血清蛋白质组样品处理方法的比较分析

四种检测法在乙腈沉淀法去除血清蛋白中的比较作者：胡洪华蒋婷宋海星胡瀚丹来源：《中国医药导报》2012年第23期[摘要] 目的比较四种方法在乙腈沉淀法去除血清蛋白中的检测效果，建立一种能快速检测去蛋白率的方法。

方法用乙腈沉淀法去除血清蛋白，分别应用四种不同的检测分析方法，方法Ⅰ通过真空冻干；方法Ⅱ通过真空干燥；方法Ⅲ通过设立对照调零；方法Ⅳ通过挥干乙腈，分析血清蛋白的去除率。

结果方法Ⅰ和方法Ⅱ耗时长、设备要求高；方法Ⅲ耗时最短、方法简便；方法Ⅳ耗时较短、但容易产生实验误差，方法Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ的蛋白去除率结果比较，差异无统计学意义（P > 0.05），与方法Ⅳ比较，差异有统计学意义（P < 0.05）。

结论方法Ⅲ为最佳的分析测定分析方法，可用于快速方便了解乙腈的去蛋白率。

[关键词] 乙腈沉淀法；血清蛋白；去蛋白率[中图分类号] R446.1 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210（2012）08（b）-0085-02Comparison of four method for removing serum protein by acetonitrile precipitation HU Honghua1 JIANG Ting1 SONG Haixing2▲ HU Handan11.School of Laboratory Medicine, Chengdu Medical College, Sichuan Province, Chengdu 610083, China;2.Department of Biomedical Sciences, Chengdu Medical College, Sichuan Province, Chengdu 610083, China[Abstract] Objective To compare the test effect of serum protein removal rate by acetonitrile precipitation with four different methods, the aim is to establish a rapid test method to detect the serum protein removal rate. Methods The serum proteins were removed by acetonitrile precipitation experiments, and applied for four different detection methods, vacuum freeze-drying (method Ⅰ), vacuum drying (method Ⅱ), controlled through the establishment of zero (method Ⅲ), dryness acetonitrile (method Ⅳ) were detected the serum protein removal rate in respect. Results Method Ⅰand method Ⅱ were time-consuming and higher equipment requirements, while method Ⅲ was time-saving and simple, although method Ⅳ was time-saving, it was prone to experimental error, method Ⅰ, Ⅱ and Ⅲ proteins removal results revealed no significant difference (P > 0.05) compared with method Ⅳ, which had statistically significant difference (P < 0.05). Conclusion Method Ⅲ is the best analysis of measurement and analysis method, and can be used to understand the removal quickly and easily.[Key words] Acetonitrile precipitation; Serum proteins; Protein removal rate研究表明血清中有20多种高丰度蛋白质，占血清总蛋白的80%以上，而对疾病诊断有密切关系的蛋白含量甚微[1]。

