痰标本前处理对细菌培养结果的影响性分析

痰标本的细菌学检查随着医疗技术的更新和医疗事业的不断发展，临床上采纳了很多介入性诊疗措施，以致于抗菌药物广泛应用、耐药菌株不断增多、细菌的耐药机制越发复杂和机体免疫功能下降引发感染逐渐增多，也正因此临床对于细菌学检查提出了更多、更迫切的要求。

细菌学检查所面临的最主要的问题是提供临床结果的可靠性和准确性，影响细菌检验结果可靠性的因素有很多，比如采取标本的时机、方法，标本的保存和运送方式以及分离培养方法、鉴定手段等等，临床中很多医生仅仅重视细菌标本的鉴定和培养方法，却忽略了标本的质量和采集方法。

其中痰标本的问题是最严重的，痰也是下呼吸道分泌物，在大多数情况下，采集痰标本的方式是自然咳痰，因此很容易受到上呼吸道分泌物的干扰，所以如何能够确定改为提高痰标本的治疗改为质量是十分重要的，这个问题也已经受到了国内外广大微生物工作者的重视，所以本篇文章就对痰标本的细菌学检查这一问题进行深入的探讨。

一、痰标本的现状以及存在的问题首先是痰标本的采取，目前大多数医院都对患者采取自然咳痰的方式采集清晨的第一口痰，患者在留痰前需要使用清水漱口，而且需要漱口三次，然后将痰液用力的咳出。

虽然有很多医院能够严格按照标准执行，但还有部分医院尚未按照要求去做。

其次是痰标本的运送，细菌学检查痰标本需要在留取痰标本之后立即将其送往细菌时，但是据相关数据显示，到目前位置仅有一小部分医院能够做到，绝大多数医院并没有在标本留取之后立刻送检。

尤其是对于住院的患者，医院的做法往往是将所有患者的标本集齐之后再由相关人员送往细菌室，以致于患者的标本从留取到送检之间耽搁了两至三个小时，如果痰标本在送到细菌室之后并未立进行接种或者是涂片，而是再耽搁一段时间的话，则会造成该观察的内容没有观察到，而且应该培养出来的细菌也并未培养出来。

随之而来的问题就是涂片染色显微镜检查，到目前为止，仍然有很多医院在培养痰标本之前并未进行涂片染色显微镜检查，不包括特殊检查，比如痰涂片找抗酸杆菌。

细菌培养检查小常识——如何正确留取痰培养标本？
肺癌患者由于免疫力降低易伴随呼吸道感染,同时呼吸道感染也是临床上最常见的感染性疾病之一，随着抗生素的广泛应用，感染菌株耐药率不断增加，给临床治疗带来了极大的困难。

当呼吸道发生细菌感染时，痰液量会明显增多，痰培养是呼吸道感染病原学诊断最常用的方法，同时，痰培养的检验结果及药敏试验在指导临床抗生素使用方面也发挥了非常重要的作用。

痰标本的留取是影响培养结果准确性的重要因素之一。

留取标本时一般以晨痰为佳，在留取之前用清水或淡盐水反复漱口，或用牙刷清洁口腔，取坐位或半坐卧位，屈膝，上身前倾，深吸气后屏气3秒，然后腹肌用力，做爆破性咳嗽，将痰液咳出，吐入无菌的透明密闭痰盒内，尽可能的缩短容器开盖时间并立即送检以减少杂菌生长。

对于幼龄咳痰困难或不会咳痰的儿童可用压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，其受到刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管的分泌物黏在拭子上。

另外需要我们特别注意的是留取痰标本一定要在停用抗生素一周之后或者是抗菌药物使用之前，如果是做结核菌涂片，应送检三
份痰标本，连续三日，每日采集清晨第一口痰。

参考文献。

痰标本在细菌学检验中的应用分析摘要目的：探讨痰标本在细菌学检验中的应用价值。

方法：选择送检于检验科的300例痰标本，分别接种培养于不同的培养基上。

结果：1例标本在923tbl液体培养基浑浊，有细菌生长，在7h9l 半固体蔗糖培养基中有油煎蛋样的菌落出现，而在罗氏培养基、923tbb和7119b培养基中没有菌落生长。

结论：用高渗半固体培养基可以从临床痰标本中分离出结核分枝杆菌l型菌株，表明痰标本在细菌学检验中仍有一定的价值。

关键词痰标本细菌学检验在感染疾病的病原菌中，细菌l型是细菌细胞壁部分缺损或完全丧失而造成的，细菌胞壁的缺失可以是自发的，也可以是人工诱导的，但人工诱导的频率远比自发为高。

