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RNA提取步骤RNA（Ribonucleic Acid，核糖核酸）是细胞中一类重要的生物大分子，承担着重要的遗传信息传递和蛋白质合成的功能。
RNA提取是研究RNA生物学功能的基础，下面是RNA提取的基本步骤。
1.样本选择和收集：样本的选择和收集是RNA提取的第一步。
样本可以是任何含有RNA的细胞、组织或体液，如细菌、真菌、动物和植物组织。
在选择样本时，应注意保持样本的完整性和纯度，以最大限度地保留RNA的完整性。
2.细胞或组织破碎：细胞或组织破碎是RNA提取的关键步骤。
破碎细胞可以释放细胞质中的RNA，并使其易于提取。
通常有以下方式实现细胞或组织的破碎：-机械破碎：使用搅拌器或超声波浸没仪等设备将细胞或组织破碎。
-化学破碎：使用化学溶解剂如含有离子的缓冲液等破碎细胞。
-酶解：使用蛋白酶等酶类分解细胞或组织。
3.细胞或组织的裂解：细胞或组织裂解是破裂细胞膜和核膜，使RNA释放出来的步骤。
细胞或组织的裂解可以采取以下方法：-物理方法：如超声波、高温或高压等。
-化学方法：如使用制备裂解液溶解膜。
-酶解法：如使用蛋白酶等酶类裂解细胞膜。
4.RNA的纯化：在RNA提取过程中，纯化RNA以消除DNA、蛋白质和其他杂质是非常重要的。
以下是常见的纯化步骤：- DNase处理：用于降解DNA并消除其对RNA的干扰。
-蛋白酶处理：用于降解蛋白质并消除其对RNA的干扰。
-异丙醇沉淀：用来沉淀RNA，将其分离出其他溶液中的杂质。
-高盐沉淀：用来消除RNA的杂质。
5. 经过上述步骤后，可以使用RNA作为后续实验的模板，如逆转录PCR（Reverse Transcription PCR）进行mRNA的合成和扩增、Northern blotting进行RNA的检测等。
在RNA提取过程中，需要注意以下几点：-提取操作应注意消除污染源，严格遵守无菌技术，避免RNA的降解和污染。
- 所有操作和提取溶液都应严格遵守操作规范，使用无RNase的耗材和试剂。
TRIZOL提取RNA步骤（革兰式阳性细菌和阴性菌通用）一.细胞前处理1.取菌液100ul（原则上每107个细胞加入1ML TRIZOL，不能超过108细胞），8000g，4℃，离心2 min，去掉上清液体。
（仔细将上清液吸取干净，不要触及EP管底部的细菌。
）2.加入250 ul，20mg/ml 的lysozyme（使用无Rnase free 的TE溶解）吹打混匀，放入37℃的水浴锅或者培养箱中孵育10 Min。
二.总RNA提取3.将孵育完毕的裂解液加入1 ML trizol 裂解液吹打混匀，再使用振荡器震荡3-5次（每次1-2 S）,放置在常温下6-10 min。
（此步一定要室温静置，静置完毕后可以直接放入-80℃冰箱保存）4.往已经备好的裂解液中加入氯仿（Rnaiso plus 1/5的体积量，一般200 ul左右，最多300ul）盖紧离心管盖，剧烈震荡，直到将混合液乳化成乳白色状态。
5.室温静置5 Min。
6.12000g，4℃离心，15 Min，从离心机中小心取出离心管（尽量不要触及管子和盖子的交界处，以免引起污染），此时匀浆液分为3层，上层是无色上清液（含RNA），中层是蛋白层（含有大部分DNA以及蛋白），下层是红色的有机相。
