石蜡切片法

石蜡切片法的原理及应用1. 石蜡切片法的原理•石蜡切片法，也称为石蜡切片技术，是一种常用于生物组织切片和植物切片的方法。

它是将生物样本或植物材料浸泡在石蜡中，并使用切片机将其切割成薄片的技术。

石蜡切片法的原理基于石蜡的特性和切片机的工作原理。

•石蜡是一种固态蜡状物质，具有良好的可模塑性。

它的熔点较低，在55-60摄氏度范围内熔化，使得将样本浸泡在石蜡中能够快速固化和切割。

切片机通过旋转刀片和样本的移动来切割石蜡固化后的样本，从而得到薄片。

•石蜡切片法的原理包括以下几个步骤：–样本固定：将生物组织或植物材料固定在切片床上，通常通过福尔马林等化学物质进行固定。

–组织处理：将固定后的样本进行去水化和脱脂处理，以去除水分和脂肪等物质，使样本更易于渗透和固化。

–石蜡浸渍：将处理后的样本浸泡在石蜡中，使石蜡渗透到样本组织中，并使其固化。

–切片制备：将石蜡固化的样本放置在切片机上，通过旋转刀片和样本的移动来切割石蜡，得到薄片。

–切片染色：将薄片固定在载玻片上，并进行染色处理，以增强样本的可视化效果和对细胞结构的观察。

2. 石蜡切片法的应用•石蜡切片法在生物医学研究、临床医学和植物学等领域具有广泛的应用价值。

以下是石蜡切片法的一些主要应用：2.1 生物组织切片•生物组织切片是石蜡切片法最常见的应用之一。

通过石蜡切片法可以将生物组织固化并切割成薄片，用于观察和研究组织的结构和功能。

生物组织切片可用于研究疾病的病理学特征、细胞增殖和分化等过程。

2.2 病理分析•石蜡切片法在病理学方面具有重要的应用。

通过切割和染色石蜡切片，可以观察到细胞核、细胞质和细胞间质等组织成分的细微结构，实现对肿瘤、感染和其他疾病的病理分析和诊断。

2.3 细胞学研究•石蜡切片法可用于细胞学研究，通过切割和染色石蜡切片，可以观察细胞的形态、结构和功能等特征，对细胞的增殖、分化和凋亡等过程进行研究。

细胞学研究在癌症和其他疾病的研究中具有重要的意义。

石蜡切片法在显微镜下观察植物体内部的细微结构之前,必须根据植物材料的特性,采用不同的方法,对植物材料进行处理,把材料制成透明的玻片标本.根据材料的性质和制作法的不同,常用的植物显微制片技术可以分为切片法与非切片法两大类,前者常用的有徒手切片法,冰冻切片法,火棉胶切片法,石蜡切片法,冷冻切片法等,其中以石蜡切片法最为常用.后者包括整体封藏法,涂布法,压片法等.石蜡切片法石蜡切片法是以石蜡作包埋剂,用旋转切片机将材料切成薄片,经一系列处理制成永久制片的方法.在研究植物的细胞,组织,胚胎以及形态等方面石蜡切片法是最理想的制片方法.石蜡切片法的一般流程为:取材→固定→抽气→洗涤→脱水→透明→浸蜡→包埋→修块→切片→粘片→染色→封片.取材用锋利的刀片切取新鲜的植物材料,选定适宜的材料,立即固定.取材的注意事项如下:(1)取材料要新鲜.动作要迅速,以免挤压损坏组织;取病理材料时,应设置对照材料.(2)所取材料大小要适当:根和茎一般直径≤5mm,切取成5-10mm小段;叶片一般取过中脉处,切成2-5mm宽,5-8mm长.在切材料时,必须注意刀片与中轴成直角,两切面平行,否则制成的切片细胞是斜的.雌,雄蕊一般不需分割.(3)取材时间可根据切片要求有所区别.如:在进行植物发育的研究过程时,需要找到细胞分裂相,一般在晴天的早晨9:00-10:00时取材,此时植物细胞分裂活动较明显.(4)取材不易过老,否则制片有难度(过老的材料须在滑走切片机上进行);对纵切的材料适当多取材,如根尖,茎尖等,因为切到材料正中的概率较低.(二)固定将已切好的材料尽快地浸入相当于材料10-15倍体积的固定液中.借助固定液的作用,使细胞的新陈代谢瞬时停止,并保持细胞或组织的形态构造及其内含物的状态不发生变化.从而达到使组织变硬从而便于切片,增强内含物的折光度,令细胞易于着色的目的,同时具有防腐作用.以新鲜配制固定液效果较好.固定的时间依材料的种类,性质,大小等而定.