大鼠及豚鼠经口灌胃方法的改进

表2两组治愈病例主要临床症状起效时间比较组别犬数发热腹痛里急后重脓血便腹部压痛治疗组230.85?0.32*1.10?0.41*1.08?0.36*1.13?0.451.51?0.47*对照组141.31?0.271.70?0.731.76?0.721.17?0.572.05?0.72注:与对照组比较*p<0.01表3两组治愈病例主要临床症状消失时间比较组别犬数发热腹痛里急后重脓血便腹部压痛治疗组231.97?0.75*3.10?1.02*2.79?1.05*2.87?1.113.16?1.17*对照组142.69?1.193.89?1.333.93?1.193.92?1.094.41?1.35注:与对照组比较*p<0.014小结犬的急性菌痢临床施治中,随着致病菌群的不断变化,耐药菌株的增长,给治疗带来一定的困难。

特别是基层兽医站无实验室,条件差,全凭目观和经验,无法对大便进行细菌培养,给用药带来了一定困难。

盲目滥用抗生素,而导致菌群失调,迁延不愈,给广大养殖户增加了支出,浪费了财力、物力、人力,造成不应有的损失。

而用中药治疗常可取得良好的疗效。

自拟葛根芩连汤中,主药葛根味甘平有解肌清热、升清止痢功用;黄芩、黄连则味苦、性寒、清热燥湿,抗菌消炎,除里急后重症;木香理气开胃、行止泻;马齿苋清热解毒止痢;茯苓、泽泻,渗湿利水、健脾和中;金银花清热解毒;甘草清热解毒、补中、调和诸药。

诸药相合,共奏清热解毒,燥湿坚阴止痢之功。

现代药理研究认为:葛根、黄芩、黄连、马齿苋对痢疾杆菌有较强的抑制作用,同时,葛根芩连汤有提高机体免疫力,增强小肠黏膜绒毛上皮细胞功能的作用。

文章编号:1003-8655(2006)03-0036-01中草药治疗宠物犬腹胀病赵沛林(山东省无棣县畜牧局2519007)中图分类号:S858.292文献标识码:B宠物犬的腹胀病,是由饲养管理不善或饲料品质低劣、变质等引起的一种原发或继发性疾病,临床比较多见。

一种改进的小白鼠灌胃给药法
王宁萍;赵建宁;杨志伟
【期刊名称】《宁夏医科大学学报》
【年(卷),期】1999(021)001
【摘要】在动物实验中经口给药法是一种常用的方法。

经口给药法有口服与灌胃两种方法。

适用于小白鼠、大白鼠、兔等动物。

口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物摄取。

此法虽简单方便，但剂量不够准确。

为保证剂量的准确性常用灌胃法。

灌胃法是用灌胃管将所应投的药灌到动物胃...
【总页数】1页(P57)
【作者】王宁萍;赵建宁;杨志伟
【作者单位】
【正文语种】中文
【相关文献】
1.新型灌胃器经胃给药法在新生SD大鼠中的应用及效果评价 [J], 严彩满;王潜;苏志文;吴繁;谭小华;崔其亮
2.乳大鼠灌胃给药方法之改进 [J], 范志刚;于晓凤
3.一种家兔灌胃给药新方法 [J], 刘晨;杜建军;秦雯;刘中华;杨光;孙平
4.改进的酒精灌胃法建立大鼠酒精性肝病模型 [J], 伏建峰;史清海;岳新华;张东辉
5.高效液相色谱法分析芦丁在灌胃给药大鼠体内的组织分布 [J], 李巧稚;肖丹丹;王晓颖;段青娅;刘雪松;李倩
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实验动物的给药途径和方法及药量计算方法一、经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药法。

1、鼠类：鼠类的灌胃器由特殊的灌胃针构成。

左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的右U角中，插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置，灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。

2、兔、犬等：灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。

然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

(二)口服法口服给药是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取。

此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。

大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽。

二、注射给药法(一)皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮卜注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。

皮下注射用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器，使针头水平刺入皮下。

推送药液时注射部位隆起。

拨针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。

(二)肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。

大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射。

注射时针头宜斜刺迅速人肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。

(三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位，使内脏移向上腹，右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。

随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。

根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。

尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。

在国内文献上却很少见到具体的描述。

在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。

一、灌胃器具制作1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2～l6号灌胃针。

二是自制。

自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。

加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。

在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。

豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。

1.2家兔灌胃器的制作取12号腰椎穿刺针。

加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml注射器，即家兔灌胃器。

二、灌胃操作方法2.1小鼠经口灌胃给药方法先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。

在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。

以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。

如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。

注完药液后轻轻抽出灌胃针。

小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。

2.2大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。

根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。

复旦学报(医学版)Fudan Univ J Med Sci 2010Mar ,37(2)　上海市自然科学基金项目(09ZR1405700)　△Corresponding aut hor E 2mail :chifanglu @改良的豚鼠灌胃给药方法丛　宁　韩　朝　迟放鲁△　杨娟梅　黄一波　辛　渊(复旦大学附属眼耳鼻喉科医院耳鼻喉科　上海　200031)【摘要】　目的　改良豚鼠灌胃给药的方法。

