实验五逆境对植物的伤害(电导率法)..

实验五逆境对植物组织的伤害—电导率法检测植物细胞质膜透性和愈创木酚法测定过氧化物酶活性一、实验目的：1.了解研究植物抗逆生理的实验方法，学会使用DDS-11A型电导率仪，掌握绝对电导率和相对电导率的概念；2.熟悉植物组织过氧化物酶活性的测定方法，学会分光光度计的“动力学”测量程序二、实验原理：（P78和P97）三、实验材料：绿豆幼苗四、实验步骤：1.材料处理：10株幼苗为一组分别置于45℃（纯水最好预热至该温度）和室温中（在上课之前请先处理好材料，以课堂小组为单位）。

2.电导率的测定：2h后小心取出幼苗，冷却至室温后测定浸出液和纯水的电导率。

（不必测材料煮沸后的电导率）3.过氧化物酶（POD）活性测定P973.1POD的提取：材料1g，加入KH2PO4冰浴研磨成匀浆，低温4000rpm离心15min,收集上清液，定容至25mL,低温保存3.2POD的测定：先在分光光度计的“动力学”或“时间扫描”程序上设置好参数取比色杯2个，1个将对照液放入参比杯按照程序调零，另一个比色杯拉出加入20μL酶液，再加入1mL KH2PO4 ，最后加入3mL反应混合液，立即测量。

❖723G型分光光度计“动力学”测定❖【3按“按“按“ENT”后，出现：测量出图谱后，按“ESC”返回到界面:按“3”进入活性测量功能，出现如下界面：按“SET”进行具体设置，按“ENT”可得出相应值。

按“4”进入图谱处理功能，出现如下界面：其中按“1”可见原始图谱，按“2”可进行峰谷检测，按“3”通过横纵坐标的缩放可达到图谱缩放功能，方便观察图谱。

按“4”具有具体的实验查询功能。

思考题1.电导率的测定主要有哪些影响因素?2.相对电导率和绝对电导率的概念?3.请说出电导率和电导度的概念区别。

4.温度和CO2会影响电导度的测定结果吗？在操作中应注意什么？5.影响酶提取、纯化和活性测定的因素有哪些？6.测定时酶活性的测定应当定在什么时间范围内？测定植物组织过氧化物酶活性的意义与用途。

逆境胁迫对植物生理生化代谢的影响20093391 魏晓明农学0901摘要：对植物产生伤害的环境称为逆境，又称胁迫。

常见的逆境有寒冷、干旱、高温、盐渍等。

逆境会伤害植物，严重时会导致植物死亡。

逆境对植物的伤害主要表现在细胞脱水、膜系统受破坏，酶活性受影响，从而导致细胞代谢紊乱。

有些植物在长期的适应过程中形成了各种各样抵抗或适应逆境的本领，在生理上，以形成胁迫蛋白、增加渗透调节物质（如脯氨酸含量）、提高保护酶活性等方式提高细胞对各种逆境的抵抗能力。

关键词：逆境胁迫,抗逆性，相对电导率，脯氨酸，丙二醛，样品，细胞膜透性，过氧化物酶活性，叶绿素，可溶性糖。

前言：植物细胞膜起调节控制细胞内外物质交换的作用，它的选择透性是其最重要的功能之一。

当植物遭受逆境伤害时，细胞膜受到不同程度的破坏，膜的透性增加，选择透性丧失，细胞内部分电解质外渗。

膜结构破坏的程度与逆境的强度、持续的时间、作物品种的抗性等因素有关。

因此，质膜透性的测定常可作为逆境伤害的一个生理指标，广泛应用在植物抗性生理研究中。

当质膜的选择透性被破坏时细胞内电解质外渗，其中包括盐类、有机酸等，这些物质进入环境介质中，如果环境介质是蒸馏水，那么这些物质的外渗会使蒸馏水的导电性增加，表现在电导率的增加上。

植物受伤害愈严重，外渗的物质越多，介质导电性也就越强，测得的电导率就越高（不同抗性品种就会显示出抗性上的差异）。

在植物胁迫处理过程中，叶绿素含量会下降，可以把叶绿素含量下降看作是胁迫发展中由功能性影响到器质性伤害的一个中间过程。

过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶，他与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有密切关系，在植物生长发育过程中，他的活性不断变化，因此测量这种酶，可以反映某一时期植物体内代谢的变化。

