大鼠肺微血管内皮细胞使用说明

丙戊酸钠对烧伤休克大鼠肺微血管内皮细胞活化和通透性的影响周国勇;胡森;贾赤宇【摘要】目的观察组蛋白去乙酰化酶抑制剂丙戊酸钠(VPA)对大鼠50% TBSA Ⅲ度烧伤休克模型肺微血管内皮细胞(PMEC)活化和通透性的影响.方法雄性SD大鼠随机分为4组:假烫组,烫伤组(给予50%TBSA Ⅲ度烫伤),烫伤+VPA组及烫伤+2M2P组(烫伤后即刻皮下注射VPA 300 mg/kg或对照药物2-甲基-2-戊烯酸,即2M2P 300 mg/kg).分别于烫伤后2 h、6 h及12 h,伊文斯蓝(EB)染色法检测肺血管通透性;采血检测红细胞压积(HCT)及脏器功能指标;HE染色观察肺组织病理变化,干湿重法检测肺组织含水率;免疫组化法检测肺组织血管内皮细胞生长因子(VEGF)、E-选择素(E-selectin)和细胞间黏附分子-1(ICAM-1)的表达;TUNEL法检测肺微血管内皮细胞(PMEC)凋亡率.结果与烫伤组比较,伤后2 h及6 h烫伤+VPA 组和烫伤+2M2P组血HCT和肺组织含水率降低,肺血管通透性明显降低(P<0.05),肺水肿等病理改变减轻;烫伤+VPA组PMEC凋亡率低于烫伤+2M2P组(P<0.05).烫伤+VPA组VEGF、E-selectin、ICAM-1阳性率均显著低于烫伤组和烫伤+2M2P组(P<0.05).结论 VPA能抑制烧伤休克大鼠肺血管内皮细胞的活化以及凋亡,从而减少血管通透性增加引起的血容量丢失.【期刊名称】《解放军医药杂志》【年(卷),期】2013(025)012【总页数】5页(P11-15)【关键词】烧伤;休克;丙戊酸;肺微血管内皮细胞;大鼠;Sprague-Dawley【作者】周国勇;胡森;贾赤宇【作者单位】100091,北京,解放军309医院烧伤整形科;100091,北京,解放军309医院烧伤整形科;100091,北京,解放军309医院烧伤整形科【正文语种】中文【中图分类】R-332严重烧伤早期往往出现大量体液和血浆渗出到体外及第三间隙，其引起的低血容量性休克是严重烧伤后器官功能损伤及预后不良的病理生理基础。

sciencell内皮细胞培养基说明书Sciencell内皮细胞培养基是一种特异性和高效性培养内皮细胞的基质，能够有效地维持和生长内皮细胞，并促进它们的分化和功能发挥。

以下是Sciencell内皮细胞培养基的详细说明：一、培养基配方Sciencell内皮细胞培养基主要包含以下成分：1. DMEM/F12培养基2. 10% FBS3. 内皮细胞生长因子（EGF、VEGF、FGF、呋喃丙酸等）4. 抗生素/抗菌素（penicillin和streptomycin）5. L-酪氨酸、谷氨酰胺和葡萄糖等。

二、适用范围Sciencell内皮细胞培养基适用于以下内皮细胞的培养：1. 人类内皮细胞（HEC、HUAEC、HPMEC等）2. 小鼠内皮细胞（MEC、MAEC等）3. 大鼠内皮细胞（REPEC、RAEC等）4. 其他动物内皮细胞。

三、培养条件1. 培养温度：37℃2. CO2浓度：5%3. 外源性添加物：Sciencell内皮细胞培养基中已经包含了必要的营养因子、生长因子和抗生素/抗菌素，不需要额外添加外源性添加物。

