鲜切甘薯不同部位褐变机理差异

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鲜切甘薯不同部位褐变机理差异王礼群1,刘 硕1,杨春贤2,张欣怡1,姚世响1,邓丽莉1,曾凯芳1,*(1.西南大学食品科学学院,重庆 400715;2.西南大学生命科学学院,重庆市甘薯工程技术研究中心,重庆 400715)摘 要:以‘渝薯17’甘薯为实验材料,将鲜切甘薯分为皮部、周边以及中心3 个部位。

通过对冷藏过程中鲜切甘薯不同部位褐变情况、褐变底物酚类物质含量、褐变相关酶活力的比较研究,探讨鲜切‘渝薯17’不同部位的褐变机理及差异。

结果表明,绿原酸是甘薯褐变的主要底物,鲜切甘薯不同部位褐变存在差异,皮部褐变最严重,周边次之,中心最弱。

皮部总酚和游离酚含量均显著高于周边和中心组织(P <0.05),其中主要底物绿原酸含量为周边和中心组织的3~4 倍。

多酚氧化酶(polyphenoloxidase ,PPO )是引起皮部组织褐变的主要酶,苯丙氨酸解氨酶对酚类物质的积累起促进作用;周边组织褐变由PPO 和过氧化物酶(peroxidase ,POD )协同作用催化;中心组织褐变则主要由POD 引起。

关键词:鲜切甘薯;酶促褐变;绿原酸;多酚氧化酶;过氧化物酶Mechanism of Browning in Different Parts of Fresh-Cut Sweet PotatoWANG Liqun 1, LIU Shuo 1, YANG Chunxian 2, ZHANG Xinyi 1,YAO Shixiang 1, DENG Lili 1, ZENG Kaifang 1,*(1. College of Food Science, Southwest University, Chongqing 400715, China; 2. Sweet Potato Engineering Technology ResearchCenter, College of Life Sciences, Southwest University, Chongqing 400715, China)Abstract: In this paper, fresh-cut sweet potato ‘Yushu No. 17’ was divided into three parts including skin, peripheral and central part. The mechanism of browning in different parts of fresh-cut sweet potato was studied by measuring the browning index, the content of phenolic compounds and the activity of browning-related enzymes. The results showed that chlorogenic acid was the major browning substrate in sweet potato. There were differences in browning among different parts of fresh-cut sweet potato, with the most severe browning occurring in the skin, followed by the peripheral and central parts. The contents of total and free phenols in the skin were significantly higher than those in the peripheral and central tissues (P < 0.05), with a 3 to 4-fold increase being observed in the content of chlorogenic acid. Polyphenol oxidase (PPO) was the major enzyme responsible for the browning process of skin tissue. L -phenylalanine ammonia-lyase promoted the accumulation of phenolic substances. The browning process of peripheral tissue was catalyzed by PPO and peroxidase (POD), while that of central tissue was mainly caused by POD. The moisture content of sweet potato tissue decreased with storage time.Keywords: fresh-cut sweet potato; enzymatic browning; chlorogenic acid; polyphenol oxidase; peroxidase DOI:10.7506/spkx1002-6630-201801043中图分类号:TS255.3 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2018)01-0285-06引文格式:王礼群, 刘硕, 杨春贤, 等. 鲜切甘薯不同部位褐变机理差异[J]. 食品科学, 2018, 39(1): 285-290. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201801043. WANG Liqun, LIU Shuo, YANG Chunxian, et al. Mechanism of browning in different parts of fresh-cut sweet potato[J]. Food Science, 2018, 39(1): 285-290. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201801043. 收稿日期:2017-05-15基金项目:重庆市社会事业与民生保障科技创新主题专项(Cstc2015shms-ztzx80010);西南大学本科生科技创新项目(SPXY201605)第一作者简介:王礼群(1996—),女,本科生,研究方向为食品科学与工程。

E-mail :wangliqun8393@*通信作者简介:曾凯芳(1972—),女,教授,博士,研究方向为农产品加工与贮藏工程。

E-mail :zengkaifang@甘薯(Ipomoea batatas Lam.)是我国四大经济作物之一,产量居世界之首,而川渝地区甘薯种植面积居全国第一[1-2]。