血清清蛋白.γ-球蛋白的分别纯化与判定（一）血清清蛋白.γ-球蛋白的分别与纯化【目标请求】1．懂得蛋白质分别提纯的总体思绪.2．控制盐析法.分子筛层析.离子交流层析等试验道理及操纵技巧.【试验道理】血清中含有清蛋白和各类球蛋白（α-β-γ-球蛋白等）,因为它们所带电荷不合.相对分子质量不合,在高浓度盐溶液中的消融度不合,是以可运用它们在中性盐溶液中消融度的差别而进行沉淀分别,此法称为盐析法.本试验运用不合浓度硫酸铵分段盐析法可将血清中清蛋白.球蛋白初步分别.在半饱和硫酸铵溶液中,血清清蛋白不沉淀,球蛋白沉淀,离心后清蛋白重要在上清液中,沉淀的球蛋白加少量水可使其从新消融.用盐析法分别而得的蛋白质含有大量的硫酸铵,会妨害蛋白质的进一步纯化,是以必须去除,经常运用的有透析法.凝胶过滤法等.本试验采取凝胶过滤法,该法是运用蛋白质与无机盐类之间相对分子质量的差别除去粗成品中盐类.脱盐后的蛋白质溶液再经DEAE纤维素层析柱进一步纯化.DEAE纤维素为阴离子交流剂,在pH 6.5的前提下带有正电荷,能吸附带负电荷的α-球蛋白和β-球蛋白（pl分别为4.9.5.06和5.12）,而γ-球蛋白（pl7.3）在此前提下带正电荷,不被吸附故直接从层析柱流出,此时收集的流出液即为纯化的γ-球蛋白.进步醋酸铵溶液的浓度到0.06 mol/L,DEAE纤维素层析柱上的ß-球蛋白及部分a-球蛋白可被洗脱下来.将醋酸铵溶液的浓度进步至,则清蛋白被洗脱下来,此时收集的流出液即为较纯的清蛋白.经DEAE纤维素阴离于交流柱纯化的清蛋白.γ－球蛋白液往往体积较大,样品德量分数较低.为便于判定,常需浓缩.浓缩的办法许多,本试验选用聚乙二醇透析浓缩的办法.血清清蛋白.γ-球蛋白分别纯化后,选用醋酸纤维薄膜电泳法判定其纯度.【试剂与器材】1.试剂.（1）饱和硫酸铵溶液：称取固体硫酸铵850g参加1000mL蒸馏水中,在70~80℃下搅拌促熔,室温中放置留宿,瓶底析出白色结晶,上清液即为饱和硫酸铵液.（2）醋酸铵缓冲液：称取醋酸铵23.12g,加蒸馏水800mL,用稀氨水或稀醋酸调pH至,定容至1000mL.(不得加热)（3）醋酸铵缓冲液：取上液用蒸馏水稀释5倍.（4）醋酸铵缓冲液：取上液用蒸馏水稀释3倍.（上述3种缓冲液要确保浓度和pH的精确性,稀释后要重调pH）（5）300g/L三氯乙酸（6）纳氏试剂（7）葡聚糖凝胶G-25（8）DEAE纤维素（9）新颖血清（10）聚乙二醇（11）双缩脲试剂2.器材离心计心情刻度离心管pH试纸抽滤瓶黑.白反响板透析袋铁架台×20cm）移液枪布氏漏斗造就皿【操纵办法】1. 硫酸铵盐析（1）取刻度离心管1支,参加mL新颖血清,边摇边迟缓滴入饱和硫酸铵液mL.混匀后室温下放置10min,4000r/min离心10min.用滴管当心吸出上清液置于试管中,即为粗清蛋白液.（2）离心管底部的沉淀参加0.8mL蒸馏水,振荡消融,即为粗球蛋白液.2.凝胶柱层析脱盐（1）凝胶的处理：量取30mLSephade G-25醋酸铵缓冲液,置于滚水浴中1h,并经常动摇负气泡逸出.掏出冷却,待凝胶下沉后,倾去含有细微悬浮物的上层液.×醋酸铵缓冲液,将上述处理过的凝胶粒悬液持续注入层析柱内,直至所需凝胶床高度距层析柱上口约3~4cm为止.装柱时应留意凝胶粒装填平均,凝胶床内不得有界面和蔼泡,凝胶床面应平整.打开下口夹,调节柱下端螺旋夹流速2mL/min,用2倍柱床体积的醋酸铵缓冲液均衡.封闭下口夹.（3）上样与洗脱：打开下口夹,使床面上的缓冲液流出,待液面降到凝胶床概况时,封闭出水口.用滴管汲取盐析所得清蛋白溶液,在距离床面1mm处沿管内壁轻轻迁移转变加进样品,切勿搅动床面.然后打开下口夹,使样品进入床内,直到与床面平齐为止.立刻醋酸铵缓冲液冲洗柱内壁,待缓冲液进入凝胶床后再加少量缓冲液.如斯反复2次,以洗净内壁上的样品溶液.然后再参加适量缓冲液于凝胶床上,调流速10滴/min,开端洗脱.用小试管收集流出的液体,每管收集20滴,收集10管后封闭出水口.（4）检测蛋白质与NH4+：取诟谇反响板各一块,按洗脱液的次序每管取1滴,分别滴入反响板中,在黑色反响板中加300g/L三氯乙酸溶液（或用双缩脲试剂检测）2滴,消失白色混浊或沉淀即示有蛋白质析出,并记载各管白色混浊程度.于白色反响板中加人奈氏试剂溶液l滴,不雅察NH4消失的情形.归并含有蛋白质的各管,即为已脱盐的清蛋白溶液,γ-球蛋白的收集同清蛋白的操纵.3.离子交流层析柱纯化（1）DEAE纤维素处理：量取 DEAE-纤维素20mL,加0.5mol/L HCl 溶液50mL,搅拌后放置20min,虹吸去除上清液(也可用布氏漏斗抽干),再用蒸馏水反复洗数次直至pH 4.0 为止.加等体积 0.5 mol/LNaOH 溶液,搅拌后放置20min,虹吸去除上清液,同上用蒸馏水反复洗至pH<7为止.醋酸铵缓冲液40mL 放置30min.待装柱.×醋酸铵缓冲液均衡.调流速20滴/min,将脱盐后的γ-球蛋白溶液上柱,办法与上述脱盐法雷同.同样用300g/L三氯乙酸溶液或双缩脲试剂检讨有无蛋白质流出.收集不被纤维素吸附的蛋白质即为纯化的γ-球蛋白溶液.DEAE纤维素层析柱不必再生,可直接用于血清蛋白.（3）清蛋白的纯化：将脱盐后的清蛋白溶液上柱后,用醋酸铵缓冲液洗脱,流出约6mL后.将柱上的缓冲液液面降至与纤维素床概况平齐.再改用醋酸铵缓冲液洗脱,并用300g/L三氯乙酸溶液或双缩脲试剂检讨流出液是否含有蛋白质.流出液中有蛋白质时,立刻收集,即为纯化的清蛋白液,留作纯度判定用.4.蛋白溶液浓缩将待浓缩的蛋白质溶液放入较细的透析袋中,置入造就皿内.透析袋四周撒上聚乙二醇.经由一准时光后即可不雅察到显著的浓缩现象.该浓缩样品留作纯度判定.以上物资在运用后可以经由过程加温及吹风而收受接管.【要点提醒】1.装柱时,不克不及有气泡和分层现象,凝胶悬液尽量一次加完.2.加样时,切莫将床面冲起,亦不要沿柱壁参加.不克不及搅动床面,不然分别带不整洁.3.流速不成太快,不然分子小的物资来不及集中,随分子大的物资一路被洗脱下来,达不到分别目标.4.在全部洗脱进程中,始终应保持层析柱床面上有一段蒸馏水,不得使凝胶干结.（二）血清清蛋白.γ-球蛋白的判定——醋酸纤维素薄膜电泳【试验目标】1.控制电泳的基起源基础理;2.熟习醋酸纤维素薄膜电泳的办法和运用.【试验道理】蛋白质是两性电解质,在统一pH情形下,混杂蛋白质中各类成分带电量不合.分子大小不合,在统一电场中泳动的速度不合,导致雷同的时光迁徙的距离不合而把它们离开.血清中含有多种蛋白质,用醋酸纤维素薄膜电泳可分为五个区带,γ-球蛋白的等电点为7.3,在pH8.6的巴比妥缓冲液中,带的负电荷起码,是以在电场中比其它蛋白质移动速度慢.而清蛋白等其它蛋白质的等电点均小于7.3（pl分别为4.9.5.06和5.12）,是以在电场中比γ-球蛋白移动速度快.本试验分别全血清中各类蛋白质成分,同时判定前次试验清蛋白.γ-球蛋白的提纯成果.【试剂与器材】1.试剂（1）巴比妥缓冲液（pH8.6,离子强度0.06）：称取巴比妥纳12.76g,巴比妥1.66g,蒸馏水消融并定容至1000mL.（2）染色液：氨基黑10B 0.25g,用甲醇50mL.冰醋酸10mL.水40mL消融.（3）漂洗液：甲醇或乙醇45mL,冰醋酸5mL,水50mL,混匀.2.器材电泳仪电泳槽醋酸纤维薄膜造就皿滤纸点样器吸量管竹镊子吹风机【操纵办法】1.取醋酸纤维薄膜3张,在薄膜的无光泽面的1.5cm处用铅笔轻轻整洁条线.2.将薄膜浸入pH8.6的巴比妥-巴比妥钠缓冲液中,浸泡约30min(膜上没有白色斑痕).3.将完整浸透的薄膜轻轻掏出,平铺在滤纸上,用滤纸吸去过剩的缓冲液.分别用点样器蘸取正常血清.清蛋白和γ-球蛋白溶液点在点样线上(光滑面).4.薄膜的无光泽面向下,两头紧贴在电泳槽支架上的滤纸条上（点样端在阴极）.薄膜应位正,平直无曲折,加上槽盖均衡5分钟后通电电泳,调电流0.5mA/cm膜宽（几条薄膜就是通几毫安的电流,是按横向盘算的）,通电时光约40~60min.5.电泳停止后,封闭电源,将薄膜浸于氨基黑10B染色液中染色5min,掏出后用漂洗液漂洗4~5次,每次约5min,待布景无色为止.【成果处理】依据脱色后薄膜上消失的黑点,对清蛋白.γ-球蛋白与正常血清比较,剖析样品的纯度.【思虑题】假如电泳成果证实γ球蛋白的分别后果不睬想,应从哪些方面剖析？。

