小型实验动物灌胃给药技术方法介绍

第1篇一、实验目的1. 了解灌胃操作的基本方法。

2. 掌握灌胃实验的注意事项。

3. 观察灌胃对小鼠生理指标的影响。

二、实验原理灌胃是一种将药物、营养物质等液体物质通过胃管灌入动物胃腔的方法。

本实验旨在通过灌胃操作，观察灌胃对小鼠生理指标的影响，以期为后续研究提供参考。

三、实验材料1. 实验动物：清洁级雄性小鼠10只，体重20-25g。

2. 仪器设备：电子天平、电子秤、注射器、灌胃针、灌胃管、酒精棉球、手术器械等。

3. 药物：生理盐水、实验药物（根据实验要求）。

4. 其他：记录纸、笔等。

四、实验方法1. 实验动物分组：将10只小鼠随机分为两组，每组5只，分别为实验组和对照组。

2. 灌胃操作：a. 实验组：将实验药物用生理盐水稀释至所需浓度，通过灌胃管将药物灌入小鼠胃腔。

b. 对照组：将等量的生理盐水灌入小鼠胃腔。

3. 灌胃后观察：a. 记录小鼠灌胃前后的体重、行为、饮食、活动等情况。

b. 观察小鼠生理指标的变化，如心率、呼吸频率、体温等。

4. 数据处理：a. 对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的生理指标差异。

b. 对灌胃实验结果进行总结和分析。

五、实验结果1. 实验组小鼠灌胃后，体重、心率、呼吸频率、体温等生理指标与对照组相比无显著差异。

2. 实验组小鼠灌胃后，饮食、活动等行为与对照组相比无显著差异。

六、实验讨论1. 本实验采用灌胃方法，将实验药物灌入小鼠胃腔，观察其对小鼠生理指标的影响。

2. 实验结果显示，灌胃对小鼠生理指标无显著影响，说明灌胃操作对小鼠的影响较小。

3. 本实验为后续研究提供了灌胃操作的经验，有助于研究灌胃对动物生理指标的影响。

七、实验结论1. 本实验通过灌胃操作，观察灌胃对小鼠生理指标的影响，为后续研究提供了参考。

2. 灌胃操作对小鼠的影响较小，可作为一种常用的实验方法。

3. 在进行灌胃实验时，应严格按照操作规程进行，以确保实验结果的准确性。

八、实验建议1. 在进行灌胃实验前，应充分了解灌胃操作的方法和注意事项。

小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口，自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉，用这样的针头灌胃，损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓，不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了。

（我认为，所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部，进入食管后就可以推药了，这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况
下。

）当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，最大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

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11.常用实验动物的给药途径和方法常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

药理学小鼠灌胃实验报告药理学小鼠灌胃实验报告摘要：药理学研究是为了解药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，为药物的合理应用提供依据。

小鼠灌胃实验是一种常用的药效学研究方法，通过给小鼠经口给药，观察药物的生物利用度、毒副作用等指标，可以评价药物的药理学特性。

本文将从深度和广度两个方面对药理学小鼠灌胃实验进行全面评估。

一、实验原理及操作步骤1. 实验原理药物的药理学特性可以通过小鼠灌胃实验来评价。

该实验方法主要通过给小鼠灌胃给药，观察药物在小鼠体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，从而了解药物的药效学特性。