植物体内的碳素营养状况以及农产品的品质性状，常以糖含量作为重要指标。

植物为了适应逆境条件，如干旱、低温，也会主动积累一些可溶性糖，降低渗透势和冰点，以适应外界环境条件的变化。

植物组织逆境伤害程度的测定实验37 植物组织逆境伤害程度的测定——电导法【原理】植物组织受到逆境伤害时，由于膜的功能受损或结构破坏，而使其透性增大，细胞内各种水溶性物质包括电解质将有不同程度的外渗，将植物组织浸入无离子水中，水的电导将因电解质的外渗而加大，伤害愈重，外渗愈多，电导度的增加也愈大。

故可用电导仪测定外液的电导度增加值而得知伤害程度。

【仪器与用具】电导率仪1台；真空泵（附真空干燥器）一套；恒温水浴1具；水浴试管架1个；20ml具塞刻度试管10支；打孔器1套（或双面刀片1片）；10ml移液管（或定量加液器）1个；试管架1个；铝锅1个；电炉1个；镊子1把；剪刀1把；搪瓷盘1个；记号笔1支；去离子水适量；滤纸适量；塑料纱网（约3cm2）6片。

【方法】1．容器的洗涤电导法对水和容器的洁净度要求严格，水的电导值要求为1~2μS （微西门子）；所用容器必须彻底清洗，再用去离子水冲净，倒置于洗净而垫有洁净滤纸的搪瓷盘中备用。

为了检查试管是否洁净，可向试管中加入电导值在1～2μS的新制去离子水，用电导仪测定是否仍维持原电导。

2．试验材料的处理分别在正常生长和逆境胁迫的植株上取同一叶位的功能叶若干片。

若没有逆境胁迫的植株，可取正常生长的叶片若干片，分成两份，用纱布擦净表面灰尘。

将其中一份放在﹣20℃左右的温度下冷冻20min （或置40℃左右的恒温箱中处理30min）进行逆境胁迫处理。

另一份裹入潮湿的纱布中放置在室温下作对照。

3．测定（1）将处理组叶片与对照组叶片用去离子水冲洗两次，再用洁净滤纸吸净表面水分。

用6～8mm的打孔器避开主脉打取叶圆片（或切割成大小一致的叶块），每组叶片打取叶圆片30片，分装在三支洁净的刻度试管中，每管放10片。

（2）在装有叶片的各管中加入10ml的去离子水，并将大于试管口径的塑料纱网放入试管距离液面1cm处，以防止叶圆片在抽气时翻出试管。

然后将试管放入真空干燥箱中用真空泵抽气20min（也可直接将叶圆片放入注射器内，吸取10ml的去离子水，堵住注射器口进行抽气）以抽出细胞间隙的空气，当缓缓放入空气时，水即渗入细胞间隙，叶片变成透明状，沉入水下。

一、实验目的通过本实验，了解植物在逆境条件下的生理反应和适应机制，探究不同逆境对植物生长的影响，以及植物如何通过生理和形态上的变化来适应逆境环境。

二、实验原理植物在逆境条件下，如干旱、盐害、低温等，会经历一系列的生理和形态变化。

这些变化包括细胞膜透性增加、渗透调节物质积累、光合作用减弱、呼吸作用变化等。

通过观察和分析这些变化，可以了解植物逆境生理的机制。

三、实验材料与方法1. 实验材料选用小麦（Triticum aestivum L.）作为实验材料，分为对照组和实验组。

2. 实验方法（1）干旱处理：将实验组小麦置于干旱条件下，对照组小麦正常浇水。

（2）盐害处理：将实验组小麦置于盐浓度分别为0、50、100、150、200 mmol/L的盐溶液中，对照组小麦正常浇水。

（3）低温处理：将实验组小麦置于4℃低温条件下，对照组小麦正常生长。

（4）生理指标测定①细胞膜透性：采用电导率法测定细胞膜透性。

②渗透调节物质含量：采用比色法测定脯氨酸和可溶性糖含量。

③光合作用强度：采用光合仪测定光合有效辐射（PAR）和光合速率。

④呼吸作用强度：采用氧气消耗法测定呼吸速率。

⑤形态指标：观察植物叶片的萎蔫程度、叶片颜色变化等。

四、实验结果与分析1. 干旱处理实验结果显示，随着干旱时间的延长，实验组小麦的细胞膜透性逐渐升高，渗透调节物质含量增加，光合作用强度降低，呼吸作用强度先升高后降低。

