军犬侵袭性大肠埃希菌分离鉴定及药敏试验

宠物源性大肠杆菌耐药性调查师志海;王文佳;兰亚莉;陈朝喜【摘要】To understand drug resistance of Escherichia coli isolated from pets in Guangzhou,broth microdilution method was used for antimicrobial agent susceptibility testing of 120 clinical E. coli isolates to ceftiofur, enrofloxacin and other 11 antibiotics and the experimental data were statisticized by WHONET 5. 4 software. Based on the results of drug resistance pattern analysis, it can guide the clinical use of drugs for pets and provide a theoretical basis for drug resistance surveillance.%本试验采用微量肉汤稀释法对120株宠物医院分离的大肠杆菌进行头孢噻呋、恩诺沙星等13种抗生素的最小抑菌浓度(MIC)值测定,并利用WHONET 5.4软件对数据进行处理,以了解广州市宠物源性大肠杆菌的耐药情况.通过对其耐药谱型的调查,为指导宠物临床用药和耐药性及耐药性监测提供理论依据.【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2012(039)007【总页数】2页(P244-245)【关键词】微量肉汤稀释法;耐药谱型;耐药监测【作者】师志海;王文佳;兰亚莉;陈朝喜【作者单位】河南省农业科学院畜牧兽医研究所,河南郑州450002;华南农业大学兽医学院,广东广州 510642;河南省农业科学院畜牧兽医研究所,河南郑州450002;西南民族大学生命科学与技术学院,四川成都610041【正文语种】中文【中图分类】S851.4+3犬大肠杆菌病是由致病性大肠杆菌所引起的犬的急性肠道传染病，当饲养管理不当、犬舍卫生不良、气候剧变、仔犬哺乳不足及在其他某些应激因素的作用下，使仔犬体质变差、抵抗力降低时，便可引起大肠杆菌内源性感染，或经消化道或脐带感染（高文鑫等，2009）。

致病性大肠杆菌的分离鉴定及药敏试验1.材料与方法1.1实验材料1.1.1器材设备：剪刀、镊子、手术刀、接种环、接种针、涂布棒、酒精灯、载玻片、盖玻片、染色缸、染色架、革兰氏染液、光学显微镜、香柏油、恒温培养箱、游标卡尺等。

1.1.2病料采集：根据临床症状、流行病学采集疑似发病未死猪或刚死亡猪只的肝脏、脾脏、心脏、肺脏、大肠、排泄物等并冷藏运输于3h内送至实验室，待检。

1.1.3培养基与试剂：普通营养琼脂、麦康凯琼脂、伊红美蓝琼脂、微量生化反应管、药敏片、青霉素等抗生素。

1.2试验方法1.2.1细菌的形态学检查：触片镜检，用镊子夹取待检病料一端，再用灭菌过的剪刀剪出一个切面，将新鲜的切面在干净的载玻片上轻触几下，载玻片自然干燥后进行瑞氏染色或美兰染色并镜检。

可初步判断待检病料中是否含有细菌。

触片也可以是排泄物悬浮液或研磨后的组织液，注意，为避免细胞碎片影响观察，涂片或触片时一定要均匀、薄。

1.2.2分离培养：将手术刀灼烧趁热在待检病料表面烫一下，以杀灭其表面杂菌；用无菌剪刀在烫面剪出一个小口，用灭菌过的接种环从其切面伸入并旋转勾取组织，用分区划线的方法接种于普通营养琼脂培养基、麦康凯培养基和伊红美蓝培养基上；或将组织研磨后用灭菌生理盐水或灭菌PBS液稀释，再用接种环勾取悬浮液使用分区划线的方法接种于普通营养琼脂培养基、麦康凯培养基和伊红美蓝培养基上，置37℃恒温箱培养18-24h后观察菌落形态。

在普通营养琼脂培养基上长出灰白色光滑圆形菌落，麦康凯培养基上长出粉红色或砖红色光滑圆形菌落，在伊红美蓝培养基上长出紫黑色并有金属光泽的光滑圆形菌落。

注：麦康凯培养基和伊红美蓝培养基为鉴别培养基。

1.2.3培养物革兰氏染色：用接种环取一滴灭菌生理盐水于载玻片上→用接种环挑去麦康凯培养基上单个中等大小的红色菌落于生理盐水中混匀→均匀涂布成直径约为1cm的薄层→那载玻片在酒精灯上方30-40cm处干燥→使用酒精灯外焰固定→滴加一滴草酸结晶紫1min→水洗→加革兰氏碘液2-3min→水洗→95%酒精脱色0.5-1min →水洗→滴加石炭酸复红0.5-1min，用滤纸吸干，油镜镜检。

大肠埃希氏菌的分离鉴定与药敏试验作者：张鑫来源：《当代畜禽养殖业》 2019年第2期张鑫浙江省湖州市安吉县天荒坪镇畜牧兽医站 313300摘要：大肠埃希氏菌通常被称作大肠杆菌，外文名称（学名）Escherichia coli。

它属于细菌界，变形菌门，V-变形菌纲，肠杆菌目，肠杆菌科，埃希氏菌属，大肠杆菌种。

大肠杆菌主要寄生于人和动物的大肠内，约占肠道菌的1%。

是一种两端钝圆、能运动、无芽孢的革兰氏阴性短杆菌。

该菌常引起动物严重腹泻和败血症。

关键词：大肠埃希氏菌；分离鉴定；药敏试验近年来随着集约化养鸡业的迅速发展，大肠杆菌病的流行日趋严重，其不仅使患病的鸡群生长发育受阻，饲料转化率下降，死淘率及屠宰废弃率增加，而且种鸡及产蛋鸡的蛋品质下降，孵化率降低，以及治疗费用增加等等，给养鸡户造成了极大的经济损失。

1 大肠埃希氏菌的主要特点大肠埃希氏菌属于原核生物，具有由肽聚糖组成的细胞壁，只含有核糖体简单的细胞器，没有细胞核，有拟核。

细胞质中的质粒常用作基因工程中的运载体。

大肠埃希氏菌属于异养兼性厌氧型。

大肠埃希氏菌和人体在不致病的情况下可认为是互利共生，在致病的情况下可认为是寄生。

大肠埃希氏菌遇到伊红美蓝，菌落呈深紫色，并有金属光泽。

2 大肠埃希氏菌导致的疾病（1）鸡大肠杆菌病引起的急性败血症。

各种日龄的鸡均可发病，病鸡腹泻或呼吸困难。

剖检心脏和肝脏，表面覆盖一层容易剥离的白色纤维素膜(肝周炎、心包炎)，肉鸡大肠杆菌病还容易继发肉鸡腹水症。

（2）雏鸡脐炎。

该病一般是由大肠杆菌和其他细菌混合感染引起，主要发生于刚出壳的雏鸡，多数在出壳后2~3日内死亡。

病雏虚弱，常堆挤在一起，水样腹泻，腹部膨大，脐孔未闭合，呈蓝黑色，有刺激性恶臭味，死亡率在l0%以上。

（3）气囊炎。

病鸡表现为咳嗽和呼吸困难，呈地方性流行，病死率5%~20%，有时可达50%。

还有鸡大肠杆菌病引起的肠炎、蛋鸡输卵管炎、卵黄性腹膜炎、脑炎和全眼球炎等。

鸡致病性大肠杆菌的分离培养及药敏实验实验基本步骤：样品→肝、脾触片革兰氏染色镜检→普通琼脂平板、麦康凯琼脂平板分离培养→革兰氏染色镜检、生化实验鉴定→普通肉汤培养基增殖培养→药敏实验。

