叶绿素的光敏性质探究
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植物光敏反应植物光敏反应是指植物对光线的敏感性和对光线的反应。
光敏反应是植物生长和发育中非常重要的一个环节,它直接影响着植物的生长速度、形态结构和生理功能。
植物通过光敏反应能够感知光线的强度、方向和周期,从而调节自身的生长和发育,适应不同的环境条件。
本文将从植物光敏反应的机制、影响因素以及在植物生长中的作用等方面进行探讨。
一、植物光敏反应的机制植物的光敏反应主要通过叶绿体中的叶绿体色素来实现。
叶绿体中的叶绿体色素主要包括叶绿素a、叶绿素b等,它们能够吸收光能并将其转化为化学能。
当光线照射到植物叶片上时,叶绿体色素吸收光子,激发电子,产生光合作用。
光合作用是植物利用光能合成有机物质的过程,是植物生长的重要能量来源。
除了光合作用外,植物的光敏反应还包括光周期反应和光形态反应。
光周期反应是指植物对光照时间的敏感性,不同植物对光照时间的需求不同,有些植物需要长日照,有些植物需要短日照。
光形态反应是指植物对光线强度和方向的反应,植物能够通过光线的强度和方向来调节自身的生长方向和形态结构。
二、植物光敏反应的影响因素植物的光敏反应受到多种因素的影响,主要包括光照强度、光照周期、光质和温度等因素。
光照强度是影响植物光敏反应的重要因素之一,光照强度越强,植物光合作用的效率越高,植物生长速度也会加快。
光照周期是指植物每天接受到的光照时间,不同植物对光照周期的需求不同,有些植物需要长日照,有些植物需要短日照。
光质是指光线的波长和颜色,不同波长的光线对植物的生长和发育有不同的影响。
一般来说,蓝光和红光对植物的生长促进作用较大,而绿光对植物的生长影响较小。
温度也是影响植物光敏反应的重要因素之一,适宜的温度能够促进植物的光合作用和生长发育,过高或过低的温度则会影响植物的生长速度和形态结构。
三、植物光敏反应在植物生长中的作用植物的光敏反应在植物生长中起着至关重要的作用。
首先,光敏反应能够促进植物的光合作用,提高植物的光能利用效率,从而促进植物的生长和发育。
植物叶绿素荧光特性及其在抗旱研究中的应用植物是人类生命的重要物质基础,而叶绿素则是植物生命的重要组成部分。
叶绿素具有很多特性,其中最为重要的是荧光特性。
本文将就植物叶绿素荧光特性及其在抗旱研究中的应用进行探讨。
一、叶绿素荧光特性叶绿素在光能量的作用下,吸收蓝光和红光后通过光合作用合成生物质,同时散发出绿光。
然而,当植物遭遇压力时,光合作用会受到抑制,而叶绿素则会发生鬼影效应,散发出不同于正常光合作用时的荧光信号,称为叶绿素荧光。
叶绿素荧光具有多种波长和不同时间尺度的特征。
在光合作用正常的情况下,叶绿素荧光强度较弱,而当植物受到环境胁迫时,会出现荧光强度升高的现象。
此外,叶绿素荧光的发射波长也会受到影响,通常可分为低能级和高能级两类,其中低能级荧光由氧化还原电子接受器所产生,而高能级荧光则来自于光化学反应中反向电子转移所产生。
由于叶绿素荧光和植物的环境条件息息相关,可以通过对叶绿素荧光特性的研究,获得植物在不同环境下的光合作用状况,从而为植物的生长发育以及应对压力提供有力支持。
二、叶绿素荧光在抗旱研究中的应用作为重要的植物生理信号,叶绿素荧光被广泛应用于植物抗旱研究中,既可以作为抗旱育种的优良指标,也可以为了解植物在抗旱过程中的生理特性提供有价值的信息。
下面我们将重点介绍叶绿素荧光在抗旱研究中的应用。
1. 植物光合能力的评估叶绿素荧光可以为植物光合能力的评估提供有力支持。
特别是在干旱等压力下,光合能力明显受到影响,叶绿素荧光的变化可以及时反映植物光合作用的状况。