4. 培养密度：内皮细胞的培养密度应当根据不同细胞类型和研究需要适当调整，一般为1-3x10^4 cells/cm2。

5. 培养时间：培养时间应当根据不同细胞类型和实验需要适当调整，一般为4-7天。

四、保存条件Sciencell内皮细胞培养基应当在4℃低温保存，避免阳光直射和冻结。

保存期长达6个月，但是在保质期内使用会更好。

打开后，建议在一个月内使用完毕。

五、使用说明1. 移液操作：使用Sciencell内皮细胞培养基时应当采用无菌条件下的移液操作，并避免出现气泡和异物。

2. 细胞接种：将内皮细胞接种到预先涂覆的细胞培养底物上，并根据需要进行细胞划分和培养状态监测。

3. 细胞增殖：使用Sciencell内皮细胞培养基可促进内皮细胞的增殖和生长，建议每3-4天更换新的培养基。

4. 细胞检测：在细胞培养期间需监测细胞的培养状态、生长状态和增殖情况。

急性肺损伤大鼠呼吸膜 AQP1和 AQP5的表达岳胜;朱平;岳磊;乔国华【摘要】目的：确定水通道蛋白 AQP1及 AQP5是否在大鼠肺泡毛细血管膜（呼吸膜）表达，进而研究急性肺损伤（ALI）大鼠 AQP1和 AQP5的表达调节及激素干预的作用。

方法采用亲和的抗人 AQP1和 AQP5抗体，应用免疫组化及免疫电镜的方法研究AQP1及AQP5在呼吸膜的分布。

选用肺泡内灌注脂多糖（LPS）制作大鼠 ALI 动物模型，研究 ALI 时呼吸膜 AQP1及 AQP5的变化。

结果免疫染色显示 AQP1主要表达于正常肺组织的微血管内皮，而 AQP5主要表达于肺泡 I型上皮细胞。

免疫组化分析进一步表明 LPS 灌注后4h ～48hAQP1及 AQP5在呼吸膜的表达均下降；AQP1蛋白于 LPS 灌注后24h 及激素干预后有部分恢复（P ＜0．05），而 AQP5无这种恢复现象。

结论 ALI 时 AQP1及 AQP5在呼吸膜的表达减少，提示 ALI 时 AQP1和 AQP5的下降表达可能与其液体转运的异常有关。

%Objective To determine if aquaporin1 ( AQP1) and aquaporin5( AQP5) are expressed in the alveolar-capillary membrane in rats, and to investigate the changes of AQP1 and AQP5 expression in the rat with acute lung injury.Methods The distribution of AQP1 and AQP5 in alveolar capillary membrane was investigated by immunohistochemistry and immunoelectron microscopy with affinity-purified antibodies to human AQP1 and AQP5.The possibility that alveolar capillary membrane AQP1and AQP5 undergo altered regulation was studied by a rat model established using intra-tracheal instillation of lipopolysaccharide (LPS).Results Immunolabelling showed that AQP1 was stained primarily in the microvascular endothelium of normal lungs, while AQP5 was expressedin type I pneumocytes. Immunohistochemical analysis showed a significant decrease in the expression of AQP1 and AQP5 in injured lungs at 4 -48 h after LPS instillation.AQP1 protein was resumed partly at 24 h after LPS instillation and steroid administration, whereas AQP5 was unchanged.Conclusions The decreased expressions of AQP1 and AQP5 in injured lungs suggest that both of them may play a role in abnormal fluid transportation.【期刊名称】《中国比较医学杂志》【年(卷),期】2016(026)008【总页数】6页(P70-74,90)【关键词】水通道蛋白 1;水通道蛋白 5;急性肺损伤;激素【作者】岳胜;朱平;岳磊;乔国华【作者单位】郑州大学附属洛阳中心医院急诊科，河南洛阳 471000;郑州大学附属洛阳中心医院急诊科，河南洛阳 471000;郑州大学附属洛阳中心医院急诊科，河南洛阳 471000;郑州大学附属洛阳中心医院急诊科，河南洛阳 471000【正文语种】中文【中图分类】R-33临床中，肺水肿的形成涉及肺间质和毛细血管的液体转运，近年来关于肺组织中液体转运的分子机制的研究显示，水通道蛋白(aquaporins，AQPs)是一组在哺乳动物体内表达的水选择通道的分子家族,它们可以增强浆膜面水通透力的功能，因而可以提供快速液体转运的通路[1，2]。

大鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞编号名称规格北京派瑞金GK1003大鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞5×105cells/瓶为能尽快开展实验，派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期，且每次发货为汇合率达到70%的细胞，收到细胞后即可开展实验。

派瑞金提供的大鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞取自新鲜的组织，按照标准操作流程分离培养。

研发的大鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件，降低杂细胞污染，保证不同批次间细胞质量的稳定。

同时，派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程，所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测，保证细胞纯度在90%以上；同时也需经过微生物检测，保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。

大鼠II型肺泡上皮细胞简介：1、名称：大鼠II型肺泡上皮细胞2、组织来源：正常大鼠3、规格：25cm2培养瓶4、细胞简介：肺泡上皮细胞由肺泡I型(AECI)上皮细胞和肺泡Ⅱ型(AECII)上皮细胞构成，其比例约为1：2，这两类细胞在功能上和形态上明显不同。

AEC II在数量上比AECI 多，但是即使将AECⅡ顶部的微绒毛计算在内，其所占的肺泡上皮表面面积的比例也不足10%。

AECⅡ呈立方形，胞浆里面含有板层小体是其基本特征，是鉴别AECⅡ的主要依据。

肺泡Ⅱ型上皮细胞是肺泡上皮组织干细胞，在正常的细胞更新和修复过程中，它既可以分化为AECⅡ，也可以通过有丝分裂来维持自身细胞群。

本公司生产的大鼠II型肺泡上皮细胞采用胰酶和胶原酶消化制备而来，细胞总量约为5X105个/瓶，细胞纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

5、培养基信息：1）培养基类型：M1992）添加因子：FBS、Penicillin、Streptomycin等大鼠II型肺泡上皮细胞使用方法：收到细胞后，请按照以下方法进行操作。

1.取出25cm2培养瓶，75%酒精消毒，拆下封口膜，放入37℃，5%CO2细胞培养箱中静置6-8小时或者过夜，以稳定细胞状态。

血管内皮细胞培养方法全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：血管内皮细胞（vascular endothelial cell，VEC）是血管内膜上的一种细胞，它们起着维持血管结构和功能的重要作用。

近年来，血管内皮细胞的培养方法逐渐成为生物医学领域的研究热点之一。

良好的血管内皮细胞培养方法不仅有助于研究心血管疾病的发生机制，还可以为新药的研发提供重要参考依据。

本文将详细介绍血管内皮细胞培养的方法和技巧，希望对相关研究人员和医学工作者有所帮助。

一、血管内皮细胞来源血管内皮细胞可以从多种来源获得，包括人类或动物的血管组织。

通常情况下，从人体的脐带血、外周血或组织中分离得到的血管内皮细胞具有较高的纯度和活性，适合于体外培养。

一些商业生物技术公司也提供血管内皮细胞的原代细胞培养服务，可以方便地购买到高质量的细胞用于研究。

二、血管内皮细胞培养基的选择血管内皮细胞培养基是培养血管内皮细胞的基本营养液，不同类型的细胞需要不同种类的培养基。

一般来说，常用的血管内皮细胞培养基包括Eagle's minimum essential medium（EMEM）、Dulbecco's modified Eagle's medium（DMEM）和Medium 199等。