材料固定完毕,保存于加盖的容器内,贴上标签.良好的固定剂,应是穿透力强,使细胞立刻致死,原生质全部凝固;不发生任何变形,增强折光率,并且不妨碍染色.常用固定液:简单固定液以一种化学药品配制的固定液.⑴乙醇为凝固型固定剂.常用无水乙醇或95%乙醇.⑵甲醛为非凝固性固定剂.具强烈刺激性气味.纯净的甲醛为无色透明液体.固定用的浓度为4%-10%.⑶醋酸为凝固型固定剂.为无色透明的液体,刺激性极强,低温下凝结成冰,故又名冰醋酸.2.混合固定液:由几种试剂,适量配制而成.混合遵循原则:①优缺点互补;②膨胀与收缩相互平衡;③强氧化剂与还原剂应分别配置.常用混合固定液有下列几种:⑴FAA固定液(福尔马林-冰醋酸-乙醇)广泛适用于根,茎,叶,花药,子房的组织切片,所以又称为万能固定液.一般固定时间不低于24h.该固定液优点是在较低温度下(10℃左右)适用于材料的长期保存,可兼作保存液.并且固定的材料,不妨碍染色,但用于细胞学上的固定效果较差.⑵纳瓦兴(Navaschjn's)固定液1912年首创.适用于细胞学与组织学研究的切片观察.但渗透慢,不能长期保存;主要用于显示分裂相.(三)抽气植物材料内部多由于含有空气,导致固定液不能完全深入.材料投入固定液后需要立即抽气.以便让固定液有效透入材料组织中,并排除材料内气泡的干扰.一般抽气时间为20-30min.抽过气的材料在停止抽气,应沉入底部.(四)洗涤固定液中的成分有可能会妨碍染色或发生沉淀或结晶,影响观察;有的还会继续作用,使材料变质等.因此,在使用材料时,需根据固定液的种类,用水,缓冲液或70%乙醇洗去渗入细胞内部的固定液.如:用FAA固定的材料在脱水时用70%乙醇反复洗涤数次.如用水洗涤,可将材料自固定液中取出,放入指形管,加入半管水,用纱布将管口扎紧,置于水槽内,进行流水冲洗.流水冲洗时间一般为12-24h.(五)脱水材料经洗涤后含有部分水分,会使材料分解.而且透明剂与水是不相混合的,不利于材料的透明和包埋等后期处理.因此需用脱水剂逐渐除去材料中的水分,以便让石蜡渗透进细胞.所以,脱水是制片的关键环节.脱水剂要求能与水混合,而且能与其他有机溶剂互相替代.脱水必须在有盖的玻璃器皿中进行,防止吸收空气中的水分;在更换高一级的脱水剂时,最好不要移动材料,以免损坏材料.(六)透明透明剂要具有既能与脱水剂相混合又能和石蜡相混合的性质,可以将材料中的脱水剂置换出来,使石蜡能顺利进入材料中.二甲苯是目前应用最广的透明剂,作用迅速,但易使材料变脆..(七)浸蜡是指逐步清除材料中的透明剂,以使石蜡充分渗透于材料内部的过程.这样,材料的各部分都能保持原来的结构与位置,切片不致发生破裂或其他变形.浸蜡是一个渐进的过程,常用的正丁醇.每次浸蜡的时间,视材料大小而调节.(八)包埋材料经过足够时间的浸蜡后,需包入蜡块,以备切片.操作方法:根据切片材料大小,确定所需纸盒的尺寸,用表面光滑的磅纸预先叠好纸盒.(九)切片即将包埋好的材料块用切片机切成所需厚度的切片带.(十)贴片是用黏贴剂把切片平铺贴在载玻片上,以便于染色和观察.常用的粘片剂有下列二种:(1)明胶黏片剂(2)蛋清黏片剂(十一)染色即根据植物细胞中不同的化学性质,用染料分别进行染色,以利于观察切片中细胞与组织的形态与构造及其内含物等.染色基本程序为脱蜡,染色,分色封片.染色方法可分为下列几类:①单染只用一种染料染色.②双重染色两种染料染色,如番红--固绿;苏木精---曙红.③多重染色多种染料染色,如番红—固绿—桔红G;酸性品红—苯胺蓝—桔红G等.(十二)封藏封藏于中性树胶中,使材料能在显微镜下清晰地显示出来,并能长期保存.方法:将含材料的载玻片放在吸水纸上(切片一面向上),迅速地在切片的中央滴一滴树胶(必须在二甲苯干燥前进行),用右手持小镊子轻轻地夹住盖玻片的右侧,稍微倾斜使其左侧与封藏剂接触,然后再缓慢地放下,避免产生气泡.补充：注意事项：１、制片是一个连续的操作过程，往往要连续几天才能完成，因此，事先一定要制订工作日程计划，应按顺序进行工作。

