WesternBlot快速实验攻略概要
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Western Blot 快速实验攻略
一、 Western Blot 实验原理
蛋白免疫印迹 (Western Blot , WB 是将蛋白质经电泳分别后转移到膜上 ,而后利
用抗体进行检测的技术。完好的 WB 流程 ,以下列图所示 ,包括样本制备、 SDS-PAGE 、转膜、抗体联合、蛋白检测等 5
个大步骤。
二、试剂准备
1. 各种缓冲液
1 电泳缓冲液 :10xTris-Glycine-SDS 电泳缓冲液 (20319ES76 2电转缓冲
液 :Western Blot 电泳电转通用缓冲液 (20329ES03 3蛋白上样缓冲液 :5Xsds-PAGE 蛋白上样缓冲液 (20315ES05 4其余缓冲液 :PBS , TBST 2. 样本制备
1 细胞裂解液 :RIPA (20101ES60,或 20115ES60,或 20114ES60 2蛋白酶克制
剂 :PMSF (20104ES03 3.蛋白定量
1 蛋白定量试剂 :BCA 蛋白定量试剂盒 (20201ES76 4.蛋白电泳
1 预制胶 :4-20%梯度预制胶 , 12 孔 (36214ES10
2 蛋白 marker :三色预染蛋白分子标准 (10-245kDa (20352ES76 5.转膜与关闭 1
膜 (自备
2 膜上蛋白检测 :丽春红染色液 (36221ES60 3膜的关闭 :BSA , 无 IgG (36103ES25
6. 抗体孵育
1 抗体 :内参抗体、一抗、二抗 (例 :30101ES10, 30401ES10, 34101ES60
2 检测试剂 :ECL 化学发光超敏显色试剂盒 (36208ES60
三、实验步骤
1. 样本制备
1 融解 RIPA 裂解液 ,混匀。取适合量的裂解液 ,在使用前数分钟内加入 PMSF ,
使 PMSF 的最后浓度为 1mM 。
2 贴壁细胞 :去除培育液 ,用 PBS 、生理盐水或无血清培育液洗一遍。依照 6 孔板每孔加入 150-250μL裂解液的比率加入 裂解液。用枪吹打数下 ,使裂解液和细胞充足接触。细胞充足裂解后应无没有显然的细胞积淀。
悬浮细胞 :离心采集细胞 ,用手指把细胞使劲弹散。依照 6 孔板每孔细胞加入150-250μL裂解液的比率加入裂解液。再 用手指轻弹以充足裂解细胞。充足裂解后
应没有显然的细胞积淀。假如细胞量许多 ,必要分装成 0.5-1 106× 个细胞 /管 ,而后 再
裂解。
组织样本 :依照每 20mg 组织加入 150-250μL裂解液的比率加入裂解液。用玻璃匀浆器匀浆 ,直至充足裂解。
3 充足裂解后 , 10000-14000g 离心 3-5min ,取上清 ,即可进行后续的 PAGE 、
Western 和免疫积淀等操作。
【注】 :RIPA 裂解液的裂解产物中常常会出现一小团透明胶状物 ,属正常现
象。该透明胶状物为含有基因组 DNA 等复合 物。在不检测和基因组 DNA 联合特别密切的蛋白的状况下 ,能够直接离心取上清用于后续实验 ;假如需要检测和基因组结 合特别密切的蛋白 , 则能够经过超声办理打坏打散该透明胶状物 , 随后离心取上清用于后续实验。 假如检测一些常有的转录 因子 ,比如 NF-kappaB 、 p53
等时 ,往常不用进行超声办理 ,就能够检测到这些转录因子。
2. 蛋白定量
1 配制 BSA 标准品系统
标准品稀释液为蛋白样品的溶解液 , 原则上蛋白样品在什么溶液中 , 标准品也宜用什么溶液稀释。 但也可用 0.9%的 NaCl 或 1 ×PBS 进行稀释。 BSA 标准品系统配制可参照下表。
表 1BSA 标准品系统配制 (微孔板检测 ,线性范围 20-2000μg/mL *
Vial 稀释液体积 ( μ L2mg/mLBSA体积 ( μ LBSA终浓度 ( μ
g/mL
A 01002000
