微生物检验标本采集规范

• 2、下呼吸道标本
（1）自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容 器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、 流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检 的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液， 不要唾液。
• （2）诱导痰：在医护人员指导下，用3 NaCL诱导咳 出痰液，用于结核分枝杆菌和肺孢子菌检测。
临床常见微生物学检验标本通常有血液、 痰液、尿液、粪便、伤口的脓液、胸水、腹水、 脑脊液及泌尿生殖系统的分泌物等，下面分别 介绍各种标本的采集方法。
一、呼吸道标本采集规范
病原体种类繁多而复杂 使呼吸道感染病原诊断成为难题
➢细菌 ➢真菌（包括肺孢子菌） ➢病毒 ➢支原体、衣原体与立克次体 ➢原虫 ➢寄生虫
（二）采集方法
1、咽拭子及鼻拭子 采集前患者应用冷开水反复漱口， 拭子的选择：要求无菌、不含抑制剂； 预先沾湿拭子（非常重要）； 由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，将棉拭子 通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次以取得标本。 对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，直取病灶部位，拭 子要避免接触口腔及舌粘膜。减少污染。 立即送检。室温保存。 接种同痰
（一）采集指征 •凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血 性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外 周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X 线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至 出现感染性休克和呼吸衰竭等患者，应采集痰 液或下呼吸道标本。
•对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、 肺鼠疫等）患者采集检验标本时必须注意生物 安全防护。
2．耻骨弓上膀胱穿刺采集尿 使用无菌注射器直 接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评 估 膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但患者不 易接 受，主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的 婴儿尿 标本的采集。

微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。

下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。

采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。

采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。

送检尽快送检，一般不超过2小时。

若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。

2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。

5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

6.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

7.采样后应立即送检，最好在2h内。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。

对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。

–经支气管镜直接吸引 –支气管肺泡灌洗 –防污染样本毛刷
下呼吸道标本采集方法
3
胃内采痰法：无自觉症状的肺结核病人尤 其婴幼儿不会咳嗽，有时将痰误咽入胃中， 可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。 4 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭 子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽，可喷出 肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。幼儿还 可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
血培养标本的运送
采集后的血培养瓶应在1小时之内送往
实验室。 血培养瓶在采血接种后在室温不超过 数小时。 血培养瓶在接种前和接种后均不得冷 藏或冷冻。
血培养假阳性的危害
1、增加患者抗生素用量，破坏其微生态环境 2、延长了住院天数 3、延误病情诊断 4、增加经济负担
防止皮肤寄生菌或环境微生物污染
但由于标本的采集和运送常有护士或医
生或病人自己完成，所以也是最不容易 做好的事情，而且不知道问题所在之处 ，造成的后果是: 临床医生最不能接受的问题:阳性率低
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。 4.采样后立即送检，最好在2h内。甚至床旁接种尤其是 厌氧培养，棉拭子标本宜用运送培养基，尽量不要以 棉花拭子收集样本。 5. 标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的 7.混有正常菌群的标本如痰、尿、伤口拭子，不可置肉 汤培养。 8.安全：标本收集时，注意安全防护；标本收集后，须 避免他人被感染。

咳痰标本不合格，退检吗？
如果低倍视野下鳞状上皮细胞大于25个，
白细胞小于10个，应不做或仅在特殊要求 时做培养。
如做培养，报告中注明“镜检结果表明标

微⽣物标本采集⽅法及注意事项 微⽣物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有⼗分密切的关系。

医⽣、护⼠、检验⼈员均应重视微⽣物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进⾏正确采集标本的宣传和指导。

下⾯是yjbys店铺为⼤家带来的微⽣物标本采集⽅法及注意事项，欢迎阅读。

⼀、粪便标本采集和处理 (1)采集⽅法 1.⾃然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓⾎、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛⽆菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋⽩胨⽔中(PH8.6)。