1 病料采集1.1 准备材料：试管、载玻片、手术刀、手术剪、结扎绳、记号笔、冰块、泡沫箱、口罩、手套（该灭菌的都进行高压蒸汽灭菌）、冰箱。

1.2 取材部位：血液、肝脏、脾脏、肠内容物，若有鸡胚感染则去鸡胚及卵黄物。

1.3 操作方法：将病死鸡浸泡在消毒剂溶液中，打开腹腔，无菌采集肝脏、脾脏放于事先准备好的灭菌试管内，将带有肠内容物的肠管两端结扎放于灭菌是试管内。

将有明显病变的脏器入肝、脾进行触片，做好标记。

都贴上标签，标示采集样品，来源地，采集时间，采集人。

将装有病料的试管放在放有冰袋的泡沫箱中，及时返回实验室，置于4℃冰箱待检。

2 菌的分离培养及鉴定2.1 准备材料：光学显微镜、革兰氏染色液、载玻片、手术刀、接种环、平皿、恒温箱、高压锅、摇床、酒精灯、葡萄糖、甘露醇、乳糖、蔗糖等微量生化发酵管，蛋白胨水（蛋白胨(或胰蛋白胨)20g、氯化钠5g、蒸馏水1000mL pH7.4），葡萄糖蛋白胨水溶液（每100 mL蛋白胨水中加入葡萄糖1g）、甲基红试剂、吲哚试剂、乙醚、VP指示剂、超净台。

培养基：A. 普通琼脂培养基（牛肉粉 3g、蛋白胨 10g、氯化钠 5g、琼脂 20g、蒸馏水1000ml，ph7.3±0.1），B. 麦康凯琼脂培养基（蛋白胨20g、牛胆盐5g、氯化钠5g、琼脂15g，乳糖10g、结晶紫0.001g、中性红0.025g，ph7.2±0.2。

），C. 营养肉汤培养基（牛肉粉 3g、蛋白胨 10g、氯化钠 5g、蒸馏水1000ml，ph7.2±0.2）。

2．2 样品触片镜检涂片镜检：取触片,进行革兰氏染色镜检。

2.2.1在玻片上滴加草酸铵结晶紫染色液，作用1min，水洗。

2.2.2 加革兰氏碘液于玻片上媒染，作用1min，水洗。

822020年第3期 吉林畜牧兽医·畜牧科学·XuMu KeXue犬皮肤真菌病病原分离鉴定与药敏试验黄浩轩上海八公叔叔网络科技有限公司，上海 200000摘 要：本文选取了58个犬皮肤真菌病的病灶样本，结合伍德氏灯检查、皮肤样品接种与培养、形态学鉴定、PCR 鉴定纸片扩散法展开犬类真菌性皮肤病的病原分离鉴定与药敏试验。

结果显示：犬小孢子菌在14 d 时基本成熟；链格孢霉在第7天基本成熟；犬小孢子菌、链格孢霉对NYS 最敏感，产生的抑菌圈最大。

关键词：犬类真菌性皮肤病；病原分离鉴定；药敏试验为了对犬皮肤真菌病的主要病原进行深入了解，落实真菌分离培养、鉴定极为必要。

同时，要保证使用抗真菌药物的合理性，就有必要展开药敏试验。

依托这样的鉴定与试验，能够筛选出适合犬皮肤真菌病治疗的药物。

1 试验准备1.1 试验菌株随机采集了58个犬皮肤真菌病的病灶样本，进行真菌分离培养。

1.2 仪器与设备本次试验使用的仪器设备包括伍德氏灯、培养皿、电泳仪、压力蒸汽灭菌器、基因扩增仪、低温离心机、霉菌培养箱、分析天平、工作台、紫外凝胶成像系统。

使用的主要试剂与药品包括制霉菌素标准品、伊曲康唑标准品、酮康唑标准品、制霉菌素药敏纸片、伊曲康唑药敏纸片、西班牙琼脂糖凝胶、真菌DNA 提取液等。

2 试验方法2.1 伍德氏灯检查将病犬带入暗室内进行伍德氏灯检查。

将伍德氏灯预热5 min，使其距离病犬皮肤5～10 cm，进行照射，记录患处的荧光反应。

2.2 皮肤样品接种与培养提取病犬毛发，将其移入沙氏培养基中接种；使用封口膜对平板进行密封倒置，标注编号、日期等基本信息；放入28 ℃的恒温培养皿中。

2.3 病原真菌的形态学鉴定对确认为真菌的菌株进行多次的纯化处理，获取稳定菌落。

每间隔1 d 观察、记录真菌的生长状态、镜检结果等。

2.4 病原真菌的PCR 鉴定提取真菌的DNA，进行PCR 反应与琼脂糖凝胶电泳，对扩增产物送检测序[1]。

临床分离大肠埃希菌对常用抗菌药物的敏感性分析摘要：目的：分析2015-2021年期间本院住院患者临床分离大肠埃希菌对常用抗生素的敏感性。

方法：获取并回顾性分析2015-2021年期间临床分离的585份大肠埃希菌标本，对其来源、分布情况及抗菌药物敏感性进行分析。

结果：2015-2021年期间，本院共分离致病菌4007株，其中大肠埃希菌585株，分离率为14.60%（585/4007），整体检出率呈现先升高后降低趋势，2017年和2020年检出率较高为21.6%和20.8%。

大肠埃希菌主要来源于穿刺液、分泌物、尿液、脓液、血液和痰液，尿液中检出率最高（184株，31.45%）。

本院抗生素使用量前五位为头孢唑林、头孢他啶、哌拉西林他唑巴坦、左氧氟沙星和头孢曲松。

2015-2021年期间，大肠埃希菌对头孢他啶、哌拉西林他唑巴坦的敏感性呈现上升趋势（P＜0.05），对头孢曲松敏感性呈现先下降后上升的趋势（P＞0.05），对左氧氟沙星和头孢唑林的敏感性基本保持稳定（P＞0.05）。

结论：近些年来，大肠埃希菌的检出率呈现先升高后降低的趋势，且对部分抗生素的药物敏感性降低，需结合药敏试验合理选择抗生素改善临床治疗效果。

关键词：大肠埃希菌；抗生素；敏感性大肠埃希菌是院内感染的常见致病菌，可通过侵袭操作设备或医护人员引发院内感染，给医疗机构院感防控带来巨大挑战。

随着侵袭性手术和广谱抗生素的使用量增加，大肠埃希菌的检出率逐年攀升，不仅增加了患者住院时间和医疗费用支出，也降低了患者预后预期水平[1]。

及时了解大肠埃希菌的耐药性水平和临床抗菌药物应用效果，采取及时有效的措施预防细菌耐药对提高临床诊疗效果改善患者预后有积极作用[2]。

故此，本文对2015-2021年期间主要抗菌药物使用情况及大肠埃希菌分布情况及其对常用药物药敏感性进行了回顾性分析，期望为有效控制细菌耐药提供参考。

1.资料与方法1.1资料来源获取并回顾性分析2015-2021年期间临床分离的585份大肠埃希菌标本，对其来源、分布情况及抗菌药物敏感性进行分析，同一患者同一部位同一种菌只记第一株。