与对照组相比，实验组小麦的叶片萎蔫程度明显加重，叶片颜色变黄。

2. 盐害处理实验结果显示，随着盐浓度的增加，实验组小麦的细胞膜透性逐渐升高，渗透调节物质含量增加，光合作用强度降低，呼吸作用强度先升高后降低。

与对照组相比，实验组小麦的叶片萎蔫程度和叶片颜色变化均随盐浓度增加而加重。

3. 低温处理实验结果显示，实验组小麦在低温条件下，细胞膜透性升高，渗透调节物质含量增加，光合作用强度降低，呼吸作用强度降低。

与对照组相比，实验组小麦的叶片萎蔫程度明显加重，叶片颜色变紫。

实验 46 逆境对植物的伤害（电导仪法）一、原理植物细胞膜对维持细胞的微环境和正常的代谢起着重要的作用。

在正常情况下，细胞膜对物质具有选择透性能力。

当植物受到逆境影响时，如高温、低温、干旱、盐渍或病原菌侵染后，细胞膜遭到破坏，膜透性增大，从而使细胞内的电解质外渗，以致植物细胞浸提液的电导率增大。

膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关，也与植物抗逆性的强弱有关。

这样，比较不同作物或同一作物不同品种在相同胁迫温度下膜透性的增大程度，即可比较作物间或品种间的抗逆性强弱，因此，电导法目前已成为作物抗性栽培、育种上鉴定植物抗逆性强弱的一个方法。

二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片。

（二）试剂NaCl 溶液。

（三）仪器设备电导仪，天平，温箱，真空干燥器，抽气机，恒温水浴锅，注射器。

三、实验步骤1. 制作标准曲线如需定量测定透性变化，可用纯 NaCl 配成 0 、 10 、 20 、 40 、 60 、80 、 100 μg/mL 的标准液，在 20 ～ 25 ℃恒温下用电导仪测定，可读出电导率。

以电导率为纵坐标， NaCl 量为横坐标做标准曲线。

2. 选取小麦或其他植物在一定部位上生长叶龄相似的叶子若干，剪下后，先用纱布拭净，称取两份，各重 2 g 。

3. 一份插入小杯中放在 40 ℃恒温箱内萎蔫 0.5 ～ 1 h ，另一份插入水杯中放在室温下做对照。

处理后分别用蒸馏水冲洗两次，并用洁净滤纸吸干。

然后剪成长约 1 cm 小段放入小烧杯中（大小以能够容纳电极为度），并用玻棒或干净尼龙网压住，在杯中准确加入蒸馏水 20 mL ，浸没叶片。

4. 放入真空干燥器，用抽气机抽气 7 ～ 8 min 以抽出细胞间隙中的空气。

重新缓缓放入空气，水即被压入组织中而使叶下沉。

5. 将抽过气的小烧杯取出，放在实验桌上静置 20 min ，然后用玻棒轻轻搅动叶片，在 20 ～25 ℃恒温下，用电导仪测定溶液电导率。

6. 测过电导率之后，再放入 100 ℃沸水浴中 15 min ，以杀死植物组织，取出放入自来水冷却 10 min ，在 20 ～ 25 ℃恒温下测其煮沸电导率。

植物生理学实验科技论文题目逆境胁迫对植物生理生化指标的影响学号 104120122姓名白雪洁学院生命科学学院专业、班级生科10C指导教师王莎莎云南师范大学教务处编印逆境胁迫对植物生理生化代谢的影响摘要：干旱、盐碱和低温是强烈限制作物产量的三大非生物因素,其中干旱造成的损失最大, 其损失超过其他逆境造成损失的总和。

对植物产生伤害的环境称为逆境，又称胁迫。

常见的逆境有寒冷、干旱、高温、盐渍等。

逆境会伤害植物，严重时会导致植物死亡。

逆境对植物的伤害主要表现在细胞脱水、膜系统受破坏，酶活性受影响，从而导致细胞代谢紊乱。

有些植物在长期的适应过程中形成了各种各样抵抗或适应逆境的本领，在生理上，以形成胁迫蛋白、增加渗透调节物质（如脯氨酸含量）、提高保护酶活性等方式提高细胞对各种逆境的抵抗能力。