7.将上层无色液体转移至一管新的离心管中（上层液体吸取时尽量使用200 ul的枪头，尽量不要吸取到中间蛋白层，一般取600 ul足矣，不要贪多。
）8.向吸取的上清液中加入0.5-1倍体积的Rnaiso plus 体积的异丙醇（最多750 ul，并且异丙醇要置入-20℃冰箱中提前预冷），上下颠倒混匀后，4 ℃静置10 min。
9.12000 g，4 ℃离心10 Min。
10.小心去掉上清液（先倾倒出液体，再使用200 ul的枪头将剩余的异丙醇吸掉，在吸取异丙醇的时候一定不要触及底部的RNA沉淀，宁可剩余一点异丙醇在EP管内，一般10-20 ul异丙醇是可以接受的），加入75%的乙醇约1.5 ml，（乙醇一定要在-20℃预冷，使用DEPC处理水配制），尽量吹打3-5次，然后再振荡器再使用振荡器震荡3-5次（每次1-2 S，动作不能太剧烈，再轻弹管壁使得RNA悬浮起来。
rna提取的流程和方法RNA提取的流程和方法一、RNA 提取流程1、实验准备在RNA提取前，需要准备一些实验用品，如RNA提取试剂盒、干净的Eppendorf管、试剂管盒等。
2、组织采集从实验材料（如组织）中采集适量样品，将其添加到实验管中，并用恰当的液体（如液氮）固定。
3、细胞分离和消化将固定过的样品放置在消化槽中，并加入相应蛋白酶（常用的蛋白酶有 Protease、 DNase I 等）。
待消化完成后，细胞就可以分离出来，得到小分子和线粒体RNA。
4、细胞悬液处理细胞和消化液将放置在分离机中，以速度较快的离心来分离细胞悬液和上清液，获得纯净的细胞悬液，以及细胞内的RNA。
5、病毒筛选针对实验中可能存在的病毒，在RNA提取后期，可以采用专门的病毒筛选技术来检测病毒的存在与否，用以保证实验结果的可靠性。
6、RNA 提取利用加热或冷冻方法来预处理细胞悬液，再加入性质非常活跃的提取试剂，分离出RNA，最后经酶抑制剂处理，即可实现RNA的提取。
7、RNA 质量检测采用实时定量荧光PCR（qPCR）或定量实时荧光 PCR（qRT-PCR）技术，对提取出来的RNA进行质量检测，以确定RNA的质量是否满足后续研究的要求。
8、实验结束实验完成后，将所有的实验用品清洗干净，并完成实验报告记录和记录实验结果，结束实验。
二、RNA 提取方法1、常规方法（1）分离法利用细胞成分的不同溶解度，将细胞内的RNA和DNA分离出来，如甲醇分离法、混合洗涤法、膜过滤法等，然后将DNA除去，即可得到纯化的RNA样品。
（2）磁珠法采用特定的磁珠技术，通过磁场的作用，将RNA结合在磁珠上，然后加入洗涤液，脱除磁珠上的杂质和有害物质，最终得到纯化的RNA样品。
2、新型方法（1）多尺度细胞抗分离法利用细胞的多尺度的抗性，通过不同直径的磁珠把细胞内的RNA 分离出来，可以节约实验时间，并有效提高细胞内RNA的收量、纯度和活性。
（2）膜过滤法采用膜过滤的方法，可以快速准确的将细胞内的RNA纯化，提高RNA的收率，并保护RNA免受外界环境的破坏，为实验提供良好的保护条件。
RNA提取一般步骤总结RNA提取原理：| 通过变性剂破碎细胞或者组织，然后经过氯仿等有机溶剂抽提RNA，再经过沉淀，洗涤，晾干，最后溶解。
但是由于RNA酶无处不在，随时可能将RNA降解，所以实验中有很多地方需要注意，稍有疏忽就会前功尽弃。
RNA提取的一般步骤所有RNA的提取过程中都有五个关键点，即：样品细胞或组织的有效破碎；有效地使核蛋白复合体变性；对内源RNA酶的有效抑制；有效地将RNA从DNA和蛋白混合物中分离；对于多糖含量高的样品还牵涉到多糖杂质的有效除去。