宠物犬源致病性大肠杆菌鉴定与药敏试验作者：郭世栋胡元春来源：《世界家苑·学术》2017年第08期摘要：某宠物医院，就诊的一例泰迪犬，泰迪犬早上吃了狗粮，无明显症状，下午出现严重的腹泻，精神沉郁。

为了确定引起泰迪犬的严重腹泻病原菌，对就诊的泰迪犬无菌采集肛拭子进行细菌的分离鉴定，并得到了一株病原菌。

对分离的病原菌进行培养特性、形态学观察、生化试验、动物致病性试验的方法进行鉴定，结果显示，从严重的腹泻泰迪犬体内分离的一株病原菌被鉴定为致病性大肠杆菌，致病性大肠杆菌对小鼠具有很强的致病性。

对从严重的腹泻泰迪犬体内分离致病性大肠杆菌进行药敏试验，结果显示，头孢曲松、头孢克肟，氟苯尼考、氧氟沙星4种药物敏感；对大观霉素、美洛培南、丁胺卡娜霉素、头孢他啶4种中度敏感，对氨苄西林、林可霉素、强力霉素、阿莫西林4种药物耐药。

关键词：泰迪犬：致病性大肠杆菌；药敏试验；随着人们现在生活水平的提高，农村及城市中的家庭中的泰迪犬养殖数量越来越多，泰迪犬成为人们生活中重要伴侣动物，泰迪犬健康状态越来越受到人们的关注。

致病性大肠杆菌是引起宠物犬腹泻主要的病原菌，当犬感染了大肠杆菌后出现严重的腹泻，严重着可导致败血症，出现突然死亡。

一、发病情况。

某宠物医院，就诊的一例泰迪犬，泰迪犬1岁，泰迪犬早上吃了狗粮，无明显症状，下午出现严重的腹泻，精神沉郁。

通过询问，泰迪犬已经做过了五连疫苗。

二、病毒性疾病的检测。

宠物医院的医护人员对送诊的宠物犬前腿臂静脉采血1mL，用离心机分离血清，按照说明用胶体金试纸条，对分离的血清进行检测犬瘟热、细小病毒、冠状病毒、腺病毒抗原检测，结果显示，检测的犬瘟热、细小病毒、冠状病毒、腺病毒抗原为阴性。

排除了犬瘟熱、细小病毒、冠状病毒、腺病毒的感染。

三、细菌的分离鉴定与镜检。

对送诊的泰迪犬无菌采集的肛拭子，放入加入0.85%无菌的生理盐水，轻轻摇晃后接种于麦康凯培养基上，37℃培养12-18h，选取单个优势菌落接种于伊红美蓝培养基养基上，37℃培养12h。

动物医学进展,021,42(6)=140-144Progressin Veterinary Medicine屠宰场分离大肠埃希氏菌O157：H7药敏试验及耐药基因分析钟巧贤1，袁淑英1,梁秋燕1，袁明贵1,彭新宇1，徐志宏12,向蓉12*(.广东省农业科学院动物卫生研究所/广东省畜禽疫病防治研究重点实验室/农业部兽用药物与诊断技术广东科学观测实验站，广东广州510640；.岭南现代农业科学与技术广东实验室肇庆分中心，广东肇庆5262382.)摘要：为了解2018年一2019年从广东省内生猪屠宰场分离的19株大肠埃希氏菌O157：H7耐药情况，采用微量肉汤稀释法测定阿莫西林等16种抗菌药物对分离菌株的最小抑菌浓度(MIC),并用普通PCR 法检测blaNDM-1等10种耐药基因。

结果表明，19株大肠埃希氏菌O157：H7分离菌株对不同抗生素存在耐药差异，其中对阿莫西林、氨苄西林、青霉素、氯霉素和恩诺沙星的耐药率均为100%，对头孢哝酮的耐药率最低为5.26%，其余10种抗菌药物的耐药率位于31.58%〜84.21%之间-,mcr-1eM fOR和rmlB4种耐药基因未检出,blaNDM-1等6种耐药基因检出率范围为5.26%〜89.47%.生猪屠宰场大肠埃希氏菌O157:H7耐药且多重耐药严重，分离株携带丰富的耐药基因。

关键词：屠宰场；大肠埃希氏菌O157：H7；微量肉汤稀释法；耐药中图分类号：S852.61；S858.28文献标识码:：文章编号：1007-5038(2021))6-01，10-05大肠埃希氏菌(EscherCchia coli)是人和动物肠道中最重要和最常见的微生物之一，属于人兽共患条件致病菌］12］。