这些培养基通常含有必需氨基酸、维生素、矿物质、生长因子、胎牛血清等营养成分，可以提供适宜的环境促进细胞生长。

1、原代细胞的分离和培养将采集到的组织样本进行酶消化处理，分离出血管内皮细胞，并通过贴壁法或悬浮培养法将其传代培养。

在传代培养的过程中，需要定期更换培养基、观察细胞的形态和数量变化，以确保细胞的健康生长。

2、细胞的传代和冻存随着细胞的传代次数增加，细胞的增殖能力和活性逐渐下降，需要进行细胞的传代和冻存。

传代前需要对细胞进行细胞数计数和活力检测，传代后要及时观察细胞的形态和生长情况，确保细胞的健康状态。

3、细胞的实验处理在进行实验前，需要对培养的细胞进行处理，如细胞分裂抑制（如丙酮酸、羟基脲等）、细胞增殖刺激（如VEGF、EGF等）等。

大鼠肺成纤维细胞原代提取及培养实验具体步骤及方法大鼠肺成纤维细胞原代提取及培养实验具体步骤及方法将大鼠的肺成纤维细胞从机体中取出，经胰酶、螯合剂（常用EDTA）处理，分散成单细胞，置合适的生长培养基培养基中培养，使细胞得以生存、生长和繁殖。

一、实验材料准备1. 动物出生后1-4天的Wistar乳鼠1只。

2. 试剂PBS、培养液(Hyclone的低糖DMEM，含Hyclone的10%新生牛血清、100 U/ml 青链霉素、1%明胶PBS、0.25%胰酶(含EDTA，GIBCO)，碘酒和酒精绵球。

3. 器械眼科直剪2把、眼科弯剪2把、眼科直镊2把、眼科弯镊2把、玻璃平皿3套，25 cm2塑料培养瓶(Costar)。

二、具体操作1. 明胶包被培养瓶过夜(准备2-3个)，取出明胶，用2 ml培养液冲洗培养瓶一遍，置于超净台中。

2. 解剖取肺：将乳鼠在酒精中浸泡后取出，转移至超净台上的玻璃培养皿中，用碘酒消毒胸部皮肤，再用酒精棉球脱碘。

左手捏紧乳鼠颈背部皮肤以充分展露胸部，右手以眼科直剪剪开皮肤，充分撕拉开，再用酒精棉球消毒，继而以另一把眼科弯剪沿胸骨柄左下缘向上剪开肋骨，然后在切口中间横剪胸骨。

用眼科镊取出肺，置于盛有PBS(含有200U/ml青链霉素)的玻璃平皿中，冲洗去血。

3. 用眼科剪将肺分成几个肺叶，用镊子去除周边的血凝块及纤维组织，用眼科剪剪去肺门处的支气管和血管，再用含有双抗的PBS冲洗1遍。

4. 用眼科弯剪将肺组织剪碎成1 mm3大小，加入含有双抗的PBS，将肺组织块吹打开，静置15 min后，更换新的PBS。

5. 用200 ul微量加样器(最好是超净台中专用的，临用时用酒精绵球好好擦拭枪柄)取200 ul加样枪头一个，剪去尖，在酒精灯上用火焰烧弯。

用枪头吸取组织块接种于培养瓶中，每瓶20-25块左右，每小块间距0.5 cm左右。

组织块放置好后，轻轻将培养瓶翻转，让瓶底朝上，向瓶内加入2 ml左右的培养液，盖好瓶盖，将培养瓶倾斜放置在温箱中，干贴壁2-4 h后，将培养瓶慢慢翻转平放，继续静置培养。

•论著・乙酰化白藜芦醇对脂多糖诱导急性肺损伤中微循环修复作用机制探究闫雪I崔蕊I熊晓毅I张敏龙2|咸阳职业技术学院医学院712000；2空军军医大学唐都医院呼吸科，西安710038通信作者：张敏龙，Email：740720039@【摘要】目的观察脂多糖(LPS)诱导急性肺损伤大鼠肺组织中微循环的变化，探讨乙酰化白藜芦醇对其干预作用及机制。

方法32只SD大鼠随机分为空白对照组、LPS处理组、乙酰化白藜芦醇预处理组和白藜芦醇预处理组，每组8只。

采用气管内滴注LPS(5mg/kg)的方法制作急性肺损伤动物模型，观察病理变化、肺组织湿/干重比值，用伊文思蓝法检测肺微血管通透性，用酶联免疫吸附试验法检测肺组织中肿瘤坏死因子a和白细胞介素邛的含量，用蛋白质印迹法检测细胞骨架重构相关蛋白FAK、cofilin的表达变化，免疫荧光观察肺微血管内皮细胞单层细胞间隙改变情况。