血清免疫球蛋白的提取分离、纯化及鉴定-1血液及组织样品的制备分析组织中某种物质的含量、探索物质代谢的过程和规律，经常使用动物的肝、肾、脑、粘膜和肌肉等组织，也选用全血、血浆、血清或者无蛋白血滤液等血液样品，有时也采用尿液、胃液等完成各种生化实验。

掌握以上各种实验样品的正确处理和制备方法是保证生化实验顺利进行的关键。

一、血液样品(一）采血测定用的血液，多由静脉采集。

一般在饲喂前空腹采取，因此时血液中化学成分含量比较稳定，采血时所用的针头、注射器，盛血容器要清洁干净；接血时应让血液沿着容器壁慢慢注入，以防溶血和产生泡沫。

(二）血清、全血及血浆的制备1.血清的制备血清是全血不加抗凝剂自然凝固后析出的淡黄清亮液体。

制备方法是：将刚采集的血液直接注入试管或离心管中。

将试管放成斜面，让其自然凝固，一般经3h 血块自然收缩而析出血清；也可将血样放入37 ℃恒温箱内，促使血块收缩，能较快约析出血清。

为了缩短时间，也可用离心机分离（未凝或凝固的均可离心），分离出的血青，用吸管吸出置于另一试管中，若不清亮或带有血细胞，应重离心，加盖冷藏备用。

2.全血及血浆的制备取清洁干燥的试管或其它容器，收集动物的新鲜血液，立即与适量的抗凝剂充分混合，所得到的抗凝血为全血。

每毫升血液中加入抗凝剂的种类可以根据实验的需要进行选择，但是用量不宜过大，否则将影响实验的结果。

将已抗凝的全二于 2，000r / min 离心10min ，沉降血细胞，取上层清液即为血浆。

血浆比血清分离得快而且量多：两者的差别，主要是血浆比血清多含一种纤维蛋白原，其它成分基本相同。

3.抗凝剂凡能够抑制血液凝固反应进行的化合物称为抗凝剂。

抗凝剂种类甚多，实验室常用的有如下几种，可根据情况选择使用。

（1）草酸钾（钠）优点是溶解度大，可迅速与血中钙离子结合，形成不溶性草酸钙，使血液不凝固。

每毫升血液用1-2mg 即可。

配制方法：配制10％草酸钾水溶液二吸取此液0.1ml 放入一试管中，慢慢转动试管，泛草酸钾尽量铺散在试管壁上，置80 ℃ 烘箱烤干（若超过150 ℃ 则分解），管壁即呈一薄层三色粉末，加塞备用。

免疫透射比浊法及干化学法测定血清白蛋白方法学比较及偏倚评估【摘要】目的通过评估免疫透射比浊法与干化学法测定ALB的偏倚,探讨两种方法检测ALB结果间的偏差是否在允许的范围,保证检测结果的可比性。

方法依据NCCLS标准化文件EP9-A2 [1],每天取临床样本8份,分别用免疫透射比浊法与干化学法进行双份测定,共测定5 d,去除离群点,计算相关系数及预期偏差,以CLIA’88规定的室间质评(ALB+10%)允许误差的1/2作为方法比较结果系统误差的允许限值,进行偏倚的评估。

结果干化学法与免疫透射比浊法比较,r�2=0.934,在医学决定水平20 g/L,35 g/L,52 g/L时,干化学法的预期相对偏倚分别10.4%,6.8%,3.2%, 在Xc= 20 g/L及Xc=35 g/L时, 两种方法存在统计学差异。

结论以免疫透射比浊法作为比较方法,干化学法测定ALB的结果存在正偏差,测定结果的偏差随着ALB浓度的减低而增大,在低浓度时差异更显著,两者相关性差。

因此,实验室内使用不同分析方法检测同一分析物时,建议对各方法进行方法学比较及偏倚评估,明确方法间的差异,并建立各方法的参考范围,特别是建立不同方法在不同医学决定水平浓度的参考值,以保证检测结果的可比性。

【关键词】血清白蛋白;免疫透射比浊法;干化学; 偏倚Turbidimetric Immunoassay Method and Dry-slide Bromocresol Green Method in(ALB)Serum Albumin Determination:A Methodological Comparison and Bias AssessmentFENG Pin-ning,GAO Ling,YU Xiong-wen,et al.Laboratory Medicine Department of the First Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University,Guangzhou 510080,China【Abstract】 Objective The article compares the bias assessments of turbidimetric immunoassay method and dry-slide bromocresol green method in ALB detection, and discusses whether the bias of the two detection results are within the range permitted, so as to ensure the comparability of the results.Method According to NCCLS standardization document EP9-A2 [1], firstly 8 clinical samples are daily taken and tested duplicates under each method, altogether five days. Next the outlier points are excluded and correlation coefficients and expected deviations are calculated. The value is restricted by 1/2 of the error thatexternal quality assessment allows(ALB+10%)by CLIA’88 as the method comparison result system error, and then it is bias assessed.Results The results of comparison between dry-slide bromocresol green method and turbidimetric immunoassay method are as follows: r�2=0.934,when medical decisions are 20 g/L,35 g/L and 52 g/L,the expected relative deviations of dry-slide bromocresol green method are 10.4%,6.8%,3.2% respectively. When Xc=20 g/L and Xc=35 g/L, there are significant differences between the results of two methods.Conclusion Turbidimetric immunoassay is regarded as the methodology in comparison. Dry-slide bromocresol green method, however, proves positive deviations in the results of ALB determination. Its value of bias increases with the decline of ALB concentration, and it is more apparent when the concentration turns low. These two methods have poor correlation. Therefore, when different analysis methods are utilized in the detection of the same object, it is suggested different methodological comparisons and bias assessments be used in each method to make clear the disparities among them and then establisheach reference range, especially the concentration reference values of different methods in different medical decisions, to insure the comparability of the detection results.【Key words】 (ALB)serum albumin; Turbidimetric immunoassay method; Dry-slide bromocresol green method;Bias作者单位:510080中山大学附属第一医院检验医学部血清白蛋白测定是医院常规的生化检验项目,可作为诊断某些疾病(肾病综合征,肝硬化等)和评估预后的指标,其值的高低也可作为血液透析,肾移植患者生存期等的预测指标[2]。

