实验六

实验六 利用电位差计测量电压一、实验目的1. 理解并掌握电位差计的工作原理；2. 掌握用箱式电位差计测量电压的方法。

二、实验器材直流稳压电源、电阻箱一个、滑线变阻器一个、万用表一个、箱式直流电位差计一只，导线等。

三、实验原理如图所示，标准电压Es=1.0186V ，调节滑动变阻器1使开关打向左边Es 时I G =0。

此时，流经电阻和滑动变阻器2的电流为：10101.86s E I mA == 当开关打向右边Ux 时，调节滑动变阻器2使I G =0，此时回路1的器件和条件都没发现变化，其电流仍然为10mA ，此时滑动变阻器2的左端电压就等于Ux 的电压。

四 、实验步骤（1）电压的测量1、打开直流是位差计电源开关，将倍率开关K1由“断”放所需档位5上，将功能开关K3旋到“测量”，旋动调零电位器，使检流计初步指零；令电位差计预热5分钟；2、将检流计精细调0；将扳键推向“标准”，旋动工作电流调节旋钮“粗”，“微”，使检流计指0；3、按图2所示，接好电路图；4、用万用表测量100欧姆电阻两端电压；5、按万用表测量数据初步调节读盘数据，被测电阻两端电压按正确极性接在“未知”接线柱上，将扳键开关K2扳向“未知”；调节大小读数使检流计指零，则被测量值等于倍率与3个读盘之和的乘积。

图1 电位差计实验原理图2 电位差计测量电压（2）电位差计的灵敏度电位差计的灵敏度定义为：电位差计平衡后，单位被测电压的变化所引起的检流计指针偏转的变化。

若改变平衡时的补偿电压U的改变量为△U，引起检流计指针的偏转为△n，则灵敏度S为：S=△n/△U =五、实验报告万用表测量电压值为电位差计测量值为电位差计的灵敏度S=。

最新实验六(实验报告)实验目的：本次实验旨在探究特定物质在不同条件下的反应特性，以及通过实验数据分析物质的性质和变化规律。

通过对实验过程的观察和结果的记录，加深对理论知识的理解，并提高实验操作技能。

实验材料：1. 试样：待测物质样品2. 试剂：所需的化学反应试剂3. 仪器：天平、烧杯、量筒、滴定管、温度计、pH计、光谱仪等实验步骤：1. 准备阶段：根据实验要求，准确称取适量的试样和试剂，准备好所有实验仪器。

2. 实验操作：按照实验指导书的步骤，进行化学反应操作，记录下每个步骤的具体条件，如温度、pH值、反应时间等。

3. 数据收集：对反应过程中产生的数据进行收集，包括但不限于颜色变化、沉淀形成、气泡产生等。

4. 结果分析：根据收集到的数据，分析反应过程中物质的变化，以及反应的动力学特征。

5. 结论撰写：根据实验结果，撰写实验结论，总结物质的性质和反应特点。

实验结果：1. 反应速率：通过观察和记录，发现在特定条件下，反应速率与预期相符，具体数据见附录。

2. 产物分析：实验中产生的主要产物为X和Y，通过光谱分析确认了其结构。

3. 副反应：在实验过程中，未观察到明显的副反应现象。

4. 影响因素：实验中发现温度和pH值对反应速率有显著影响。

实验讨论：本次实验中，反应的速率和产物与理论预测基本一致，但在实际操作中存在一定的误差，可能的原因包括实验操作的不精确、环境条件的波动等。

未来可以通过改进实验方法和控制实验条件来减少误差。

结论：通过本次实验，我们成功地研究了特定物质在不同条件下的反应特性，并通过数据分析得到了物质的性质和反应规律。

实验结果对理解相关化学反应机制具有重要意义，并为进一步的实验研究提供了基础。

实验六：观察人血永久涂片一、实验目的：能够运用显微镜观察人血永久涂片，识别红细胞、白细胞和血小板。

二、操作步骤：操作内容操作细则取用器材1、一手握镜臂，一手托镜座，镜筒向前，镜臂向后，将显微镜从显微镜箱中取出；将显微镜安放在实验台距身前边缘7cm左右处，略偏左。

