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菊花的组织培养课件(经典)

菊花的组织培养课件(经典)
响。
光照要求
每天光照时间应控制在12-16小时， 光照强度为2000-3000lx，以提供 充足的光照条件，促进菊花组织生 长和分化。
湿度控制
培养室内相对湿度应保持在70%80%之间，以防止培养物失水或过 度吸水。
营养液成分调整策略
01
02
03
大量元素调整
根据菊花生长需求，适时 调整营养液中氮、磷、钾 等大量元素的含量和比例。
课程结束后一周内提交。
报告格式
其他要求
采用书面形式，字数不少于1000字，需包 含标题、正文及结论等部分。
报告需真实反映学生的学习情况和自我感 受，不得抄袭或剽窃他人成果。
THANKS
感谢观看
01
02
03
04
快速繁殖
利用组织培养技术可以快速繁 殖出大量优质种苗，满足市场
需求。
种质保存
通过组织培养技术可以长期保 存菊花的种质资源，避免种质
退化。
遗传转化
利用组织培养技术可以将外源 基因导入菊花细胞，实现遗传
转化和基因工程育种。
新品种选育
通过组织培养技术可以诱导菊 花产生变异，从中选育出优良
新品种。
考核内容
涵盖课程讲授的所有知识点，包括菊花的生物学特性、组织培养 的基本原理、技术操作等。
成绩评定
结合学生的出勤率、课堂表现、实验操作能力及考试成绩等多方 面因素进行综合评定。
学生自我评价报告提交要求
报告内容
提交时间
学生需对自己在课程学习过程中的表现进 行全面评价，包括知识掌握情况、实验将抗病虫害相关基因导入菊花
细胞，提高植株的抗病虫害能力。
06
总结回顾与课程考核要求
关键知识点总结回顾

菊花的组织培养ppt课件

菊花的组织培养ppt课件
营养生殖包括：
4
扦插
5
嫁 接
6
压条
7
植物组织培养：
当植物细胞脱离了原来所在植物体的 器官或组织而处于离体状态时，在一定的 营养物质、激素（细胞分裂素、生长素）和其他外 界条件（温度、pH、光照、无菌等）的作用下，就 可能表现出全能性，发育成完整的植株， 这种培育新植株的方法，叫做植物的组织 培养。
②动物已分化的体细胞全能性受限制，但细 胞核仍具有全能性
植物细胞要表现全能性，步骤： 1.成熟细胞 → 分生细胞 → 胚状体 →完整植株 2.成熟细胞 → 愈伤组织 →出根出芽→完整植株
12
需要条件：
1.离体
2.一定的营养物质
3.植物激素：主要是生长素和细胞分裂素
4.适宜温度和pH 细胞全能性大小：
9
科学家在植物激素对器官建成，及改进培养基配方等方 面所取得的成果，极大地推动了组织培养技术的发展， 使这项技术可以实际应用于快速繁殖、品种改良等方面。 20世纪50年代初期，法国科学家利用组织培养技术成功 地脱除了染病大丽花植株所携带的病毒，从而为脱毒苗 的生产提供了一种可行的途径。现在凭借组织培养技术 来脱除植物的病毒已经在生产中广泛应用。20世纪50年 代中期，由于细胞分裂素的发现，使组织培养状态下外 植体芽的形态建成成为可人为调控的因素，从而使在组 织培养状况下进行植株再生成为现实。进入60年代以后， 组织培养技术在基础理论、实际操作方面不断取得进展， 相继在植物体细胞杂交、单倍体育种、种质资源保存、 快速育苗、人工种子制造、次生代谢物生产等方面有了 可喜的成果。时至今日，组织培养技术已经成为基础坚 实、易于掌握、应用面广的一种技术手段。
22
（二）影响植物组织培养的因素： 1．植物材料的影响：

菊花的组织培养课件(共36张PPT)

菊花的组织培养课件(共36张PPT)