以小麦幼苗为材料，设置对照组，探究了干旱胁迫下脯氨酸（pro）、谷胱甘肽(GSG、丙二醛(MDA、H2O2的含量变化以及抗氧化酶(POD、PPO活性的变化。

结果表明：在干旱胁迫下，脯氨酸（pro）、谷胱甘肽(GSG、丙二醛(MDA、H2O2的含量相对于对照组均有较明显的上升趋势，POD和PPO活性也表现出较大水平的提高。

关键词：干旱胁迫,抗逆性，脯氨酸，丙二醛，样品，细胞膜透性，过氧化物酶活性，叶绿素，可溶性糖。

谷胱甘肽；抗氧化酶；H2O2引言：干旱是我国农业可持续发展面临的主要问题之一, 【1】干旱胁迫对植物的影响是一个复杂的生理生化过程，涉及到许多生物大分子和小分子植物细胞膜起调节控制细胞内外物质交换的作用，它的选择透性是其最重要的功能之一。

【2】研究表明，游离的脯氨酸在植物细胞抵抗非生物胁迫过程中扮演着越来越重要的角色，许多新的生理功能也逐渐被发现，近几年来有关脯氨酸的研究倍受科学工作者的关注【9】。

干旱是一种最常见的胁迫，遇此逆境作物除进行气孔调节外，渗透词节也不夹为一种有效方法。

原理是通过加强合成代谢，增加细胞内渗透物质浓度，降低渗透势，维持膨压和细胞正常生理功能。

1.1 供应材料。

小麦种子；主要试剂：0.1% HgCl2，TTC，3%磺基水杨酸（SSA），冰乙酸，茚三酮，PBS(pH=7.8) ，0.6%TBA（用0.6% TCA配制）， PBS (pH=6.8，内含1mMHA)，0.1%Ti(SO4)2[用20%(v/v) H2SO4配制] ，PBS, （pH=5.8,内含0.１mmol/ LEDTA, 1%PVP）， POD反应混合液（10 mmol/L愈创木酚，5 mmol/L H2O 2 ,用PBS溶解），PPO反应混合液（ 20 mmol/L邻苯二酚，用PBS溶解）5%三氯乙酸，PBS (pH=7.7) ，4 mM DTNB (用0.1M pH=6.8PBS现配)。

主要仪器：分光光度仪，离心机，试管，微量加样器，研钵等。

1.21 Pro脯氨酸是水溶性最大的氨基酸，具有很强的水合能力，其水溶液具有很高的水势。

脯氨酸的疏水端可和蛋白质结合，亲水端可与水分子结合，蛋白质可借助脯氨酸束缚更多的水，从而防止渗透胁迫条件下蛋白质的脱水变性。

因此脯氨酸在植物的渗透调节中起重要作用，而且即使在含水量很低的细胞内，脯氨酸溶液仍能提供足够的自由水，以维持正常的生命活动。

正常情况下，植物体内脯氨酸含量并不高，但遭受干旱等胁迫时体内的脯氨酸含量明显增加，它在一定程度上反映植物受环境干旱胁迫的情况，以及植物对水分和盐分胁迫的忍耐及抵抗能力。

1.22 MDA植物器官衰老或在逆境下遭受伤害，往往发生膜脂过氧化作用，丙二醛（MDA）是膜脂过氧化的最终分解产物，从膜上产生的位置释放出后，与蛋白质、核酸起反应修饰其特征；使纤维素分子间的桥键松驰，或抑制蛋白质的合成。

MDA的积累可能对膜和细胞造成一定的伤害，它在一定程度上也反映了植物受环境干旱胁迫的情况。

1.23 抗氧化酶植物体内存在着一套负责清除活性氧所产生的抗氧化系统，在植物正常生长情况下，它使活性氧的产生和清除处于动态平衡状态，在逆境诸如干旱胁迫下，这种平衡被打破。