安装镜头2、安装好物镜和目镜。

对光3、转动粗准焦螺旋，使镜筒上升。

4、转动转换器，使低倍物镜正对通光孔。

5、转动遮光器，选择较大光圈对准通光孔。

6、左眼注视目镜内，右眼睁开，用手转动反光镜（要能根据光线强弱选择镜面），看到明亮视野。

用低倍镜观察人血永久涂片7、用洁净的纱布将人血永久涂片擦干净后放在载物台上，使涂片尽量正对通光孔的中心，用压片夹固定。

8、两眼从一侧注视物镜；双手顺时针方向转动粗准焦螺旋；使镜筒徐徐下降，直到物镜头接近涂片为止。

9、两眼睁开，左眼注视目镜；双手逆时针方向转动粗准焦螺旋，使镜筒慢慢上升，直至看到物像；若物像不在视野中央，移动装片使物像移到视野中央。

识别红细胞、白细胞和血小板10、能够清晰的看到物像，并能分辨出红细胞、白细胞和血小板，必要时可转动细准焦螺旋。

整理器材11、实验结束后，先提升镜筒，取下人血永久涂片、目镜，盖上镜头盖，转动转换器，把两物镜偏到通光孔两旁，使镜筒降到最低位置，反光镜竖立存放，显微镜外表用纱布擦拭，镜头用擦镜纸擦拭，将显微镜放回显微镜箱。

12、整理好仪器，清理好桌面，将人血永久涂片放回原处并合理存放废品（整理不到位要扣分）。

三、操作注意事项1、安放显微镜中的“7cm”是指距身前的边缘，而非实验台左侧边缘，这个距离与手掌的宽度相仿；2、手绝对不能接触目镜和物镜镜头的玻璃部分，镜头只能用擦镜纸擦拭；3、不能用手扳物镜转换镜头，要转动转换器（安装镜头的部位，大金属圆盘）；4、对光后会看到视野特别明亮，打开实验台上的灯对光后甚至会很耀眼；5、对光后，不能移动显微镜；6、不能单手转动准焦螺旋，尽量不在高倍镜下转粗准焦螺旋；7、安放涂片时，需要用两个压片夹压住涂片；8、由于血液中白细胞的数量最少，需要学生认真的全方位的观察人血永久涂片；9、区分开杂质和红细胞、白细胞、血小板。

实验六验证机械能守恒定律验证机械能守恒定律。

1．在只有重力做功的自由落体运动中，物体的重力势能和动能互相转化，但总的机械能保持不变。

若物体某时刻瞬时速度为v，下落高度为h，则重力势能的减少量为mgh，动能的增加量为12m v2，看它们在实验误差允许的范围内是否相等，若相等则验证了机械能守恒定律。

2．速度的测量：做匀变速直线运动的物体某段位移中间时刻的瞬时速度等于这段位移的平均速度。

计算打第n点速度的方法：测出第n点与相邻前后点间的距离x n和x n＋1，由公式v n＝x n＋x n＋12T计算，或测出第n－1点和第n＋1点与起始点的距离h n－1和h n＋1，由公式v n＝h n＋1－h n－12T算出，如图所示。

铁架台(含铁夹)，打点计时器，学生电源，纸带，复写纸，导线，毫米刻度尺，重物(带纸带夹)。

1．安装置：如图所示，将检查、调整好的打点计时器竖直固定在铁架台上，接好电路。

2．打纸带：将纸带的一端用夹子固定在重物上，另一端穿过打点计时器的限位孔，用手提着纸带使重物静止在靠近打点计时器的地方。

先接通电源，后松开纸带，让重物带着纸带自由下落。

更换纸带重复做3～5次实验。

3．选纸带：分两种情况说明(1)用12m v2n＝mgh n验证时，应选点迹清晰，且第1、2两点间距离接近2 mm的纸带。

若第1、2两点间的距离大于2 mm，则可能是由于先释放纸带后接通电源造成的。

这样，第1个点就不是运动的起始点了，这样的纸带不能选。

(2)用12m v2B－12m v2A＝mgΔh验证时，处理纸带时不必从起始点开始计算重力势能的大小，这样，纸带上打出的起始点O后的第一个0.02 s内的位移是否接近2 mm，以及第一个点是否清晰也就无关紧要了，实验打出的任何一条纸带，只要后面的点迹清晰，都可以用来验证机械能守恒定律。

1．测量计算在起始点标上0，在以后各计数点依次标上1、2、3…，用刻度尺测出对应下落高度h1、h2、h3…。

实验六动作捕捉系统实验一、实验目的通过动作捕捉实验，熟练运用运动作捕捉系统获取作业过程中的人体参数并进行分析处理，学会对作业者在作业过程中的工作姿态的评价和分析。

