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脾脏单个核细胞的制备脾脏单个核细胞的制备: 将5 只小鼠断颈椎处死, 无菌取出脾脏, 分别剪碎, 置200 目无菌尼龙网上, 分次滴入4~ 5 ml RPMI1640 培养液, 轻轻研磨脾脏, 直到脾脏变白;收集细胞悬液( 由于红细胞所占比例很低且对实验影响不大, 故无需作红细胞裂解处理) , 1 000 r/ min( 离心半径17. 5 cm) 离心5 min, 弃上清; 加入2 ml pH7. 4 的PBS, 混匀后1 000 r/ min( 离心半径17. 5 cm) 离心5min, 弃上清; 加入4 ml RPMI1640 培养液, 混匀, 用RPMI1640 培养液稀释200 倍后滴加在细胞计数板上进行细胞计数, 根据计数结果用RPMI1640 将细胞悬液调成2 × 10 / 300 µl 的浓度。
《流式细胞术检测小鼠脾细胞内细胞因子刺激方案的筛选》单细胞悬液的制备：将大鼠颈椎脱位处死后, 置70%乙醇中浸泡5 m in, 无菌取出脾脏和胸腺置于平皿中, 除掉结缔组织, 用生理盐水清洗3次。
加入2 mL RPM I- 1640完全培养液, 用剪刀分别将脾和胸腺剪成1 mm 1 mm 1 mm 碎块后, 用毛玻片轻柔研磨组织碎片, 经8层纱布过滤制成单细胞悬液, 经H anks液离心洗涤后, 将细胞悬浮于含10%小牛血清的RPM I- 1640 培养液。
台盼蓝染色, 计数活细胞在95%以上, 调整细胞数至5×10 cells /L。
《粗江蓠多糖对大鼠淋巴细胞周期的影响》610制备脾细胞悬液脾淋巴细胞的获取:手术刀、解剖剪、解剖镊、止血钳等手术器械,300 目尼龙网等须经消毒处理; 以颈椎脱臼法处死小鼠, 用7 5 % 乙醇浸泡小鼠10-15min 。
沿腹腔中线剪开小鼠胸腔, 取出脾脏置于培养皿中, 剪去脂肪和筋膜组织, 用R PMI-1640培养液漂洗。
粗剪成小块, 用注射器芯轻轻挤压, 加人基础培养液, 混悬, 用300目尼龙网过滤到玻璃离心管中, 再加人基础培养液冲洗网上剩余组织细胞。
小鼠脾脏细胞原代培养及观察计数【实验目的】1.学习掌握细胞培养的基本原理以及具体方法，并对小鼠脾细胞进行原代培养；2.掌握无菌操作的具体过程及无菌操作台的使用；3.学习掌握染色法鉴别细胞的生死状态的原理及方法；4.学习使用血球计数板对细胞总数及活细胞数进行计数；【实验原理】A.细胞培养细胞培养指的是在无菌条件下，把动、植物细胞从组织中取出，在体外模拟体内的生理环境，使离体的细胞在体外生长和繁殖，并且维持其结构和功能的一种培养技术。
动物细胞培养可分为原代培养和传代培养。
从供体获得组织细胞，在无菌条件下，用胰蛋白酶消化或机械分散等方法，将动物组织分散成单个细胞开始首次培养长出单层细胞的方法称为细胞的原代培养。
当培养的动物细胞生长增殖达到一定密度，形成致密的单层细胞时，用胰蛋白酶将细胞消化分散成单细胞，从一个容器中以1：2或其他比例转移到另一个容器中扩大培养的方法，称为细胞的传代培养。
传代培养的累计次数就是细胞的培养代数。
高等生物是由多细胞构成的整体，在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体内的功能活动是十分困难的。
但如果把活细胞拿到体外培养、增殖并进行观察和研究，则要方便和简单得多。
被培养的动物细胞是非常好的实验对象和实验研究材料，对体外培养的活细胞进行研究可以帮助人类揭开生、老、病、死的规律，探索优生、抗衰老和防治各种疾病的途径和机制，也可以人为地诱导和改变细胞的遗传性状和特性，使其向有利于人类健康长寿的方向发展。
因此动物细胞体外培养技术是研究细胞分子机制非常重要的实验手段，被广泛应用于医学、生物技术、基因工程等研究领域。
细胞培养的意义:具有其他生物技术无可比拟的优点；培养条件易改变和控制，便于单因子分析；便于人们直接对细胞内结构、细胞生长及发育等过程的观察；在生物学的各个领域（如分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿瘤学及病毒学等）已被广泛应用。
细胞培养的局限性：在脱离机体复杂环境下，细胞培养条件与躯体环境有一定距离；观察到的结果有时难以正确反映机体内的状况；细胞培养得到的产物少。
小鼠脾脏单个核细胞分离及细胞计数实验时间：实验地点：实验人：1实验原理小鼠脾脏位于上腹部左后侧，体积较大，长条形，属于外周免疫器官。
外周血中淋巴细胞可经再循环驻如脾脏等外周免疫器官的特定区域，所以富含各类免疫细胞。