但其中最关键的是抑制RNA酶活性。
RNA的提取目前阶段主要可采用两种途径:提取总核酸，再用氯化锂将RNA沉淀出来；直接在酸性条件下抽提，酸性下DNA 与蛋白质进入有机相而RNA留在水相。
第一种提取方法将导致小分子量RNA的丢失，目前该方法的使用频率已很低。
实验步骤：破碎组织→分离RNA→沉淀RNA→洗涤RNA→融解RNA→保存RNA。
1、破碎组织和灭活RNA酶可以同步进行，可以用盐酸胍、硫氰酸胍、NP-40、SDS、蛋白酶K等破碎组织，加入β-ME可以抑制RNA酶活性。
2、分离RNA一般用酚、氯仿等有机溶剂，加入少量异戊醇，经过此步，离心，RNA一般分布于上层，与蛋白层分开。
3、沉淀RNA一般用乙醇、3M NaAc（pH-5.2）或异丙醇。
4、洗涤RNA使用70％乙醇洗涤，有时，为避免RNA被洗掉，此步可以省掉，洗涤之后可以晾干或者烤干乙醇，但是不能过于干燥，否则不易溶解。
5、融解RNA一般使用TE。
6、保存RNA应该尽量低温。
为了防止痕量RNase的污染，从富含RNase的样品（如胰脏、肝脏）中分离到的RNA需要贮存在甲醛中以保存高质量的RNA，对于长期贮存更是如此。
从大鼠肝脏中提取的RNA，在水中贮存一个星期就基本降解了，而从大鼠脾脏中提取的RNA，在水中保存3年仍保持稳定。
另外，长度大于4kb的转录本对于痕量RNase的降解比小转录本更敏感。
一、概述RNA提取是生物学研究中的重要步骤，它涉及到从细胞或组织中提取出RNA分子，为后续的分子生物学实验和分析提供基础数据。
在RNA提取过程中，有许多关键步骤和注意事项需要注意，才能确保提取到高质量的RNA样品。
本文将重点介绍RNA提取过程中的关键步骤及注意事项。
二、样品采集和保存1. 样品的采集要尽量避免受到外界环境的污染，采集器具要事先经过严格的消毒处理。
2. 采集后的样品应立即冷藏或置于液氮中保存，避免RNA降解。
三、细胞破碎1. 细胞破碎是RNA提取的第一步，直接影响到RNA的得率和质量。
常用的方法包括酚-氯仿法、超声波法和离心破碎法等。
2. 选择合适的细胞破碎方法，要充分破碎细胞膜，释放出RNA分子，同时避免RNA的降解。
四、蛋白质沉淀1. 蛋白质沉淀的目的是去除DNA和蛋白质，以纯化RNA。
常用的方法包括酚-氯仿法和硅胶柱法。
2. 在进行蛋白质沉淀时，要注意去除酚相和混合相中的DNA和蛋白质，以免对RNA纯化产生影响。
五、RNA沉淀和洗涤1. RNA沉淀的方法有乙醇沉淀法和硅胶柱法等，选择合适的方法要根据样品的特点和后续实验的需要进行。
2. 在RNA洗涤的过程中，要充分去除盐和其他杂质，以保证提取到干净的RNA样品。
六、RNA溶解和质量检测1. RNA溶解的过程要充分溶解RNA，并保证溶解液的质量纯净。
2. 对提取得到的RNA样品进行浓度和完整性的检测，以确保RNA的质量达标。
七、总结RNA提取是分子生物学研究中的重要步骤，本文介绍了RNA提取过程中的关键步骤和注意事项。
通过严格控制每个步骤，可以保证提取到高质量的RNA样品，为后续的实验和分析提供可靠数据。
希望本文能够帮助读者更好地理解RNA提取过程，并在实验操作中取得更好的效果。
八、RNA存储和稳定性1. 存储RNA样品时，应尽量避免反复冻融，因为这样容易导致RNA 降解。
合适的储存温度通常为-80摄氏度。
