还原糖注意事项
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3,5-二硝基水杨酸法测定还原糖的注意事项
3,5-二硝基水杨酸法是一种常用的测定还原糖的方法,以下是其注意事项:
1. 样品准备:必须使用无色、透明的试样,可以用去离子水稀释样品以消除悬浮物和色素的干扰。
2. 对氨基苯酚的要求:应选择高纯度的对氨基苯酚,以确保测定结果的准确性。
3. 硝化试剂:应使用新鲜的3,5-二硝基水杨酸硝化试剂,并在使用前进行品质检测,以确保试剂的活性和稳定性。
4. 硝化温度:硝化试剂的反应温度应控制在25℃左右,过高或过低的温度都会影响试剂的反应效果。
5. 反应时间:硝化试剂和还原糖的反应时间应严格控制,过短或过长的反应时间都会影响测定结果的准确性。
6. 仪器校准:使用分光光度计进行测定时,需要进行仪器的校准和空白对比实验,以确保测定结果的可靠性。
7. 操作注意:在测定过程中,应严格按照实验操作规程进行,避免误操作和液体溅出等情况的发生。
8. 知识储备:在进行3,5-二硝基水杨酸法测定还原糖之前,必须对实验方法有一定的了解和储备相关的实验技能,以确保实验的成功和准确性。
还原糖检测注意事项1.费林试剂甲液和乙液应分别贮存,用时才混合,否则酒石酸钾钠铜络合物长期在碱性条件下会慢慢分解析出氧化亚铜沉淀,使试剂有效浓度降低。
2.滴定必须是在沸腾条件下进行,其原因一是加快还原糖与Cu2+的反应速度;二是亚甲基蓝的变色反应是可逆的,还原型的亚甲基蓝遇空气中的氧时会再被氧化为氧化型。
此外,氧化亚铜也极不稳定,易被空气中的氧所氧化。
保持反应液沸腾可防止空气进入,避免亚甲基蓝和氧化亚铜被氧化而增加消耗量。
3.滴定时不能随意摇动锥形瓶,更不能把锥形瓶从热源上取下来滴定,以防止空气进入反应溶液中。
4.本方法测定的是一类具有还原性质的糖,包括葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖等,只是结果用葡萄糖或其他转化糖的方式表示,所以不能误解为还原糖=葡萄糖或其他糖。
但如果已知样品中只含有某一种糖,如乳制品中的乳糖,则可以认为还原糖=某糖。
5.分别用葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖标准品配制标准溶液分别滴定等量已标定的费林氏液,所消耗标准溶液的体积有所不同。
证明即便同是还原糖,在物化性质上仍有所差别,所以还原糖的结果只是反映样品整体情况,并不完全等于各还原糖含量之和。
如果已知样品只含有某种还原糖,则应以该还原糖做标准品,结果为该还原糖的含量。
如果样品中还原糖的成分未知,或为多种还原糖的混合物,则以某种还原糖做标准品,结果以该还原糖计,但不代表该糖的真实含量。
6.乙酸锌可去除蛋白质、鞣质、树脂等,使它们形成沉淀,经过滤除去。
如果钙离子过多时,易与葡萄糖、果糖生成络合物,使滴定速度缓慢;从而结果偏低,可向样品中加入草酸粉,与钙结合,形成沉淀并过滤。
)A、裵林试剂的最终标定及样品的最终滴定在1 min内完成.7.配制葡萄糖标准溶液应非常准确.一定控制好滴定速度.每班测定一次C标,将浓度值填写在记录表格中。
滴定终点则为兰色褪去出现明亮颜色(如亮红\亮黄色)8、碱性酒石酸铜甲液中的硫酸铜的铜离子为此化学反应定量的标物,次甲基兰为氧化还原指示剂(氧化型为蓝色、还原型为无色)9、此实验为什么要在碱性条件下进行,主要是在酸性条件下,还原糖会形成酯(不具有氧化性或氧化性不强的含氧酸如乙酸)、有机酸(如被硝酸氧化),样液中的二糖及多糖与淀粉会水解成还原糖,结果可想而知。
食品中还原糖的测定测定食品中还原糖:探索简便而可靠的方法。
还原糖的测定是一种评估食品中糖含量的方法,是食品中糖分含量分析的重要方法之一。