血清清蛋白、γ-球蛋白的分离、提纯于鉴定一、实验目的：1、掌握盐析法分离蛋白质的原理和基本方法2、掌握凝胶层析法分离蛋白质的原理和基本方法3、掌握离子交换层析法分离蛋白质的原理和基本方法4、掌握醋酸纤维素薄膜电泳法的原理和基本方法5、了解柱层析技术二、实验原理：蛋白质的分离和纯化是研究蛋白质化学及其生物学功能的重要手段。

对于不同的蛋白质，其分子量、溶解度及等电点等都有所不同。

利用不同蛋白质在这些性质上的差别，利用相应的物理方法可分离纯化不同蛋白质。

A.盐析法：在蛋白质溶液中加入大量中性无机盐后，由于中性盐与水分子的亲和力大于蛋白质，致使蛋白质分子周围的水化膜减弱乃至消失。

同时，加盐后由于离子强度发生改变，蛋白质表面的电荷大量被中和，从而破坏了蛋白质的胶体性质，导致蛋白质溶解度降低，蛋白质分子之间易于聚集沉淀，进而使蛋白质从水溶液中沉淀析出。

B.凝胶层析：利用蛋白质与无机盐类之间分子量的差异。

当溶液通过SephadeG-25凝胶柱时，溶液中分子直径大的蛋白质不能进入凝胶颗粒网孔，而分子量小的无机盐能进入凝胶颗粒的网孔中，因此在洗脱过程中，小分子的盐会被阻滞而后洗脱出来，从而达到去盐的目的。

C.离子交换层析:离子交换层析是指流动相中的离子和固定相上的离子进行可逆的交换，利用化合物的电荷性质及电荷量不同进行分离。

D.纯度鉴定（醋酸纤维素薄膜电泳）：血清中各种蛋白质的等电点不同，一般都低于pH7.4。

它们在pH8.6的缓冲液中均解离带负电荷，在电场中向正极移动。

由于血清中各种蛋白质分子大小、形状及所带的电荷量不同，因而在醋酸纤维素薄膜上电泳的速度也不同。

因此电泳时可将它们分离为清蛋白、α1-球蛋白、α2-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白5条区带。

三、材料与方法A材料样品：人混合血清试剂：葡聚糖凝胶（G-25)层析柱、DEAE纤维离子交换层析柱、饱和硫酸铵溶液、醋酸铵缓冲溶液、20%磺基水杨酸、1%BaCl溶液、氨基黑染色液、漂洗液、pH8.6巴比妥缓2冲溶液、电泳仪、电泳槽B实验步骤盐析（粗分离）→葡聚糖凝胶层析（脱盐）→DEAE纤维素离子交换层析（纯化）→醋酸纤维素薄膜电泳（纯度鉴定）具体操作流程示意：（一）盐析+凝胶柱层析除盐：（二）离子交换层析（纯化）：（三）醋酸纤维素薄膜电泳：1、点样（如下图）：-点样线尽量点得细窄而均匀,宁少勿多2、电泳：①薄膜粗面向下②点样端置阴极端③两端紧贴在滤纸盐桥上，膜应轻轻拉平电压：110V时间：50min3、染色和漂洗：电泳完毕后，关闭电源，将膜取出，直接浸于染色液中5min。

血清白蛋白和球蛋白的分析测定－盐析法[目的与原理]掌握血清白蛋白和球蛋白测定的原理和方法，并用盐析法测定水产动物血清中白蛋白和球蛋白的含量。

血清中含有多种不同成分的蛋白质，主要为白蛋白和球蛋白。

用盐析法沉淀血清中球蛋白，用双缩脲法测定上清液中白蛋白，同时测定血清总蛋白。

血清球蛋白的量从两者的差值求得。

[试剂与器材]试剂：1、球蛋白沉淀剂：称取硫酸钠（Na2SO4）208g，及亚硫酸钠（Na2SO3）70g，加入蒸馏水约900ml，并加入浓硫酸2ml，使蒸馏水酸化。

不停搅拌，待完全溶解后将溶液移入1L容量瓶内，用蒸馏水稀释至1L刻度。

保存于25℃以上的温度中。

2、双缩脲试剂：溶解1.50g硫酸铜(CuSO4.5H2O)和 6.0g酒石酸钾钠(NaKC4H4O6.4H2O)于500ml蒸馏水中，在搅拌下加入300ml 10%氢氧化钠溶液，用水稀释到1000ml，贮存在内壁涂以石蜡的瓶中，此试剂可长期保存。

3、标准血清：将待测样品用0.05mol/L氢氧化钠配制成适当浓度的溶液(使测定值在标准曲线范围内)，学生实验中可用酪蛋白配制或用血清样品稀释10 倍，冰箱存放待用。