2. 另外，干燥的RNA样品更容易保存，因此可以考虑使用适当的稳定剂，如DEPC水或RNAlater等，来保护RNA在样品采集至提取过程中的稳定性。
提取rna的步骤
提取RNA是分子生物学研究中的重要步骤之一，它通常用于研究基因表达、基因调控和遗传变异等过程。
以下是提取RNA的基本步骤： 1.样品采集和处理：根据实验要求选择合适的样品，如细胞、组织、血清、尿液等。
采集后，立即加入RNA保护剂，并在低温条件下保存。
2.细胞破碎：使用机械方法或化学方法将细胞破碎，如用高速离心机、超声波器或液氮冷冻等方法。
3.RNA提取：通过离心、溶解、洗涤等步骤，将RNA分离出来。
通常使用酚/氯仿（Trizol）法、硅胶柱法或磁珠法等方法提取RNA。
4.纯化RNA：将提取的RNA经过凝胶净化或硅胶柱纯化，去除DNA、蛋白质等杂质，得到高质量的RNA样本。
5.RNA定量：使用紫外吸收光谱或荧光分析仪等方法测定RNA的浓度和纯度。
6.保存RNA：将RNA保存在-80°C的低温条件下，或加入RNase 抑制剂等物质，避免RNA的降解和污染。
以上是提取RNA的基本步骤，不同实验需要根据具体要求进行适当调整。
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rna提取的主要步骤RNA提取是生物学研究中的一项重要技术，它可以从细胞或组织中分离RNA分子，从而研究基因表达、疾病机制等方面的问题。
RNA提取的主要步骤包括样品采集、细胞破碎、RNA分离和纯化等过程。
样品采集是RNA提取的第一步。
样品可以是细胞、组织甚至是体液等。
在采集样品时，需要注意避免RNA的降解。
例如，在采集组织样品时，可以在液氮中快速冷冻，以防止RNA分解酶的活性。
此外，样品的数量和质量也需要注意，以确保后续的提取效果。
接下来是细胞破碎的步骤。
细胞破碎的目的是将细胞膜破坏，使得细胞内的RNA释放出来。
常用的细胞破碎方法有机械破碎、化学破碎和超声波破碎等。
机械破碎是通过物理力量对细胞进行破坏，例如使用搅拌器或高压细胞破碎机。
化学破碎则是利用化学试剂对细胞进行破坏，例如使用裂解缓冲液或蛋白酶K等。
超声波破碎则是利用超声波的机械效应对细胞进行破碎。
选择适合的细胞破碎方法可以有效地破坏细胞膜，使得RNA能够顺利地释放出来。
细胞破碎后，需要将RNA与其他细胞成分分离。
RNA的分离可以通过差凝法、离心法或柱层析法等方法进行。
差凝法是利用RNA 与其他细胞成分的差异性质进行分离，例如RNA在酚-氯仿中的溶解性较好，可以与DNA和蛋白质分离开来。
离心法是利用离心力对RNA和其他细胞成分进行分离，例如通过高速离心将RNA沉淀下来。
柱层析法是利用柱上填充的特定配体与RNA之间的亲和性进行分离，例如使用硅胶柱或离子交换柱。
选择合适的分离方法可以高效地将RNA纯化出来。
纯化的RNA需要进行浓缩和检测。
RNA的浓缩可以通过乙醇沉淀法或钠醋酸法进行。
乙醇沉淀法是利用乙醇的沉淀作用将RNA从溶液中沉淀下来，然后通过洗涤和干燥将RNA浓缩。
钠醋酸法是利用钠醋酸和乙醇的共同作用将RNA从溶液中沉淀下来，然后通过洗涤和干燥将RNA浓缩。
浓缩后的RNA可以通过电泳或光度计等方法进行检测。
电泳是利用RNA的电荷和大小差异进行分离和检测，例如琼脂糖凝胶电泳或聚丙烯酰胺凝胶电泳。
提rna步骤及原理RNA是一种重要的生物大分子，它参与了许多基因表达和调控过程。
研究RNA的结构和功能对于理解生物体内的生物学过程至关重要。