免疫细胞的分离：采用红细胞裂解法，是根据细胞对渗透压变化的敏感度。
红细胞由于细胞结构较为简单，仅有细胞膜结构，对于膨胀的耐受能力较差，因此绝大部分就会涨破，受到破坏。
是一种比较温和的去除红细胞最简便易行的方法。
2实验材料：1)健康小鼠2)手术器械（剪刀、镊子）、解剖板3)70%乙醇4)PBS缓冲液、红细胞裂解液（ACK）5)0.2%台盼蓝6)细胞计数板、计数器7)离心机8)显微镜3实验方法：3.1取小鼠脾脏●将小鼠颈椎脱位处死，用酒精消毒。
●用剪刀剪开背部皮肤，再找到脾脏，用镊子夹出脾脏并剪除周围组织。
3.2制备单个核细胞悬液●将取出的脾脏置于盛有3mlPBS缓冲液的平皿中，然后再置于尼龙指套中，用针芯轻轻碾压使得单个核细胞悬浮于平皿中。
●吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管（15ml）中，以1500rpm离心10min，弃去上清液，加入ASK至2-3ml，轻轻吹打混匀并放置2min，以破坏红细胞。
然后加入PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心10min。
●弃去上清液，用PBS缓冲液定容至2ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞悬液。
3.3计算细胞浓度稀释十倍，随机选取一个大方格计数细胞计数为324个，计算细胞浓度为324×104×10=3.24×107/ml3.4计算细胞活力在总计为324个细胞中计数，死亡细胞有16个，计算细胞活力为：324-16/324×100%=95.1%在理论范围之内4实验结果4.1研磨脾脏得到细胞悬液本实验中将小鼠的脾脏放入尼龙指套内，置于少量PBS液中缓慢研磨，获得细胞悬液。
实验中，我们发现尼龙指套不能滤去所有结缔组织，操作中会有结为絮状团块的结缔组织。
小鼠脾脏单个核细胞分离及细胞计数实验时间：____________ 实验地点：_____________ 实验人：__________________ 1实验原理小鼠脾脏位于上腹部左后侧，体积较大，长条形，属于外周免疫器官。
外周血中淋巴细胞可经再循环驻如脾脏等外周免疫器官的特定区域，所以富含各类免疫细胞。
免疫细胞的分离：采用红细胞裂解法，是根据细胞对渗透压变化的敏感度。
红细胞由于细胞结构较为简单，仅有细胞膜结构，对于膨胀的耐受能力较差，因此绝大部分就会涨破，受到破坏。
是一种比较温和的去除红细胞最简便易行的方法。
2实验材料：1）健康小鼠2）手术器械（剪刀、镊子）、解剖板3）70汇醇4）PBS缓冲液、红细胞裂解液（ACK5）0.2%台盼蓝6）细胞计数板、计数器7）离心机8）显微镜3实验方法：3.1取小鼠脾脏将小鼠颈椎脱位处死，用酒精消毒。
用剪刀剪开背部皮肤，再找到脾脏，用镊子夹出脾脏并剪除周围组织。
3.2制备单个核细胞悬液将取出的脾脏置于盛有3mlPBS缓冲液的平皿中，然后再置于尼龙指套中，用针芯轻轻碾压使得单个核细胞悬浮于平皿中。
吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管（15ml）中，以1500rpm离心10min, 弃去上清液，加入ASK至2-3ml，轻轻吹打混匀并放置2min,以破坏红细胞。
然后加入PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心10min。
弃去上清液，用PBS缓冲液定容至2ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞悬液。
3.3 计算细胞浓度稀释十倍，随机选取一个大方格计数细胞计数为324个，计算细胞浓度为324X 104X 10=3.24 X 107/ml3.4 计算细胞活力在总计为324个细胞中计数，死亡细胞有16 个，计算细胞活力为：324- 16/324 X 100%=95.1%在理论范围之内4 实验结果4.1 研磨脾脏得到细胞悬液本实验中将小鼠的脾脏放入尼龙指套内，置于少量PBS液中缓慢研磨，获得细胞悬液。
地塞米松调节T细胞免疫应答保护小鼠急性炎性肝损伤的作用刘焕荣;陆芸;张正国;王健;王昱;刘光伟;薛峰【摘要】背景：在小鼠急性炎性肝损伤中，地塞米松（Dex）可通过抑制天然免疫细胞功能抑制肝损伤进展，然而T 细胞是否参与此保护作用尚少见报道。
目的：探讨 Dex 在急性炎性肝损伤中对 T 细胞免疫应答的调节效应。