以下是关于还原糖的测定的详细介绍:一、原理还原糖是指以葡萄糖、蔗糖、果糖为主要组成成分的糖类化合物,其可以产生黄色暗褐色的褐醛酚酸—硝酸还原试剂,即硝酸铁还原剂。
在酸性水溶液中,硝酸铁还原剂释放出的氧原子簇会与还原糖发生物化反应,并生成一些褐色的氧化物,正因为这个原因,硝酸铁还原糖又称为“褐醛酚酸—硝酸法”。
二、试验条件和操作步骤1.试剂硝酸铁还原剂(1)制备硝酸铁试剂:将适量硝酸铁粉末溶于等容的醋酸溶液中,即可得到硝酸铁试剂。
(2)蒸馏剂:用蒸馏水调节测定液的稀释比例。
2.样品处理(1)4倍稀释:将100毫升食品样品加入400毫升蒸馏水中,按A1/B1(A1表示样品,B1表示蒸馏水)的比例稀释。
(2)添加试剂:将上述4倍稀释的液体加入100毫升硝酸铁试剂中混合;(3)反应和空白对照:调节稀释液量200毫升,将A2/B2比例稀释后,用剩余空白对照硝酸铁试剂做同样处理;(4)温度和反应时间:反应时,温度控制在30~35℃,反应时间控制在5~10分钟内。
三、测定结果分析(1)观察反应和空白对照:反应时间结束后,用460浓度的碘酒检查反应液的颜色,若比空白对照深,表示反应发生;(2)判定定量:使用正常的视觉色谱法定量判定,尽量不要进行精密定量;(3)反应有逆反应现象:在比较反应液比色前,应先检查有无影响反应发生的原因,如样品中存在大量糖醛类或有机酸类等杂质物质;(4)计算结果:将反应液与空白对照,使用A1/B1比例稀释,使用A2/B2比例稀释,则添加硝酸铁试剂的反应液中,还原糖的量可根据以下公式进行计算:还原糖的量(g/L)=反应后量(g/L)-空白对照量(g/L)四、注意事项1.硝酸铁还原剂易被氧化,为保证试验结果的准确性,试剂应及时使用;2.每次实验均应有空白对照;3.实验温度和反应时间应严格控制,否则会影响试验结果;4.原始样品中的其他物质有可能产生干扰,必要时应向样品中添加一定的抑制剂;5.实验过程中,应全程使用橡皮囊实施空白比色,以保持稳定的环境。
一、实验目的1. 了解糖的还原反应原理;2. 掌握还原糖的检测方法;3. 通过实验验证还原糖在食品中的存在。
二、实验原理还原糖是指具有还原性的糖类,如葡萄糖、果糖、乳糖等。
在碱性条件下,还原糖可以还原铜离子(Cu2+)为亚铜离子(Cu+),生成砖红色的氧化亚铜(Cu2O)沉淀。
本实验采用斐林试剂检测还原糖,斐林试剂由斐林A液(NaOH溶液)和斐林B 液(CuSO4溶液)组成,在碱性条件下,斐林A液和斐林B液混合后,Cu2+被还原成Cu+,与还原糖发生反应,生成砖红色沉淀。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:苹果、梨、香蕉、蜂蜜、白砂糖、斐林试剂、蒸馏水、试管、试管架、酒精灯、滴管等;2. 实验仪器:电子天平、移液器、恒温水浴锅、显微镜等。
四、实验步骤1. 样品制备:将苹果、梨、香蕉分别洗净,去皮,切成小块,放入研钵中,加入适量蒸馏水,研磨成匀浆;2. 斐林试剂配制:分别将斐林A液和斐林B液加入试管中,各加入5ml蒸馏水,混合均匀;3. 样品检测:a. 取6支试管,分别编号为1、2、3、4、5、6;b. 在1号试管中加入1ml苹果匀浆,2号试管中加入1ml梨匀浆,3号试管中加入1ml香蕉匀浆,4号试管中加入1ml蜂蜜,5号试管中加入1ml白砂糖,6号试管中加入1ml蒸馏水;c. 在各试管中加入1ml斐林试剂,轻轻摇匀;d. 将试管放入恒温水浴锅中,加热至50℃,保持5分钟;e. 观察各试管颜色变化,记录结果。
五、实验结果与分析1. 实验结果:a. 1号试管(苹果匀浆):出现砖红色沉淀;b. 2号试管(梨匀浆):出现砖红色沉淀;c. 3号试管(香蕉匀浆):出现砖红色沉淀;d. 4号试管(蜂蜜):出现砖红色沉淀;e. 5号试管(白砂糖):未出现砖红色沉淀;f. 6号试管(蒸馏水):未出现砖红色沉淀。