下面将介绍RNA的提取步骤以及其原理。
1. 细胞破碎：首先需要破碎细胞壁，使RNA释放出来。
可以通过机械破碎、酶解或超声波破碎等方法，将待提取的细胞或组织进行处理，使其细胞壁破裂。
2. 蛋白质消化：为了去除细胞中的蛋白质，需要进行蛋白酶处理，将蛋白质分解释放RNA。
常用的蛋白酶有蛋白酶K、蛋白酶ase等。
3. RNA沉淀：利用盐溶液将RNA沉淀下来。
常用的盐溶液有醋酸钠、氯化钠等。
加入盐溶液后，RNA会形成带负电荷的物质，与阳离子结合形成沉淀。
4. RNA纯化：通过将RNA溶解于适当的缓冲液中，并加入醇类或其他试剂，去除干扰物质如DNA、蛋白质和多余的盐等。
这里主要利用了RNA在不同条件下的溶解性差异，从而将RNA纯化。
5. RNA沉淀及洗涤：使用无水乙醚、异丙醇等有机溶剂，将纯化后的RNA沉淀下来。
然后进行洗涤以去除残留的盐和其他杂质。
6. RNA溶解：将RNA沉淀融于适当的溶液中，如去离子水或缓冲液，以便后续实验的进行。
RNA提取的原理主要基于RNA具有独特的化学结构和物理性质。
RNA是由核苷酸组成的，与DNA相似，但其具有URACIL（U）碱基而非胸腺嘧啶（T）碱基。
RNA在细胞内参与转录和翻译过程，是转录过程产生的物质，通过提取RNA可以获得物种特异性的RNA序列，进而进行RNA测序、定量PCR等分子生物学实验。
在RNA提取过程中，细胞破碎、蛋白质消化、RNA沉淀、纯化及溶解等步骤的设计，使得RNA能够被高效地提取出来，并且不受到外界干扰物质的影响，确保获取纯净的RNA样品，用于后续的实验分析。
RNA提取实验步骤如下：
●匀浆处理：
●组织：将组织在液氮中磨碎，每50-100mg组织加入1ml TRIzol，用匀浆
仪进行匀浆处理。
●单层培养细胞：直接在培养板中加入TRIzol裂解细胞，每10cm2面积（即
3.5cm直径的培养板）加1ml，用移液器吸打几次。
●细胞悬液：离心收集细胞，每5-10×106动物、植物、酵母细胞或1×107
细菌细胞加入1ml TRIzol，反复吸打。
加TRIzol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。
一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。
将匀浆样品在室温（15-30℃）放置5分钟，使核酸蛋白复合物完全分离。
可选步骤：如样品中含有较多蛋白质，脂肪，多糖或胞外物质（肌肉，植物结节部分等）可于2-8℃10000×g离心10分钟，取上清。
每使用1ml TRIzol加入0.2ml氯仿，剧烈振荡15秒，室温放置3分钟。
2-8℃10000×g离心15分钟。
收集上清液。
使用酒精洗涤RNA，以去除离心管内残留的试剂和盐。
最后利用2-甲基硫氰酸盐（MECT）溶液进行脱水，使RNA干燥而不影响RNA的完整性。
此外，如果是从动物组织中提取RNA，还需要使用DNase I处理RNA，以去除残留的DNA。
如果是从细菌中提取RNA，需要先进行细菌的裂解和细胞壁的破碎。
同时需要注意，整个提取过程需要严格控制RNA酶的污染。
RNA提取一般步骤总结RNA提取原理：| 通过变性剂破碎细胞或者组织，然后经过氯仿等有机溶剂抽提RNA，再经过沉淀，洗涤，晾干，最后溶解。
但是由于RNA酶无处不在，随时可能将RNA降解，所以实验中有很多地方需要注意，稍有疏忽就会前功尽弃。