2. 直肠拭⼦法：难以获得粪便或排便困难患者及幼⼉可采⽤此法，将拭⼦前端⽤⽆菌⽢油或⽣理盐⽔湿润,然后插⼊肛门约 4～5cm(幼⼉ 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表⾯粘液后取出，盛于⽆菌试管中或保存液中送检。

(2) 注意事项 1.尽可能在抗⽣素使⽤之前采集标本。

2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混⼊尿液及其他异物，采集过程应尽量⽆菌操作。

3.不应⽤厕纸收集粪便。

4.对同⼀病⼈在同⼀天不宜重复送检。

5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。

6.下列腹泻患者应连续3d送检标本 --社区获得性腹泻(⼊院前或72h内出现症状) --医院腹泻(⼊院72h后出现症状)，且⾄少有下列情况之⼀：⼤于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。

--怀疑肠道感染的⾮腹泻性表现。

7.肠炎和发热病⼈建议做⾎培养。

8.伤寒沙门菌感染时⾻髓培养⾼出⾎培养。

9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。

(3)标本拒收 ⼲燥的拭⼦、含钡粪便、黄软成形便、⼲便、明显污染的粪便、⼀⽇内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。

⼆、尿液标本采集和处理 (1)采集⽅法 1. 中段尿采集法：清晨起床后⽤肥皂⽔清洗尿道⼝和外阴部，再⽤清⽔冲洗尿道⼝周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～10ml盛于带盖的⽆菌容器内⽴即送检，采集后于0.5h内进⾏接种。

临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。

1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。

1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。

1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。

1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。

引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。

1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。

1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。

1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。

1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。

禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。

1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。

1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。

1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。

1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。

不可用纱布包裹组织样本。

2 常见临床微生物标本的采集方法。

2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。

2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。

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无菌操作
在采集微生物标本时，必须严 格遵守无菌操作原则，避免污 染标本和引入外源性微生物。
正确选择采集部位
根据不同的病原体和感染类型 ，选择正确的采集部位，以提 高标本的阳性率和准确性。
采集足量标本
采集足够量的标本，以保证检 测的准确性和可靠性。
及时送检
采集后的微生物标本应及时送 检，避免延误诊断和治疗。
指导治疗
根据微生物标本的检测结果， 医生可以选择针对性的治疗药 物和方法，提高治疗效果。
监测病情变化
通过对微生物标本的连续检测 ，可以及时了解患者病情的变 化情况，为医生调整治疗方案 提供依据。
预防和控制感染
通过对微生物标本的检测和分 析，可以及时发现和控制感染 源，防止感染的扩散和传播。
微生物标本采集原则
不同类型标本的采集方法 和处理流程
微生物实验室安全防护措 施
临床微生物标本采集意义再认识
准确诊断和治疗感染性 疾病的基础
指导临床合理使用抗生 素的依据
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监测医院感染和流行趋 势的重要手段
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推动临床微生物学科发 展的关键因素
提高临床微生物标本采集质量策略探讨
01 加强医护人员培训，提高标本采集技能
根据采集部位和微生物种类指导患者进行相应的准备工 作，如清洁皮肤、保持空腹等。
鼓励患者在采集过程中保持放松状态，配合医护人员的 操作。
04 微生物标本运输 、保存和处理流 程
微生物标本运输要求及注意事项
微生物标本运输需使用专用运 输箱，确保密封性良好，防止
标本外泄。
运输人员需接受专业培训，了 解标本运输的相关知识和操作 技能。