2. 分析:a. 苹果、梨、香蕉、蜂蜜均含有还原糖,与斐林试剂反应后,生成砖红色沉淀;b. 白砂糖为非还原糖,与斐林试剂反应后,未出现砖红色沉淀。
还原糖检测的操作步骤还原糖检测的操作步骤1. 引言还原糖是指具有还原性的单糖和部分还原性的多糖,其检测是一种常用的分析方法,用于确定食品、饮料等样品中的糖含量。
本文将详细介绍还原糖检测的操作步骤,希望能帮助读者更全面地理解和掌握这个过程。
2. 实验所需材料在进行还原糖检测前,我们需要准备以下实验所需材料:- 还原糖检测试剂盒- 待测样品- 蒸馏水- 试管- 移液器- 离心管- 离心机- 恒温水浴器- 显色板3. 操作步骤3.1 样品制备将待测样品称取适量,加入适量的蒸馏水,充分混合均匀。
如需测定饮料或其他高浓度的样品,可以适当稀释,确保待测溶液的浓度在检测范围内。
3.2 样品处理将制备好的样品离心10分钟,以除去悬浮物。
借助移液器,小心地取出上清液转移至试管中。
3.3 加标处理在处理前期,可以加入一定浓度的加标溶液作为内标,以提高结果的准确度和可靠性。
3.4 消解处理将取自样品的上清液放入恒温水浴器中,使其保持在指定温度下。
加入相应的还原糖检测试剂盒中的消解剂,并严格按照试剂盒说明书的操作方法进行消解处理。
消解时间和温度会根据不同的试剂盒和样品要求而有所不同。
3.5 检测操作将消解后的样品均匀摇匀,并按照试剂盒的要求加入相应的试剂,一般是加入试剂A和试剂B。
摇匀后,放入恒温水浴器中反应一段时间。
3.6 显色反应将反应后的溶液转移到显色板上,并将显色板放入离心机中离心。
根据试剂盒的要求进行离心转速和离心时间的设置。
3.7 光度测定将离心后的显色板放入光度计中,选择合适的波长进行测定。
根据试剂盒的说明,可以设定合适的样品数量来进行测定。
3.8 结果分析根据光度计测得的吸光度值,结合试剂盒提供的标准曲线,计算出样品中还原糖的含量。
4. 本文观点和理解作为一种常见的定量分析方法,还原糖检测在食品、医药等领域具有广泛的应用。
在具体操作时,需要严格按照试剂盒的要求进行操作,并注意样品的制备、处理和消解等步骤。
计算还原糖的公式
(实用版)
目录
1.计算还原糖的公式介绍
2.计算还原糖的步骤
3.计算还原糖的注意事项
4.计算还原糖的实际应用
正文
一、计算还原糖的公式介绍
还原糖是一种具有还原性的糖类物质,其分子结构中含有一个或多个游离的醛基或酮基。
在生物组织中,还原糖是重要的能量来源,也是生物体内糖代谢的关键物质。
计算还原糖的公式通常基于还原糖与费林试剂或本氏试剂的反应,通过测量反应产物的吸光度来推算还原糖的含量。
二、计算还原糖的步骤
1.提取样品:从生物组织中提取待测样品。
2.制备试剂:配制费林试剂或本氏试剂。
3.反应:将提取的样品与试剂混合,并在水浴中加热,观察颜色变化。
4.测量吸光度:用光电比色计测量反应产物的吸光度。
5.计算:根据反应物的摩尔浓度和吸光度,计算出还原糖的含量。
三、计算还原糖的注意事项
1.样品处理:在提取样品时,应尽量保证样品不受污染,避免实验结果的误差。
2.试剂配制:试剂的配制要准确,否则会影响计算结果的准确性。
3.反应条件:反应时需注意水浴温度和时间,避免温度过高或时间过长导致反应产物分解。
4.测量仪器:使用光电比色计测量吸光度时,要注意仪器的校准和维护。
四、计算还原糖的实际应用
计算还原糖的方法被广泛应用于生物学、食品科学等领域。
在生物学研究中,通过测量生物组织中还原糖的含量,可以了解生物体的糖代谢状况。
在食品科学中,计算还原糖的含量可以作为评价食品品质的指标之一。
还原糖检测注意事项1.费林试剂甲液和乙液应分别贮存,用时才混合,否则酒石酸钾钠铜络合物长期在碱性条件下会慢慢分解析出氧化亚铜沉淀,使试剂有效浓度降低。
2.滴定必须是在沸腾条件下进行,其原因一是加快还原糖与Cu2+的反应速度;二是亚甲基蓝的变色反应是可逆的,还原型的亚甲基蓝遇空气中的氧时会再被氧化为氧化型。
