小型实验动物灌胃给药技术方法介绍

第1篇一、实验目的1. 了解灌胃操作的基本方法。

2. 掌握灌胃实验的注意事项。

3. 观察灌胃对小鼠生理指标的影响。

二、实验原理灌胃是一种将药物、营养物质等液体物质通过胃管灌入动物胃腔的方法。

本实验旨在通过灌胃操作，观察灌胃对小鼠生理指标的影响，以期为后续研究提供参考。

三、实验材料1. 实验动物：清洁级雄性小鼠10只，体重20-25g。

2. 仪器设备：电子天平、电子秤、注射器、灌胃针、灌胃管、酒精棉球、手术器械等。

3. 药物：生理盐水、实验药物（根据实验要求）。

4. 其他：记录纸、笔等。

四、实验方法1. 实验动物分组：将10只小鼠随机分为两组，每组5只，分别为实验组和对照组。

2. 灌胃操作：a. 实验组：将实验药物用生理盐水稀释至所需浓度，通过灌胃管将药物灌入小鼠胃腔。

b. 对照组：将等量的生理盐水灌入小鼠胃腔。

3. 灌胃后观察：a. 记录小鼠灌胃前后的体重、行为、饮食、活动等情况。

b. 观察小鼠生理指标的变化，如心率、呼吸频率、体温等。

4. 数据处理：a. 对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的生理指标差异。

b. 对灌胃实验结果进行总结和分析。

五、实验结果1. 实验组小鼠灌胃后，体重、心率、呼吸频率、体温等生理指标与对照组相比无显著差异。

2. 实验组小鼠灌胃后，饮食、活动等行为与对照组相比无显著差异。

六、实验讨论1. 本实验采用灌胃方法，将实验药物灌入小鼠胃腔，观察其对小鼠生理指标的影响。

2. 实验结果显示，灌胃对小鼠生理指标无显著影响，说明灌胃操作对小鼠的影响较小。

3. 本实验为后续研究提供了灌胃操作的经验，有助于研究灌胃对动物生理指标的影响。

七、实验结论1. 本实验通过灌胃操作，观察灌胃对小鼠生理指标的影响，为后续研究提供了参考。

2. 灌胃操作对小鼠的影响较小，可作为一种常用的实验方法。

3. 在进行灌胃实验时，应严格按照操作规程进行，以确保实验结果的准确性。

八、实验建议1. 在进行灌胃实验前，应充分了解灌胃操作的方法和注意事项。

小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口，自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉，用这样的针头灌胃，损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓，不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了。

（我认为，所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部，进入食管后就可以推药了，这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况
下。

）当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，最大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

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11.常用实验动物的给药途径和方法常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

药理学小鼠灌胃实验报告药理学小鼠灌胃实验报告摘要：药理学研究是为了解药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，为药物的合理应用提供依据。

小鼠灌胃实验是一种常用的药效学研究方法，通过给小鼠经口给药，观察药物的生物利用度、毒副作用等指标，可以评价药物的药理学特性。

本文将从深度和广度两个方面对药理学小鼠灌胃实验进行全面评估。

一、实验原理及操作步骤1. 实验原理药物的药理学特性可以通过小鼠灌胃实验来评价。

该实验方法主要通过给小鼠灌胃给药，观察药物在小鼠体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，从而了解药物的药效学特性。