研究表明,叶绿素荧光在叶片的不同部位和不同光合作用阶段有不同的变化规律和响应方式,因此对于不同物种、不同品种,以及在不同环境下的植物进行研究时,需要结合具体环境因素和生理特性进行分析。
2. 叶片水分状态的评估在干旱环境下,植物叶片中的水分含量明显下降。
此时,叶绿素荧光信号的强度和峰值均会出现变化,可以反映叶片的水分状态。
尤其在干旱环境下,叶绿素荧光信号的强度和峰值变化更为显著,因此可作为评估植物抗旱能力的重要指标之一。
植物光敏色素及其生物学功能的研究在自然界中,光是生命的基础,生物通过对光的感知和利用来生长和繁衍。
而植物作为光合生物,必须依赖光合作用来合成自身所需的有机物和能量。
植物感知光的能力主要来源于植物中的光敏色素。
植物光敏色素是一种能够吸收光能,并将其转化成化学能的分子。
植物光敏色素的研究已经有了长足的发展,不仅拓展了我们对植物的认识,也为开发新型光合作用提供了有益启示。
一、植物光敏色素的种类及其结构植物中最重要的光敏色素是叶绿素,它能吸收来自太阳的光线,将这些光能转换为植物生长必需的能量。
除了叶绿素,植物还拥有多种色素,不同的色素对不同波长的光呈现出独特的吸收谱。
其中,类胡萝卜素和叶黄素是另外两种可以吸收光的关键色素。
叶绿素是由大量的光合色素a和一定量的光合色素b所构成的复合物,主要存在于植物的叶片中。
类胡萝卜素则是植物中的一类色素,其主要作用是吸收光线,并将其传递给叶绿素进行光合作用。
而叶黄素则是另一类光敏色素,其主要为叶片的保护作用,能够有效吸收过剩的光线,避免其对植物的损害。
不同的光敏色素在结构上也存在差异。
以叶绿素为例,它包含一个长链的脂溶性色素分子,以及一个具有Mg离子的氯元素环。
氯元素环可以吸收特定波长的光线,使叶绿素分子激发成高能态,从而触发光合作用。
而类胡萝卜素和叶黄素的结构则与叶绿素存在显著区别。
二、植物光敏色素的生物学功能植物光敏色素在植物的生长和发育中起着重要的作用。
它们能够感知和响应外界的光线强度、波长、方向等信息,直接或间接地作用于植物的形态、色素积累、代谢和决定性状等生理过程。
植物光敏色素中尤其叶绿素是光合作用的关键,它们通过吸收特定波长的光线,使叶绿素分子激发至高能态,从而可以触发光合作用的进行,从而合成有机物和释放氧气。
植物光敏色素的生理功能不仅仅是光合作用中起到的作用那么简单。
有研究表明,叶绿素能够对植物形态和营养的合成产生影响。
针对植物光形态的研究发现,植物的表面形态受到光照条件的影响,比如对红色光照射植株干重会增加;而蓝光对植物发芽、生长和开花、营养物质吸收都有明显的促进作用。
植物光敏性和光信号传导的分子机制研究在植物的生长发育过程中,光是一个非常重要的因素。
植物对光的反应能力,主要依靠光敏感性和光信号传导系统的调节。
因此,研究植物光敏性和光信号传导的分子机制,有助于我们深入了解植物光生理生态学相关的机制。
一、植物光敏性的分子机制植物的光敏感性主要来源于叶绿体。
叶绿体产生的光能被植物利用来进行光合作用,以及其他一些重要的生理过程。
植物对光的反应对于其生长发育,以及生存环境的适应性有着重要的影响。
植物的光敏性主要由不同的色素负责,包括叶绿素、类胡萝卜素、叶黄素等。
这些色素在吸收特定波长的光时,会产生不同的反应。
例如,叶绿素的吸收峰位在485nm和660nm左右,这些波长下的光能被植物利用来展开光合作用,促进生长发育。
同时,植物的光敏感性还涉及到一些光感受器。
这些光感受器包括光依赖呼吸性调节因子(Phytochrome)、蓝/紫光受体(Cryptochromes)、UV-A感应蛋白(UVR8)等。