石蜡切片的具体步骤与做法？石蜡切片法即用石蜡作为支持剂进行切片的方法。

石蜡切片法是一般组织学、病理学等常规制片方法，因此用得最多，它有很多优点：比较省时间，容易操作，可切成极薄的切片（4um以下），能制作连续切片，组织块可包埋在石蜡中永久保存。

缺点是只能用于较小的组织块，较大的组织块不易切好，容易破碎，组织在脱水透明过程中产生收缩并易变脆。

制片时间太长。

石蜡切片的制作过程（一）材料与用具1．材料：鱼皮肤、性腺、肠、肝胰脏等。

2．用具：溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等。

（二）实验内容与步骤1．取材及固定取动物体上的小块组织成为组织块。

组织块的大小以不超过0.5立方厘米为宜。

切去组织块时动作要轻，切忌用力牵引或挟持，以免组织内部发生变化。

组织块取下后，先用先用0.85％的生理盐水漂洗以戏曲血液与污渍，如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净，可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次，使其管腔冲洗干净，切忌不可用刀或其他器具刮之。

由动物身上切取的组织必须是新鲜的，材料越新鲜越好，一般不应超过死后24小时。

如果是管状器官或是其中有分泌之消化液，则死后应迅速采取，以免组织自溶或上皮剥落。

材料由动物体取下后应当迅速固定，固定的目的是尽快使固定液渗入组织内部，将组织固定，以保持其原有的结构。

不同的组织应选用适当的固定液。

固定液的用量与组织块体积之比一般在20：1。

不应使组织块贴于容器壁上，应记录固定液的名称，材料的种类，动物品种及开始固定的时间。

2．冲洗固定后的组织块在进行脱水前必须用流水洗去固定液。

组织块应用纱布包好，注名，放金属水洗网中用流水冲洗，甲醛固定液固定的组织一般水洗24小时，Bouins固定液固定的组织水洗24小时。

AFA固定液则不需要水洗。

3．脱水和硬化经过固定后的组织在水洗后要进行脱水，脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来，使组织逐渐变硬，便于油类或其他透明及浸入，为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。