方法：6只雄性C57BL/6J 小鼠随机分为实验组和模型组，在以脂多糖诱导急性炎性肝损伤模型前1 h，两组分别腹腔注射 Dex 5 mg/ kg 和等体积 PBS。
建模12 h 后处死小鼠，行临床评分并检测肝功能；分离脾脏单个核细胞，分析 T 细胞活化情况以及各 T细胞亚群的细胞因子表达、分泌和转录因子表达。
结果：实验组小鼠临床评分和血清转氨酶水平均明显低于模型组，脾脏 CD44+ CD62L - T 细胞（活化或记忆性 T 细胞）比率显著降低，Th1型细胞因子 IFN-γ表达、分泌减少，Th2型细胞因子IL-4表达、分泌增加，调节性 T 细胞（Treg 细胞）比率、Th2/ Th1、Treg/ Th1比值增加；同时，Th1细胞特异性转录因子表达下调，Th2、Treg 细胞特异性转录因子表达上调。
结论：Dex 通过抑制 T 细胞活化并调节 T 细胞亚群分化（抑制Th1细胞分化，促进 Th2、Treg 细胞分化），在急性炎性肝损伤中起一定保护作用。
%Background:Dexamethasone can protect mice against the acute inflammatory liver injury by inhibiting innate immune cell function. However,the roles of T cell in this protective effect remain unknown. Aims:To investigate the regulatory effect of dexamethasone on T cell immune response in acute inflammatory liver injury. Methods:Six maleC57BL/ 6J mice were randomly divided into 2 groups. One hour before induction of acute inflammatory liver injury by lipopolysaccharide,dexamethasone 5 mg/ kg and PBS were given intraperitoneally in experimental group and model group,respectively. All the mice were sacrificed 12 hours after model construction. The clinical score and liver function parameters were assessed;splenic mononuclear cells were isolated for measurements of T cell activation,as well as cytokineexpression,secretion, and transcriptional factor expression for different T-cell subsets. Results:Clinical score and serum levels of transaminase were significantly lower in experimental group when compared with the model group. Meanwhile,percentage of CD44 +CD62L - T cells(i. e. activated or memory T cells)from spleen was significantly decreased in experimental group. Among splenic T cell population,expression and secretion of IFN-γ,a Th1-type cytokine,was decreased;expression and secretion of IL-4,aTh2-type cytokine,percentage of regulatory T cells(Treg cells),and ratios of Th2 / Th1 and Treg/ Th1 were increased;transcriptional factor specific for Th1 cells was down-regulated,and those for Th2 and Treg cells were up-regulated. Conclusions:Dexamethasone inhibits T cell activation and directs the reciprocal T cell lineage differentiation (repressing Th1 cell differentiation,promoting Th2 and Treg cell differentiation),which may contribute to the protection against acute inflammatory liver injury.