离体组织、器官或细胞
3、植物组织培养过程:
植物细胞培养
细胞分裂素
>生长素
脱分化
细胞分
愈
伤 再分化
组 织
芽
植
物
根
体
裂素≈ 生长素
细胞分裂素< 生长素
不需要光
需要光
4、植物组织培养的应用：
1、培育无病毒植株
2、 培养紫草愈伤组织,提取紫草素（治疗烫伤 和割伤的药物以及染料和化妆品的原料）
3、诱导离体的植物组织形成具有生根发芽能力 的胚状结构，包裹上人造种皮，制成人工种子， 可以解决有些作物品种繁殖能力差，结子困难或发芽
1、选材：菊花茎段，取生长旺盛的嫩枝 2、消毒
①流水冲洗
菊花茎段用流水冲洗后可加少许洗衣粉，用软刷轻轻 刷洗，刷洗后在流水下冲洗20min左右。
② 酒精处理
用无菌吸水纸吸干外植体表面的水分，放入 体积分数为70％的酒精中摇动2－3次，持续6－ 7s，立即将外植体取出，在无菌水中清洗。
③消毒液处理
取出后用无菌吸水纸吸干外植体表面的水分， 放入质量分数为0.1％的氯化汞溶液中1－2min ，取出后在无菌水中至少清洗3次，漂净消毒液 。
基础知识 （一）植物组织培养的基本过程
（二）影响植物组织培养的因素
• 不同的植物组织 • 同一植物的不同Βιβλιοθήκη 料 • 营养、环境条件 • 植物激素
实验操作
• 制备MS固体培养基
1、配制母液
2、配制培养基
3、灭菌
• 外植体消毒 • 接种 • 培养 • 移栽 • 栽培
结果分析与评价
（一）对接种操作中污染情况的分析 （二）是否完成了对植物组织的脱分化和再分化 （三）是否进行了统计、对照与记录 （四）生根苗的移栽是否合格

菊花的组织培养经典ppt课件

菊花的组织培养经典ppt课件

思考：
在植物组织培养的过程中，为什么要进行一系列的消 毒、灭菌，并且要求无菌操作？
植物组织培养所利用的植物材料体积小、抗性差，对 培养条件的要求较高。用于植物组织培养的培养基同 样适合于某些微生物的生长，如一些细菌、真菌等的 生长。而培养物一旦受到微生物的污染，就会导致实 验前功尽弃，因此要进行严格的无菌操作。
一、植物组织培养的概念
当植物细胞脱离了原来所在植物体的器官或组织 而处于离体状态时，在一定的营养物质、激素和其他 外界条件的作用下，就可能表现出全能性，发育成完 整的植株
植物组织培养原理：
植物细胞的全能性 概念： 细胞的全能性是指已分化的细胞具有发育成完
整个体的潜能。 原因： 是生物体的每一个细胞都含有该物种所特有的
（二）是否完成了对植物组织的脱分化和再分化
观察实验结果，看看是否培养出了愈伤组织，记录多 长时间长出愈伤组织。统计更换培养基后愈伤组织进 一步分化成根和芽的比例和时间
（三）生根苗的移栽是否合格
生根苗移栽技术的关键是既要充分清洗根系表面的培 养基，又不能伤及根系。一般使用无土栽培的办法。 培养基质要提前消毒，可以向培养基质喷洒质量分数 为5%的高锰酸钾，并用塑料薄膜覆盖12h。掀起塑料 薄膜后24h才能移栽。新移栽的组培苗要在温室过渡 几天，等壮苗后再移植到大田或进行盆栽。统计自己 移栽的成活率，看看移栽是否合格
3、不同植物激素使用顺序
有利于细胞分裂，但细胞不分化 细胞既分裂也分化 分化频率提高
4、植物激素的用量比
比值高时 比值低时 比值适中
结果 有利于根的分化，抑制芽的形成 有利于芽的分化，抑制根的形成
促进愈伤组织的形成
5、pH、温度、光照（菊花组培） pH=5.8 温度控制在18—22℃ 每日光照12h

