP与以往的核酸扩增方法相比具有如下优点:
(1)操作简单,LAMP核酸扩增是在等温条件下进行,对于中小医院只需要水浴锅即可,产物检测用肉眼观察或浊度仪检测沉淀浊度即可判断。
对于RNA的扩增只需要在反应体系中加入逆转录酶就可同步进行(RT.LAMP),不需要特殊的试剂
及仪器。
(2)快速高效,因为不需要预先的双链DNA热变性.避免了温度循环而造成
的时间损失.核酸扩增在l h内均可完成,添加环状引物后时间可以节省1/2,多数情况在20。
30 rain均可检测到扩增产物。
且产物可以扩增至109倍,达0.5 mg/mL.应用专门的浊度仪可以达到实时定量检测。
(3)高特异性,由于是针对靶序列6个区域设计的4种特异性引物。
6个区域中
任何区域与引物不匹配均不能进行核酸扩增。
故其特异性极高。
(4)高灵敏度,对于病毒扩增模板可达几个拷贝,比PCR高出数量级的差异。
缺点:由于LAMP扩增是链置换合成,靶序列长度最好在300 bp以内。
>500 bp则较难扩增。
故不能进行长链DNA的扩增。
由于灵敏度高。
极易受到污染而产
生假阳性结果。
故要特别注意严谨操作,以及在产物的回收鉴定、克隆、单链分离
方面均逊色于传统的PCR方法。
4 引物设计实例
LAMP引物设计的在线网站(http://primerexplorer.jp/e/),只要导入靶基因就能自
动生成成组引物。
以某一微生物的鞭毛基因为例讲解一下LAMP相物设计的过程:首先单击浏览按钮选择靶基因序列文件,靶序列默认的是小于2 2 kbp。
支持三个类型的文件,普通文本格式(仅含序列), FASTA格式和GenBank 格式文件。
第二,从下面三个选项中选择定参数设定(引物设计条件)条件。
基于GC含量的自动判断, 起始的参数是特定的:如果GC含量小于或等于45%.,则选取AT 丰度高的区,如果GC含量高于60%,则选取GC丰度高的区,其它情况是标准设定
状态。