RNA提取的一般步骤所有RNA的提取过程中都有五个关键点，即：样品细胞或组织的有效破碎；有效地使核蛋白复合体变性；对内源RNA酶的有效抑制；有效地将RNA从DNA和蛋白混合物中分离；对于多糖含量高的样品还牵涉到多糖杂质的有效除去。
但其中最关键的是抑制RNA酶活性。
RNA的提取目前阶段主要可采用两种途径:提取总核酸，再用氯化锂将RNA沉淀出来；直接在酸性条件下抽提，酸性下DNA 与蛋白质进入有机相而RNA留在水相。
第一种提取方法将导致小分子量RNA的丢失，目前该方法的使用频率已很低。
实验步骤：破碎组织→分离RNA→沉淀RNA→洗涤RNA→融解RNA→保存RNA。
1、破碎组织和灭活RNA酶可以同步进行，可以用盐酸胍、硫氰酸胍、NP-40、SDS、蛋白酶K等破碎组织，加入β-ME可以抑制RNA酶活性。
2、分离RNA一般用酚、氯仿等有机溶剂，加入少量异戊醇，经过此步，离心，RNA一般分布于上层，与蛋白层分开。
3、沉淀RNA一般用乙醇、3M NaAc（pH-5.2）或异丙醇。
4、洗涤RNA使用70％乙醇洗涤，有时，为避免RNA被洗掉，此步可以省掉，洗涤之后可以晾干或者烤干乙醇，但是不能过于干燥，否则不易溶解。
5、融解RNA一般使用TE。
6、保存RNA应该尽量低温。
为了防止痕量RNase的污染，从富含RNase的样品（如胰脏、肝脏）中分离到的RNA需要贮存在甲醛中以保存高质量的RNA，对于长期贮存更是如此。
从大鼠肝脏中提取的RNA，在水中贮存一个星期就基本降解了，而从大鼠脾脏中提取的RNA，在水中保存3年仍保持稳定。
另外，长度大于4kb的转录本对于痕量RNase的降解比小转录本更敏感。
为了增加贮存RNA样品的稳定性，可以将RNA溶解在去离子的甲酰胺中，存于-70℃。
用于保存RNA的甲酰胺一定不能含有降解RNA的杂物。
来源于胰脏的RNA至少可以在甲酰胺中保存一年。
当准备使用RNA 时，可以使用下列方法沉淀RNA：加入NaAc至0.3M，12,000×g离心5分钟。
I氯化锂法提取总RNA：本方法用高浓度尿素变性蛋白并抑制RNA酶，用氯化锂选择沉淀RNA，其特别适合于从大量样品中提取少量组织RNA，具有快速简洁的长处，但也存在少量DNA的污染及RNA得率不高,小RNA片断丢失的缺陷。
试验试剂：1、氯化锂/尿素溶液【氯化锂126g(3M) 尿素、360g(6M) 加水至1L，过滤灭菌】2、悬浮液【10mM? Tris-HCL (pH7.6) ,1mM? EDTA (pH8,0) ,0.5%SDS】试验步骤：1、对于大量组织或细胞，则每克组织或细胞加入5－10ml氯化锂－尿素溶液，匀桨器高速匀桨2分钟；对于少量细胞（107个细胞/ml），则每克组织或细胞加入0.5ml氯化锂－尿素溶液手工匀桨，并转移至Eppendof管中。
2、匀桨液在0－4℃放置4小时后，12000g离心30分钟。
3、取沉淀，加入原匀桨液1/2体积的氯化锂－尿素溶液，重复步骤2。
4、沉淀用原匀桨液1/2体积的氯化锂－尿素溶液复溶后，加入等体积酚/氯仿/异戊醇在室温放置15－30分钟并不时摇动混匀，4000g离心5分钟。
5、取上层水相，加1/10倍体积的3M乙酸钠（pH5.2）及2倍体积的乙醇，－20℃放置1小时，5000g离心。
6、70％乙醇洗沉淀一次。
真空干燥。
7、RNA溶解液溶解沉淀，得RNA，分装，于－70℃保存。