4、乙醚器材：可见分光光度计，离心机，试管若干及试管架，旋涡混合器，塑料试剂瓶，1L容量瓶，烧杯2个，吸管若干支，滤纸，擦镜纸。

[实验步骤]1、准确吸取血清样本0.2ml，置于10×100mm试管内。

以5ml刻度吸管加入球蛋白沉淀剂 3.8ml，塞住管口，反复倒转混和10次（不宜过多）。

以1ml 刻度吸管吸取悬液1ml （相当于血清0.05ml），置于另一试管内，作为“总蛋白测定管”。

剩余的混悬液另加乙醚约2ml，揿住管口，在约20 秒钟内颠倒混和40 次，然后经每分钟2500 转的速度离心沉淀 5 分钟。

此时试管内分成三层：上层为乙醚，中层为球蛋白，下层为澄清的白蛋白溶液。

将试管斜置在桌面片刻或轻击试管，待蛋白块自管壁分离后，将1ml吸管插入白蛋白溶液中并吸取此溶液1ml（小心，准确，且不可触及球蛋白块片）。

处理蛋白质组学样品蛋白质组学是研究细胞、组织或生物体内所有蛋白质的组成、结构和功能的一门学科。

在进行蛋白质组学研究时，处理样品是非常重要的一个环节。

下面介绍一些处理蛋白质组学样品的常见方法。

1. 样品收集在进行蛋白质组学研究前，首先需要收集样品。

样品可以是细胞、组织、血清、尿液等。

对不同的样品，收集方法也有所不同。

2. 常规处理对于细胞和组织样品，一般需要进行离心、洗涤、裂解等常规处理。

其中，离心可以将细胞和组织分离出来，洗涤可以去除细胞和组织表面的污染物，裂解则是将细胞和组织释放出蛋白质。

对于血清和尿液样品，一般需要进行离心、超滤等处理方法。

3. 蛋白质提取蛋白质提取是将样品中的蛋白质提取出来的过程。

常用的提取方法包括直接提取法、异相分配法、有机溶剂法等。

其中直接提取法是最常用的方法，其步骤包括样品加入裂解缓冲液、裂解、去除杂质、离心等。

4. 蛋白质定量在蛋白质组学研究中，需要对提取出的蛋白质进行定量。

常用的方法包括BCA法、Lowry法、Bradford法等。

5. 蛋白质分离蛋白质组学研究中，需要对蛋白质进行分离。

常用的方法包括SDS-PAGE、2D-PAGE等。

其中SDS-PAGE是最常用的蛋白质分离方法之一，可以将蛋白质按照分子量大小进行分离。

6. 质谱分析蛋白质组学研究中，需要对分离出的蛋白质进行质谱分析。

常用的方法包括MALDI-TOF、ESI-MS等。

其中MALDI-TOF是最常用的质谱分析方法之一，可以对蛋白质进行快速准确的分析。

综上所述，处理蛋白质组学样品是进行蛋白质组学研究的重要环节之一。

通过合理的处理方法，可以获得高质量的样品，从而保证后续研究的准确性和可靠性。

血清代谢组学样本前处理原理血清代谢组学在生物医学研究中发挥着重要的作用，而样本前处理是进行代谢组学分析的关键步骤之一。

样本前处理对于后续的代谢物检测和数据分析具有重要的影响，能够提高代谢物的检测灵敏度和准确性。

本文将就血清代谢组学样本前处理的原理进行探讨。

血清样本是代谢组学研究中常用的样本之一，其中包含了丰富的代谢物信息。

然而，血清样本中的代谢物浓度范围广泛，从微摩尔到纳摩尔的浓度差异都存在，这给代谢物的检测和分析带来了挑战。

为了克服这些挑战，样本前处理步骤必不可少。

样本前处理的主要目的是去除样本中的干扰物质，提高代谢物的检测灵敏度和准确性。

常见的样本前处理步骤包括样本蛋白去除、代谢物提取、样本衍生化等。

样本蛋白去除是样本前处理中的重要步骤之一。

血清样本中含有大量的蛋白质，这些蛋白质会干扰代谢物的检测和分析。

因此，需要采用适当的方法去除蛋白质。

目前，常用的方法有沉淀法、滤膜法和固相萃取法等。

沉淀法是将样本与有机溶剂混合后，通过离心将蛋白质沉淀下来；滤膜法是将样本通过微孔膜滤膜，滤掉蛋白质；固相萃取法是利用固相萃取柱将蛋白质吸附，然后洗脱蛋白质。

通过这些方法可以有效去除蛋白质，减少干扰。

代谢物提取是样本前处理的另一个关键步骤。

代谢物提取的目的是将血清样本中的代谢物转移到适当的溶剂中，以便进行后续的分析。

常用的提取方法有有机溶剂法、液液萃取法和固相萃取法等。

有机溶剂法是将血清样本与有机溶剂混合后，通过振荡、超声波处理或离心等方式将代谢物转移到有机相中；液液萃取法是将血清样本与适当的有机溶剂相混合，通过相分离将代谢物转移到有机相中；固相萃取法是利用固相萃取柱将代谢物吸附，然后洗脱代谢物。