二、实验说明不良的作业姿势与不当的受力/施力状态已成为工人疲劳、肌肉骨骼职业疾病的重要原因。

传统的观察、测量、评价方法只能从外界获取工人所处的作业状态，在获取肌肉、骨骼、关节等组织的负荷、角度、速度参数时尚有不足。

本实验中介绍的动作捕捉系统可以实时获取作业过程中的身体姿势、解剖学角度、角速度、扭矩、足底压力等人体参数，对作业姿势的改进、作业方式的再设计提供了有效帮助。

目前动作捕捉系统已经广泛应用于动画制作、步态分析、生物力学、人因工程等领域。

三、实验仪器及原理无线传感运动动作捕捉及力学评估系统（Functional Assessment of Biomechanics, FAB）FAB是基于无线惯性传感技术的生物力学及动作评价系统。

系统由13个（标准配置）小巧轻便的传感器组成（根据需要可以扩充到17个）和一套数据分析、显示的软件。

传感器分别装配在头、上臂、下臂、胸、盆骨、大腿、小腿、足底。

通过弹性绷带可以将传感器固定在各个部位。

系统可以输出的人体参数有：扭矩、角速度、角加速度、空间角度、解剖学角度、足底压力、足底重量、力量、功率等。

特点：1、无线实时进行动作捕捉及数据分析；2、误差小准确性高使用范围广；3、体积小重量轻便携性好，安装方便使用简单；4、无线传输最远距离20米（开阔地带可达40米）；5、解剖学角度、空间角度、力量、扭矩、角速度、角加速度等数据同步分析；6、数据可以传输存储在记忆卡，可将分析数据以Excel表格的形式导出；7、足底压力及足底重量数据同步采集。

FAB软件主界面该设备摆脱了摄像机的限制，并实现了对数据无损耗的特性，大大优于传统的动作捕捉系统，其能够将测量数据实时反映在计算机软件中，并且系统本身自带存储设备，可以完全远离固定场所，拥有很高的灵活性。

实验六比例、求和运算电路一．实验目的1. 用运算放大器等元件构成反相比例放大器,同相比例放大器,电压跟随器,反相求和电路及同相求和电路,通过实验测试和分析,进一步掌握它们的主要特点和性能及输出电压与输入电压的函数关系.二．实验设备名称数量型号1．DC信号源 1 块 -5V～+5V2．信号发生器 1台3．示波器 1台4．万用表1只5．电阻 11只 100Ω*1 2.4kΩ*110kΩ*4 20kΩ*2100kΩ*2 1MΩ*16．集成块芯片 1只 LM741*110. 短接桥和连接导线若干 P8-1和5014811. 实验用9孔插件方板 297mm×300mm三．实验内容与步骤每个比例,求和运算电路实验,都应先进行以下两项:1）按电路图接好线后,仔细检查,确保正确无误。

将各输入端接地，接通电源，用示波器观察是否出现自激振荡。

若有自激振荡，则需更换集成运放电路。

2）调零：各输入端仍接地，调节调零电位器，使输出电压为零（用数字电压表200mV档测量，输出电压绝对值不超过5mV）。

1. 反相比例放大器，实验电路如图8-1所示。

图8-1 反相比例放大器2）分析图8-1反相比例放大器的主要特点（包括反馈类型），求出表8-1中的理论估算值。

表8-12. 同相比例放大器，实验电路如图8-2所示。

1）分析图8-2同相比例放大器的主要特点（包括反馈类型），求出表8-2中各理论估算值，并定性说明输入电阻和电阻的大小。

图8-2 同相比例放大器表8-23. 电压跟随器，实验电路如图8-31）分析图8-3电路的特点，求出表8-3中各理论估算值。

图8-3 电压跟随器2）分别测出表8-3中各条件下的V o值。

表8-34. 反相求和电路，实验电路如图8-4 所示1）分析图8-4反相求和电路的特点，并估算：a. 按静态时运放两个输入端的外接电阻应对称的要求，R’的阻值应多大？b. 设输入信号V11=1V, V12=2V, V13=-1.5V, V14=-2V,试求出V o的理论估算值。

实验六-水样中pH 值的测定一、实验目的1、了解pH 值的直接电位法测定原理及方法；2、掌握酸度计的使用方法。

二、实验原理由pH 玻璃电极（指示电极）和饱和甘汞电极（参比电极）插入溶液中组成测定pH 值的原电池。

在一定条件下，电池电动势E 是试液中pH 值的线性函数。

测量E 时，若参比电极接正，则E = K + 0.059pH (25℃)上述能斯特公式中的K 值包括饱和甘汞电极电位、内参比电极电位、玻璃膜的不对称电位及参比电极与溶液间的液接电位，它难于用理论方法计算出来，但在一定得实验条件下是常数。