植物生理学实验报告实验题目：逆境对植物细胞膜透性的影响(电导法)姓名班级学号一、实验原理和目的原理：植物细胞膜对维持细胞的微环境和正常的代谢起着重要的作用。

在正常情况下，细胞膜对物质具有选择透性能力。

如高温或低温，干旱、盐渍、病原菌侵染后，细胞膜遭到破坏，膜透性增大，从而使细胞内的电解质外渗，以致植物细胞浸提液的电导率增大。

膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关，也与植物抗逆性的强弱有关。

比较不同植物或同一植物不同品种在相同胁迫温度下膜透性的增大程度，即可比较植物间或品种间的抗逆性强弱。

用电导仪测定可以比较植物组织中的外渗电解质的含量，从而间接了解细胞透性的大小。

因此，电导法目前已成为植物抗性栽培、育种上快速鉴定植物抗逆性强弱的一个精确而实用的方法。

二、实验器具和步骤植物材料：女贞叶片；实验器具：电导仪；温箱；恒温水浴锅；小烧杯，量筒步骤：1.选取低温(高温）处理的女贞叶片5片，先用纱布拭净，再用打孔器打取20片小圆叶，放入小烧杯中，加入20ml 蒸馏水作为处理组。

2．再用相同的方法打取20片未经处理的小叶放入小烧杯中，加入20ml 蒸馏水作为对照组。

3.将小烧杯放入35℃水浴锅中静置25min，期间用玻棒轻轻搅动叶片，到时间后用，电导仪测定溶液电导率。

4. 测过电导率之后，再放入100℃沸水浴中10min，以杀死植物组织，取出烧杯放入自来水冷却，测其煮沸电导率。

[ 注意事项]1. 整个过程中，叶片接触的用具必须绝对洁净（全部器皿要洗净），也不要用手直接接触叶片，以免污染。

2. 测定后电极要清洗干净。

计算按下式计算相对电导度：相对电导度（L）=（S1-空白电导率）/（S2-空白电导率）S1:煮前的电导率S2:煮后的电导率空白电导率:蒸馏水的电导率相对电导度的大小表示细胞膜受伤害的程度由于室温对照也有少量电解质外渗，故可按下式计算由于低温或高温胁迫而产生的外渗，称为伤害度（或伤害性外渗）。

伤害度（%）=100 1⨯--CKCKtLLL式中L t—处理叶片的相对电导度；L ck—对照叶片的相对电导度四、思考题1.植物在逆境情况下细胞膜的透性会怎样变化？答：在逆境下细胞膜的透性增大。

实验五、植物抗逆性鉴定----外渗电导法实验五、植物抗逆性鉴定----外渗电导法植物生存的环境条件是经常变化的，在植物的一生中，约有90％的时间是处在不利的环境条件下。

寒冷、干旱、高温、盐碱等是常见的自然灾害，随着现代工业的发展，又出现了大气、土壤和水体污染等灾害。

此外，还有病虫侵染和杂草的危害。

这些不良的环境条件统称为逆境，它对植物的生理过程和生长发育可造成各种危害，轻则生长发育不良，重则绝产或死亡。

对于农作物来说，逆境条件是限制产量的重要因素，据Boyer(1982)对美国8种主要农作物的统计，由于病、虫、杂草等生物胁迫造成的减产不过10％，而70％左右的减产是来自气象和土壤因素引起的理化环境胁迫。

因此，研究植物在逆境条件下的生理反应及其忍耐或抵抗能力，采取有效措施提高植物的抗逆性，对于进一步发展农业生产，具有十分重要的意义。

逆境伤害以及植物在逆境条件下的生理反应是多种多样的，近年来人们采用各种方法，进行了广泛的研究，从生态、形态、生理、生化等方面，提出了一些有关植物抗性的鉴定指标和研究方法。

其中一些已在理论研究和生产实践中得到了普遍的承认和广泛的应用。

本实验介绍其中的外渗电导法。

[原理]细胞膜不仅是分隔细胞质和胞外环境的屏障，而且也是细胞与环境发生物质交换的主要通道，又是细胞感受环境变化刺激的部位。

细胞膜的选择透性是其维持生理功能的最重要的条件之一。

各种逆境伤害都会造成质膜选择透性的改变或丧失，例如低温、冰冻、干旱脱水等导致的细胞膜机械损伤以及逆境和衰老过程中的膜脂过氧化作用，都可以增大细胞膜通透性。

因此，细胞质膜透性的测定常作为植物抗性研究中的一个重要生理指标。

当质膜的选择透性因逆境伤害而明显改变或丧失时，细胞内的物质(尤其是电解质)大量外渗，从而引起组织浸泡液的电导率发生变化，通过测定外渗液电导率的变化，就可反映出质膜的伤害程度和所测材料抗逆性的大小。