优化采集方法和工具
根据不同类型的标本和采集需求， 选择合适的采集方法和工具，确 保采集到足够的标本量。
规范标本运输和保存
制定详细的标本运输和保存规范， 包括温度、光照等环境条件的控 制，确保标本在运输和保存过程 中保持质量稳定。
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未来发展趋势预测
2024/2/2
自动化和智能化技术应用 随着科技的不断发展，自动化和智能化技术将在临床微生 物标本采集中得到更广泛的应用，提高采集效率和准确性。
节。
2024/2/2
关键控制点分析
对标本采集过程中的关键控制点进 行了深入剖析，如无菌操作技术、 标本采集时机、采集量等因素对标 本质量的影响。
成功经验总结
总结了在实际操作过程中取得的成 功经验，如合理选用采集工具、正 确保存和运输标本等。
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存在问题及原因分析
标本污染问题
分析了标本污染的主要原因，包括采集过程中未严格执行无菌操作、 采集容器不洁净等。
2024/2/2
重症患者样本
对于重症患者，其样本也 应优先处理，以便医生及 时了解患者病情。
特殊项目样本
对于某些特殊项目，如细 菌培养、药敏试验等，也 应优先处理，以缩短检验 周期。
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及时反馈问题并改进工作流程
反馈问题
分析原因
在接收和处理过程中发现的问题，应及时反 馈给相关科室和人员。
对反馈的问题进行分析，找出问题产生的原 因。
临床微生物标本采集规范总结
2024/2/2
1
目 录
2024/2/2
• 标本采集重要性 • 标本采集前准备 • 不同类型标本采集方法 • 标本采集过程中质量控制措施 • 实验室接收和处理流程优化建议 • 总结反思与未来展望

微生物检验标本的正确采集及注意事项
正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。

下面是yjbys小编为大家带来的微生物检验标本的正确采集及注意事项的知识，欢迎阅读。

一、血液标本的采集
1、采集方法
（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2。

5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5—10ml，婴幼儿1—5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项
（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38。

5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20：1或大于这个比例。

24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
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标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。

四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）、标本情况（标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达，冷藏保存。
六)实验室拒收标准
烧伤患者的创面、组织活检、血培养等的细菌学检测结果对临床医生进行烧伤感染的诊断和治 疗十分重要。创面的拭子标本或组织活检标本都可以进行细菌定量培养。出现全身感染症状时，应 同时采集血培养标本。在采集表面拭子或组织活检标本之前，应对创面彻底清洁，且未局部应用抗 菌药物。
一)临床采样指征：
由于烧伤的早期创面无菌，烧伤后12小时勿采集标本。当患者出现发热、创面恶化时， 考虑采样。
二)采样要求 1.病原体培养应在抗菌药物应用前或停药一周后采集标本。 2.生殖器是开放性器官，标本采集过程中应遵循无菌操作以减少杂菌 污染。 3.阴道内有大量正常菌群存在，采取宫颈标本应避免触及阴道壁。 4.沙眼衣原体在宿主细胞内繁殖，采集时尽可能多的取上皮细胞。
尿道分泌物
三）采集方法
（1）男性：取样前至少1小时内不要小便。 用无菌生理盐水清洗尿道口，用灭菌纱布 或棉球擦干，用男性拭子采取从尿道口溢 出的脓性分泌物或将男性拭子插入尿道内 2～4厘米取分泌物，置无菌试管中。如无 脓液溢出，可从阴茎的腹面向龟头方向按 摩，促使分泌物溢出。
应尽量送检无菌部位的标本，尤其是血培养。有菌部位标本应避免“正常菌群导致 标本的污染”。人体很多部位，如下呼吸道（痰液标本）、鼻窦、皮肤伤口等处的正常 菌群极易污染标本。因此，从这些部位采集标本，要尽可能降低这些部位正常菌群或定 植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。

4）咽用压舌板压舌；用无菌拭子在后咽部、扁桃体 和其它感染部位采集标本；怀疑白喉可用无菌拭
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.