这些光感受器在植物对不同波长光的反应中扮演着重要的角色。
二、植物光信号传导的分子机制植物光信号传导的分子机制主要包括两个方面:激活和抑制。
在激活方面,光感受器的激活会引发一系列的蛋白磷酸化、酶反应等,调节植物对光的反应。
在抑制方面,一些负调控蛋白会对光感受器进行调控,以达到负反馈的目的。
Phytochrome是植物光信号传导的重要组成部分之一。
当Phytochrome受到红光刺激时,它会形成一种的复合物。
这个复合物可以识别一些下游基因的启动子,并且通过一些转录调控因子(Transcriptional Co-Activators)、激酶(Kinases)等的介入,调节植物的生长发育和对光的反应。
同样,一些负调控模块也参与到光信号传导的过程中。
例如,LIGHT-DEPENDENT SHORT HYPOCOTYLS1(LSH1)蛋白,可以降解一些Phytochrome 的下游调控蛋白,从而限制Phytochrome的反应。
第1篇一、实验目的1. 了解叶绿素在不同条件下的变化规律。
2. 探究叶绿素在光合作用过程中的作用。
3. 掌握实验操作方法和数据分析方法。
二、实验原理叶绿素是植物进行光合作用的关键色素,其含量和结构的变化会影响植物的光合效率。
本实验通过观察叶绿素在不同条件下的变化,探究叶绿素在光合作用过程中的作用。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:菠菜、水稻、玉米等不同植物叶片。
2. 实验仪器:分光光度计、研钵、剪刀、天平、烧杯、试管、移液管、蒸馏水、丙酮、碳酸钙、NaOH溶液等。
四、实验步骤1. 取菠菜叶片,将其洗净、晾干,用剪刀剪成约1cm²的小块,称取0.1g放入研钵中。
2. 加入少量碳酸钙,研磨至叶片变白,加入5mL丙酮,继续研磨至叶片完全溶解。
3. 将研磨液过滤,取滤液放入比色皿中,以丙酮为空白,用分光光度计测定滤液在波长665nm处的吸光度。
4. 重复步骤1-3,分别取水稻、玉米叶片进行实验。
5. 将不同植物叶片放入装有蒸馏水的烧杯中,置于光照条件下,每隔一定时间取出叶片,重复步骤1-3。
6. 将不同植物叶片放入装有NaOH溶液的烧杯中,置于光照条件下,每隔一定时间取出叶片,重复步骤1-3。
7. 记录实验数据,分析叶绿素在不同条件下的变化规律。
五、实验结果与分析1. 不同植物叶片叶绿素含量比较实验结果显示,菠菜、水稻、玉米叶片的叶绿素含量存在差异。
其中,菠菜叶片的叶绿素含量最高,水稻叶片次之,玉米叶片最低。
2. 光照条件下叶绿素含量变化实验结果显示,随着光照时间的延长,菠菜、水稻、玉米叶片的叶绿素含量逐渐增加,并在一定时间后达到最大值,之后基本保持稳定。
3. NaOH溶液条件下叶绿素含量变化实验结果显示,在NaOH溶液条件下,菠菜、水稻、玉米叶片的叶绿素含量逐渐减少,并在一定时间后基本保持稳定。
六、结论1. 叶绿素在不同植物叶片中的含量存在差异,其中菠菜叶片的叶绿素含量最高。
2. 光照条件下,叶绿素含量随光照时间的延长而增加,并在一定时间后达到最大值。
植物光敏色素的结构和功能研究植物是地球上最为重要的生命形式之一,作为光合生物,植物需要通过吸收阳光中的光能来完成自身的生长、发育和繁衍。
而植物能够利用光能的重要途径,就是通过植物光敏色素对不同波长光线的选择性吸收和反应。
随着现代科学技术的不断发展,对于植物光敏色素的结构和功能的研究也越来越深入,对于揭示植物的生命活动以及提高植物的生产力和适应性具有重要的意义。
本文将从植物光敏色素的基本特征、结构和功能及其在植物生理生态方面的研究进行探讨和总结。