甘薯中富含淀粉、维生素以及抗氧化物质如多酚等,是天然的“生理碱性”食物,具有调节体内酸碱平衡、提高免疫力、促进消化和防癌等作用[3-5]。

随着消费者对食物原有营养价值的重视,鲜食甘薯在甘薯产业中所占比率越来越大[6]。

近年来,鲜切果蔬凭借其便捷、高利用率以及高营养价值保留度等特点在我国快速发展,逐渐进入人们的生活[7-8]。

但由于鲜切甘薯加工过程中受到机械伤害,伤口处极易发生褐变,营养价值降低,制约了鲜切甘薯的发展;因此对鲜切甘薯褐变机理和有效控制措施的研究具有重要意义。

目前对果蔬褐变的研究结果表明,果蔬的褐变主要为酶促褐变,即果蔬在受到切割伤害后,酚-酚酶原本的细胞分区被破坏,从而使得酚类物质和酚酶接触,在氧气作用下酚类物质被氧化产生醌类物质,聚合成为黑褐色物质,产生褐变[9-10]。

苯丙氨酸解氨酶(L-phenylalanin ammonia-lyase,PAL)是广泛存在于植物中的苯丙烷代谢途径关键酶,可将苯丙氨酸转化生成酚类物质,参与各种酚类物质的合成。

此外,PAL与植物诱导抗病及抗病信号通路相关[11-12]。

已有的研究表明,甘薯的褐变也属于酶促褐变,多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)是产生褐变的氧化酶,绿原酸是主要作用底物[13]。

过氧化物酶(peroxidase,POD)也是与褐变密切相关的一类酶,它可以清除活性氧抵御逆境,也可以与酚类物质结合促进褐变[11,14]。

但与一般果蔬不同的是,甘薯的褐变分布不均匀[15],具有明显的组织特异性,而目前对鲜切甘薯不同部位褐变机理差异的研究较少。

以‘渝薯17’甘薯为实验材料,通过对鲜切甘薯在冷藏过程中不同部位褐变底物含量变化、褐变相关酶(PPO、POD、PAL)活力变化以及与褐变相关因素的研究,明确鲜切甘薯不同部位的褐变机理及其差异,为鲜切甘薯褐变控制以及保鲜技术开发提供针对性的理论参考,也为甘薯产业的发展提供新的思路。

1 材料与方法1.1材料与试剂实验所用‘渝薯17号’采收于西南大学合川农厂甘薯实验基地。

丙酮(分析纯)重庆川东化学试剂厂;交联聚乙烯吡咯烷酮(crosslinking polyvingypyrrolidone,PVPP)北京拜尔迪生物技术有限公司;儿茶酚(化学纯)中国医药集团上海化学试剂公司;绿原酸(色谱纯)上海原叶生物技术有限公司;愈创木酚(化学纯)中国佘山化工厂;L-苯丙氨酸(生化试剂)上海康达氨基酸厂;β-巯基乙醇(分析纯)中国化学医药集团化学试剂公司。

1.2仪器与设备UV1000紫外分光光度计天美(中国)科学仪器有限公司;Synergy H1mg全自动酶标仪美国BioTek 公司;3400N扫描电子显微镜日本Hitachi公司;3H16R1高速冷冻离心机湖南赫西仪器装备有限公司;DZF6032真空干燥箱上海齐欣科学仪器有限公司。

1.3方法1.3.1样品准备选取大小均匀、无病虫害、无机械损伤的甘薯,洗净后去表皮,切成厚度为0.5 cm的甘薯片,放入塑料托盘,保鲜袋封装,置于4 ℃恒温冰箱中贮藏8 d。

按皮部、周边和中心3 个部位取样(图1),皮部为从边缘起向内0.5 cm 左右的圆环组织,中心为以中心点为圆心、半径为1cm的组织,其余部位为周边组织,每隔1 d取样1 次。

Ⲃ䚼䖍Ё图 1 鲜切甘薯不同部位分区图Fig. 1 Parts of fresh-cut sweet potato1.3.2褐变度的测定褐变度的测定参考文献[16],采用消光值法并稍作修改。

随机取1.0 g甘薯组织,加入液氮研磨3 min至呈粉末状,待液氮挥发干后加入10 mL预冷蒸馏水,混匀后,离心10 min(3 500 r/min、4 ℃),取上清液于340 nm波长处测定吸光度A340 nm,以A340 nm表示褐变度值。