方法　选取清醒豚鼠40只,使其后肢站立、腹侧紧贴支持物,体位垂直不能前移,后拉两耳颊部皮毛并轻抵项部使其头后仰颈伸直,插入1mL 注射器、越过上下臼齿并压住舌根灌药;另选40只全身麻醉的豚鼠,使其侧卧头高臀低位,插入直径2mm 小儿吸痰管至胃内灌药。

结果　对清醒及全麻豚鼠,连续灌胃给药7d ,80只豚鼠均顺利实现灌胃,仅需一人独立操作,无一例因操作不当引起豚鼠消化道损伤或误灌入气道死亡,成功率达100%。

结论　成功改良了豚鼠的灌胃给药方法,使经口给药途径的动物实验不需因技术问题而局限于大鼠、小鼠,为进一步的药物和营养学等研究奠定了基础。

【关键词】　豚鼠;　灌胃;　臼齿;　麻醉【中图分类号】　R 332 【文献标志码】　AModif ied gavage methods for guinea pigsCON G Ning ,HAN Zhao ,C HI Fang 2lu △,YAN G J uan 2mei ,HUAN G Y i 2bo ,XIN Yuan(Department of Otorhinolary ngology ,Eye ,Ear,N ose and T hroat Hos pital ,Fudan Universit y ,S hanghai 200031,China )【Abstract 】　Objective T o modify the method of gavage administration in guinea pigs.　M ethods Fourtyawake guinea pigs were kept rearing on the hind legs and leaning on a vertical fixture to avoid their escaping forward.A 1mL injector was inserted into the mouth to the depth when the molar teeth were passed.Another fourty guinea pigs under general anesthesia were reversed at trendelenburg position and a children suction tube with an outer diameter of 2mm was inserted into the stomach.　R esu lts All of the 80guinea pigs were administered by modified gavage smoothly for seven consecutive days by one operator each time.None endured much pain or digestive tract injury ,or died from air way perfusion by mistake.　C onclusions We successfully modified the gavage method in guinea pigs ,which would definitely take guinea pigs involved in intragastical pharmacal experiments besides the routine of rats and mice.【K ey w ords 】　guinea pig ;　gavage ;　molar teet h ;　anest hesia 灌胃给药能够准确掌握给药剂量、控制给药时间,是营养学和药物学动物实验中的重要给药途径。

急 性 毒 性 试 验 方 法――改良寇氏法Kärber 法由Kärber 于1931提出，后经Finney 改进，顾汉颐作过改进，1963年孙瑞元教授对该法进一步改进，改进后的计算方法称为点斜法或孙氏法，增加了不含0%和100%死亡率的校正式，所得LD 50及全部有关参数与正规概率单位法相近。

改良寇氏法（Käber）试验设计的原则是：各组剂量按等比级数；各组动物数相等：大致有一半组数的动物死亡率在10%～50%之间，另一半在50%～100%之间，最好出现0 %和100 %的剂量组。

一、剂量选择及分组1、剂量选择剂量设计是否合理是急性毒性试验能否成功的关键。

探求外源化学物的急性毒性，测定其LD 50或LC 50时，应首先广泛查阅文献资料，了解该化学物的化学结构和理化性质，如结构式、分子量、溶解度、挥发度、纯度及杂质含量等，其次确定测定LD 50的计算方法，然后设计剂量。

2、预试验：总的原则是先用少量动物，以较大的剂量间距染毒，求出粗略的致死剂量范围，即确定受试动物全部致死的最小剂量（b ）和全部不致死的最大剂量（a ），即求出待测化学物0 %~100 %的大致致死剂量范围，然后在这个剂量范围内按几何级数的间距设计5~7个剂量组，组间剂量呈等比级数（r ），其比值为1.2~1.5。

进行正式实验。

用于急性毒性试验时，动物的体重为：大鼠180~200g ，小鼠18~22g ，豚鼠200~250ｇ，家兔2~2.5kg ，犬10~12 kg 。

用于实验的同一批动物体重变异范围不得超过所用动物平均体重的20%。

仍然遵守雌雄各半或雌雄兼取的原则。

当预试中发现化学物的毒性有明显的性别差异时，则需要选用雌、雄两种性别的动物分别进行试验，求出各自的LD 50。

通过预试，找出受试化学物引起动物死亡的大致剂量范围，以此为依据设计正式试验的剂量和分组。

按下式设计剂量组：1n abr -= 式中：r —相邻两组剂量的比值，一般为1.2～1.5，b —最低全致死剂量量， a —最高不致死剂量， n —设计的组数。