痰标本在琼脂培养基上，菌落呈“油煎蛋”样式[1]。

本实验旨在筛查临床痰标本中结核分枝杆菌l型细菌的存在情况，论述了痰标本在细菌学检验中的应用效果，为进一步研究结核分枝杆菌l型细菌的形成提供思路，现报告如下。

资料与方法实验对象：2009年6月～2012年5月送检于检验科的300例痰标本。

培养基配制：罗氏培养基的配制：基础液，谷氨酸钠1.8g、磷酸二氢钾1.2g，枸橼酸镁0.3g，葡萄糖0.3g，硫酸镁0.1g，丙三醇6ml、蒸馏水300ml。

上述溶液加热充分溶解，加入土豆粉6g，摇匀加热5分钟。

冷却到40～50℃时，加入500ml全卵液，加入已经高压灭菌的2%孔雀绿10ml，摇，静置后进行分装。

呈斜面放置于干燥箱85℃，1.5小时。

冷却后，培养基斜面颜色鲜艳，表面光滑无气泡，4℃保存。

痰标本的细菌培养：取痰标本，以1：3的比例加入消化液，漩涡振荡，3000转/分，离心15分钟，加入适量pbs重悬沉淀，取300ml分别接种于middlebrook mgit 7h9液体、7h9l、7h9b半同体培养基、923tbb和923tbl液体培养基中，37℃静置培养。

消化液的配制：4%naoh 50ml，2.9%枸橼酸钠50ml，n-乙酰-l-半胱氨酸0.5g当天配制，24小时内使用。

痰涂片检查和细菌培养结果一致性及对痰标本的合格率影响分析【摘要】：目的研讨痰涂片检查和细菌培养结果一致性及对痰标本的合格率影响。

方法于2019年10月至2021年5月期间我院接的51份痰样本，均采用痰涂片和细菌培养，分析其一致性和合格率。

结果与细菌培养结果相比，痰涂片检查灵敏度95.2%（40/42）、特异度88.9%（8/9）、准确率94.1%（48/51）、阳性预测值97.6（40/41）、阴性预测值80.0%（8/10），痰涂片与细菌培养的检查结果具有一致性。

经检验显示，在51分痰标本中，其中大肠埃希菌21.6%（11/51）、肺炎克雷伯菌33.3%（17/51）、金双色葡萄球菌31.4%（16/51）为病原菌主要菌株。

结论痰标本合格率与培养结果一致性较高，通过痰涂片检查可提升对呼吸道疾病的诊断价值。

适合临床中推广使用。

【关键词】：痰涂片检查；细菌培养；一致性；痰标本；合格率痰标本的细菌学检查，对协助下呼吸道感染性疾病的诊断具有重要的参考价值，痰细菌学检查结果能够帮助临床医生了解感染情况，避免抗感染药物的不合理使用[1]。

本文结合我院的51份样本，均采用痰涂片和细菌培养，分析其一致性和合格率。

现报告如下。

1资料与方法1.1标本来源于2019年10月至2021年5月期间我院接的51份痰样本，来自于51名住院患者，其中27名男性，24名女性，年龄24至76岁，平均（46.7±4.5）岁。

1.2标本采集在清晨早床后用清水漱口，用力自肺部用力咳，将痰液存放至无菌瓶当中。

经过痰诱导后，用纤支镜蘸取痰液送检。

1.3涂片检查将脓性较强或带有血丝的痰标本作为涂片检测样本，均匀涂在薄片上，并用革兰染色镜检查。

以在低倍视野中发现上皮细胞≤10个，低倍视野中细菌个数≥25个为判断标准。

根据细菌所称形态判断目标菌。

1.4细菌培养合格的痰标本在经过消化后分别接种在平板上（血平板、麦康凯平板、巧克力平板、CHROMagarTM假丝酵母菌显色平板），完成后将血平板、麦康凯平板、孵育箱中，箱内温度35℃恒温；CHROMagarTM假丝酵巧克力平板平整放置在CO2母菌显色平板凭证放置在30℃恒温箱；1.5统计学处理使用SPSS22.0统计软件处理数据，百分比（%）代表计数数据，x2用于检验。

抗生素使用、标本采集方法对痰培养样本细菌学检验结果的影响研究发表时间：2017-08-23T16:08:41.350Z 来源：《航空军医》2017年第12期作者：李巨坤[导读] 对于临床为痰培养样本细菌学检验结果的准确率，选择规范的标本采集手段及尽量在未使用抗生素前进行检查。