通常需要用与待测溶液pH 值接近的标准缓冲溶液进行校正，以抵消K 值对测量的影响。

其原理是：当电极对分别插入pH s 标准缓冲溶液和pH x 未知溶液中，电动势E s 和E x 分别为E s = K + 0.059pH s (25℃)E x = K + 0.059pH x (25℃)两式相减，得059.0059.0E pH E E pH pH s s x s x ∆+=-+= (25℃)在酸度计上，pH 示值按照ΔE/0.059分度，此分度值只适用于温度为25℃时。

为适应不同温度下的测量，需进行温度补偿。

在实际测定中，先将“温度补偿”旋钮调至溶液的温度处，然后将电极对插入已知pH s 的标准缓冲溶液中，用“定位”旋钮将仪器示值调节到pH s 的数值处，这叫“定位”校正（将K 值抵消）。

进行“温度补偿”和“定位”校正后，电极插入pH x 的试液中，仪器就可以直接显示出pH x 的测定值。

pH x 值的设定误差决定于pH s 的正确配置、两电极的性能及酸度计的情况。

一般说来，用一种标准溶液校正仪器后，再去测另一种标准溶液，若测定值与第二种标准溶液的pH 标准值误差小于允许值，则符合要求，否则应检查不准确的原因。

三、仪器与试剂1. 仪器pHS-2F 酸度计（1台）、pH 复合电极（1支）、塑料小烧杯（50mL 3只）2. 试剂pH 标准缓冲溶液：pH =4.01（0.05mol •L -1 KHC 8H 4O 4 溶液）、pH =6.86（0.025mol •L -1 KH 2PO 4 和0.025mol •L -1 Na 2HPO 4 的混合溶液）、pH =9.18（0.01mol •L -1 Na 2B 4O 7 •10H 2O 溶液）；各种未知水样。

实验六微生物的生理生化反应1、实验目的探究菌株在碳源同化、氮源利用、乙醇发酵和抗生素效价分析等方面不同的生长特性，观察并简要分析不同微生物的生理生化特征及其形成机理。

2、实验过程简述2.1 培养基与试剂准备2.1.1碳源同化培养基准备碳源为葡萄糖、半乳糖、蔗糖、麦芽糖、乳糖、棉籽糖、蜜二糖、纤维二糖、海藻糖、松三糖、可溶性淀粉、α-甲基葡萄糖苷的YNB 培养基，放入一根杜氏管。

2.1.2氮源同化培养基准备氮源为硫酸铵，尿素，蛋白胨，硝酸钾，无氮源YNB 的固体、液体培养基。

2.1.3 乙醇发酵用种子培养基：YPD 培养基2.1.4乙醇发酵用发酵培养基葡萄糖，酵母粉，蛋白胨，尿素，磷酸二氢钾，硫酸镁，氯化钙。

2.1.5抗生素效价测定用培养基：LB 培养基2.1.6青霉素：用pH 6.0 磷酸缓冲液配制，浓度为100 mg/ml，0.22μm 孔径过滤灭菌。

2.2 微生物的碳源同化和发酵1、从菌体斜面接一环菌于1 ml 无菌水中，室温静置2 h。

2、取200 μl 菌悬液，分别转接于含杜氏管的小试管中，静置培养48 h。

3、每24 h 观察记录生长和产气情况。

4、根据实验结果判断不同菌株对不同碳源的同化或发酵。

2.3 微生物的氮源利用1、从菌体斜面接一环菌于1 ml 无菌水中，室温静置2 h。

2、取200μl 菌悬液，分别转接于上述培养基小试管中，30℃或37℃静置培养48 h。

3、各取20μl 菌悬液，分别划线于不同氮源的固体平板上，待菌液被吸收后，培养皿倒置，静置培养48 h。

4、每24 h 观察记录生长情况，48 h 测定液体培养物的OD 600。

5、根据实验结果判断不同菌株对不同氮源的利用能力或偏好性。

2.4 酵母菌的乙醇发酵1、种子液培养：将酿酒酵母从菌种斜面上接一接种环至YPD 种子培养基中，30℃，200rpm，培养18 h。

2、乙醇发酵：按照10%（v/v）的比例将培养好的种子液接入100 ml 发酵培养基中，用无菌塑料布将封口密封，30℃，静置培养，每24 h 手摇1 次，发酵3-4 d。