一、植物光敏色素的基本特征植物光敏色素是植物体内的一类光感蛋白,主要存在于植物叶片、茎、花、根和果实等组织部位,其主要作用是通过吸收外界光能来促进植物的光合作用和其他生物学过程。
根据其吸收波长和结构特征的不同,植物光敏色素可以分为三类:类黄酮、叶绿素和类胡萝卜素。
1. 叶绿素:叶绿素是植物中最为常见的光敏色素,其结构与嗜银杆菌叶绿素类似,由一个长有卡宾环结构的类胡萝卜烯分子和一个镁离子组成。
叶绿素能够吸收蓝绿光和红光,其吸收光谱范围为400-700nm。
叶绿素在光合作用中起到了核心作用,能够转换并储存太阳光能,并将其转化为有机物质。
2. 类黄酮:类黄酮是植物中的次要黄色素,其结构特征为具有一个或多个苯环和/或吡喃环的多羟基黄酮化合物。
类黄酮的吸收光谱范围主要为250-550nm,对紫光和蓝光吸收最强,但不能吸收红光。
类黄酮在植物中的功能主要是通过吸收紫外光和蓝光来减轻光破坏并保护光合色素。
3. 类胡萝卜素:类胡萝卜素是植物中黄色和红色色素的主要来源,其结构特征为由若干个异构体的类胡萝卜烯分子组成。
类胡萝卜素的吸收光谱范围为400-500nm,其吸收红光的能力较弱。
类胡萝卜素在植物中主要功能是保护光合色素,调节抗氧化作用和参与胡萝卜素代谢。
二、植物光敏色素的结构和功能植物光敏色素的结构和功能之间密不可分,其复杂的结构及其对外界各种因素的敏感性决定了其具有多种重要的生物学功能。
第1篇一、实验目的1. 学习并掌握从菠菜中提取叶绿素的方法。
2. 了解叶绿素的化学性质及其在光合作用中的作用。
3. 培养实验操作技能和数据分析能力。
二、实验原理叶绿素是植物进行光合作用的主要色素,位于叶绿体的类囊体膜上。
叶绿素分子中含有镁离子,是镁卟啉化合物。
叶绿素分为叶绿素a和叶绿素b两种,分别吸收红光和蓝紫光,对绿光的吸收最少,因此叶片呈现绿色。
叶绿素的提取方法主要有溶剂提取法和层析法。
本实验采用溶剂提取法,利用有机溶剂(如丙酮、乙醇等)将叶绿素从菠菜叶片中提取出来。
叶绿素在有机溶剂中溶解度较高,因此可以通过这种方式提取。
三、实验仪器与材料1. 仪器:研钵、剪刀、烧杯、漏斗、玻璃棒、滤纸、滤液细线、色谱柱、脱脂棉、纱布等。
2. 材料:新鲜菠菜叶、丙酮、碳酸钙等。
四、实验步骤1. 准备材料:称取30g新鲜菠菜叶,用剪刀剪碎。
2. 研磨:将剪碎的菠菜叶放入研钵中,加入少量碳酸钙,用研杵研磨至烂。
3. 提取:将研磨好的菠菜叶转移到烧杯中,加入30mL丙酮,盖上表面皿,浸泡10-15分钟。
4. 过滤:用滤纸将提取液过滤,收集滤液。
5. 层析:将滤液滴在色谱柱的滤纸条上,层析液从上至下流过,观察色素分离情况。
五、实验结果与分析1. 提取液颜色:提取液呈绿色,表明叶绿素已从菠菜叶片中提取出来。
2. 层析结果:色谱柱上出现四条不同颜色的色带,自上而下依次为胡萝卜素(橙黄色)、叶黄素(黄色)、叶绿素a(蓝绿色)、叶绿素b(黄绿色)。
六、实验讨论1. 叶绿素在光合作用中起着至关重要的作用,是植物进行能量转换的关键色素。
本实验通过溶剂提取法成功提取了叶绿素,为后续研究提供了基础。
2. 实验过程中,碳酸钙的加入有助于防止研磨过程中叶绿素被破坏。
此外,层析法可以有效地将叶绿素与其他色素分离,便于进一步研究。
3. 本实验操作简单,但需要注意以下几点:- 研磨过程中要避免研磨过猛,以免破坏叶绿素结构。
- 提取过程中要控制好溶剂的用量和浸泡时间,以确保叶绿素充分提取。
生物实验探究叶绿素的形成是否与光有关
编者按:查字典大学网为大家收集并发布了生物实验:探究叶绿素的形成是否与光有关,供大家参考,希望对大家有所帮助!