目前国际公认的分类主要有6个种类，其中肠出血性大肠埃希氏菌(EHEC)是能引起人和动物出血性腹泻和肠炎的一类大肠埃希氏菌，O157：H7血清型是其代表菌株。

大肠埃希氏菌O157：H7是目前世界公认的引起食源性疾病的重要致病菌和人兽共患病病原微生物，主要通过食物及饮食、肉及肉制品传播［5］。

犬瘟热及细小病毒病病例细菌的分离鉴定和药敏试验
杨百亮;魏之昀
【期刊名称】《天津农学院学报》
【年(卷),期】2001(008)004
【摘要】采取细小病毒病例和有腹泻症状的犬瘟热病例的粪便30份和呼吸道型犬瘟热病例的鼻腔分泌物22份进行分离培养和药敏试验.结果表明,所有病例的粪便样品均分离到大肠杆菌、葡萄球菌和链球菌,67%的粪便样品分离到沙门氏菌;所有鼻腔分泌物样品分离到葡萄球菌,78%的鼻腔分泌物样品分离到肺炎球菌.丁胺卡那霉素对粪便样品细菌的抑菌效果较好,敏感率达83%,与氯霉素的协同作用率达58%;氯霉素对呼吸道分泌物细菌的抑菌效果较好,敏感率达86%,与丁胺卡那霉素的协同作用率达63%.本次试验结果为犬瘟热和细小病毒病的临床治疗提供了依据.【总页数】3页(P19-21)
【作者】杨百亮;魏之昀
【作者单位】天津农学院,动物科学系,;畜牧兽医本科2001届毕业实习生
【正文语种】中文
【中图分类】S855.3
【相关文献】
1.犬瘟热发病期呼吸道细菌的分离鉴定 [J], 肖焰;王正江;刘永张;杨德梅;李海昌;王生奎;肖啸
2.犬瘟热发病期消化道细菌分离鉴定 [J], 张海燕;李建波;张斌恺;叶妍琳;代飞燕;杨
玉艾;肖啸
3.犬瘟热及细小病毒病继发感染的病原菌药敏试验 [J], 薛应照;郝建堂;樊风林
4.犬瘟热及细小满毒病例消化道呼吸道细菌的分离、培养鉴定及药敏试验 [J], 许建民;洛金德;薛应照;郝建堂;樊风林
5.犬瘟热病毒感染病例的诊断与病毒分离鉴定 [J], 黄文明;沈明华
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动物医学进展,２０１９,４０(１１):１３４Ｇ１３６P r o g r e s s i nV e t e r i n a r y M e d i c i n e兽医临床流浪犬源大肠埃希菌对氟喹诺酮类和氨基糖苷类药物的耐药性检测㊀收稿日期:２０１８Ｇ０７Ｇ０３㊀基金项目:四川省科技厅项目(２０１６K Z ０００７);西南民族大学中央高校基本项目(２０１７N Z Y Q N ３８);西南民族大学研究生 创新型科研项目 重点项目(C Z ２０１８S Z ２１)㊀作者简介:冯皓媛(１９９４－),女(满族),辽宁抚顺人,硕士研究生,主要从事兽医药理与毒理学研究.∗通讯作者冯皓媛,李宇涵,李㊀玲,代㊀璐,陈朝喜∗(西南民族大学生命科学与技术学院,四川成都６１００４１)㊀㊀摘㊀要:为选择有效治疗流浪犬大肠杆菌病药物,从成都市双流爱之家动物救助中心采集流浪犬粪便进行细菌分离与鉴定,测定其对６种临床常用氟喹诺酮类(二氟沙星㊁诺氟沙星㊁沙拉沙星)和氨基糖苷类(阿米卡星㊁安普霉素和卡那霉素)抗菌药物的最小抑菌浓度(M I C ).结果表明,分离的２６７株大肠埃希菌对二氟沙星㊁诺氟沙星和沙拉沙星耐药率分别为５６．２％㊁４６．７％和２２．１％;对阿米卡星㊁安普霉素和卡那霉素的耐药率分别为６．０％㊁６．７％和３０．７％;分离菌株对沙拉沙星和阿米卡星最敏感,可优先选择沙拉沙和阿米卡星进行流浪犬大肠杆菌病防治.㊀㊀关键词:流浪犬;大肠埃希菌;琼脂平板稀释法;耐药率中图分类号:S ８５２．６１２文献标识码:B文章编号:１００７Ｇ５０３８(２０１９)１１Ｇ０１３４Ｇ０３㊀㊀大肠埃希菌(E s c h e r i c h i a c o l i ,E ．c o l i )是人和动物肠道中最重要和最常见的微生物之一,大部分并不致病.然而,某些具有特定血清型的大肠埃希菌可能对畜禽和人类尤其是幼龄动物和婴幼儿造成致病性,严重腹泻和败血症是其常见症状[１].由于致病性大肠埃希菌血清型的复杂性和地区血清型的较大差异,大肠埃希菌疫苗很难获得令人满意的预防效果.目前用于治疗犬科大肠杆菌病的传统抗生素如庆大霉素㊁阿莫西林和氨苄西林已经产生了严重的耐药性,很多情况下并不适合继续用于临床治疗[２Ｇ６].相关研究结果显示,细菌耐药性共患病的加重蔓延,导致耐药现象日益严重并表现为多重耐受性[７Ｇ８].人类与宠物的密切接触,也可以引起耐药菌通过接触传染给人体,从而威胁到人类健康[９].犬大肠杆菌病具有高发病率和高病死率.近年来饲养宠物的家庭越来越多,但遗弃宠物的事件也不断增加,大量宠物流浪街头,造成许多人畜共患病的蔓延与耐药细菌的传播.在兽医临床生产实践中,氟喹诺酮类和氨基糖苷类药物使用频率较高,具有广泛的抗菌活性[１０].近年来,氟喹诺酮类已成为继头孢菌素之后国际抗菌药物市场上使用最多的药物[１１].由于抗菌药物的不合理使用,使得细菌的抗药性水平不断提高,耐药谱不断扩大,使得动物医院常用的抗菌药物效果越来越差,某些抗菌药物的价值已经消失[１２].相关研究表明,针对耐药性严重的现状,氟喹诺酮耐药可通过改变药物靶点,外排和m a r R 突变等几种不同的途径改善;氨基糖苷类药物同样是使用得较多的药物,虽然不同地区的宠物源大肠埃希菌的耐药性差异较大,而对氨基糖苷类如阿米卡星这类药物的耐药率较低[１３Ｇ１４].随着抗菌药物在临床治疗中的应用越来越频繁,耐药性大肠埃希菌越来越受到国内外学者的关注[１５].本研究旨在通过采集成都市双流爱之家动物救助中心的流浪犬粪便样本,采用琼脂平板稀释法对分离鉴定的２６７株大肠埃希菌进行药敏检测,以期为流浪犬大肠杆菌病的临床治疗用药选择提供理论依据,而且对公共卫生安全具有重要意义.１㊀材料与方法１．１㊀材料１．１．１㊀样本来源㊀２６７份新鲜犬粪便样本采自成都双流爱之家动物流浪中心;质控菌大肠埃希菌A T C C ２５９２２由西南民族大学兽医药理实验室保存.１．１．２㊀试剂及药物㊀MH 肉汤㊁MH 琼脂培养基㊁MA C 液体培养基㊁MA C 琼脂培养基㊁L B 肉汤和１５e 细菌生化鉴定管,广东环凯生物公司产品;盐酸沙拉沙星㊁盐酸二氟沙星㊁盐酸诺氟沙星㊁卡那霉素㊁阿米卡星㊁安普霉素,上海绿叶制药有限公司产品,临用前用相应的溶剂溶解并定容,配制成浓度均为５１２０μg/m L 的母液备用.１．２㊀方法１．２．１㊀粪便增菌培养㊀将采集粪便样本分别加入一次性粪便采样器,每个粪便采样器内加入１０m L 高压灭菌的３００m L /L 甘油L B 肉汤,３７ħ培养箱过夜进行增菌培养.１．２．２㊀细菌分离纯化及生化鉴定㊀配制麦康凯液体培养基,每个试管分装３m L ,高压灭菌后分别加入１０μL 的增菌菌液,３７ħ培养箱过夜培养.次日选取有细菌生长的试管,将菌液接种于麦康凯琼脂平板上后进行标记,３７ħ孵育１８h ,选取典型单个菌落继续纯化.将纯化细菌革兰染色,油镜观察,根据文献进行大肠埃希菌初步鉴定[１６].生化鉴定按照说明书进行操作.１．２．３㊀药敏试验㊀以大肠埃希菌A T C C ２５９２２作为质控菌株,采用琼脂平板稀释法对分离的２６７株大肠埃希菌进行６种兽医临床常用氟喹诺酮类和氨基糖苷类药物的药敏试验,并根据美国临床和实验室标准协会(C L S I )２０１３版进行结果判定[１７].１．２．４㊀数据统计与处理㊀药敏数据用WHO N E T５．６软件进行处理和分析,计算并统计其M I C ５０㊁M I C ９０和耐药率.２㊀结果２．１㊀细菌的分离鉴定及生化鉴定经纯化的大肠埃希菌在麦康凯培养基上的纯培养菌落均为粉色㊁不透明㊁边缘平滑的圆形菌落;经革兰染色后用显微镜观察发现呈现红色㊁大小适中㊁两头钝圆的杆菌,为革兰阴性菌(图１).细菌生化鉴定试验表明符合大肠埃希菌判定标准,与张培东等结果基本一致[１８].图１㊀麦康凯纯化菌株F i g ．１㊀P u r i f i e d s t r a i n s o n M a c C o n k e y me d i u m ２．２㊀M I C ５０㊁M I C ９０和耐药率测定及多重耐药分析分离菌株对３种喹诺酮类抗菌药物耐药率均在６０％以下,其中分离株对盐酸沙拉沙星耐药率最低,为２２．１％;分离株对诺氟沙星耐药率最高,为５６．２％.多重耐药统计结果显示,耐药菌株中６６株仅对１种药物耐药(２４．７％),６２株分离株对２种药物耐药(２３．２％),４５株对３种喹诺酮类抗菌药物耐药菌(１６．９％).分离菌株对３种氨基糖苷类抗生素耐药率均在３５％以下,其中分离株对阿米卡星耐药率最低,对卡那霉素耐药率最高,为３０．７％,对阿米卡星的耐药率为６．０％,安普霉素的耐药率为６．７％,多重耐药统计结果显示,耐药菌株中有７３株仅对１种药物耐药(２７．３４％),１５株分离株对两种药物耐药(５．６％),同时对３种氨基糖苷类类抗菌药物耐药的菌株有７株(２．６％)(表１).表１㊀２６７株流浪犬源大肠埃希菌对６种抗菌药物的M I C ５０㊁M I C ９０和耐药率的检测结果T a b l e １㊀D e t e c t i o n r e s u l t s o fM I C ５０,M I C ９０an dd r u g r e s i s t a n c e r a t e o f ２６７s t r a y d o g Ｇd e r i v e d E ．c o l i a g a i n s t s i xa n t i b m i c r o b i a l s 药物D r u gs ５０％最低抑菌浓度/(μg m L －１)M I C ５０９０％最低抑菌浓度/(μg m L －１)M I C ９０耐药率/％D r u g re s i s t a n c e r a t e 盐酸二氟沙星D if l u o x a c i nh yd r o c h l o r i de ０．５２５６５６．２盐酸沙拉沙星S a r a f l o x a c i nh y d r o c h l o r i d e ０．２５８２２．１盐酸诺氟沙星N o r f l o x a c i nh y d r o c h l o r i d e ０．２５８４５．７卡那霉素K a n a m y c i n ２１２８３０．７阿米卡星A m i k a c i n １２６安普霉素A p r a m yc i n ４８６．７３㊀讨论近年来,由于小动物临床滥用抗生素,犬体内耐大肠埃希菌的菌株数量不断增加,耐药机制日趋复杂,对犬的大肠杆菌疾病治疗是一个严峻的挑战.犬与人类密切相关,容易传播.因此,监测犬的大肠埃希菌耐药性可以为小动物临床药物使用提供参考,并有助于控制大肠埃希菌耐药性的增强与传播,具有重要的公共卫生意义[１９Ｇ２０].本研究对采自成都地区的流浪犬源大肠埃希菌菌株进行耐药性初步调查,结果表明,成都地区流浪犬源大肠埃希菌对这３种氟喹诺酮类药物的耐药性较低,其中对盐酸诺氟沙星的耐药率较低,仅为５３１冯皓媛等:流浪犬源大肠埃希菌对氟喹诺酮类和氨基糖苷类药物的耐药性检测４５．７％,略低于石河子地区动物医院对犬源分离菌耐诺氟沙星(５７．