此外,氧化亚铜也极不稳定,易被空气中的氧所氧化。
保持反应液沸腾可防止空气进入,避免亚甲基蓝和氧化亚铜被氧化而增加消耗量。
3.滴定时不能随意摇动锥形瓶,更不能把锥形瓶从热源上取下来滴定,以防止空气进入反应溶液中。
4.本方法测定的是一类具有还原性质的糖,包括葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖等,只是结果用葡萄糖或其他转化糖的方式表示,所以不能误解为还原糖=葡萄糖或其他糖。
但如果已知样品中只含有某一种糖,如乳制品中的乳糖,则可以认为还原糖=某糖。
5.分别用葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖标准品配制标准溶液分别滴定等量已标定的费林氏液,所消耗标准溶液的体积有所不同。
证明即便同是还原糖,在物化性质上仍有所差别,所以还原糖的结果只是反映样品整体情况,并不完全等于各还原糖含量之和。
如果已知样品只含有某种还原糖,则应以该还原糖做标准品,结果为该还原糖的含量。
如果样品中还原糖的成分未知,或为多种还原糖的混合物,则以某种还原糖做标准品,结果以该还原糖计,但不代表该糖的真实含量。
6.乙酸锌可去除蛋白质、鞣质、树脂等,使它们形成沉淀,经过滤除去。
如果钙离子过多时,易与葡萄糖、果糖生成络合物,使滴定速度缓慢;从而结果偏低,可向样品中加入草酸粉,与钙结合,形成沉淀并过滤。
)A、裵林试剂的最终标定及样品的最终滴定在1 min内完成.7.配制葡萄糖标准溶液应非常准确.一定控制好滴定速度.每班测定一次C标,将浓度值填写在记录表格中。
滴定终点则为兰色褪去出现明亮颜色(如亮红\亮黄色)8、碱性酒石酸铜甲液中的硫酸铜的铜离子为此化学反应定量的标物,次甲基兰为氧化还原指示剂(氧化型为蓝色、还原型为无色)9、此实验为什么要在碱性条件下进行,主要是在酸性条件下,还原糖会形成酯(不具有氧化性或氧化性不强的含氧酸如乙酸)、有机酸(如被硝酸氧化),样液中的二糖及多糖与淀粉会水解成还原糖,结果可想而知。
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还原糖的测定实验报告实验目的:通过实验,掌握还原糖的测定方法,了解还原糖在生活中的应用。
实验原理:还原糖是指具有还原性的糖类物质,如葡萄糖、果糖等。
在碱性条件下,还原糖能与铜离子发生氧化还原反应,将Cu2+还原为Cu+,同时还原糖被氧化为酸。
通过测定还原糖溶液对氧化铜的还原作用,可以确定还原糖的含量。
实验仪器和试剂:1. 分光光度计。
2. 玻璃烧杯。
3. 还原糖试剂。
4. 氢氧化钠溶液。
5. 硫酸铜溶液。
6. 蒸馏水。
实验步骤:1. 取一定量的还原糖溶液放入玻璃烧杯中。
2. 加入适量的氢氧化钠溶液,并混合均匀。
3. 加入适量的硫酸铜溶液,再次混合均匀。
4. 将混合溶液放入水浴中加热,使其发生反应。
5. 反应结束后,冷却至室温,用蒸馏水稀释至刻度线。
6. 用分光光度计测定溶液吸光度,记录数据。
实验数据处理:根据实验数据,利用标准曲线法计算出还原糖的含量。
实验结果:通过实验测定,得到还原糖的含量为Xg/L。
实验结论:通过本次实验,我们成功掌握了还原糖的测定方法,并且得到了还原糖的含量。
还原糖在食品工业中有着重要的应用,我们需要进一步了解还原糖的性质和用途,为日后的实际应用提供参考。
实验注意事项:1. 实验过程中要注意安全,避免溶液溅出。
2. 操作仪器时要轻拿轻放,避免损坏。
3. 实验后要及时清洗玻璃器皿,保持实验台面整洁。
总结:本次实验成功测定了还原糖的含量,掌握了还原糖的测定方法。
通过实验,我们深入了解了还原糖的性质和应用,为今后的学习和工作打下了良好的基础。
希望大家能够在日常生活中多加利用所学知识,不断提高自己的实践能力。
以上是本次实验的实验报告,谢谢!。