生物实验:探究叶绿素的形成是否与光有关
方法一:
(1)实验材料与用具:大蒜2头培养皿(或小食碟)2个清水黑纸
(2)方法步骤:在每个培养皿中分别放入一个蒜头,加入清水,其中之一(甲)
用黑纸将蒜头的鳞状茎上部罩上。
放在约25℃左右的室内,二者(甲和乙)均放在光下。
(3)实验现象:10天之后,二者均可长出叶,但甲为淡黄色,乙为绿色。
(4)实验分析:有无光照二者均可生长出新叶,因为鳞状茎内贮存着大量的
有机物可供叶芽和叶片的生长。
甲呈淡黄色说明叶绿素的产生需要光,乙为对照。
实验结论:叶绿素的生成需要光。
方法二:选用大蒜的鳞叶(蒜瓣),去掉蒜皮后用细铁丝将其串起来,围成环形放在盘内,盘内放些水,做相同的两盘,分别将一盘放在有阳光的地方,另一盘放在避光的地方。
注
意盘内要保持有水。
避光处的蒜苗为黄色,光下的蒜苗为绿色。
这是因为高等植物叶绿体中的色素主要有两类,既绿色的叶绿素和黄色的类胡罗卜素,正常情况下二者的含量比例是三比一,由于叶绿素的数量占了优势,覆盖了类胡罗卜素,叶子呈现绿色。
但是,叶绿素必须在光照的条件下才能形成。
生长在黑暗条件下的植物,不能生成叶绿素,这时二者的比例不是原来的三比一,类胡罗卜素占了优势,叶子呈现黄色。
方法三:用马铃薯块(土豆),取两个马铃薯块分别放在阳光下和暗处各一个,阳光下的薯块会逐渐变成绿色,而暗处的薯块就不会变成绿色。
叶绿素的光敏性质探究(与二氢卟吩e4对比)研究背景光敏剂的光漂白(photobleaching)是指在光的照射下,光敏剂所激发出来的荧光强度随着时间推移逐步减弱乃至消失的现象,这是光动力诊断临床应用中考虑光剂量和检测需用时间的一个重要因素。
长波红光在组织中具有较大的穿透深度,从而能保证足够的治疗深度:大的吸光度能保证充分利用光能量和尽可能减少药物剂量;光敏剂吸光度的大小是决定药物剂量的理论依据。
过多的光敏剂分布于癌组织中势必会影响光的穿透深度,然而使用过少的光敏剂又不能产生应有的疗效。
因此,光敏剂的使用剂量要依据其吸光度的大小和肿瘤组织的大小来权衡。
对于同一种光敏剂,它的漂白时间将随入射光的光能流率的增大而减小。
再次,除了与光敏剂的类型有关外,还与初始浓度和入射光源的波长有关。
初始浓度越大,光漂白时间越长。
实验意义:探究不同浓度的叶绿素在不同光源、不同时间的照射下,其吸光度随时间的变化,探测其光漂白特性,为更好地在临床应用上要保持光敏剂的有效杀伤浓度,且控制好光敏剂的激发时间,这样才能保证治疗的效果。
初步设想:探究叶绿素在不同浓度,不同光源,不同光照时间对光的敏感性:(1)用紫外检测得到叶绿素的紫外可见吸收光谱,与二氢卟吩e4的光谱图比较。
(最好能同时测定荧光光谱)(2)在叶绿素的最大吸收波长处检测浓度为0.05 mg/ml ,0.1 mg/ml ,0.2 mg/ml ,0.3 mg/ml, 0.4mg/ml的叶绿素的吸光度,并制作曲线图,验证其是否符合朗伯-比尔定律。
(3)实验设置了不同的六组光源:白光、红外光、黄光、绿光、蓝光、紫外光,分别对0.4mg/ml的叶绿素待测样品进行垂直照射10min、20min、30min、40min、50min、60min、80min、100min,取照射后的各样品进行紫外-可见吸收光谱的检测,通过光谱的变化,探究光敏剂叶绿素明显的光漂白特性。