这些方法能够有效地提取代谢物，提高代谢物的检测灵敏度。

样本衍生化是样本前处理的另一个重要步骤。

样本衍生化是将血清样本中的代谢物转化为更容易检测的衍生物，以提高检测灵敏度。

常用的衍生化方法有甲基化、乙酰化、巯基化等。

衍生化方法的选择取决于代谢物的特性和检测方法的要求。

处理蛋白质组学样品蛋白质组学样品处理是进行蛋白质组学研究的关键步骤之一。

样品处理的好坏直接影响到后续蛋白质质谱分析的结果和准确性。

样品处理的主要目的是提取蛋白质，去除杂质和干扰物，同时保持蛋白质的完整性和稳定性。

一般来说，样品处理包括以下几个步骤：1. 细胞裂解：先对生物样品进行裂解，以释放蛋白质。

裂解方法包括机械破碎、化学裂解、超声波裂解等。

2. 蛋白质提取：提取蛋白质的方法有多种，如直接提取、盐析法、酸碱提取法、有机溶剂提取法等。

具体方法应根据样品类型和实验目的进行选择。

3. 蛋白质清洁：清洁蛋白质的过程是去除杂质和干扰物，使蛋白质纯化。

这个步骤可以通过一些方法，如离心、过滤、电泳、吸附等方式来实现。

4. 蛋白质定量：定量是必要的步骤，可使用比色法、BCA法、Lowry法等方法进行。

5. 消化：消化是指将蛋白质酶解成对应的肽段，为后续的质谱分析做准备。

消化方法有多种，如胶体消化、酶促消化、化学消化等。

在进行蛋白质组学样品处理时，需要注意的事项包括：1. 样品的保存：样品的保存应尽量避免蛋白质的降解和氧化，一般应冷藏或冷冻保存。

此外，样品的处理应迅速进行，避免长时间暴露在空气中。

2. 样品的预处理：在进行样品处理之前，需要对样品进行预处理，如去除细胞壁、去除脂质、去除核酸等。

3. 样品的稀释：样品的浓度应根据实验需求进行调整，过于稠密的样品会影响后续的分析结果。

4. 样品的标准化：为了使不同实验之间的结果可比较，需要使用标准样品进行标准化。

综上所述，蛋白质组学样品处理是研究蛋白质组学的重要步骤。

在进行样品处理时，需要根据实验需求选择合适的方法进行操作，以保证后续分析的准确性和可靠性。

两种仪器测定血清白蛋白的方法比较摘要目的：分析溴甲酚绿法(BCG)与干化学法在测定血浆白蛋白(ALB)时的偏倚，为实间评估提供依据。

方法：依据美国国家临床实验室标准化委员会(NC—CLS)EP9-A文件，每天随机选取临床标本8份，分别用2种方法测定样本白蛋白含量，共5天，记录检验结果，应用统计分析软件对所测得的结果进行统计分析，并计算方法间的偏倚。

结果：以溴甲酚绿法(x)对干化学法(Y)进行评估，干化学法(Y)和溴甲酚绿法(X)测定血清白蛋白(ALB)的回归方程为：Y=1.1346X+7.3919，相关系数X2=0.9949。

白蛋白浓度为30g/L、40g/L、50g/L 时，干化学法(Y)相对偏倚分别为11.6％、5.5％、1.8％。

结论：溴甲酚绿法与干化学法测定血清白蛋白时，测定结果相对预期偏倚随白蛋白浓度的增大而降低，建议各临床实验室对不同方法建立不同的参考值。

关键词白蛋白类干化学法溴甲酚绿法材料与方法仪器：HITACHI 7080(日本)及VITROS 250(美国)全自动生化分析仪。

临床样本：48份来自甘肃省中医院检验科健康体检样本，无溶血、无脂浊、肝素钠抗凝。

白蛋白试剂及定标液：HITACHI7080应用郎道公司提供的白蛋白试剂(批号：0505004)，定标液为RANDOX公司提供的Cfas校准批号：357UN；干化学法所用试剂定标液为美国VITROS公司生产，批号为09287441。

质控品：由RANDOX公司提供的As—sayed human 8era level I和levelⅡ质控品，批号分别为2350和2352。

测定及分析方法：①溴甲酚绿法(X)在HITACHI 7080上测定；干化学法(Y)在VITROS 250上测定。

②每天选取8份临床病人样本，分别用2种方法按顺序1→8进行样本测定，再按相反顺序8→1重复测定。

③记录测定结果(xij和Yij)，计算每个样本测定结果的均值(Xi和Yi)。

血清蛋白质组学
血清蛋白质组学作为分子生物学和临床医学领域的重要分支，是研究血清中蛋白质种类、结构、生理功能和病理特征的学科。

在血液中，有许多蛋白质分子扮演着重要的生物
学角色，如携带氧气、免疫防御和凝血作用等。

分析血清中的蛋白质，有助于了解生物体
内环境的变化和健康状况，同时也能提供许多临床诊断和治疗的指导。

血清蛋白质组学包括样本采集、样品预处理、蛋白质分离、鉴定、定量和功能分析等
环节。

其中，蛋白质分离是血清蛋白质组学中最重要的步骤之一，常用的方法包括电泳、
液相色谱、凝胶过滤、亲和层析和负荷柱等。

蛋白质分离后，需要进行鉴定和定量。

目前，常用的鉴定方法包括质谱分析和免疫检测方法。

质谱分析是一种高效、高灵敏度和高分辨
率的技术，能够对蛋白质进行全局鉴定和定量。

而免疫检测方法则是一种高特异性、高灵
敏度和可重复性的技术，常用于检测特定蛋白质的表达和变化情况。

血清蛋白质组学已被广泛应用于疾病的诊断和治疗过程中。

例如，在肿瘤诊断中，临
床医生可以利用血清蛋白质组学的技术，检测出癌症患者血清中的癌抗原和其他蛋白质标
志物，以及它们的表达量和变化情况，从而实现早期诊断和治疗。

在药物研发中，血清蛋
白质组学技术也可以帮助药物研发人员对药物的药效、药代动力学和毒性进行评价。

总之，随着蛋白质组学技术的不断发展和完善，血清蛋白质组学已成为分子生物学和
临床医学中不可或缺的工具。

通过分析血清中蛋白质的种类、结构、功能和变化情况，血
清蛋白质组学为临床医生提供了重要的参考信息，有助于实现个性化诊疗和治疗效果评
估。

血清蛋白质组学研究中乙腈沉淀法去除清蛋白的实验研究朱慧;李克;翟云霞【摘要】目的建立去除人血清清蛋白的乙腈沉淀法并研究其去除效果.方法血清经除脂后按血清:水:乙腈=1:2:4.5(v/v/v)比例沉淀分离高丰度清蛋白,用SDS-PAGE 验证去除效果和重复性.分别对4名体检健康者和非小细胞肺癌患者去除清蛋白前后的血清凝胶电泳图像进行分析.结果经本法去除后血清清蛋白平均浓度由(50.65 4±2.82)g/L下降为(2.50 4±0.71)g/L,占血清总蛋白比例由65.1%下降为33.3%,呈显著降低,差异有统计学意义(P＜0.001).与等量上样原血清电泳结果相比,相对分子量(Mr)在50 000～80 000间的蛋白质被明显去除,而被其掩盖的低丰度蛋白质得以显现,蛋白质条带明显变窄.结论乙腈沉淀法提供了一种经济、简便,且重复性较好的人血清清蛋白去除方法,为血清蛋白质组学研究提供了技术支持.【期刊名称】《临床检验杂志》【年(卷),期】2011(029)001【总页数】3页(P16-18)【关键词】乙腈沉淀法;血清清蛋白;高丰度蛋白质;低丰度蛋白质;蛋白质组学【作者】朱慧;李克;翟云霞【作者单位】南京师范大学生命科学院,南京,210046;南京军区南京总医院检验科,南京210002;南京军区南京总医院检验科,南京210002;南京军区南京总医院检验科,南京210002【正文语种】中文【中图分类】Q81人体血浆、血清、脑脊液等体液中含有种类众多的蛋白质，能够提供大量关于机体健康状况或疾病状态的信息，从中可寻找诊断疾病的特异性标志物、提示疾病阶段或评价疗效的指标，或探寻新的临床药物作用的靶蛋白［1-2］。