石蜡切片的实验报告石蜡切片的实验报告石蜡切片是生物学和医学领域中常用的技术手段，它可以将组织样本固定在切片上，以便于观察和分析。

本次实验旨在探究石蜡切片技术的原理、步骤和应用。

一、石蜡切片技术的原理石蜡切片技术是一种常用的组织学研究方法，它的原理基于石蜡的透明性和稳定性。

石蜡是一种具有较高熔点的蜡状物质，具有良好的剪切性和切片稳定性。

在进行石蜡切片前，需要将组织样本进行固定、脱水和浸渍处理，使其具备适合切片的性质。

然后，将固定好的组织样本浸入石蜡中，石蜡渗透进入组织细胞中，将其包裹在石蜡中形成固定的切片。

最后，使用显微镜对切片进行观察和分析。

二、石蜡切片的步骤1. 组织样本的固定：将组织样本取出后，迅速进行固定处理。

常用的固定剂有福尔马林、乙醛等，可以使组织样本保持原有的形态结构。

2. 脱水处理：将固定好的组织样本进行脱水处理，以去除组织中的水分。

脱水过程中，需要逐渐使用浓度递增的酒精进行浸泡，使组织逐渐脱水至无水状态。

3. 浸渍处理：将脱水后的组织样本浸泡在石蜡溶液中，使其充分浸渍。

浸渍时间根据组织样本的大小和类型而定，一般需要数小时至数天。

4. 石蜡包埋：将浸渍好的组织样本放入石蜡模具中，加热使石蜡融化，将组织样本包裹在石蜡中。

包埋过程中需要控制温度和时间，以确保石蜡充分渗透到组织中。

5. 石蜡切片：使用石蜡切片机将包埋好的组织样本切割成薄片。

切片时需要调整切片机的切割速度和刀片的角度，以获得理想的切片质量。

6. 切片染色：将切好的石蜡切片进行染色处理，以增强组织结构的对比度和可见性。

常用的染色方法有血液学染色、组织学染色等。

7. 显微镜观察：将染色好的石蜡切片放置在显微镜下进行观察和分析。

通过显微镜的放大功能，可以清晰地观察到组织样本的细胞结构和组织构成。

三、石蜡切片技术的应用石蜡切片技术在生物学和医学领域中有广泛的应用。

首先，它可以用于病理学研究，帮助医生诊断和治疗疾病。

通过观察石蜡切片下的组织结构，医生可以了解病变的类型、程度和分布情况，从而制定相应的治疗方案。

2. 取材取材时，最好用徒手切片等方法，检查一下材料的内部结构是否适合需要，不理想时，再重新取材。

要点：（1）在符合观察要求的情况下，材料越小越好，体积尺寸一般不超过0.5cm。

（2）进行科研用的，材料样本数量要符合统计学的需要，并留有充分的余地。

（3）有特殊需要的材料，如茎尖纵切要看腋芽等结构的，要将材料作好标记——两侧削扁，切片时才有方向性。

（4）材料取下后要设法保持材料的新鲜。

材料取好后要立即固定。

3. 固定（FAA者可免）FAA固定液的配置：（50-70%乙醇90ml+冰醋酸5ml+37-40%甲醛（即福尔马林）5ml），常温下至少24hr或更长（视材料厚薄、大小而定）。

固定后一般的材料都可以在此液中于冰箱长期保存。

要点：①固定液的体积为材料体积的20-50倍；②固定液开始浸泡时，要对材料抽气，5. 脱水材料完成“冲洗”后，将材料上多余的水尽量除去，然后进入第一级脱水剂中。

脱水剂的浓度分为6-7级，从低到高逐级进行，每级脱水约2小时。

材料小和嫩的脱水时间可以缩短，材料大和硬（木质化程度高的）脱水的时间可以长一些，需要多总结经验。

脱水过程长，尤其是在高浓度脱水剂中的时间长，材料会变脆，不利于切片。

见下表。

注意：用FAA固定的材料，因不经“冲洗”，可以直接从2级脱水剂开始脱水。

注意：脱水剂用量不少于材料体积的5倍。

叔丁醇脱水所要求的温度，以叔丁醇不凝固材料进入无水的脱水剂中后，若脱水剂变浑浊，说明材料中的水分未脱干净，必须回到7. 浸蜡（透蜡）材料从叔丁醇脱水后进入装有适量融化的叔丁醇（恒温箱最好从36-40度缓慢升到56-60℃，透蜡的效果才好）的蜡管中，在蜡管中逐渐多次加入碎蜡（熔点48-50℃），直至与叔丁醇等体积为止（每次加蜡后都将透明剂瓶盖上，以免透明剂过渡蒸发），然后在56-60℃温箱中4-8小时或过夜。