结果LPS干预4h后，大鼠肺部损伤明显，肿瘤坏死因子a和白细胞介素10的含量增高，肺湿/干重比值及通透性明显增加，FAK-cofilin通路明显激活，肺微血管内皮单层细胞间隙明显增加；乙酰化白藜芦醇预处理显著减轻了LPS导致的急性肺损伤，减少了炎症因子的释放，并且抑制了FAK-cofilin通路的激活及肺微血管内皮单层细胞间隙的增加。

结论肺微循环的改变参与了LPS诱导肺损伤的发生发展，乙酰化白藜芦醇能够通过抑制FAK-cofilin通路减轻肺损伤。

【关键词】急性肺损伤；脂多糖类；FAK-cofilin通路；微循环；乙酰化白藜芦醇基金项目：咸阳职业技术学院重大科学研究项目(2019KYA02)DOI：10.3760/l31368-20200806-007003,5,4，-Tri-O-acetyiresveratrol alleviates lipopolysaccharide-induced acute lung injury by regulatinglung microcirculationYan Xue1,Cui Rui1,Xiong Xiaoyi1,Zhang Miniong21School of Medicine,Xianyang Vocational Technical College,Xianyang712000,China;2De p art merit o f Respiratory Medicine,Tangdu Hospital,the Fourth Military MedicalUniversity,Xi'an710038,ChinaCorresponding author:Zhang Minlong,Email:740720039@[Abstract!Objective To observe the change of lung microcirculation in lipopolysaccharide(LPS)-induced acute lung injury,and explore the intervention effect and the mechanism of3,5,4-Tri-()-acetylresveratrol.Methods Thirty-two rats were randomly divided into four groups:normalcontrol group,LPS group,3,5,4-Tri-O-acetylresveratrol pre-treated group and acetylresveratroipre-treated group,eight rats in each group.The acute lung injury animal model was made by5mg/kgLPS instillation into the airway.The pathological changes,wet/dry weight ratio of lung tissues wereobserved.Evans blue method was used to detect pulmonary microvascular permeability.Enzyme-linked immunosorbent assay was used to detect the levels of tumor necrosis factor-a and interleukin-ipin lung tissues.Western blot was used to detect the expressions of FAK and cofilin.Theimmunofluorescence was used to observe the changes of monolayer permeability of pulmonarymicrovascular endothelial cells.Results After LPS stimulation for four hours,the lung injury ofrats was obvious,the levels of tumor necrosis factor-a and interleukin-lp were increased,the wet/dry weight ratio and permeability of lung tissues were increased,FAK-cofilin pathway wasactivated,and the monolayer permeability of pulmonary microvascular endothelial cells wasincreased.Pretreatment with3,5,4-Tri-O-acetylresveratrol significantly attenuated LPS-inducedacute lung injury,reduced the release of inflammatory factors,and inhibited the activation of FAK-cofilin pathway and the increase of monolayer permeability of pulmonary microvascular endothelial cells.Conclusions The changes of lung microcirculation are involved in the occurrence and development of LPS-induced lung injury.3,5,4/-Tri-O-acetylresveratrol can reduce lung injury by inhibiting FAK cofilin pathway.【Keywords】Acute lung injury;Lipopolysaccharides;FAK-cofilin;Microcirculation;3,5,4^-T r i-()-acetylresveratrolFund program:Key Research Projects of Xianyang Vocational Technical College(2019KYA02) DOI:10.3760/l31368-20200806-00700急性肺损伤是由多种因素(如感染、创伤、休克、吸入理化物质等)引起的以顽固性呼吸困难及低氧血症为主要特征的一类肺部疾病，如未得到及时诊治，会逐渐发展成为ARDS。