１４％)的比例.盐酸沙拉沙星耐药率为２２．１％,远低于文献中文娟在成都的宠物犬分离株的为４９．４％的耐药率,这可能与双流爱之家动物救助中心的犬使用的抗生素频率低有关.对３种氨基糖苷类药物的耐药性总体也较低,其中对卡那霉素耐药率略高为３０．７％,对阿米卡星㊁安普霉素耐药率分别为６％和６．７％,也远低于文娟等的报道[１５].师志海等[２１]对我国成都地区在兽医临床上分离的１５６株犬源大肠埃希菌进行常用的８种常用抗菌药物的耐药性检测,结果表明８种药物均表现出不同程度耐药.为了避免耐药菌株的增加,应正确选择抗菌药物,严格按照规定剂量㊁适当的剂量和疗程使用药物,合理组合用药,注意休药期.此外,相关部门必须加强对不同地区大肠埃希菌耐药性的监测.由于不同地区致病性大肠埃希菌耐药谱型存在差异,选择合适的药物以达到理想的治疗效果,应关注当地的细菌耐药谱型,以便更好地选择抗菌药物进行正确的治疗.参考文献:[１]㊀陆承平．兽医微生物学[M]．北京:中国农业出版社,２０１２．[２]㊀陈浦言．兽医传染病学[M]．北京:中国农业出版社,２０１５．[３]㊀王㊀婧．大肠杆菌部分生物学特性研究及喹诺酮类耐药基因检测[D]．新疆石河子:石河子大学,２０１７．[４]㊀陈金云,李树珩．注意防治家犬大肠杆菌病[J]．畜牧兽医科技信息,１９９９(１９):１０Ｇ１０．[５]㊀刘成功．犬大肠杆菌病的防治[J]．中国工作犬业,２０１１(９):２４Ｇ２５．[６]㊀温㊀彪,王玉杰,王㊀鹏．犬大肠杆菌病的诊治[J]．畜牧兽医杂志,２０１０,２９(４):１２５Ｇ１２７．[７]㊀C u mm i n g sKJ,A p r e aV A,A l t i e rC．A n t i m i c r o b i a l r e s i s t a n c et r e n d sa m o n g c a n i n e E s c h e r i c h i ac o l i i s o l a t e so b t a i n e df r o mc l i n i c a l s a m p l e s i n t h e n o r t h e a s t e r nU S A[J]．C a nV e t J,２０１５,５６(４):３９３Ｇ３９８．[８]㊀陈朝喜,田淑琴,郭伟娜．１５６株犬源大肠杆菌耐药谱型分析[J]．安徽农业科学,２０１１,３９(３):１４６７Ｇ１４６８．[９]㊀N a z i r i Z,D e r a k h s h a n d e hA,F i r o u z iR,e t a l．D N Af i n g e r p r i n tＧi n g a p p r o a c h e s t o t r a c e E．c o l i s h a r i n g b e t w e e nd o g s a n do w nＧe r s[J]．J A p p lM i c r o,２０１５,１２０(２):４６０Ｇ４６８．[１０]㊀D e b a v a l y aN．I m p a c t o f a n t i m i c r o b i a l t h e r a p y o n f e c a l E s c h eＧr i c h i a c o l i i nd o g s[D]．A u b u r nU n i v e r s i t y,２００９．[１１]㊀K r e s s eH,B e l s e y MJ,R o v i n iH．T h e a n t i b a c t e r i a l d r u g sm a rＧk e t[J]．N a tR e vD r u g D i s c o v,２００７,６(１):１９Ｇ２０．[１２]㊀魏㊀峰．大肠杆菌耐药性及质粒介导喹诺酮耐药基因的检测[D]．四川雅安:四川农业大学,２０１２．[１３]㊀A h l a m A．C o m p e n s a t o r y e v o l u t i o ni n q u i n o l o n er e s i s t a n tE s c h e r i c h i a c o l i[D]．C a r l e t o nU n i v e r s i t y,２０１５．[１４]㊀N a m H M,L e eHS,B y u n JW,e t a l．P r e v a l e n c e o f a n t i m i c r oＧb i a l r e s i s t a nc e i n f e c a l E s c h e r i c h i a c o l i i s o l a t e s f r o ms t r a y p e td o g s a n dh o s p i t a l i ze d p e td o g s i n K o r e a[J]．M i c r o b i a lD r u gR e s i s t a n c e,２０１０,１６(１):７５．[１５]㊀文㊀娟．成都地区犬源大肠杆菌毒力相关基因㊁耐药性及系统进化组的研究[D]．四川成都:西南民族大学,２０１６．[１６]㊀洪庆华,石㊀璐,孙井梅,等．革兰氏染色三步法应用试验探讨[J]．实验室研究与探索,２０１０,２９(１１):１５Ｇ１７．[１７]㊀N a t i o n a lC o mm i t t e ef o rC l i n i c a lL a b o r a t o r y S t a n d a r d s．P e rＧf o r m a n c e s t a n d a r d s f o r a n t i m i c r o b i a l d i s k a n d d i l u t i o n s u s c e pＧt i b i l i t y t e s t s f o r b a c t e r i a i s o l a t e d f r o ma n i m a l a p p r o v e d s t a n dＧa r d(４n d e d i t i o n)[S]．W a y n e:N C C L S,２０１３．[１８]㊀张培东．大肠杆菌的分离及生化鉴定[J]．中国畜牧兽医文摘,２０１７,３３(９):６８．[１９]㊀路振香,孙㊀坤,夏礼贤,等．病死猪大肠埃希菌与变形杆菌的分离鉴定和药敏试验[J]．动物医学进展,２０１８,３９(２):１３４Ｇ１３６．[２０]㊀胡晓辰,孙艳敏,郭凤英,等．犬源大肠杆菌的分离鉴定及药敏试验[J]．当代畜牧,２０１５(３):４２Ｇ４４．[２１]㊀师志海,王文佳,兰亚莉,等．宠物源性大肠杆菌耐药性调查[J]．中国畜牧兽医,２０１２,３９(７):２４４Ｇ２４５．D e t e c t i o no f F l u o r o q u i n o l o n e s a n dA m i n o g l y c o s i d e sR e s i s t a n c e i nS t r a y D o gＧD e r i v e d E s c h e r i c h i a c o l iF E NGH a oＧy u a n,L IY uＧh a n,L IL i n g,D A IL u,C H E N C h a oＧx i(C o l l e g e o f L i f eS c i e n c e a n dT e c h n o l o g y,S o u t h w e s tM i n z uU n i v e r s i t y,C h e n g d u,S i c h u a n,６１００４１,C h i n a)A b s t r a c t:T o s e l e c t t h ee f f e c t i v ed r u g s f o r t r e a t m e n to f E．c o l i i n f e c t i o n s i ns t r a y d o g s,t h es t o o l s a m p l e s w e r e c o l l e c t e d f r o mS h u a n g l i uA i z h i j i aA n i m a l R e s c u eC e n t e r i nC h e n g d u f o r E．c o l i c u l t u r e a n d i d e n t i f i c aＧt i o n,a n d t h eM I C so f s i xc o mm o n l y u s e dc l i n i c a l f l u o r o q u i n o l o n e sa n da m i n o g l y c o s i d e sw e r ed e t e r m i n e d．T h e r e s u l t s s h o w e d t h a t:a t o t a l o f２６７s t r a i n s o f E．c o l i w e r e i s o l a t e d a n d t h e r e s i s t a n c e r a t e s t o d i f l o x a c i n, n o r f l o x a c i na n d s a r a f l o x a c i nw e r e５６．２％,４６．７％a n d２２．１％,r e s p e c t i v e l y;t h e r e s i s t a n c e r a t e s t o a m i k a c i n, k a n a m y c i n a n d a p r a m y c i nw e r e６．０％,６．７％a n d２２．１％,r e s p e c t i v e l y;T h e s t r a i n sw e r em o s t s e n s i t i v e t o s aＧf r a n o x a c i na n d a m i k a c i n,a n db o t hs a f r a n o x a c i na n da m i k a c i nw e r e p r e f e r r e d i nt h e p r e v e n t i o na n dt r e a tＧm e n t o f c a s e s o f E．c o l i i n f e c t i o n s．K e y w o r d s:s t r a y d o g;E s c h e r i c h i a c o l i;a g a r d i l u t i o nm e t h o d;d r u g r e s i s t a n c e r a t e６３１动物医学进展㊀２０１９年㊀第４０卷㊀第１１期(总第３１７期)。