第1篇一、实验目的1. 学习还原糖的检测原理和方法。
2. 掌握斐林试剂的使用方法。
3. 通过实验了解还原糖在食品、生物样品中的应用。
二、实验原理还原糖是指在水溶液中能将斐林试剂还原成砖红色沉淀的糖类物质。
斐林试剂是一种含有CuSO4和NaOH的混合溶液,在加热条件下,Cu2+被还原成Cu2O,形成砖红色沉淀。
还原糖与斐林试剂反应,生成砖红色沉淀的多少与还原糖的浓度成正比。
三、实验材料1. 试剂:斐林试剂、NaOH溶液、CuSO4溶液、葡萄糖标准溶液、蒸馏水。
2. 仪器:试管、试管架、酒精灯、恒温水浴锅、移液器、滴定管。
四、实验步骤1. 准备斐林试剂:将CuSO4溶液和NaOH溶液按1:9的比例混合,现配现用。
2. 配制葡萄糖标准溶液:准确称取1.0g葡萄糖,用蒸馏水溶解并定容至100ml,配制成10mg/ml的葡萄糖标准溶液。
3. 样品处理:准确称取待测样品0.1g,用蒸馏水溶解并定容至10ml,配制成0.01mg/ml的样品溶液。
4. 实验步骤:a. 取一支试管,加入1ml斐林试剂;b. 取另一支试管,加入1ml样品溶液;c. 将两支试管同时放入恒温水浴锅中,加热至沸腾,保持沸腾状态2分钟;d. 观察颜色变化,记录结果。
5. 结果处理:a. 将实验结果与葡萄糖标准溶液进行对照;b. 计算样品中还原糖的浓度。
五、实验结果与分析1. 实验结果:样品溶液加入斐林试剂后,加热至沸腾,观察到样品溶液变为浅蓝色,随后逐渐变为棕色,最终形成砖红色沉淀。
2. 结果分析:根据实验结果,样品溶液中加入斐林试剂后,发生了还原反应,生成了砖红色沉淀。
这说明样品中含有还原糖,且其浓度与斐林试剂反应生成的沉淀量成正比。
六、实验讨论1. 实验过程中,样品溶液加热至沸腾时,需保持沸腾状态2分钟,以确保还原糖与斐林试剂充分反应。
2. 实验结果中,样品溶液的颜色变化过程为浅蓝色→棕色→砖红色沉淀,说明还原糖在加热条件下,与斐林试剂反应生成砖红色沉淀。
还原糖检测注意事项
1.费林试剂甲液和乙液应分别贮存,用时才混合,否则酒石酸钾钠铜络合物长期在碱性条件下会慢慢分解析出氧化亚铜沉淀,使试剂有效浓度降低。
2.滴定必须是在沸腾条件下进行,其原因一是加快还原糖与Cu2+的反应速度;二是亚甲基蓝的变色反应是可逆的,还原型的亚甲基蓝遇空气中的氧时会再被氧化为氧化型。
此外,氧化亚铜也极不稳定,易被空气中的氧所氧化。
保持反应液沸腾可防止空气进入,避免亚甲基蓝和氧化亚铜被氧化而增加消耗量。
3.滴定时不能随意摇动锥形瓶,更不能把锥形瓶从热源上取下来滴定,以防止空气进入反应溶液中。
4.本方法测定的是一类具有还原性质的糖,包括葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖等,只是结果用葡萄糖或其他转化糖的方式表示,所以不能误解为还原糖=葡萄糖或其他糖。
但如果已知样品中只含有某一种糖,如乳制品中的乳糖,则可以认为还原糖=某糖。
5.分别用葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖标准品配制标准溶液分别滴定等量已标定的费林氏液,所消耗标准溶液的体积有所不同。
证明即便同是还原糖,在物化性质上仍有所差别,所以还原糖的结果只是反映样品整体情况,并不完全等于各还原糖含量之和。
如果已知样品只含有某种还原糖,则应以该还原糖做标准品,结果为该还原糖的含量。
如果样品中还原糖的成分未知,或为多种还原糖的混合物,则以某种还原糖做标准品,结果以该还原糖计,
但不代表该糖的真实含量。
6.乙酸锌可去除蛋白质、鞣质、树脂等,使它们形成沉淀,经过滤除去。
如果钙离子过多时,易与葡萄糖、果糖生成络合物,使滴定速度缓慢;从而结果偏低,可向样品中加入草酸粉,与钙结合,形成沉淀并过滤。
)A、裵林试剂的最终标定及样品的最终滴定在1 min内完成.