《菊花的组织培养》课件

《菊花的组织培养》课件

菊花组织培养案例
菊花种子萌发的组织培养
利用组织培养技术，可实现菊花 种子取代传统方式萌发的目的。
菊花组织快速繁殖的组织 培养
通过组织培养技术，可以将菊花 的种子迅速繁殖，提高育种效率。
菊花细胞的悬浮培养
通过菊花细胞的悬浮培养技术， 可以在短时间内大量生产和收获 菊花组织。
常见问题及解决方案
1 细胞污染
《菊花的组织培养》PPT 课件
本课程将介绍如何进行菊花的组织培养。组织培养可以有效地促进植物生长 并获得质量更高的植物。让我们一起开始吧！
概述
什么是组织培养？
组织培养是指利用外界因素来控制细胞组织生 长、分化和发育的一种方法。
组织培养的意义
组织培养可用于繁殖难以育种的珍稀植物，也 可以研究细胞分裂及开发新品种等。
组织培养的发展趋势
未来的发展趋势是要提高组织培养技术的效率 和实用性，广泛应用于众多领域。
进行无菌操作可以避免细 胞污染，严格控制实验条 件。
2 培养基配制不当
按照具体的实验步骤制备 营养液，不同的植物需要 不同的培养基。
3 培养条件不合适
掌握适宜的环境温度、湿 度和通气量等因素，即可 提高菊花的培养成功率。
结语
菊花组织培养的应用前景
组织培养技术在植物学、农业及医学等领域有 广泛应用，将来有望推动更多领域的发展。
菊花的组织培养方法
1
材料准备
2
玻璃器皿、无菌培养基等实验用品。
3
培养基配制
பைடு நூலகம்
4
按照一定比例调配不同种类的营养物质，
如有机物、水、微量元素、激素等。
5
基本步骤
细胞分离、培养基配制、培养条件设置、 菊花细胞的悬浮培养等。

《菊花的组织培养》课件

《菊花的组织培养》课件
《菊花的组织培养》ppt课 件
目录
• 菊花的组织培养概述 • 菊花的组织培养技术流程 • 菊花的组织培养技术的应用 • 菊花的组织培养技术的挑战与前景 • 菊花的组织培养技术的实践案例
01
菊花的组织培养概述
组织培养的定义与特点
01
组织培养定义
组织培养是一种在人工条件下 ，通过控制温度、湿度、光照 、营养等环境因素，使植物组 织或细胞在体外继续生长和发 育的技术。
炼苗与移栽
炼苗
在模拟自然环境的条件下，对培养成熟的菊花材料进行炼苗 ，以适应外界环境。
移栽
将经过炼苗后的菊花材料移植到自然环境中，进行正常的生 长和管理。
03
菊花的组织培养技术的应用
快速繁殖优良品种
快速繁殖优良品种是组织培养技术的重要应用之一。通过组织培养技术，可以快速、大量地繁殖出具有优良性 状的菊花品种，从而加速菊花育种进程。
某品种菊花组织培养的详细步骤
准备阶段
选择健康、无病虫害的菊花品种， 准备好实验所需的培养基、容器、 试剂等。
取材阶段
选取健康、无病虫害的菊花植株， 剪取其幼嫩的茎段或叶片作为实验 材料。
消毒阶段
将取材用自来水冲洗干净，放入消 毒液中浸泡一定时间，然后取出用 无菌水冲洗多次，确保表面无菌。
接种阶段
将消毒好的材料切成适当大小，接入 准备好的培养基中，确保材料与培养 基紧密接触。
02
03
褐化问题
实验材料在切割过程中受到机械 损伤，导致切口处褐变。解决方 案：采用低浓度的生长调节剂处 理切口，减轻褐化现象。
04
污染问题
培养基或实验器具消毒不彻底， 导致细菌或真菌污染。解决方案 ：加强消毒措施，确保所有器具 和培养基在使用前已经彻底消毒 。