蛋白酶－热酚法本方法适合于病毒RNA的提取试验试剂：1、蛋白酶K（终浓度50ug/ml）, J5 p l6 V/ t7 [/ I2、2×缓冲液：1%SDS? 20mMTris-HCL (pH 7.6)? 0.2MnaCL试验步骤：1、提纯病毒液中加入等体积缓冲液、蛋白酶K,37℃40-50分钟。
2、加入等体积65℃预热的酚溶液，轻徭,在65℃保温5分钟后再轻徭。
离心，取上清，氯仿抽提一次。
4、取上层水相，加1/10倍体积的3M乙酸钠（pH5.2）及2倍体积的乙醇，－20℃放置1小时，5000g离心(10000g,10min)。
70％乙醇洗沉淀一次。
真空干燥。
6、RNA溶解液溶解沉淀，得RNA，分装，于－70℃保存。
植物RNA提取过程中难点的相应对策植物RNA提取过程中难点的相应对策酚类化合物的干扰及对策：许多植物组织特别是植物的果实（如苹果、樱桃、李子、葡萄等）和树木类植物中富含酚类化合物。
酚类物质的含量会随着植物的生长而增加。
因而从幼嫩的植物材料中更容易提取RNA。
此外，针叶类植物的针叶中多酚的含量比在落叶植物的叶子中要高得多。
在植物材料匀浆时，酚类物质会释放出来，氧化后使匀浆液变为褐色，并随氧化程度的增加而加深，这一现象被称为褐化效应（browning effect）。
被氧化的酚类化合物（如醌类）能与RNA稳定地结合，从而影响RNA的分离纯化。
但Newbury等发现RNA提取的难易程度与材料中酚类物质的总量之间并无相关性，因此认为不是所有的酚类化合物都影响RNA的提取。
但一般认为所谓的“缩合鞣质”即聚合多羟基黄酮醇类物质（如原花色素类物质）是影响RNA提取的一类化合物。
目前去除酚类化合物的一般途径是在提取的初始阶段防止其被氧化，然后再将其与RNA分开。
防止酚类化合物被氧化的方法：还原剂法：一般在提取缓冲液中加入β-巯基乙醇、二硫苏糖醇（DTT）或半胱氨酸来防止酚类物质被氧化，有时提取液中β-巯基乙醇的浓度可高达2％。
(-巯基乙醇等还可以打断多酚氧化酶的二硫键而使之失活。
Su等认为在过夜沉淀RNA时加入(-巯基乙醇（终浓度1％）可以防止在此过程中酚类化合物的氧化。
硼氢化钠（NaBH4）是一种可还原醌的还原剂，用它处理后提取缓冲液的褐色可被消减，醌类化合物可被还原成多酚化合物。
2、螯合剂法：螯合剂聚乙烯吡咯烷酮（PVP）和聚乙烯聚吡咯烷酮（PVPP）中的CO－N＝基有很强的结合多酚化合物的能力，其结合能力随着多酚化合物中芳环羟基数量的增加而加强。
原花色素类物质中含有许多芳环上的羟基，因而可以与PVP或不溶性的PVPP形成稳定的复合物，使原花色素类物质不能成为多酚氧化酶的底物而被氧化，并可以在以后的抽提步骤中被除去。
用PVP去除多酚时pH值是一个重要的影响因素，在pH8.0以上时PVP结合多酚的能力会迅速降低。
当原花色素类物质量较大时，单独使用PVPP无法去除所有的这类化合物，因而需要与其它方法结合使用。
3、Tris-硼酸法：如果提取缓冲液中含有Tris-硼酸（pH7.5），其中的硼酸可以与酚类化合物依*氢键形成复合物，从而抑制酚类物质的氧化及其与RNA的结合。
这一方法十分有效，所以Lбpez-Gбmez等在提取缓冲液中不再加入其它还原剂。
但如果Tris-硼酸浓度过高（＞0.2M）则会影响RNA的回收率。
4、牛血清白蛋白（BSA）法：原花色素类物质与BSA间可产生类似于抗原－抗体间的相互作用，形成可溶性的或不溶性的复合物，减小了原花色素类物质与RNA结合的机会，因此提高了RNA的产量。