2. 操作步骤（1）实验前准备：选择雄性小鼠作为实验对象，确保小鼠的健康状态和芳龄相近。

准备好药物溶液，根据实验需要确定适当的剂量。

（2）给药：使用专用的灌胃针，将药物溶液缓慢灌入小鼠的胃部。

注意控制给药速度，避免因过快引起窒息或误灌导致不准确的实验结果。

（3）观察与记录：给药后，观察小鼠的行为变化和可能的毒副反应，记录实验数据。

（4）实验结束：根据实验设计的要求，观察一定的时间后，将小鼠处死，采集相应的样本进行分析，如血液、脏器等。

二、实验结果与讨论1. 药物的生物利用度药物的生物利用度是指药物经口给药后进入循环系统的百分比，是评价药物口服给药效果的重要指标。

通过小鼠灌胃实验可以评价药物的生物利用度，并为进一步研究药物的药代动力学提供参考。

2. 药物的毒副作用在药理学研究中，了解药物的毒副作用是至关重要的。

小鼠灌胃实验可以观察药物给予后小鼠的行为变化、脏器损害等，从而评估药物的安全性和毒副作用。

3. 药物的代谢和排泄小鼠灌胃实验还可以通过观察药物在小鼠体内的代谢和排泄情况，了解药物在体内的代谢途径和动力学特性。

这对于评价药物的合理用药和药物的代谢途径研究具有重要意义。

三、个人观点和理解药理学小鼠灌胃实验是一种常见的评价药物药理学特性的方法。

通过灌胃给药，可以模拟人体的口服给药情况，更加贴近临床的实际应用情况。

1. 探究灌胃给药方式对戊巴比妥钠药效的影响。

2. 分析不同给药途径对药物吸收速度、血药浓度及药理效应的影响。

3. 评估灌胃给药在药物研究中的应用价值。

二、实验原理1. 药物剂量的大小决定血药浓度的高低，血药浓度又决定药理效应，因此药物剂量决定药理作用的强弱。

2. 给药途径不同，吸收速度有差别，药物反应的潜伏期和程度亦有差别。

一般来说，腹腔给药的药效大于皮下给药，皮下给药的药效大于灌胃给药。

三、实验材料1. 实验动物：18-22g的小鼠10只，分为两组，每组5只。

2. 药物：戊巴比妥钠溶液（0.2%、0.4%、0.8%）。

3. 仪器：电子天平、注射器、灌胃器、秒表、温度计。

四、实验方法1. 将10只小鼠随机分为两组，分别为A组和B组。

2. A组采用腹腔注射给药，B组采用灌胃给药。

3. 分别对A组和B组小鼠进行编号，记录体重。

4. 将戊巴比妥钠溶液按0.2%、0.4%、0.8%的浓度分别配制，备用。

5. 对A组小鼠进行腹腔注射，剂量为0.1mL/10g体重，记录给药时间。

6. 对B组小鼠进行灌胃给药，剂量为0.1mL/10g体重，记录给药时间。

7. 给药后，分别观察A组和B组小鼠的活动情况，记录翻正反射消失时间和恢复时间。

8. 测量A组和B组小鼠的体温，记录体温变化。

9. 统计分析A组和B组小鼠的药效数据，比较两种给药方式的差异。

1. A组小鼠在腹腔注射戊巴比妥钠后，翻正反射消失时间为5-10分钟，恢复时间为15-20分钟；B组小鼠在灌胃给药后，翻正反射消失时间为10-15分钟，恢复时间为20-25分钟。

2. A组小鼠体温在给药后无明显变化；B组小鼠体温在给药后略有下降，但恢复时间较快。

3. 统计分析结果显示，A组小鼠与B组小鼠在翻正反射消失时间和恢复时间上存在显著差异（p<0.05）。

六、实验分析1. 本实验结果表明，灌胃给药对戊巴比妥钠的药效有一定影响，与腹腔注射相比，灌胃给药的药效较弱。

小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口，自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉，用这样的针头灌胃，损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓，不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了。

（我认为，所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部，进入食管后就可以推药了，这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况
下。

）当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，最大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。

由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。

灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。

灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。

灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。

灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。

先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。

插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。

可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。

此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。

具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。

此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。

实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。

小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1。

准备灌胃针头.一般可以从市场上面买到,实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口，自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大.。

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2。

抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线.抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作.。

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3。

抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头，抵住上颚,轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了.（我认为,所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部，进入食管后就可以推药了，
这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况下。

）当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

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4。

灌胃容积一般是0。

1～0.2ml/10g,最大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0。

8ml。

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小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入；
二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下：
1. 准备灌胃针头.一般可以从市场上面买到，实在没有的话,可以用12号的针头，剪去针尖,用砂纸将头端磨平，也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉，用这样的针头灌胃，损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中，若一次抓的感觉不是很顺手，要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了，一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液了。

（我认为，所谓的灌胃，不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了，这样对小鼠食道的损伤要小点，特别是要长期灌胃给药的情况下。

)当然，灌胃针头也可以再往里面深入一点，防止药液从口中流出。

4。

灌胃容积一般是0。

1～0.2ml/10g,最大0。

35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。