中国动物保健2021.05犬源大肠杆菌分离鉴定及耐药性分析研究刘杉杉1,2，孙伟1*，郭盈盈1，李加英1，田维倩1，冉钢1（1.铜仁职业技术学院贵州铜仁554300；2.民族中兽药分离纯化技术国家地方联合工程研究中心贵州铜仁554300）了解铜仁市某养殖场犬源大肠杆菌的耐药情况，采集该养殖场2只健康犬的肛门拭子，分离大肠杆菌。

采用圆纸片扩散法，测定分离的不同株犬源大肠杆菌对各类抗生素药物的敏感性。

结果显示，分离的2株大肠杆菌均对四环素和环丙沙星耐药，对萘啶酸敏感；其中一株大肠杆菌对四种抗生素耐药。

本研究不仅丰富了临床大肠杆菌耐药性流行病学数据，而且为该养殖场犬疫病防控提供了参考。

；大肠杆菌；药敏试验；耐药性分析健康动物机体肠道内存在的大肠杆菌，多数并不致病。

作为动物肠道内的共栖菌，大肠杆菌还能够产生抑制致病性大肠杆菌生长的大肠杆菌素。

近年来，随着各种抗生素的滥用，大肠杆菌的耐药性呈显著增加的趋势[1]，以往的很多特效药效果变差甚至无效。

宠物感染大肠杆菌不仅能影响到治疗效果，而且携带耐药基因的大肠杆菌可能会感染人，影响人类健康和疾病治疗效果[2-4]。

我国多省份都有关于宠物犬大肠杆菌耐药性严重情况的报道[5-7]。

铜仁市某养殖场从建立至现在已有数年，从未进行大肠杆菌耐药性试验分析。

为了解该养殖场大肠杆菌耐药的具体情况，本研究将从该养殖场采集2只健康犬肛门拭子，分离大肠杆菌，进行耐药性分析。

1材料与方法1.1主要试剂与培养基头孢噻吩、四环素、环丙沙星、庆大霉素、萘啶酸和氧氟沙星药敏纸片由Oxoid 公司生产。

普通LB 琼脂和液体培养基、胰酪胨大豆肉汤培养基、麦康凯琼脂培养基均由青岛海博生物公司提供。

1.2样品采集采集养殖场2只健康犬肛门拭子样品，置于装有0.85%无菌生理盐水的样品采集管中，常温保存备用。

采集过程中要注意对样品做好标记，谨防样品污染。

1.3大肠杆菌分离鉴定将含有肛门拭子的样品采集管涡旋振荡混匀，静置后用接种环取上清液1～2环进行涂片，室温下自然干燥，经火焰固定后，进行革兰氏染色，并在显微镜下观察细菌形态。