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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
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血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准

微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。

2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。

3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。

4.标本采集后应立即送至细菌室。

床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。

6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。

一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。

2.采血部位：肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。

怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。

对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。

4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。

过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。

消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。

微生物检验标本的正确采集及注意事项微生物检验标本的采集直接影响微生物培养与鉴定结果，准确的结果可为临床诊疗提供指导，有助于科学用药、控制感染，进而延缓细菌耐药、监测医院感染、减少抗菌药物滥用，而正确采集微生物检验标本是最为关键、重要的一步。

为此，本文总结了微生物检验标本的正确采集方法和注意事项，下面让我们一起来了解一下。

一、采集血液标本应用75%酒精清洁局部皮肤，待皮肤干燥后应用1%--2%碘酊或者1%碘伏消毒穿刺点及周围皮肤，消毒范围至少需要3厘米，再次使用75%酒精脱碘后采集血液；对于碘过敏的患者，则采用75%酒精消毒30秒，自然干燥后再用75%酒精消毒60秒的消毒策略。

消毒后不可用手直接触摸穿刺部位，穿刺抽吸8--10毫升成人血液（婴幼儿及儿童患者采血量则不能超过总血量的1%），注入血培养瓶中并立刻颠倒混匀，以防血液凝固，但不可剧烈震动，以防标本溶血。

值得注意的是，血液标本作培养时需格外小心，皮肤表面含有较多微生物，消毒不规范则会污染血液，故应在采血前由内至外认真消毒；血液注入培养基之前不可更换针头，以防感染；采血前应用抗菌药物且无法停药者应在下次用药前采血，注意，不可在静脉穿刺处采集血液标本，除怀疑导管相关感染外亦不可经由静脉导管或动脉插管内抽血；采血量并不是越多越好，采血量太多，则会稀释培养液，营养成分不够；怀疑为菌血症的患者应尽早采血，避免延误最佳时机；怀疑为布鲁式病以及细菌性心内膜炎患者应选择肘动脉、股动脉穿刺采集血液，除发热期以外，均应多次采血，建议24小时内采集3--4次，且要增加采血量，以10毫升左右为宜。

二、采集痰液标本于清晨起床后使用凉白开多次漱口，去除口腔内的杂菌，并用力咳嗽，以咳出肺部深处的脓痰，吐入清洁、干燥的容器中送检。

如果患者痰液量比较少，可以应用25毫升45摄氏度3%--10%氯化钠溶液行雾化吸入，如果是患儿，则需要轻轻按压其胸骨上方的气管，在其咳痰后使用无菌棉棒采集痰液标本。

56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋 （河南京城皮肤中医院，河南郑州 450000）常见的微生物检验标本包括以下几种类型：血、骨髓、静脉导管标本，痰及下呼吸道标本，尿液标本，大便标本，生殖道系统标本，眼、耳、鼻、咽拭子标本。

血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法：（1）先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上，用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。

（2）使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。

在血液注入血培养瓶前，先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。

（3）在穿刺前或穿刺期间，佩戴乳胶手套将静脉进行固定，防止滑动，但是不可接触穿刺点；使用注射器无菌穿刺取血后，可直接注入血培养瓶中；在血标本进入到培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检，以免血液凝固。

（4）成人的采血量是8~10 ml ，儿童的采血量是1~3 ml ，骨髓采血量是1~2 ml 。

注意事项：（1）静脉采血的部位通常为肘静脉，不建议从动脉采血。

患者疑是细菌性心内膜炎时，可以选择肘动脉或者股动脉采血，勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。

（2）使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头，直接注入血培养瓶。

如果需要进行第二次穿刺，需要更换针头。

（3）多次采血时，应在不同部位的血管穿刺，以排除皮肤菌丛污染的可能。

除非无法从静脉穿刺处取血，否则不能从静脉植入管内取血。

（4）若是从静脉植入管内取血，应该同时自外周静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果，同时在申请单上注明标本类型。

（5）采血前，应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上，并贴在培养瓶上。

（6）有血的培养瓶若不能立即送检，可放室温保存，切不可放入冰箱。

痰及下呼吸道标本正确采集方法：（1）能够自行取痰的患者，在清晨起床后未进食前，先用漱口水漱口，去除口腔细菌，再用清水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖；无法咳痰或者不合作的患者，需要帮助其采取卧位，由上而下叩击背部，并戴好无菌手套，将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器，按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内，并盖好瓶盖，收集好后立即送检。