网络出版时间：２０２４－０１－１０１１：０１：２９　网络出版地址：ｈｔｔｐｓ：／／ｌｉｎｋ．ｃｎｋｉ．ｎｅｔ／ｕｒｌｉｄ／３４．１０８６．Ｒ．２０２４０１０８．１８３２．０４６◇复方药物药理学◇血府逐瘀汤对肺动脉内皮细胞间质转化的影响及机制曾作梅，王昕癑，田雷瑜，崔力丹，郭　健，陈俞材（北京中医药大学中医学院，北京　１０００５０）收稿日期：２０２３－０９－２０修回日期：２０２３－１１－１５基金项目：国家自然科学基金青年项目（Ｎｏ８２００３９８３）；北京中医药大学“解码中医”揭榜挂帅项目（Ｎｏ２０２２ ＪＹＢ ＪＢＺＲ ００３）；分子药理和药物评价教育部重点实验室开放课题（ＮｏＰ２０２２０１）作者简介：曾作梅（１９９７－），女，硕士生，研究方向：心脑血管药理学与中药药理学，Ｅ ｍａｉｌ：ｚｅｎｇｚｕｏｍｅｉ９７０７０６＠１６３．ｃｏｍ；陈俞材（１９９０－），男，博士，讲师，研究方向：心脑血管药理学与中药药理学，通信作者，Ｅ ｍａｉｌ：２０１８０１００９＠ｂｕｃｍ．ｅｄｕ．ｃｎ；郭　健（１９７０－），女，教授，博士生导师，研究方向：中药药理学，通信作者，Ｅ ｍａｉｌ：ｇｕｏｊｉａｎ＠ｂｕｃｍ．ｅｄｕ．ｃｎｄｏｉ：１０．１２３６０／ＣＰＢ２０２３０７０３４文献标志码：Ａ文章编号：１００１－１９７８（２０２４）０１－０１５５－０７中国图书分类号：Ｒ ３３２；Ｒ２８５ ５；Ｒ３２２ １３；Ｒ３２２ ３５；Ｒ５４４摘要：目的　研究血府逐瘀汤对转化生长因子 β１（ＴＧＦ β１）诱导的大鼠肺微血管内皮细胞（ｐｕｌｍｏｎａｒｙｍｉｃｒｏｖａｓｃｕｌａｒｅｎ ｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓ，ＰＭＶＥＣｓ）内皮间质转化（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｔｏ ｍｅｓ ｅｎｃｈｙｍａｌｔｒａｎｓｉｔｉｏｎ，ＥｎｄＭＴ）的影响，并从ＴＧＦ β１／Ｓｍａｄ信号通路进一步分析其作用机制。

方法　采用ＴＧＦ β１（５μｇ·Ｌ－１）建立ＥｎｄＭＴ细胞模型。

小鼠肺微血管内皮细胞小鼠肺微血管内皮细胞产品说明：为使客户能尽快开展实验，派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期，且每次发货为汇合率达到70%的细胞，收到细胞后即可开展实验。

派瑞金提供的小鼠肺微血管内皮细胞取自新鲜的组织，按照标准操作流程分离培养。

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小鼠肺微血管内皮细胞注意事项：1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好，培养液是否有漏液、浑浊等现象，若有上述现象发生请及时和我们联系。

2. 仔细阅读细胞说明书，了解细胞相关信息，如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。

3. 请客户用相同条件的培养基用于细胞培养。

培养瓶内多余的培养基可收集备用，细胞传代时可以一定比例和客户自备的培养基混合，使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。