B 25751500
C 50501000
D 12575750
E 15050500
F 35050250
G 37525125
H 395525
I 40000=Blank
* 如用比色皿检测 ,每管需加 100μ L标准品 ,按 3 个重复计算 ,每个浓度起码需配制 300μL。
2 各取 25μL标准品和待测样品加入到微孔板中。
3 每孔加入 200μ LBCA工作液 ,振荡 30s 充足混匀。盖上微孔板 , 37℃ 孵育
30min 。
4 冷却到室温 ,在酶标仪上的 540-595nm 波长范围处检测吸光度 ,此中 562nm 波
长为最正确。
5 依据 BSA 标准品的吸光度 (减去标准品中空白孔的 OD 值即最后的读数 ,绘制标准曲线 (X-蛋白浓度 ug/mL; Y- 最后 的 OD562nm
。依照标准曲线和样品的稀释倍数计算样品蛋白浓度。
3. 蛋白电泳
1 剪开包装拿出预制胶 ,撕去胶板底端橙色胶纸 ,将预制胶固定在电泳槽中 ,内槽加满 tris-glycine 电泳缓冲液 ,外槽液面 低于内槽 5-10mm ,双手按住梳子左右部位将其安稳迟缓 (必定要慢 ,不然会将胶齿拔断或拔歪拔出。
2 在室温或不超出 37℃ 的水浴中溶解 5 ×SDS-PAGE 上样缓冲液。水浴溶解后
立刻室温寄存。
3 依照每 4μL蛋白样品加入 1μ l5 × SDS-PAGE 蛋白上样缓冲液的比率 ,混淆蛋白样品和 5 ×SDS-PAGE 蛋白上样缓冲液。
4 100℃ 或开水浴加热 3-5min ,以充足变性蛋白 ,以后冷却至室温备用。
5 在每个样品孔中上样 20-40 μg蛋白 ,并在 1 个孔中上样蛋白 marker ,盖上电泳槽盖 ,翻开电源 ,介绍使用低压 100V ,跑 15min ,以后换高压 150V 跑 ,往常电泳至蓝色染料抵达胶的底端处邻近即可停止电泳。
6 电泳后拿出胶板 ,用镊子或小螺丝刀沿左右两板间的空隙将两板别开 ,掰开两板 ,将胶拿出 ,弃去塑料板 ,此时蛋白会
从凝胶上慢慢扩散 ,所以不要保留在凝胶里 ,要快速进行下一步的转移操作。
4. 转膜与关闭
1 将胶浸于预冷的转膜缓冲液中均衡 5min 。 (假如检测小分子蛋白质 ,可省略
该步骤 ,因小分子蛋白简单扩散 。
2 依照胶的大小剪取膜和滤纸 6 片,放入预冷的转膜缓冲液中均衡 10min ,如用
PVDF 膜,需参照说明书 ,先用纯甲醇浸 泡 1-2min ,再孵育于预冷的转膜缓冲液中。(膜的选择μm孔径 ,用于一般蛋白 ; 0.2 μm孔径 ,用于分子量小于 20kD 蛋白 ;
0.1 μm孔径 ,用于分子量小于 7kD 蛋白。
3 装置转移三明治 :海绵 /3 层滤纸 /胶 /膜 /3 层滤纸 /海绵 ,每层放好后 ,用试管赶
尽气泡。
4 将转移槽置于冰浴中 , 放入三明治 , 膜凑近阳极 , 胶凑近阴极 , 加入转移缓冲液 ,
插上电极 , 100V , 1h (电流约为 0.3A 。
5 转膜结束后 ,切断电源 ,拿出膜。
6 将膜淹没在 5mL 丽春红染色液中 ,置于轨道摇床上室温染色 5~10min 或更长 ,
直待膜上显示出蛋白条带。注 :假如没有 出现染色条带 ,则表示转膜失败 ,可能需要从头转膜或从头上样电泳。
7 冲洗 :拿出膜 ,用蒸馏水 , PBS 或许其余适合溶液冲刷至背景清楚后摄影 ,大体冲刷 2~3次 ,每次 5min 。
8 脱色 :将膜放到 0.1N NaOH 溶液漂洗 5min ;倒去洗脱液 ,再重复一次。
9 冲洗 :再用蒸馏水冲洗膜 2~3 次,每次 5min 。
10 将膜置于 25mL 关闭缓冲液中 ,在室温下孵育 1 小时。 11 用 5mL TBST 清洗
三次 ,每次 15min
。
5. 抗体孵育与检测
1 将膜和一抗 (依照产品应用介绍稀释度置于 10mL 一抗稀释缓冲液中在 4 °C 下
孵育留宿并时时轻轻晃动。 2 用 5mL TBST 清洗三次 ,每次 15min 以去除残留的一
抗。