但这些标志物或靶蛋白在血浆和血清中的含量大多很低，易被更高含量的蛋白质的信息所掩盖，给研究带来困难。

据统计，血浆中蛋白质浓度最高的比最低的要高10个数量级［3］。

而清蛋白作为含量最高的蛋白质，含量可达总蛋白质量的60%以上。

血清中蛋白提取方法血清中蛋白提取方法引言：血清中蛋白质的提取是生物化学和生物医学研究中非常重要的步骤之一。

血清中蕴含着丰富的信息，包括生物标志物、生长因子和激素等，这些成分对于研究疾病的发生机制以及诊断和治疗具有重要意义。

本文将介绍一些常用的血清中蛋白提取方法，帮助读者更好地理解和掌握这一技术。

一、盐析法盐析法是一种常用的分离和富集蛋白质的方法。

该方法通过在高盐浓度下使蛋白质发生沉淀，实现了与其他杂质的分离。

具体步骤如下：1. 准备工作：在试管中加入一定量的样品血清，并加入适量的盐溶液（如氯化铵溶液）。

2. 混匀：用试管摇床等设备将样品充分混匀，使盐溶液与血清充分接触。

3. 沉淀：将试管置于低温环境（如冰浴或低温离心机中）进行沉淀。

此时，沉淀的是蛋白质，而其他大部分成分仍溶于上清液中。

4. 离心：使用高速离心机将试管进行离心，离心速度和时间可根据样品的具体情况进行调整。

5. 分离：将上清液倒入新的试管中，留下的沉淀即为富含蛋白质的组分。

二、电泳方法电泳方法是一种常用的蛋白质分离和富集技术。

通过在电场的作用下，根据蛋白质的大小和电荷差异将其分离。

以下是一种常见的电泳方法：1. 准备样品：将一定量的血清样品进行处理，如去除脂肪和其他杂质。

2. 电泳凝胶：制备聚丙烯酰胺凝胶，并根据需要选择合适的凝胶浓度和孔径大小。

3. 样品加载：将样品血清溶液加载到凝胶孔中。

4. 电泳操作：将电泳装置连接到电源，并设定适当的电场强度和时间。

5. 分析和分离：在电泳运行后，通过染色或质谱等方法对蛋白带进行观察和分析，以确定所需蛋白质的位置。

三、亲和层析法亲和层析法是一种基于蛋白质与特定配体的亲和作用进行分离和富集的方法。

以下是该方法的一般步骤：1. 准备亲和层析柱：将具有亲和性的配体固定在柱子内部。

2. 样品准备：将血清样品进行前处理，如去除异物和杂质。

3. 样品加载：将经处理的血清样品加载到亲和层析柱中。

4. 洗脱：通过更改溶液条件或引入特定的试剂，洗脱所需的蛋白质。

血清清蛋白、γ-球蛋白的分离、纯化与鉴定实验报告生物化学实验报告姓名：学号：专业年级：组别：生物化学与分子生物学实验教学中心格式要求：正文请统一用：小四号，宋体，1.5倍行距；数字、英文用Times New Roman；标题用：四号，黑体，加粗。

需强调的地方请用蓝颜色标出。

不得出现多行、多页空白现象。

一、实验目的1、掌握盐析法、凝胶层析法、离子交换层析法分离蛋白质的原理和基本方法。

2、掌握醋酸纤维素薄膜电泳法的原理和基本方法。

3、了解柱层析技术。

二、实验原理1、粗提（盐析法）：蛋白质分子能稳定存在于水溶液中是因为有两个稳定因素：表面的电荷和水化膜。

当维持蛋白质的稳定因素破坏时，蛋白质分子可相互聚集沉淀而析出。

盐在水溶液中电离所形成的正负离子可吸引水分子，从而夺取蛋白质分子上的水化膜，还可中和部分电荷使蛋白质分子聚集而沉淀，从而达到盐析沉淀蛋白质的目的。

由于血清中各种蛋白质颗粒大小、所带电荷多少及亲水程度不同，因此，利用不同浓度的硫酸铵溶液分段盐析，便可将血清中清蛋白和球蛋白从溶液中沉淀出来，达到初步分离清蛋白、球蛋白的目的。