【期刊名称】《胃肠病学》【年(卷),期】2015(000)006【总页数】5页(P324-328)【关键词】肝损伤;地塞米松;淋巴细胞活化;细胞分化;Th1-Th2 平衡【作者】刘焕荣;陆芸;张正国;王健;王昱;刘光伟;薛峰【作者单位】上海交通大学医学院附属仁济医院肝脏外科 200127; 复旦大学基础医学院免疫学系;复旦大学基础医学院免疫学系;复旦大学基础医学院免疫学系;复旦大学基础医学院免疫学系;复旦大学基础医学院免疫学系;复旦大学基础医学院免疫学系;上海交通大学医学院附属仁济医院肝脏外科 200127【正文语种】中文* Email:*****************背景：在小鼠急性炎性肝损伤中，地塞米松(Dex)可通过抑制天然免疫细胞功能抑制肝损伤进展，然而T细胞是否参与此保护作用尚少见报道。
小鼠脾脏单个核细胞分离及细胞计数
实验时间：实验地点：实验人：
1实验原理
小鼠脾脏位于上腹部左后侧，体积较大，长条形，属于外周免疫器官。
外周血中淋巴细胞可经再循环驻如脾脏等外周免疫器官的特定区域，所以富含各类免疫细胞。
免疫细胞的分离：采用红细胞裂解法，是根据细胞对渗透压变化的敏感度。
红细胞由于细胞结构较为简单，仅有细胞膜结构，对于膨胀的耐受能力较差，因此绝大部分就会涨破，受到破坏。
是一种比较温和的去除红细胞最简便易行的方法。
2实验材料：
1)健康小鼠
2)手术器械（剪刀、镊子）、解剖板
3)70%乙醇
4)PBS缓冲液、红细胞裂解液（ACK）
5)0.2%台盼蓝
6)细胞计数板、计数器
7)离心机
8)显微镜
3实验方法：
3.1取小鼠脾脏
●将小鼠颈椎脱位处死，用酒精消毒。
●用剪刀剪开背部皮肤，再找到脾脏，用镊子夹出脾脏并剪除周围组织。
3.2制备单个核细胞悬液
●将取出的脾脏置于盛有3mlPBS缓冲液的平皿中，然后再置于尼龙指套中，
用针芯轻轻碾压使得单个核细胞悬浮于平皿中。
●吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管（15ml）中，以1500rpm离心10min，
弃去上清液，加入ASK至2-3ml，轻轻吹打混匀并放置2min，以破坏红细胞。
然后加入PBS缓冲液至10ml，以1500rpm离心10min。
●弃去上清液，用PBS缓冲液定容至2ml，吹打混匀即为小鼠脾脏单个核细胞
悬液。
3.3计算细胞浓度
稀释十倍，随机选取一个大方格计数
细胞计数为324个，计算细胞浓度为324×104×10=3.24×107/ml
3.4计算细胞活力
在总计为324个细胞中计数，死亡细胞有16个，计算细胞活力为：
324-16/324×100%=95.1%
在理论范围之内
4实验结果
4.1研磨脾脏得到细胞悬液
本实验中将小鼠的脾脏放入尼龙指套内，置于少量PBS液中缓慢研磨，获得细胞悬液。
实验中，我们发现尼龙指套不能滤去所有结缔组织，操作中会有结为絮状团块的结缔组织。
这些结缔组织在离心后会和细胞绞缠在一起，去除十分麻烦，而且会损失细胞。
应该在离心之前尽早用吸管吹打后小心弃去（这样损失的细胞比较少，造成较小的误差）。
研磨脾脏时的力度、时间、温度都会影响细胞的活性。
所以应置于冰上快速、轻柔地研磨，置于液体中避免干磨。
我们在实验室室温下碾磨，造成细胞破碎较多，影响最终实验结果。
4.2白细胞计数
在使用血球计数板时，遇到了镜下看不到计数板格子线的问题:起初，我们小组能够在镜下观察到细胞，但是细胞清晰时无法找到计数板格子线。
后来我们
意识到，这可能是因为充池后立即观察，细胞还悬浮在液体中，和方格线不在同一个平面上。
静置2分钟后再调焦观察，只能隐约看到方格线。
在反复调试中发现，减小光圈并降低光源亮度可以增加方格线的清晰度。
另外，一定要注意在充池前对计数板的清洁。
我们小组起初用卫生纸对计数板清洁，在镜下发现残留很多纸纤维，严重影响观察。
改用擦镜纸清理后，就大大减少了杂物对视野的影响。