(4)另外,关于温度的影响关系实验,在恒温水浴锅里设置叶绿素溶液(0.4mg/ml)的温度分别为7℃,17℃,27℃,37℃,47℃,57℃,然后检测其吸光度,探究温度对吸光度的影响。
叶绿素的光敏性质探究(与二氢卟吩e4对比)研究背景光敏剂的光漂白(photobleaching)是指在光的照射下,光敏剂所激发出来的荧光强度随着时间推移逐步减弱乃至消失的现象,这是光动力诊断临床应用中考虑光剂量和检测需用时间的一个重要因素。
长波红光在组织中具有较大的穿透深度,从而能保证足够的治疗深度:大的吸光度能保证充分利用光能量和尽可能减少药物剂量;光敏剂吸光度的大小是决定药物剂量的理论依据。
过多的光敏剂分布于癌组织中势必会影响光的穿透深度,然而使用过少的光敏剂又不能产生应有的疗效。
因此,光敏剂的使用剂量要依据其吸光度的大小和肿瘤组织的大小来权衡。
对于同一种光敏剂,它的漂白时间将随入射光的光能流率的增大而减小。
再次,除了与光敏剂的类型有关外,还与初始浓度和入射光源的波长有关。
初始浓度越大,光漂白时间越长。
实验意义:探究不同浓度的叶绿素在不同光源、不同时间的照射下,其吸光度随时间的变化,探测其光漂白特性,为更好地在临床应用上要保持光敏剂的有效杀伤浓度,且控制好光敏剂的激发时间,这样才能保证治疗的效果。
初步设想:探究叶绿素在不同浓度,不同光源,不同光照时间对光的敏感性:(1)用紫外检测得到叶绿素的紫外可见吸收光谱,与二氢卟吩e4的光谱图比较。
(最好能同时测定荧光光谱)(2)在叶绿素的最大吸收波长处检测浓度为0.05 mg/ml ,0.1 mg/ml ,0.2 mg/ml ,0.3 mg/ml, 0.4mg/ml的叶绿素的吸光度,并制作曲线图,验证其是否符合朗伯-比尔定律。
(3)实验设置了不同的六组光源:白光、红外光、黄光、绿光、蓝光、紫外光,分别对0.4mg/ml的叶绿素待测样品进行垂直照射10min、20min、30min、40min、50min、60min、80min、100min,取照射后的各样品进行紫外-可见吸收光谱的检测,通过光谱的变化,探究光敏剂叶绿素明显的光漂白特性。
(4)另外,关于温度的影响关系实验,在恒温水浴锅里设置叶绿素溶液(0.4mg/ml)的温度分别为7℃,17℃,27℃,37℃,47℃,57℃,然后检测其吸光度,探究温度对吸光度的影响。
(5)量取1ml 0.8mg/ml的叶绿素溶液分别加入1.0ml0. 05mol/L的HCl溶液,1.0ml0.01mol/L的HCl溶液,1.0ml水,1.0ml0.01mol/L的NaOH溶液,1.0ml 0. 05mol/L的NaOH溶液,用pH计测定其pH值,再测定其在最大吸收波长下的吸光度,探究pH值对吸光度的影响。
仪器药品:SHIMADZU 生产的UV 1700 spectrophotometer (UV 1700 岛津分光光度计)、紫外灯、红光灯、黄光灯、绿光灯、蓝光灯、白光灯、罩灯的纸箱、插座、移液枪、石英比色皿、蒸馏水、擦镜纸、烧杯、4ml一次性试管(8支)、标签纸、容量瓶、黑色塑料袋、计时器、叶绿素(1 mg/ml,0.4mg/ml,0.3 mg/ml,0.2 mg/ml,0.1 mg/ml,0.05 mg/ml),0.5mol/L NaOH溶液,0.5mol/L HCl 溶液实验所需的药品预先配制好,配好的药品盛装在棕色细颈玻璃瓶中, 避光低温保存在冰箱冷藏室。