菊花的组织培养优质课件ppt


体 组
脱分化
愈 伤 再分化
芽
织 或 细
细胞分 裂素≈
组 织
根 细胞分裂
植 物 体
胞 生长素
素<生长素
不需要光
需要光
从使用情况来看，闭胸式的使用比较 广泛。 敞开式 盾构之 中有挤 压式盾 构、全 部敞开 式盾构 ，但在 近些年 的城市 地下工 程施工 中已很 少使用 ，在此 不再说 明。
（三）植物组织培养的理论基础---细胞全能性
ABCDE
BADCE
ABCDE
ABCDE
从使用情况来看，闭胸式的使用比较 广泛。 敞开式 盾构之 中有挤 压式盾 构、全 部敞开 式盾构 ，但在 近些年 的城市 地下工 程施工 中已很 少使用 ，在此 不再说 明。
血红蛋白基因开启
红细胞
合成血红蛋白
肌动蛋白基因关闭 (不合成肌动蛋白)
肌细胞
血红蛋白基因关闭 合成肌动蛋白 肌动蛋白基因开启 (不合成血红蛋白)
2、稳定性
造血干细胞 原红细胞 早幼红细
胞 中幼红细胞 晚幼红细胞 成
熟红细胞 死亡
3、不可逆性
从使用情况来看，闭胸式的使用比较 广泛。 敞开式 盾构之 中有挤 压式盾 构、全 部敞开 式盾构 ，但在 近些年 的城市 地下工 程施工 中已很 少使用 ，在此 不再说 明。
细胞分化是
否意味着细胞
中遗传物质的
植物组织培养
从使用情况来看，闭胸式的使用比较 广泛。 敞开式 盾构之 中有挤 压式盾 构、全 部敞开 式盾构 ，但在 近些年 的城市 地下工 程施工 中已很 少使用 ，在此 不再说 明。
（一）植物组织培养概念
在无菌和人工控制条件下，将离体的 植物器官、组织、细胞，培养在人工配置 的培养基上，给予适宜的培养条件，诱导 其脱分化产生愈伤组织再分化形成丛芽， 最终形成完整的植株。
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（六）栽培
幼苗移栽后，每天观察并记录幼苗的生长情 况，适时浇水、施肥，直至开花
思考：在整个操作过程中，是如何来 实现无菌环境的？
2、消毒
① 流水冲洗
菊花茎段用流水冲洗后可少许洗衣粉，用软刷轻 轻刷洗，刷洗后在流水下冲洗20min左右 ② 酒精处理
用无菌吸水纸吸干外植体表面的水分，放入体积分 数为70％的酒精中摇动2－3次，持续6－7s，立即 将外植体取出，在无菌水中清洗
③ 消毒液处理
取出后用无菌吸水纸吸干外植体表面的水分，放 入质量分数为0.1％的氯化汞溶液中1－2min，取 出后在无菌水中至少清洗3次，漂净消毒液
实验结果
先生长素， 后细胞分裂素
有利于细胞分裂,但不分化
先细胞分裂素， 后生长素
细胞既分裂也分化
同时使用
分化频率提高
三、影响植物组织培养的因素：
（4）不同植物激素使用量
生长素/细胞分裂素比值 比值高时
比值低时
比值适中
结果 促根分化，
抑芽形成 促芽分化，
抑根形成
促进愈伤组织生长
三、影响植物组织培养的因素：
菊花的组织培养一般选择未开花植株的茎 上部新萌生的侧枝
三、影响植物组织培养的因素：
（2）离体的植物组织和细胞对营养、环境等条 件的要求相对特殊，需配置适宜的培养基。
MS培养基主要成分包括：
大量元素: N、P、 S 、 K、Ca、Mg等 微量元素: B、Mn、Cu、Zn、Fe、Mo、I、Co等 有机物：甘氨酸、烟酸、肌醇、维生素、蔗糖等
（四）培养
接种后的锥形瓶最好放在无菌箱中培养， 培养期间应定期消毒
培养温度控制在18-22℃ 每日用日光灯光照12h
（五）移栽 1、打开封口膜 移栽生根的菊花试管苗之前，应先打开培养 瓶的封口膜，让试管苗在培养间生长几日
2、清洗转移 用流水清洗根部的培养基，将幼苗移植到消过 毒的蛭石或珍珠岩等环境下生活一段时间
课题1 菊花的组织培养
一、植物组织培养
细胞离体 ①必要条件：
一定的营养物质、激素和其他 外界条件
②原理: 细胞的全能性
二、植物组织培养的基本过程
请阅读P32解决下列问题：
1. 什么叫分化？其实质是什么? 2. 什么叫脱（去）分化、再分化？ 3. 愈伤组织的细胞有什么特点？ 4. 如何控制细胞的脱分化与去分化？