（嘉禾县人民医院湖南嘉禾 424500）摘要：目的探究临床工作中抗生素的使用、标本采集方法对痰培养样本细菌学检验结果的影响。

方法从2014-10至2015-10我院检验科收检的需要进行痰培养样本细菌学检验的病例中抽取220份，其中110例将采集方法作为唯一变量分为改良采集法的探究Ⅰ组和日常采集法的参照Ⅱ组，另110例将是否使用抗生素作为唯一变量分为使用抗生素的参照Ⅲ组和未使用抗生素的探究Ⅳ组，对比临床成效。

结果探究Ⅰ组的合格样本数占82.27%（48例），查出存在病原菌为74.55%，参照Ⅱ组的合格样本数占63.64%（35例），查出存在病原菌为67.27%，探究Ⅲ组的合格样本数占89.09%（49例），查出存在病原菌为75.08%，参照Ⅳ组的合格样本数占70.91%（39例），查出存在病原菌为63.55%，以上差异有统计学意义（P＜0.05），但各组之间的检查平均用时、检查费用之间无明显差异（P＞0.05）。

结论对于临床为痰培养样本细菌学检验结果的准确率，选择规范的标本采集手段及尽量在未使用抗生素前进行检查，能够保证采集标本的规范性，提高检验结果的准确性，推荐临床广泛应用。

关键词：结果影响；抗生素使用；标本采集方法；痰培养样本；细菌学检验呼吸系统疾病是临床发生人数较多的一类疾病，患者年龄分布较广，大多发生于季节变换时［1］。

患者经呼吸道将病原菌吸入体内，从而出现一系列临床表现。

痰培养样本细菌学检验是临床常用的检查手段，弄清楚病原菌有利于临床医师针对性用药，进行治疗［2］。

因此，检查结果的准确性尤为重要，为了探究患者是否服用抗生素及标本采集方法对检验结果的影响，从2014-10至2015-10我院检验科收检的需要进行痰培养样本细菌学检验的病例中抽取220份，现将结果整理如下。

临床检验中痰标本的采集存放和结果解读一、痰标本的分析前阶段的操作痰标本的分析前阶段包括检验项目的申请、采集标本前的患者准备、标本采集、样本运送以及标本到达实验室后的标本处理、储存等内容。

有数据显示，标本采集缺乏标准化程序引起的差错占全部诊断过程发生差错的60%～70%[1,2,3]。

因此，规范化分析前操作，对减少实验误差，提高检验质量尤为重要。

临床检验中所说的"痰"比患者日常理解的痰概念更为严格。

日常生活中人们提到的痰成分较复杂，通常为鼻腔分泌物反流成分、唾液、口腔黏膜、咽部分泌物以及下呼吸道分泌物组成的混合物。

而临床检验中需要的痰仅指下呼吸道分泌物。

由于鼻、咽、上呼吸道和下呼吸道各部位定植和入侵致病的细菌种类不一样，因此，如果采集的痰标本混合了除下呼吸道分泌物以外的其他物质，会在一定程度上影响检验结果，甚至会造成检验结果的错误而误导医生。

1.痰标本采集的容器：标本采集容器需为灭菌、有盖的一次性容器;为标本采集方便，容器最好是广口。

灭菌容器保证了痰标本后续的细菌/真菌培养的准确性，有盖的要求主要是考虑到痰标本是有潜在致病性标本，采集后应密封运送至实验室。

现在国内临床最常用的痰采集盒为灭菌螺旋帽一次性塑料瓶。

2.痰标本采集前的患者准备：为除去口腔内杂菌的干扰，要求患者在采集痰标本前，在医生或护士的直接指导下，清洗咽部、刷牙或漱口(建议用3%H2O2及清水漱3次)[4]。

同时指导患者咳前深吸气，争取用力咳出呼吸道深部的痰液，并尽量避免混入口腔、鼻咽分泌物。

如果以明确呼吸道感染致病菌为目的，患者最好在使用抗生素前进行痰标本检验，临床意义更大。

3.痰标本的采集[4]744-745：根据使用目的不同，采集要求不同。

(1)用于培养鉴定：以患者早晨醒来咳出的第一口深痰为最好，因为清晨第一口痰在呼吸道停留时间久，检测出致病菌的可能性更大。

其他时间段的痰也可使用。

细菌培养要求痰量>1 ml，真菌培养要求痰量3～5 ml。