实验步骤:叶绿素的光敏性质实验1.待测叶绿素溶液的配制(1)1.0mg/ml叶绿素溶液称取25mg 叶绿素,用去离子水完全溶解,再定容至25ml;(2)0.8mg/ml叶绿素溶液移取8ml(1)号溶液,用去离子水定容至10ml;(3)0.4mg/ml叶绿素溶液移取10ml(1)号溶液,用去离子水定容至25ml;(4)0.3mg/ml叶绿素溶液:移取3ml(1)号溶液,用去离子水定容至10ml;(5)0.2mg/ml叶绿素溶液移取2ml(1)号溶液,用去离子水定容至10ml;(6)0.1mg/ml叶绿素溶液移取1.0ml(1)号溶液,用去离子水定容至10ml;(7)0.05mg/ml叶绿素溶液移取0.5ml(1)号溶液,用去离子水定容至10ml;2.光照实验(1)选取0.4mg/ml,0.3 mg/ml,0.2 mg/ml,0.1 mg/ml,0.05 mg/ml叶绿素溶液,在测量溶液0分钟光照时的紫外吸收光谱,先找出最高吸收峰值对应的吸收波长,根据光敏剂的光源选择原理,选取了符合波长的光源作为激发光源。
在激发光源一致的条件下,再进行不同光敏物质的分组照射及紫外吸收光谱检测。
在不同浓度的叶绿素溶液进行紫外检测(450~700nm),得出扫描图谱。
附注:样品在502nm(S带)和656nm(Q带)处有两个特征吸收峰,在656nm 处叶绿素有一个强吸收峰,在502nm处有一个弱吸收峰,目前的分析工作仍在Q 带进行检测。
选择Q带波长是因为在Q带检测有较高的灵敏性,物质在Q带的吸收强度比S带强。
因此选定656nm为叶绿素的检测波长。
随着溶液浓度的增大,叶绿素在可见光区的吸收也增大,但是吸收带的形状没有发生变化。
不管是在高浓度还是在低浓度下,除了吸收强度有所变化外,吸收峰的相对大小和位置没有变化,也没有出现新的吸收带。
说明在不同浓度溶液中叶绿素均以单体形式存在。
A b s波长/nm(2)在相同最大吸收波长656nm 下,对刚配制好的各浓度叶绿素溶液进行紫外检测测定吸光度,分析叶绿素的吸光度对浓度的关系是否符合朗伯-比尔定律。
叶绿素浓度与吸光度的关系曲线满足:y=4.9757-0.063 (R2=0.9999),可见叶绿素在浓度值为0.05~0.4mg/mL范围内,其与吸光度呈现一定的线性关系,符合朗伯-比尔定律。
故在以下不同光照时间中,只选取了0.4mg/mL浓度的叶绿素溶液作为实验检测。
(2.1)采用紫光的光源在暗室中对待测样品(叶绿素,0.4mg/ml)进行10min、20min、30min、40min、50min、60min、80min、100min、时间的垂直照射,每次照射后取适量溶液进行紫外-可见吸收光谱的检测,分析叶绿素的光漂白特性。
叶绿素在波长为紫光的光源下的光照时间与吸光度的关系:吸光度AA b s波长/nm(2.2)用红光作为光源,分别把叶绿素的0.4 mg/ml 进行10min 、20min 、30min 、40min 、50min 、60min 、80min 、100min 时间的垂直照射,取照射后的各样品进行紫外-可见吸收光谱的检测,在同种物质、时间间隔一样(10min )的条件下进行了对比实验。