此时必须盖紧蜡管塞，以免叔丁醇蒸发。

浸蜡用石蜡的熔点应该低于包埋用石蜡的熔点、逐渐增加石蜡的浓度、逐渐增加透蜡的温度，才能使石蜡易于慢慢透入材料。

石蜡切片和冰冻切片都适合质谱成像分析
石蜡切片和冰冻切片都是质谱成像分析中常用的技术。

它们各自具有优点，可以根据实验需求进行选择。

石蜡切片法是将组织样本固定在石蜡块中，然后用切片机切成非常薄的切片(通常在20-50微米之间)。

这种方法的优点在于其切割厚度均匀，可以提供高质量的细胞和组织的图像。

此外，由于使用的是石蜡作为固定剂，因此可以得到长期保存的切片。

石蜡切片也有其缺点。

石蜡本身是一种有机物质，可能会对某些生物分子产生影响。

石蜡切片需要经过一系列复杂的处理步骤，包括脱水、包埋、切片等，这可能增加实验的复杂性和时间成本。

相比之下，冰冻切片法则是在冷冻状态下快速切割生物组织并立即冻结以保留其完整性。

这种方法的优点在于它可以提供实时观察的活体细胞和组织结构，对于研究动态过程非常有用。

此外，冰冻切片不需要使用石蜡或其他固定剂，因此不会对生物分子产生影响。

然而，冰冻切片也有其挑战。

由于是在冷冻状态下进行切割，因此切片的质量可能受到冷冻损伤的影响。

此外，冰冻切片需要在极短的时间内完成，这可能对切片机的性能要求较高。

石蜡切片和冰冻切片都适合质谱成像分析，选择哪种方法取决于具体
的实验需求。

如果需要长期保存的高质量图像，或者需要研究静态结构和三维形态，那么石蜡切片可能是更好的选择。

而如果需要实时观察活体细胞和组织结构，或者对时间敏感，那么冰冻切片可能更合适。

石蜡切片的操作方法石蜡切片是一种常用的组织切片制备方法，用于细胞学和组织学的研究。

下面是石蜡切片的操作方法：1. 收集样本：选择要制备切片的组织样本或细胞样本。

样本可以是动物组织、植物组织或细胞培养物。

2. 选择合适的浸渍剂：石蜡切片需要将样本浸渍在石蜡之中，以固定和保护样本。

常用的浸渍剂包括甲醇、乙醇和二甲苯。

3. 固定样本：将样本固定在固定剂（如甲醛）中，以保持其形态结构。

固定时间根据样本的类型和大小而定，一般在4C下静置数小时或过夜。

4. 脱水：在一系列浓度逐渐增加的乙醇溶液中，将固定的样本从水中脱水，使其逐渐转移到纯度较高的乙醇中。

5. 渗透：将脱水的样本浸渍在二甲苯或其他有机溶剂中，使其渗透并置换乙醇。

浸渍时间根据样本的大小和组织特性而定，一般在一到数小时之间。

6. 包埋：将渗透后的样本置于石蜡中，使其完全浸润。

石蜡块可以预先加热至液态，然后将样本放入其中，或者将样本以及适量的石蜡放入模具中，然后通过加热使其固化。

7. 切片：将制备好的石蜡块放入石蜡切片机中，使用旋转切片刀将其切成薄片。

切片厚度一般为4-10微米。

8. 取片：用切片刀或镊子将切好的石蜡切片取出，并放置在清洁的显微镜载玻片或切片架上。

9. 脱脂：将石蜡切片置于加热的二甲苯或其他脱蜡剂中，使其脱去石蜡。

10. 染色：根据需要，可对石蜡切片进行染色，例如常用的血液和组织标本染色方法如伊红染色(H&E染色)。