Dexter (1930)首先用电导法测定了植物的抗冻性，经过不断地改进和完善，目前已得到广泛应用。

逆境对植物细胞膜透性的影响【原理】植物在受到各种逆境(如干旱、低温、高温、盐渍和大气污染等)危害时,细胞膜的结构和功能首先受到伤害,导致膜透性增大。

因此细胞膜透性的变化反映了外部不良环境对植物细胞的伤害程度,同时细胞膜在逆境下的稳定性也反映了植物抗逆性的高低逆境条件下植物细胞的膜系统首先受到伤害,细胞膜透性增大,内容物外渗,若将受伤害的组织浸入去离子水中,其外渗液中电解质的含量比正常组织外渗液中含量增加。

组织受伤害越严重,电解质含量增加越多。

用电导仪测定外渗液电导率的变化,可以反映出质膜受伤害的程度。

【仪器设备】真空泵（3个）、DDS-307型电导仪（2-3台）、恒温水浴（2个）、剪刀15把、试管100支（大小与真空泵管子相配套，管子能放到试管里面，并密封严）、电子天平2台、玻璃棒15根，移液管:10mL，15支、滤纸（3盒）、烘箱1个【试剂】去离子水。

【材料】正常生长的以及经逆境处理的小麦、玉米或其他植物的叶片。

【方法与步骤】1、选取小麦或其他作物一定叶位和叶龄的功能叶片,一份放入水中作为对照，另一份放入40℃烘箱中或其他胁迫条件下使其萎蔫,作为处理。

对照和处理各取3个叶片,用自来水洗去表面灰尘,再用去离子水冲洗一次,用干净纱布擦去水分。

2、将叶片叠起,剪取0.5cm长的片段12个(或用打孔器打取12个叶圆片),放入试管内,然后加入10mL去离子水。

对照和处理均设3个重复，将试管放入真空干燥器内,开动真空泵抽气,以抽出细胞间隙空气。

缓慢放入空气水即渗入细胞间隙,叶片变成半透明状，叶片全部沉入水底（约10min）。

取出试管,间隔2~3min震荡一次,室温下保持30min。

3.外渗液电导率测定:将DDS-307型电导仪电极插入外渗液,测定其电导值(L1)。

测定之后,将试管放入沸水浴中加热3~5min以杀死组织。

待冷至室温后,再次测定外渗液的电导值（L2）4.结果计算(1)以细胞膜相对透性大小表示细胞受害的程度。

实验22 不良环境对植物的伤害
一、目的
了解不良环境对植物伤害的影响，学会不良环境对植物伤害的测定方法。

二、材料用具及仪器药品
玉米或小麦、绿豆幼苗、电导仪、电冰箱、温箱、水浴锅、烧杯、量筒、移液管、试管、镊子
试剂：
称取1g蒽酮溶解于1000ml稀硫酸溶液中即得[稀硫酸溶液由760ml 浓硫酸（d=1.84）稀释成1000ml而成]。

三、原理
植物在遭遇不良环境（如高温、低温等）时，蛋白质结构常受到影响。

细胞膜的半透性丧失，对物质的透性改变，盐类或有机物从细胞中渗出，进入周围环境中，通过电导度的测量和糖的显色反应，可以测知物质的外渗程度，以此来表明植物受害的情况。

四、方法步骤
1．取玉米或小麦种子，用水吸胀，萌发后移到蒙着塑料窗纱的杯上，杯中充以水，让根穿过网孔垂直伸入水中（也可以将种子种植于湿砂中），当根长至2—3cm时，即可用作实验。

2．取出幼苗，尽量不伤害根系，用镊子除去幼苗上残留的胚乳。

用蒸馏水漂洗数次，以除去伤口上的物质，然后以10株为一组，共三组，分别放在盛有20ml蒸馏水的小烧杯中（务必将根系浸入蒸馏水中）。

然后一杯放在45℃温箱中，一杯放在0—1℃冰箱中，另一杯留在室温条件下。

3．经过一定时间后，用电导仪测量每一处理烧杯中溶液的电导度，另外吸取溶液0.5ml 于试管中，加入蒽酮试剂2ml，摇匀于沸水浴中加热15分钟，如果溶液变绿，即表明糖类的存在，另以蒸馏水作同样测定作比较。

4．把结果记录于下表
电导度（
五、实验报告
记录不良环境对植物伤害的结果，并给予分析。

六、思考题
植物在不良的环境下，其电导度和糖的外流会增高吗？为什么？。