（三）接种 1、接种室消毒
污染的主要来源是空气中的细菌和孢子，接种室消 毒是至关重要的。用70％的酒精喷雾使空气消毒， 酒精或新洁尔灭搽洗工作台并用紫外线照射20分钟
2、无菌操作要求
操作要在酒精灯火焰旁完成，每次使用器械后，都需 要用火焰灼烧灭菌，接种后立即盖好瓶盖。
3、材料的切取和接种
4、接种注意事项
③用母液配制培养基时，需要根据各种母液的浓缩 倍数，计算用量
2、配制培养基
① 配制培养液
② 调PH ③ 培养基的分装
分装到锥形瓶中，每瓶分装50ml或100ml
由于菊花的茎段的组织培养比较容易， 因此不必添加植物激素 3、灭菌
分装好的培养基连同其他器械一起进行高 压蒸汽灭菌
（二）外植体消毒
1、选材：菊花茎段，取生长旺盛的嫩枝
3、移栽 幼苗长壮后，移栽到土壤中
珍珠岩 ,珍珠岩是一种火山喷发的 酸性熔岩，经急剧冷却而成的玻璃 质岩石，有弧形或圆形裂隙，如珍 珠的结构，所以被命名为珍珠岩。
蛭石是一种天然、无毒的矿物质， 在高温作用下会膨胀的矿物。它是 一种比较少见的矿物，属于硅酸盐。
固体基质型，含水量高、蓄水性强、透性好， 适合栽培
①每接种一块外植体前，镊子需放入体积分数为75 ％的酒精溶液中消毒一次，然后在酒精灯火焰上烧 一遍，冷却后再接种
②外植体在培养基中要分布均匀，放置外植体数量 根据锥形瓶的大小确定，一般胡萝卜3－4块，菊的 茎或叶6－8块，也不要太少，以充分利用培养基中 的营养成分和光照条件
③插入时应注意方向，不要倒插。茎段的茎尖基部插 入培养基利于吸收水分和养分
微量元素 和 有机物
。
３、激素：关键激素是生长素和 细胞分裂素，
其 浓度 、使用的条件: pH、温度、光。照
四、植物组织培养过程:
离
细胞分裂素>生长素
体 组
脱分化
愈 伤
再分化
芽
织 或 细
细胞分裂素 ≈生长素
组 织
根 细胞分裂素<生长素
植 物 体
胞
四、植物组织培养过程:
（5） pH、温度、光照（菊花组培） pH=5.8 温度控制在18—22℃ 每日光照12h
（6）消毒 在培养的整个过程中，都需要是一个无菌环境
三、影响植物组织培养的因素：
未开花植物的茎上部 新萌生的侧枝
１、植物材料的选择：植物的 种类、材料的年
龄、 保存时间 的长短 ２、营养：ＭＳ 培养基，主要成分是大量元素、
器官
愈伤组织：是通过细胞分裂形成的，其细胞排
列 疏松而无规则，高度 液泡化呈无定形状态 的 薄壁细胞 。
离体的植物 脱分化 器官、组织、 细胞
愈 再分化 根 伤
组
织
芽
植 物 体
三、影响植物组织培养的因素：
（1）植物材料的选择
不同植物材料
烟草和胡萝卜的组织培养较为容易 枸杞愈伤组织的芽诱导比较难
同一植物材料的年龄、保存时间的长短会 影响实验结果
植物激素： 生长素、细胞分裂素等
旁栏思考：
MS培养基中各营养物质的作用是什么？ 微量元素和大量元素提供植物细胞生活所必 须的无机盐； 蔗糖提供碳源，同时维持细胞的渗透压； 甘氨酸、维生素等物质，主要是满足离体植 物细胞的特殊营养要求。
三、影响植物组织培养的因素：
（3）不同植物激素使用顺序
使用顺序
（一）制备MS固体培养基 （二）外植体消毒 （三）接种 （四）培养 （五）移栽 （六）栽培
（一）制备MS固体培养基
MS培养基包括20多种营养成分，实验室一般使用4℃ 保存配制好的培养基母液来制备
1、配制各种母液
①无机物中大量元素浓缩10倍，微量元素浓缩100 倍，常温保存
②激素类、维生素类以及用量较小的有机物一般可 按1mg/ml的质量浓度单独配制成母液
二、植物组织培养的基本过程
１、植物组织培养的理论基础： 细胞的全能性 .
２、细胞分化：个体发育中，细胞在 形态、 结构和
生理功能上出现 稳定性差异的过程。实质_基__因_的__选_ 择性表达
３、脱分化（去分化）：由高度分化的植物组织或
细胞产生 愈伤组织的过程
根和芽
再分化：愈伤组织继续培养，重新分化成 等