山东农业大学学报(自然科学版),2023,54(4):530-538VOL.54NO.42023 Journal of Shandong Agricultural University(Natural Science Edition)doi:10.3969/j.issn.1000-2324.2023.04.008宠物源性大肠杆菌分离鉴定和耐药性分析赵勇1,2,杨丁龙1*,高感1,2,武书杰1,2,向斌1,2,和凤平1,2,李蕾1,2,杨亮宇1,2**,张立梅1,2**1.云南农业大学动物医学院,云南昆明6502012.云南农业大学家禽疫病防控中心,云南昆明650201摘要:为了分析昆明市宠物源性大肠杆菌的耐药情况，并为临床合理使用抗菌药物提供依据，本研究对采自昆明市3家宠物医院犬猫的26份棉拭子和5份灌洗液样品进行大肠杆菌的分离鉴定，并基于肠杆菌基因间重复共有序列（ERIC-PCR）对分离株进行分型；使用纸片扩散法检测分离菌株的耐药性，并检测了其耐药基因携带情况。

共分离到30株大肠杆菌，分离率为96.77%，其中犬源性14株，猫源性16株；ERIC-PCR分型显示将30株大肠杆菌可分为9个亚型，健康犬猫与非健康犬猫源性大肠杆菌分型差异较大。

耐药性实验显示分离株对氨苄西林（93.33%）耐药率最高，其次较高的是红霉素（90.00%）、四环素(83.33%)、复方新诺明(76.67%)，而对多粘菌素B、亚胺培南均不耐药；分离株中26株菌（86.67%）为多重耐药菌，且具有多种耐药谱；ESBLs基因检出率：blaTEM （70%）、blaCTX-M（36.67%）其它耐药基因检出率分别为tetA（73.33%），qnrS（33.33%），acc(6’)-Ib-cr （26.67%），sul1（26.67%）。

综上健康与非健康犬猫源性大肠杆菌基因型差异明显；昆明宠物源性大肠杆菌多重耐药形势严峻，临床中对氨苄西林、红霉素、四环素、和复方新诺明应减少或停止使用。

2021.03·Experimental research | 试验研究养基内，接着置于37 ℃温度条件下培养24 h，取紫黑色单个菌落制作图片，采用全自动革兰染色仪染色，通过显微镜即可观察大肠杆菌结构形态[3]。

1.2.2 细菌鉴定采用阴性细菌鉴定卡对分离后的菌液进行鉴定，再用全自动细菌检定及药敏分析系统对细菌的药敏性进行分析。

1.2.3 药敏试验测定所分离大肠杆菌对氨苄西林、阿莫西林、复方新诺明、阿米卡星、氯霉素、磷霉素6种抗生素药物的敏感性，常见测试方法为纸片扩散法。

待试验结束后观察抑菌圈并测定其大小，在此基础上判定敏感性的高低。

2 结果从采集的样本中分离出6株细菌。

将细菌培养于麦康凯琼脂平板后，可观察到直径为2～3 mm的红色圆形菌落，其表面光滑并整齐，向外凸起。

将细菌培养于伊红美蓝培养基后，可观察到紫黑色的圆形菌落，其表面可见金属光泽，边缘较为整齐。

对细菌革兰氏染色后在显微镜下观察，可看到单个细菌呈杆状，颜色为红色，两端钝圆，多数细菌分散排列，仅部分细菌呈2～3个相互连接，其革兰氏染色呈阴性[4]。

6株分离菌能分解葡萄糖、山梨醇、甘露醇、木胶糖、棉籽糖。

吲哚检测结果为阳性，尿素反应为阴性。

采用全自动细菌鉴定及药敏分析系统最终鉴定结果为大肠杆菌，6株细菌的生化特性一致，鉴定结果合格率99.9%[5]。

6株细菌的大肠杆菌具表现出耐药性，但不同菌株之间的耐药性程度不一。

氨苄西林、阿莫西林、复方新诺明只对3号菌株表现敏感，对1、2、4、5、6号菌株均表现耐药。

阿米卡星对1、2号菌株表示敏感，对3、4号菌株表现中度敏感，对5、6号菌株表现耐药。

氯霉素对1、2、3号菌株表现敏感，对4、5、6号菌株表现耐药。

磷霉素对1、3号菌株表现敏感，对2、4、5号菌株表现中度敏感，只对4号菌株表现耐药。

经过综合分析，使用氨苄西林、阿莫西林、复方新诺明3种抗生素药物做药敏性试验的3株细菌耐药率最高，使用阿米卡星、氯霉素抗生素药物做药敏性试验的2株细菌耐药率次之，磷霉素抗生素药物做药敏性试验的1株细菌耐药率最低[6]。

宠物源大肠埃希菌耐药性及耐药基因调查易梦颖; 王晶; 卢沛兰; 黄馨仪; 夏应碧; 黄佳为; 严杰聪; 庄子琳; 刘健华【期刊名称】《《华南农业大学学报》》【年(卷),期】2019(040)006【总页数】7页(P15-21)【关键词】宠物; 大肠埃希菌; 耐药性; 耐药基因; 抗生素【作者】易梦颖; 王晶; 卢沛兰; 黄馨仪; 夏应碧; 黄佳为; 严杰聪; 庄子琳; 刘健华【作者单位】华南农业大学兽医学院/国家兽医微生物耐药性风险评估实验室广东广州 510642; 农业部农产品质量安全生物性危害因子 (动物源) 控制重点实验室江苏扬州 225009【正文语种】中文【中图分类】S852.61抗生素耐药问题已经成为全球威胁人类和动物健康的重大问题之一，人医和兽医临床对抗菌药的长期过多使用或不合理使用加速了细菌耐药性的出现和传播。

大肠埃希菌Escherichia coli是革兰阴性兼性厌氧菌，是人和动物肠道内的共生菌，同时也是最常见的环境机会致病菌之一[1]。

大肠埃希菌对抗生素压力较敏感，易产生耐药性，同时还可通过细菌之间的菌毛接触使耐药基因在菌株菌种间传播。

由于抗菌药长期的不合理使用，我国大肠埃希菌的耐药问题十分严峻。

据2017 年CHINET中国细菌耐药性监测调查结果显示，国内主要地区临床分离大肠埃希菌对头孢噻肟、环丙沙星、左氧氟沙星、庆大霉素、哌拉西林和磺胺甲噁唑-甲氧苄啶的耐药率接近或高于50%[2]。