2. 操作步骤（1）实验前准备：选择雄性小鼠作为实验对象，确保小鼠的健康状态和芳龄相近。

准备好药物溶液，根据实验需要确定适当的剂量。

（2）给药：使用专用的灌胃针，将药物溶液缓慢灌入小鼠的胃部。

注意控制给药速度，避免因过快引起窒息或误灌导致不准确的实验结果。

（3）观察与记录：给药后，观察小鼠的行为变化和可能的毒副反应，记录实验数据。

（4）实验结束：根据实验设计的要求，观察一定的时间后，将小鼠处死，采集相应的样本进行分析，如血液、脏器等。

二、实验结果与讨论1. 药物的生物利用度药物的生物利用度是指药物经口给药后进入循环系统的百分比，是评价药物口服给药效果的重要指标。

通过小鼠灌胃实验可以评价药物的生物利用度，并为进一步研究药物的药代动力学提供参考。

2. 药物的毒副作用在药理学研究中，了解药物的毒副作用是至关重要的。

小鼠灌胃实验可以观察药物给予后小鼠的行为变化、脏器损害等，从而评估药物的安全性和毒副作用。

3. 药物的代谢和排泄小鼠灌胃实验还可以通过观察药物在小鼠体内的代谢和排泄情况，了解药物在体内的代谢途径和动力学特性。

这对于评价药物的合理用药和药物的代谢途径研究具有重要意义。

三、个人观点和理解药理学小鼠灌胃实验是一种常见的评价药物药理学特性的方法。

通过灌胃给药，可以模拟人体的口服给药情况，更加贴近临床的实际应用情况。

1. 探究灌胃给药方式对戊巴比妥钠药效的影响。

2. 分析不同给药途径对药物吸收速度、血药浓度及药理效应的影响。

3. 评估灌胃给药在药物研究中的应用价值。

二、实验原理1. 药物剂量的大小决定血药浓度的高低，血药浓度又决定药理效应，因此药物剂量决定药理作用的强弱。

2. 给药途径不同，吸收速度有差别，药物反应的潜伏期和程度亦有差别。

一般来说，腹腔给药的药效大于皮下给药，皮下给药的药效大于灌胃给药。

三、实验材料1. 实验动物：18-22g的小鼠10只，分为两组，每组5只。

2. 药物：戊巴比妥钠溶液（0.2%、0.4%、0.8%）。

3. 仪器：电子天平、注射器、灌胃器、秒表、温度计。

四、实验方法1. 将10只小鼠随机分为两组，分别为A组和B组。

2. A组采用腹腔注射给药，B组采用灌胃给药。

3. 分别对A组和B组小鼠进行编号，记录体重。

4. 将戊巴比妥钠溶液按0.2%、0.4%、0.8%的浓度分别配制，备用。

5. 对A组小鼠进行腹腔注射，剂量为0.1mL/10g体重，记录给药时间。

6. 对B组小鼠进行灌胃给药，剂量为0.1mL/10g体重，记录给药时间。

7. 给药后，分别观察A组和B组小鼠的活动情况，记录翻正反射消失时间和恢复时间。

8. 测量A组和B组小鼠的体温，记录体温变化。

9. 统计分析A组和B组小鼠的药效数据，比较两种给药方式的差异。

1. A组小鼠在腹腔注射戊巴比妥钠后，翻正反射消失时间为5-10分钟，恢复时间为15-20分钟；B组小鼠在灌胃给药后，翻正反射消失时间为10-15分钟，恢复时间为20-25分钟。

2. A组小鼠体温在给药后无明显变化；B组小鼠体温在给药后略有下降，但恢复时间较快。

3. 统计分析结果显示，A组小鼠与B组小鼠在翻正反射消失时间和恢复时间上存在显著差异（p<0.05）。

六、实验分析1. 本实验结果表明，灌胃给药对戊巴比妥钠的药效有一定影响，与腹腔注射相比，灌胃给药的药效较弱。

小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口，自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉，用这样的针头灌胃，损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓，不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了。

（我认为，所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部，进入食管后就可以推药了，这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况
下。

）当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，最大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1。

准备灌胃针头.一般可以从市场上面买到,实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口，自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大.。

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2。

抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线.抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作.。

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3。

抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头，抵住上颚,轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了.（我认为,所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部，进入食管后就可以推药了，
这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况下。

）当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

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4。

灌胃容积一般是0。

1～0.2ml/10g,最大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0。

8ml。

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小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1. 准备灌胃针头.一般可以从市场上面买到，实在没有的话,可以用12号的针头，剪去针尖,用砂纸将头端磨平，也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉，用这样的针头灌胃，损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了。

（我认为，所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了，这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况下。