7.配制葡萄糖标准溶液应非常准确.一定控制好滴定速度.每班测定一次C标,将浓度值填写在记录表格中。
滴定终点则为兰色褪去出现明亮颜色(如亮红\亮黄色)
8、碱性酒石酸铜甲液中的硫酸铜的铜离子为此化学反应定量的标物,次甲基兰为氧化还原指示剂(氧化型为蓝色、还原型为无色)
9、此实验为什么要在碱性条件下进行,主要是在酸性条件下,还原糖会形成酯(不具有氧化性或氧化性不强的含氧酸如乙酸)、有机酸(如被硝酸氧化),样液中的二糖及多糖与淀粉会水解成还原糖,结果可想而知。
10、碱性酒石酸铜乙液中的酒石酸钾钠的作用:既然实验得在碱性条件下进行,那么硫酸铜遇碱生成氢氧化铜沉淀后,不能使实验正常进行,必需使其(铜离子)在可溶状态下才行,酒石酸钾钠与铜离子络合就达到了目的。
11、影响实验结果的主要因素为:
a)反应液碱度:碱度越高,反应速度越快,样液消耗也越多,故
样品测定时样液的滴定体积要与标准相近,原理在此,这样误差要小。
b)锥形瓶规格:不同体积的锥形瓶会致使加热的面积及样液的厚度有变化,同时瓶壁的厚度不同影响传热速率,故有时甚至是同一规格但不同批的锥形瓶也会引起误差。
c)加热功率:加热的目的一是加快反应速度,二是防止次甲基兰与滴定过程中形成的氧化亚铜被氧气氧化,使结果偏高。
加热功率不同,样液沸腾时间不同,时间短样液消耗多,同时反应液蒸发速度不同,即时碱度的变化也就不同,故实验的平行性也就受影响。
d)滴定速度:滴定速度越快,样液消耗也越多,结果会偏低。
12、滴定终点有时不显无色而显暗红色,是由于样液中亚铁氰化钾量不够,不能有效络合氧化亚铜成无色的原故。
故可在反应液中适量添加亚铁氰化钾,标准与样液添加量一样。
13.滴定点是在静止加热沸腾中的颜色瞬间变化,如果人为摇晃会造成额外氧化反应的叠加,造成滴定量加大,结果漂高。
用同一型号的滴定锥形瓶作空白,即可避免加热不均造成的热量差异。
14、碱性酒石酸铜甲液中的硫酸铜的铜离子为此化学反应定量的标物,次甲基兰为氧化还原指示剂(氧化型为蓝色、还原型为无色)1。
②、滴定速度要保持均衡一致,速度每1~2秒一滴为好(速度
不要受滴定时间的长短而改变)
③、空白滴定和样品滴定一定要保证预加标准糖液量与最终数值差0.5~0.7mL(最好0.5mL)比如空白测定是22mL,再滴空白时标准糖液预加入到21.5mL。
如果这个空白又滴成了22.3mL,则下次空白滴定就预加到21.8mL,样品检测也依此类推。
④、电炉的温度对检测结果也有影响,所以要保证电炉充分预热,同时三角瓶在电炉上的放置位置要保持一致。
⑤、测定时液体沸腾后的开始滴定的时间也要保持一致,一般等液体充分沸腾后开始滴定。
⑥、滴定终点的判断也要保持一致。
一般等液面半边变透明为滴定终点。
⑦、糖液稀释及取样也要注意精确,注意吸管正确使用方法。
⑧、折光糖度精心检测,依此数据辅导还原糖的检测。
⑨、注意输液胶管漏液、变形,滴定管尖端气泡等对检测数值的影响。
⑩、三角瓶使用后清洗干净。
样品检测注意加水体积,加水量为滴定数与空白数之差,使样品检测总体积与空白滴定总体积大致相等。