11. 干燥：将染色的切片在室温下晾干或在加热台上加热至干燥。

最后，将切片用显微镜载玻片覆盖，并封口保存。

以上就是石蜡切片的一般操作方法，每个实验室可能会根据具体需求进行微调。

在操作过程中要注意安全，避免接触有毒溶剂和使用锋利的刀片时的切割操作。

石蜡切片方法采样切成直径5mm以内，长5-10mm的长段杀生、固定FAA固定液中固定24小时[根尖用卡诺固定液固定，（95%酒精：冰醋酸3：1），15-30M，不超过24小时，用95%、85%酒精浸洗，每级20M，然后转入70%酒精保存]配方：福尔马林（38%甲醛）5ml 冰醋酸5ml 70%酒精90ml 可保存整染以70%、50%酒精各2~4小时，转入爱氏苏木精稀释液（爱氏苏木清原液1份，加入50%酒精及冰醋酸各半的混合液1份）中整染2-3天爱氏苏木精配制：将苏木精溶于少量酒精中，加冰醋酸后搅拌，加速其溶解加入甘油及其余酒精研碎钾矾，溶于水中并加温将加温的钾矾溶液一滴滴地加入染色剂中，并不断挥动瓶口用双层纱布包扎，放于通风处，并经常摇动，直到颜色变为紫红进即可使用，成熟时间约需2~4周以致数月之久，若加0.2g碘酸钠即可立即成熟，成熟的原液，须用瓶塞密封，置低温暗处长期保存。

[苏木精2g 冰醋酸10ml 甘油100ml 95%酒精100 ml 蒸馏水100ml 硫酸铝钾5g]水洗、返蓝蒸馏水浸洗，勤换水至无浮色渗出，再转入自来水中，换1-2次水，至样品由紫色变为深蓝色为止，共需时约1天{镜检及分色取一小块用刀片切碎后，滴一滴水，覆以盖玻片，进行镜检，要求染色体、核仁清晰，如发现染色过度，细胞核为一团深蓝色，则需以1%盐酸或45%醋酸分色至适度，再用水洗净。

脱水经15%、30%、50%、70%、85%、95%、无水、无水各级酒精，每级2-4小时，70%酒精中过夜，此为整染的步骤，复染直接进行下一步}{脱水及复染经30%、50%、70%、85%各级酒精，每级3-4小时。

含0。

5-1%伊红的95%酒精中4-6小时（可以过夜），无水酒精两次，每次2小时此为伊红复染的步骤}透明5级氯仿透明，每级2-4小时，最后一级纯氯仿两次，每次2小时，隔纸片加蜡，置36℃温箱中一天（将瓶划成五格，吸去一格液体加入一格氯仿，当5级换入后，换纯氯仿二次）浸蜡：分2-3次加入石蜡粉末，宜先少后多，每加完一次放回温箱（38-40℃）渗透、包埋经50%、75%蜡各3小时，再经A、B、C三杯纯蜡各小时，包埋（75%石蜡指75%石蜡+25%二甲苯石蜡应用3-4层桑皮纸过滤后使用）温度处理时间50%石蜡40-42℃0.5-3 H75%石蜡48-50 0.5-3H纯蜡A 56-58 20M-1H纯蜡B 56-58 20M-1H纯蜡C 56-58 20M-1H用玻璃铅笔在盒底作记号包埋纸盒先用水润湿放于玻璃片上材料倒入后用镊子拨动调整位置，表面呈薄膜凝固时可放入水中修蜡块、切片厚8μm展片、粘片、烘片镜检选取合适的材料进行粘片，展开后，置于36℃温箱中烘干粘片剂：将鸡蛋一端打开一个小口，只让蛋白慢慢流入烧杯内，用玻璃棒充分搅拌成泡沫状，然后用粗滤纸或双层纱布过滤至量筒中，经一昼夜能滤出透明的蛋白液。