)当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

4。

灌胃容积一般是0。

1～0.2ml/10g,最大0。

35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

第三章动物灌胃实验操作规范随着科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。

根据实验目的，实验动物的种类及药物剂量的不同，需对实验动物实施不同的给药方法。

经口灌胃给药方法是一种重要的给药途径。

在国内文献上却鲜有提及，更未见具体的描述。

经过我们的动物实验研究．摸索出一套实用于小鼠经口灌胃给药的方法．只需一个人就可以完成，而且操作方便，给药剂量准确。

第一节灌胃操作方法1、小鼠经口灌胃给药方法小鼠性情虽较温顺，但捕捉时也要提防被其咬伤手指，因此需要戴手套捕捉。

用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。

在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。

以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针的弯头进入颈部弯道后即可开始灌喂。

如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。

注完药液后轻轻抽出灌胃针。

小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml／10g.w。

2、注意事项保定动物时，一定要固定好动物，使动物头不要随意摆动，但不能挤捏颈部。

灌胃器针头弧度面向前从动物右角处插入，灌胃动作要轻柔。

不能虐待动物，尤其是大鼠，否则，容易被其咬伤。

插入灌胃针时，如果遇到阻力，不能用力继续进针，应停止进针，等待其自动吞咽时，迅速进针。

否则，容易损伤动物食道。

第二节灌胃后的观察和记录当灌胃结束后，要及时地将小白鼠放回原笼盒中，并对小白鼠的活动状态和精神状态作详细的记录，所需表格如下：小鼠第天生长情况记录记录人：年月日。