BSA与PVPP结合使用提取效果会更好。
由于BSA中往往含有RNase，因而在使用时要加入肝素以抑制RNase的活性。
5、丙酮法：Schneiderbauer等用-70℃的丙酮抽提冷冻研磨后的植物材料，可以有效地从云杉、松树、山毛榉等富含酚类化合物的植物材料中分离到高质量的RNA。
酚类化合物的去除：通过Li+或Ca2+沉淀RNA的方法可以将未被氧化的酚类化合物去除。
与PVP、不溶性PVPP或BSA 结合的多酚，可以直接通过离心去除掉，或在苯酚、氯仿抽提时除去。
Manning利用高浓度的2-丁氧乙醇（50％）来沉淀RNA，而多酚溶解于2-丁氧乙醇中而被除去。
然后用含50％2-丁氧乙醇的缓冲液洗涤RNA沉淀以去除残留的多酚。
他认为即使多酚被氧化，其氧化产物仍可以溶解在高浓度2-丁氧乙醇溶液中而被去除，无需再用NaBH4来处理。
多糖的干扰及对策：多糖的污染是提取植物RNA时常遇到的另一个棘手的问题。
植物组织中往往富含多糖，而多糖的许多理化性质与RNA很相似，因此很难将它们分开。
在去除多糖的同时RNA也被裹携走了，造成RNA产量的减少；而在沉淀RNA时，也产生多糖的凝胶状沉淀，这种含有多糖的RNA沉淀难溶于水，或溶解后产生粘稠状的溶液。
由于多糖可以抑制许多酶的活性，因此污染了多糖的RNA样品无法用于进一步的分子生物学研究。
在常规的方法中，通过SDS-盐酸胍处理可以部分去除一些多糖；在高浓度Na+或K+离子存在条件下，通过苯酚、氯仿抽提可以除去一些多糖；通过LiCl沉淀RNA 也可以将部分多糖留在上清液中。
但即使通过这些步骤仍会发现有相当多的多糖与RNA混杂在一起，所以还需要用更有效的方法来解决植物RNA分离纯化时多糖污染的问题。
用低浓度乙醇沉淀多糖是一个去除多糖效果较好的方法。
在RNA提取液或溶液中缓慢加入无水乙醇至终浓度10％～30％，可以使多糖沉淀下来，而RNA仍保留于溶液中。
一般都是在植物材料的匀浆液中加入乙醇，如Lewinsohn等在从裸子植物的木质茎中提取RNA时，在匀浆上清液中加入乙醇至终浓度10％以沉淀多糖。
但Tesniere等在从葡萄浆果组织中提取RNA时，是在用CsCl超离心，乙醇沉淀之后的RNA溶液中加入终浓度30％乙醇来沉淀多糖的，进一步纯化了RNA样品。
另一个常用的方法是醋酸钾沉淀多糖法。
Bahloul等在提取云杉组织的RNA时在匀浆上清液中加入1/3体积的5M醋酸钾（pH4.8）溶液以沉淀多糖；Ainsworth在提取酸模植物花组织的RNA时加入的是1/5体积的5M醋酸钾（pH4.8）溶液。
Hughes等在提取棉花叶和花粉的RNA时是加1/3体积的8.5M醋酸钾（pH6.5）溶液到匀浆液中以除去多糖等杂质。
在提取某些植物材料的RNA时，是将上述两种方法结合使用。
如Lбpez-Gбmez等在提取芒果中果皮的RNA时，是在匀浆液中加入0.25体积的无水乙醇和0.11体积的5M醋酸钾溶液以去除多糖杂质。
Su等在去除褐藻的多糖时，单独使用乙醇或醋酸钾都无效，只有两者结合使用效果最佳。
6 Fang等认为缓冲液中含有高浓度的NaCl有助于去除多糖。
Chang等在提取松树RNA时，缓冲液中NaCl的浓度为2.0M和1.0M，通过氯仿抽提和乙醇沉淀RNA将RNA与多糖分离。
Manning是将胡萝卜种子等材料苯酚提取后的上清液稀释，调节Na+离子浓度至80mM，然后加入0.4体积的2-丁氧乙醇来沉淀去除多糖。