4. 建议客户收到细胞后前3天各拍几张细胞照片，记录细胞状态。

5. 该细胞只能用于科研，不得用于临床应用。

小鼠肺微血管内皮细胞其他相关小鼠原代细胞：小鼠小肠粘膜上皮细胞小鼠大隐静脉平滑肌细胞小鼠肺微血管内皮细胞小鼠冠状动脉平滑肌细胞小鼠肺血管平滑肌细胞小鼠大隐静脉内皮细胞小鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞小鼠冠状动脉内皮细胞小鼠气管上皮细胞小鼠骨细胞小鼠气管平滑肌细胞小鼠滑膜细胞小鼠肺成纤维细胞小鼠骨骼肌细胞小鼠支气管上皮细胞小鼠表皮细胞小鼠支气管成纤维细胞小鼠真皮成纤维细胞小鼠肺大静脉平滑肌细胞小鼠破骨细胞小鼠肺大动脉平滑肌细胞小鼠皮肤肥大细胞小鼠肺大动脉内皮细胞小鼠前脂肪细胞小鼠肺动脉成纤维细胞小鼠成骨细胞小鼠肺大静脉内皮细胞小鼠关节软骨细胞小鼠气管和支气管上皮细胞小鼠胎儿表皮角质形成层细胞小鼠胰岛细胞小鼠成年表皮角质形成层细胞小鼠胰腺星状细胞小鼠皮下脂肪细胞小鼠胰腺导管上皮细胞小鼠内脏脂肪细胞小鼠颌下腺上皮细胞小鼠脑动脉血管内皮细胞小鼠腮腺细胞小鼠脑动脉血管平滑肌细胞小鼠乳腺上皮细胞小鼠脑静脉血管内皮细胞小鼠胰腺上皮细胞小鼠脑静脉血管平滑肌细胞小鼠甲状腺上皮细胞小鼠脑膜细胞小鼠淋巴管内皮细胞小鼠神经胶质细胞小鼠淋巴成纤维细胞小鼠海马神经元细胞小鼠外周血白细胞小鼠脑微血管内皮细胞小鼠骨髓基质细胞小鼠脑成纤维细胞小鼠食管上皮细胞小鼠神经小胶质细胞小鼠食管平滑肌细胞小鼠雪旺氏细胞小鼠肠动脉内皮细胞小鼠小脑颗粒细胞小鼠肠静脉内皮细胞小鼠嗅鞘细胞小鼠肝实质细胞小鼠视网膜微血管内皮细胞小鼠肝动脉内皮细胞小鼠小梁网细胞小鼠肝动脉平滑肌细胞小鼠视网膜色素上皮细胞小鼠小肠血管内皮细胞小鼠视网膜muller细胞小鼠小肠隐窝上皮细胞小鼠虹膜色素上皮细胞小鼠肝内胆管上皮细胞小鼠晶状体上皮细胞小鼠胃粘膜上皮细胞小鼠角膜上皮细胞小鼠肝窦内皮细胞小鼠视网膜神经节细胞小鼠肝星形细胞小鼠角膜成纤维细胞小鼠直肠平滑肌细胞小鼠脉络膜血管细胞小鼠小肠平滑肌细胞小鼠牙乳头细胞小鼠结肠平滑肌细胞小鼠肝外胆管上皮细胞小鼠肠上皮细胞小鼠肝Kupffer细胞小鼠肠微血管细胞小鼠骨髓间充质干细胞小鼠肠巨噬细胞小鼠下丘脑神经元细胞小鼠子宫内膜上皮细胞小鼠睾丸支持细胞小鼠卵巢颗粒细胞小鼠心肌微血管内皮细胞小鼠子宫颈上皮细胞小鼠真皮微血管上皮细胞小鼠子宫平滑肌细胞小鼠胚胎成纤维细胞小鼠卵巢上皮细胞小鼠心脏干细胞小鼠子宫成纤维细胞小鼠神经干细胞小鼠卵巢成纤维细胞小鼠骨髓来源内皮祖细胞小鼠肾实质细胞小鼠椎间盘髓核细胞小鼠肾系膜细胞小鼠肾足突细胞小鼠膀胱上皮细胞小鼠肾小管平滑肌细胞小鼠膀胱平滑肌细胞小鼠肾成纤维细胞小鼠肾动脉内皮细胞小鼠尿道上皮细胞小鼠肾动脉平滑肌细胞小鼠输尿管上皮细胞小鼠肾小管上皮细胞小鼠肾管状上皮细胞小鼠肾小球内皮细胞小鼠心肌细胞小鼠前列腺上皮细胞小鼠心肌成纤维细胞小鼠肾上皮细胞小鼠主动脉内皮细胞小鼠膀胱成纤维细胞小鼠主动脉平滑肌细胞小鼠血管外膜成纤维细胞。