国内食品动物源分离的大肠埃希菌对氨苄西林、四环素类和磺胺类等抗菌药耐药率高于75%，对氨基糖苷类和氟喹诺酮类抗菌药耐药率高于50%[3]，但对头孢菌素耐药率较低，低于35%[1, 3]。

大肠埃希菌对头孢菌素、氟喹诺酮类等重要药物的耐药基因常位于质粒上，易于传播扩散，促进了大肠埃希菌耐药性的发展，引起了全球关注。

宠物作为人类的伴侣动物，共同的生存环境和长期的直接接触使宠物源细菌成为耐药基因在人类和环境间传播的重要媒介。

宠物犬源致病性大肠杆菌鉴定血清型检测与耐药性分析吴萍萍【摘要】为了分析安徽池州地区宠物犬源致病性大肠杆菌的血清型及耐药性,使用无菌肛门拭子采集26家宠物医院腹泻宠物粪便样品63份进行细菌分离鉴定,获得了30株大肠杆菌.对分离的30株大肠杆菌用灌胃方式攻毒小鼠验证其致病性,结果显示,20株为致病性大肠杆菌.利用玻板凝集试验和K-B药敏纸片法分别测定20株致病性大肠杆菌分离株的血清型和耐药性,结果显示,20株致病性大肠杆菌分离株共有10种血清型,以O8和O13为优势血清型;20株致病性大肠杆菌分离株均对头孢克肟、头孢曲松、恩诺沙星、丁胺卡那霉素4种药物高度敏感;对其他药物存在不同程度的耐药.本试验为该地区的宠物犬大肠杆菌病的防治提供基础.【期刊名称】《中国兽医杂志》【年(卷),期】2018(054)007【总页数】3页(P74-76)【关键词】宠物犬;大肠杆菌病;血清型;耐药性【作者】吴萍萍【作者单位】池州职业技术学院,安徽池州247000【正文语种】中文【中图分类】S858.292随着人们生活质量的提高，城市及农村宠物犬的养殖数量越来越多，宠物犬成为人们日常生活中重要伴侣动物，宠物犬的健康受到人们的关注。

宠物犬的腹泻为临床中常见的疾病之一，引起宠物犬腹泻的病原主要有致病性大肠杆菌、沙门菌、绿脓杆菌、巴氏杆菌等，其中，致病性大肠杆菌是引起宠物犬腹泻为临床中常见的疾病。

宠物犬大肠杆菌病是由致病性大肠杆菌引起初生幼犬急性肠道传染性疾病，初生幼犬主要表现腹泻败血症症状，成年犬感染致病性大肠杆菌后可引起泌尿系统感染、子宫炎和睾丸炎，还可以导致公犬的精子数量下降，致病性大肠杆菌严重危害宠物犬的健康[1-2]。

大肠杆菌广泛存在环境中，是一种重要的人兽共患病原菌，且该菌血清型众多，许多动物具有相同的血清型，但不同地区流行的血清型不同[3-4]。

在宠物犬源大肠杆菌病治疗过程中，由于不合理使用抗生素，宠物犬源大肠杆菌对抗生素也产生很强的耐药性，应引起重视[6]。

犬源大肠埃希菌对β-内酰胺类药物的耐药表型和耐药基因检测文娟;杨晓农;朱子凤;徐小桐;计慧姝【摘要】为研究犬源大肠埃希菌的耐药情况,对成都地区采集的犬肛门拭子进行细菌分离鉴定,共分离156株大肠埃希菌,同时,进行5种抗生素耐药性检测和β-内酰胺类药物耐药基因的菌株筛选.结果显示,大肠埃希菌对β-内酰胺类耐药率较高,头孢喹肟100%,氨苄西林73.1%,但对美罗培南敏感率高达95.5%.采用PCR方法检测β-内酰胺类药物常见的3种耐药基因blaCTX-M、blaSHV和blaTEM,blaCTX-M检出率最高为89.74%,blaTEM为78.84%,blaSHV无检出.耐药性和耐药基因比较表明,犬源大肠埃希菌β-内酰胺类的耐药性与耐药基因型检出率基本呈正相关,为成都犬源大肠埃希菌β-内酰胺类药物的耐药现状和疾病治疗提供了理论依据.【期刊名称】《动物医学进展》【年(卷),期】2016(037)003【总页数】3页(P78-80)【关键词】犬;大肠埃希菌;β-内酰胺类耐药基因;耐药性【作者】文娟;杨晓农;朱子凤;徐小桐;计慧姝【作者单位】西南民族大学生命科学与技术学院,四川成都 610041;西南民族大学生命科学与技术学院,四川成都 610041;西南民族大学校医院,四川成都 610041;西南民族大学生命科学与技术学院,四川成都 610041;西南民族大学生命科学与技术学院,四川成都 610041【正文语种】中文【中图分类】S852.612大肠埃希菌(Escherichia coli)广泛分布于自然界和犬肠道内，主要因饲养管理不当、天气骤变而引起疾病。

临床上以腹泻和尿路感染常见[1-2],随着β-内酰胺类药物的广泛应用，耐药的相关报道屡见不鲜。

犬携带的耐药菌很可能通过接触传播给人类[3]，从而引起严重的公共卫生问题。

我国流行的β-内酰胺类药物耐药基因主要为blaTEM、blaSHV、blaCTX-M[4]。

犬细菌性皮肤病病原菌的分离鉴定与药敏试验
薛占永;刘伟;张宁宁;林德贵
【期刊名称】《中国兽医杂志》
【年(卷),期】2008(44)12
【摘要】犬细菌性皮肤病在临床上发病率高，病理过程长，易复发，加上细菌的耐药问题越来越突出，常导致临床治疗效果不佳。

为了追踪其感染源，了解菌群及其药物敏感性的变化，为临床医生合理应用抗菌药物提供依据和指导，提高犬细菌性皮肤病的治愈率。

我们进行了本试验。

鉴于犬细菌性皮肤病的主要病原菌为需氧与兼性厌氧菌，本试验未进行厌氧菌的分离培养。

【总页数】2页(P57-58)
【作者】薛占永;刘伟;张宁宁;林德贵
【作者单位】中国农业大学动物医学院,北京,海淀,100193;河北工程大学农学院,河北,邯郸,056021;中国农业大学动物医学院,北京,海淀,100193;中国农业大学动物医学院,北京,海淀,100193;中国农业大学动物医学院,北京,海淀,100193
【正文语种】中文
【中图分类】S857.5
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2.浙江省牛犬猝死症病原菌分离鉴定及其药敏试验 [J], 褚美芬;倪柏锋;严杰
3.犬脓皮病病原菌的分离鉴定与药敏试验 [J], 许丹宁;刘容珍;曾艳
4.鲤鱼细菌性败血症病原菌的分离鉴定及药敏试验 [J], 张皓迪; 孙瑜
5.虹鳟细菌性疾病病原菌分离鉴定及药敏试验 [J], 冯栋亮;李勤慎;刘哲;王静汝因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。