2、脱盐（凝胶层析法）凝胶层析法利用蛋白质与无机盐类之间分子量的差异。

当溶液通过凝胶柱时，溶液中分子量较大的蛋白质因为不能通过网孔进入凝胶颗粒，沿着凝胶颗粒间的间隙流动，所以流程较短，向前移动速度较快，最先流出层析柱。

而盐的分子量较小，可通过网孔进入凝胶颗粒，所以流程长，向前移动速度较慢，较晚流出层析柱。

从而可达到去盐的目的。

3、纯化（离子交换层析法）离子交换是溶液中的离子和交换剂上的离子进行可逆的的交换过程。

带正电荷的交换剂称为阴离子交换剂；带负电荷的交换剂称为阳离子交换剂。

本实验采用的DEAE纤维素是一种阴离子交换剂，溶液中带负电荷的离子可与其进行交换结合，带正电荷的离子则不能，这样便可达到分离纯化的目的。

脱盐后的蛋白质溶液尚含有各种球蛋白，利用它们的等电点的不同可进行分离。

血清蛋白质组学酶解方法说实话血清蛋白质组学酶解方法这事，我一开始也是瞎摸索。

我就知道酶解这个环节很关键，但是真要上手做，那可真是一头雾水。

我试过好多酶啊，就跟在一群人里挑朋友似的。

一开始我用胰蛋白酶，这是大家都比较常用的吧。

我就按照那些书上和文献上说的量把胰蛋白酶加到血清样品里。

但是呢，我发现这个时间特别难把握。

有一次啊，我就设了个固定的时间，然后等着酶解完成。

结果出来的蛋白片段，那图谱看起来乱七八糟的。

我就知道这肯定出问题了。

后来我才明白，这个反应时间不是固定不变的，和血清样品的量啊、酶的活性啊之类的都有关系。

就像做饭，你不能按照一个固定时间焖米饭，米多了或者火小了，时间就得调整。

然后我还试过改变温度。

我想着温度高一点酶解可能快点呢。

那次我就贸然提高了温度，结果酶很快就失活了，根本没很好地酶解。

这就像你想让植物长得快，但是温度太高把植物直接烤死了一样，这步让我意识到控制温度可不能乱来。

后来我有一次用复合酶，把胰蛋白酶和另一种酶混在一起用，这次算是有点进步。

我发现不同的酶切的位点不一样，复合酶能把蛋白切得更碎一些，得到更多种类的小片段。

不过这个比例我试了好久。

我从1比1开始试，发现蛋白的酶解效果不是很均匀。

有些地方切得太多，有些地方又切不够。

我就慢慢调整这个比例，你得很耐心地一次次尝试。

有时候试一次得花好长时间才能看出结果是不是好。

还有一点很重要的就是血清的预处理。

我刚开始没太在意这个，直接就上酶。

后来发现样品中有些杂质会影响酶解的效率。

就好比你要在一块有杂草的地里种东西，那些杂草会抢营养一样。

所以我就慢慢摸索出了一套预处理血清的方法，先把血清中的一些大分子杂质去掉，这样酶解的时候就顺利多了。

现在我觉得做血清蛋白质组学酶解，你得先确认自己的样品质量和纯净度，把血清预处理好。

然后选择合适的酶非常关键，要根据你的目的决定用单一酶还是复合酶。

再就是不管是反应时间还是温度，都得根据实际情况去调整，千万不能死搬硬套那些书本上的数据。

血清蛋白质组样品处置方式的比较分析刘希成梁恒田真张霖陈阳【关键词】双向电泳；,蛋白质组学；,血清【关键词】双向电泳；蛋白质组学；血清1 材料和方式应用Affinityblue gel和Protein A别离去除人血清中的白蛋白和IgG. 将未做处置的血清和去除白蛋白和IgG的血清各400 μg 与水化液混合，参照Grg等［1］的方式进行双向凝胶电泳（twodimensional polyacrylamide gel electrophoresis, 2DE）检测，实验重复3次. 扫描获取谱图，用PDQuest分析软件进行图像分析，选取表达量不同2倍以上的蛋白点进行质谱分析，取得其肽质量指纹图(PMF)，用Profound PMF数据库查询软件在NCBInr蛋白数据库中进行蛋白的检索.2 结果PDQuest软件对2DE谱图进行匹配和统计分析，发觉未做处置血清、去除白蛋白及IgG的血清的平均蛋白质点别离为(482±18)个和(523±29)个. 从谱图中发觉，去除白蛋白及IgG后，Mr=30 000~70 000区域内蛋白点的丰度明显提高，高丰度蛋白富集区的蛋白丰度明显下降，但其它区域的部份蛋白丰度也随之下降或丢失. 切取在去除白蛋白及IgG进程中丢失和新显现的9个蛋白点（Studentst查验不同显著， P&lt;），胶内酶解后进行MALDITOFMS分析，成功鉴定了这些不同蛋白点为8种蛋白质. 在这些鉴定的不同蛋白点中，出此刻未做处置血清中的蛋白有5个，其中2个蛋白点鉴定为同一种蛋白，别离为维生素A结合蛋白，可溶性尿激酶血纤维蛋白溶酶原激活剂受体，蛋白激酶1抗原和血清白蛋白. 出此刻去除白蛋白和IgG的血清中的蛋白有4个，别离为NADH脱氢酶辅酶β，肌动蛋白结合蛋白M1，T 细胞活性受体β和血小板生长因子C.3 讨论应用Affinityblue gel和Protein A别离去除白蛋白和IgG 已经成为血清蛋白质组学研究中一种经常使用的前处置方式［2］. 本研究应用蛋白质组学方式比较分析了人未做处置血清和去除白蛋白及IgG的血清，鉴定了8种不同表达的蛋白质，其中7种为低丰度功能蛋白.蛋白功能分析发觉，维生素A结合蛋白是一种与视觉感知和物质传递相关的胞外蛋白. 可溶性尿激酶血纤维蛋白溶酶原激活剂受体定位于质膜，具有血液凝聚、细胞表面信号转导的功能. 蛋白激酶1抗原是由醛还原酶的COVA1基因编码生成的，与细胞生长、电子传递和mRNA拼接等功能相关［3］. NADH脱氢酶辅酶β由线粒体分泌到胞外，具有电子传递功能. T细胞活性受体β与T细胞信号通路和细胞防御等功能相关. 血小板生长因子C与血小板生长因子前体相关，定位于胞外，除与血小板受体信号通路相关，还与细胞增殖等其它生物功能相关［4］.咱们的实验结果说明，去除高丰度蛋白时能够增强一些低丰度功能蛋白的检测，但由于非特异性吸附的存在，也会致使部份功能蛋白的丢失. 因此，咱们以为在分析具体病例的血清时，应采纳不同的方式对样品进行处置后再别离进行实验，并将结果综合起来全面地加以分析.【参考文献】［1］Grg A, Weiss W, Dunn MJ. Current twodimensional electrophoresis technology for proteomics ［J］. Proteomics, 2004, 4 (12): 3665-3685.［2］Hu S, Loo JA, Wong DT. Human body fluid proteome analysis ［J］. Proteomics, 2006, 6(23): 6326-6353.［3］庞月华, 杨望平. 丝裂原激活蛋白激酶磷酸酶1和p38在内膜损伤后血管滑腻肌细胞表型转化进程中的表达转变［J］. 临床心血管病杂志, 2006, 22(9): 36-40.［4］Campbell JS, Hughes SD, Gilbertson DG, et al. Plateletderived growth factor C induces liver fibrosis, steatosis, and hepatocellular carcinoma ［J］. Proc Natl Acad Sci USA, 2005, 102(9): 3389-3394.。