叶绿素在红光光源下的光照时间与吸光度的关系:吸光度A时间/min-0.50.00.51.01.52.02.53.03.54.04.5A b s波长/nm(2.3)用黄光光源分别把叶绿素的0.4 mg/ml 进行10min 、20min 、30min 、40min 、50min 、60min 、80min、100min 时间的垂直照射,取照射后的各样品进行紫外-可见吸收光谱的检测,在同种物质、时间间隔一样(10min )的条件下进行了对比实验。
叶绿素在波长为黄光光源下的光照时间与吸光度的关系:吸光度AA b s波长/nm(2.4)用绿光灯光分别把叶绿素的0.4 mg/ml 进行10min 、20min 、30min 、40min 、50min 、60min 、80min 、100min 时间的垂直照射,取照射后的各样品进行紫外-可见吸收光谱的检测,在同种物质、时间间隔一样(10min )的条件下进行了对比实验。
叶绿素在波长为绿光灯光源下的光照时间与吸光度的关系:1.701.751.801.851.901.95吸光度A时间/minA b s波长/nm(2.5)用蓝光灯分别把叶绿素的0.4 mg/ml 进行10min 、20min 、30min 、40min 、50min 、60min 、80min 、100min 时间的垂直照射,取照射后的各样品进行紫外-可见吸收光谱的检测,在同种物质、时间间隔一样(10min )的条件下进行了对比实验。
叶绿素在波长为蓝光灯光源下的光照时间与吸光度的关系:吸光度A0.00.51.01.52.02.53.0A b s波长/nm(2.6)用白光分别把叶绿素的0.4 mg/ml 进行10min 、20min 、30min 、40min 、50min 、60min 、80min 、100min 时间的垂直照射,取照射后的各样品进行紫外-可见吸收光谱的检测,在同种物质、时间间隔一样(10min )的条件下进行了对比实验。
叶绿素在波长为白光灯光源下的光照时间与吸光度的关系:吸光度A时间/minA b s波长/nm(3)在最大吸收波长656nm 下(严格控制光照时间),2℃、17℃、27℃、37℃、47℃、57℃的0.4mg/ml 叶绿素溶液测定吸光度,探究温度对叶绿素光谱特性的影响。
0.00.51.01.52.02.53.0A b s波长/nm在温度为2℃和17℃时,叶绿素的最大吸收波长为654bn ,波长发生了蓝移,而在27、37、47、57℃时,最大吸收波长都在656nm ,没有发生改变。
A b s温度/℃(4)在最大吸收波长下656nm (严格控制光照时间),在0.8mg/ml 叶绿素溶液的中,分别加入1.0ml 水,1.0ml0.01mol/L 的HCl 溶液,1.0ml0.01mol/L 的NaOH 溶液,1.0ml0.005mol/L 的HCl 溶液,1.0ml0.005mol/L 的NaOH 溶液,用pH 计测定其pH 值,再测定紫外吸收值,观测pH 值对溶液吸光度的影响。
(即叶绿素的检测浓度均为0.4mg/mL ) 探究pH 对叶绿素光谱特性的影响。
0.00.51.01.52.02.53.0A b s波长/nm0.4mg/mL 的叶绿素溶液在pH=1.12时,最大吸收波长为662nm ,发生了红移,而在pH=2.00时,最大吸收波长为654nm ,发生了蓝移。
而在pH=6.60、11.93、12.77时,最大吸收波长都在656nm 没有发生改变。