第1篇一、实验目的本实验旨在了解和掌握小鼠灌胃的基本操作技术，观察灌胃对小鼠生理机能的影响，评估灌胃给药的可行性及其对实验结果的干扰。

二、实验材料与器材1. 实验动物：健康昆明小鼠10只，体重20-25g。

2. 实验器材：鼠笼、电子天平、注射器、灌胃针、生理盐水、消毒液、棉球、酒精、剪刀、镊子、记录纸、笔等。

三、实验方法1. 动物分组与编号：将10只小鼠随机分为两组，每组5只，分别标记为A组和B 组。

2. 灌胃操作：- A组：给予生理盐水灌胃，作为对照组。

- B组：给予一定剂量的实验药物灌胃，作为实验组。

- 灌胃剂量：根据小鼠体重和药物浓度计算，每组小鼠灌胃剂量相同。

- 灌胃方法：采用灌胃针，将针头从小鼠口角插入，缓慢注入胃内，注意避免损伤口腔和食管。

3. 灌胃后观察：- 观察小鼠灌胃后的精神状态、活动情况、呼吸频率等生理指标。

- 记录小鼠灌胃后的体重变化，评估灌胃对小鼠生理机能的影响。

4. 数据处理：- 对灌胃前后的生理指标和体重变化进行统计分析，比较A组和B组之间的差异。

四、实验结果1. 灌胃后小鼠生理指标变化：- A组（生理盐水组）小鼠灌胃后，精神状态、活动情况、呼吸频率等生理指标无明显变化。

- B组（实验药物组）小鼠灌胃后，部分小鼠出现精神萎靡、活动减少、呼吸加快等不良反应，但均在灌胃后24小时内恢复正常。

2. 灌胃后小鼠体重变化：- A组小鼠灌胃后体重无明显变化。

- B组小鼠灌胃后体重略有下降，但下降幅度不大，均在灌胃后24小时内恢复正常。

五、讨论与分析1. 本实验结果表明，灌胃是小鼠给药的一种有效方法，操作简便，对小鼠生理机能的影响较小。

2. 灌胃给药后，部分小鼠出现的不良反应可能是由于药物刺激或灌胃操作引起的，但这些不良反应在短时间内均可恢复。

3. 灌胃给药对小鼠体重的影响较小，且在短时间内可恢复正常，因此不会对实验结果产生显著干扰。

六、结论本实验结果表明，灌胃是小鼠给药的一种有效方法，对小鼠生理机能的影响较小，可广泛应用于动物实验中。

常用小型实验动物灌胃给药技术方法介绍随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。

根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。

尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。

在国内文献上却很少见到具体的描述。

在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。

一、灌胃器具制作1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2～l6号灌胃针。

二是自制。

自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。

加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。

在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。

豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。

1.2家兔灌胃器的制作取12号腰椎穿刺针。

加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml 注射器，即家兔灌胃器。

二、灌胃操作方法2.1小鼠经口灌胃给药方法先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。

在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。

以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。

如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。

注完药液后轻轻抽出灌胃针。

小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。

2.2大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

小鼠灌胃的操作和注意事项
答案：
在动物实验中，灌胃给药是一种常用的给药方式，尤其在生理、药理、免疫等多个学科的研究中。

本文将详细介绍小鼠灌胃给药的过程和注意事项。

灌胃给药方法适用于小鼠和大鼠等多种实验动物，操作简便，用药剂量准确。

在给药过程中，需要严格控制给药的量和次数，以确保实验结果的准确性。

首先，我们需要根据小鼠的体重和药浓度来确定给药的量。

一般来说，20g左右的小鼠可以给0.2毫升药物。

在给药过程中，我们要保持小鼠的头部和颈部成一条直线，避免药物流入口腔。

在给药时，我们用左手抓住小鼠的颈部，向下压，收紧，提起。

同时，要用右手拿着灌胃针，压着小鼠的舌头，从上颚轻轻向内进入。

在这个过程中，我们要密切关注小鼠是否有吞咽的动作。

如果遇到阻碍，我们可以轻轻晃动灌胃针，直到遇到刺空感为止。

对于大鼠的灌胃给药，我们首先要将大鼠头部固定好，使其不能随意摆动，使大鼠身体成一条直线。

然后，我们从大鼠一侧口角入针，沿上颚，咽后壁，顺着大鼠的吞咽动作将其引入胃内。

在此过程中，我们要密切关注大鼠的反应，避免其出现明显的挣扎和呛咳现象。

一、实训目的本次实训旨在使学生掌握动物实验中常用的给药途径和方法，提高实验操作技能，为今后从事相关研究工作打下基础。

二、实训时间2023年X月X日三、实训地点动物实验室四、实训对象小白鼠（雄性，体重约20g）五、实训内容1. 动物给药途径本次实训主要学习了以下动物给药途径：- 灌胃法- 腹腔注射法- 皮下注射法- 静脉注射法2. 给药方法（1）灌胃法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。

2. 用左手抓住小白鼠头部，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

3. 将药物注入胃内，注入量约为0.2～0.5ml/10g。

4. 慢慢抽出灌胃针，并轻轻抚摸小白鼠的腹部，帮助药物进入胃内。

（2）腹腔注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。

2. 用左手抓住小白鼠腹部，右手持注射器，将针头从小白鼠腹部正中线处刺入腹腔。

3. 将药物注入腹腔，注入量约为0.2～0.5ml/10g。

4. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸小白鼠腹部，帮助药物进入腹腔。

（3）皮下注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。

2. 在小白鼠背部或腹部选择合适的注射部位。

3. 用左手抓住注射部位上方皮肤，右手持注射器，将针头刺入皮下。

4. 将药物注入皮下，注入量约为0.2～0.5ml/10g。

5. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸注射部位，帮助药物进入皮下。

（4）静脉注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。

2. 在小白鼠耳静脉选择合适的注射部位。

3. 用左手抓住小白鼠耳朵，右手持注射器，将针头刺入耳静脉。

4. 将药物注入耳静脉，注入量约为0.2～0.5ml/10g。

5. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸注射部位，帮助药物进入耳静脉。

六、实训结果本次实训中，所有动物均成功接受了给药，给药过程顺利，无意外发生。

七、实训总结1. 通过本次实训，学生掌握了动物实验中常用的给药途径和方法，提高了实验操作技能。

2. 在实际操作过程中，应注意以下几点：- 操作前，仔细观察动物的状态，确保动物健康。

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代及形态的变化，常需将药物注入动物体。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法（一）灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0. 2〜0. 5mL/'10gc胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10〜20ml/kg3兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管（常用导尿管代替）从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10-12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。