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pcr扩增的原理和步骤PCR（聚合酶链反应）是一种常见的分子生物学方法，它可以快速、特异地扩增指定DNA序列，使其生成高精度的结果。
PCR是一种复杂的反应，但它的操作简单易学，变异及优化也相对简单。
由于它在生物学和医学研究中起着重要作用，因此认识其原理和操作让学者受益匪浅。
一、PCR的原理PCR是一种高效的PCR扩增方法，它利用特定的双螺旋DNA序列上的原核聚合酶作为标记，以及特定的模板序列，来实现对DNA 构建的扩增。
这种扩增过程通过重复建立定向复制来实现，该过程是以三个基本步骤为特征：建立、扩增和重组。
建立步骤是通过原核聚合酶（Taq）将双螺旋DNA序列的3‘端与模板序列上的5’端配对的过程。
这个过程被称为primer平衡，它利用模板序列前后的双链DNA，通过配对合成特定序列的核苷酸，从而形成一个新的DNA二聚体。
扩增步骤利用聚合酶的功能，以双螺旋DNA为模板，合成一条短的DNA条带。
在这个过程中，聚合酶将给定的核苷酸与模板序列上的一对核苷酸配对，并将front end在模板序列上已配对的核苷酸复制一次。
这一步骤可以重复多次，从而形成一条由少量核苷酸构成的DNA条带。
重组步骤是扩增过程中最后一步，是DNA双螺旋在高温条件下重新组装的过程。
当DNA双螺旋分裂，重新组装时，其中一个螺旋将配到模板序列上的DNA另一螺旋上，从而形成一对正反对称的DNA。
此外，这一步还会导致重组的DNA序列崭露出来，形成双聚体，并伴随着一些特异性多聚体的形成。
二、PCR的步骤PCR的步骤大体如下：1.样本准备：在实验中，要使用的样本是由某种实验物质（如DNA，RNA等）组成的混合液，因此需要将实验物质分离并准备好。
2.DNA扩增：在DNA扩增步骤中，混合液中的DNA片段将在指定温度下经历几次复制，从而形成大量的高精度的DNA片段。
3.电泳：在电泳步骤中，将DNA片段放入泳管中，然后电压按照指定的条件施加，以分离不同长度的DNA片段。
PCR扩增的原理和操作步骤PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种重要的分子生物学技术，通过扩增DNA片段，能在短时间内从极少量的DNA样本中大量产生目标DNA片段。
PCR的原理和操作步骤如下：PCR原理：PCR是通过逐渐增加的方式在体外复制DNA片段的技术，它包括三个步骤：变性、退火和延伸。
1. 变性（Denaturation）：将含有目标DNA的样本加热至94-96℃，使DNA双链解开，产生两个单链DNA。
2. 退火（Annealing）：将温度降至50-65℃，引入一对寡核苷酸引物/引模，它们在目标DNA的两个末端特异性结合。
引物的设计与目标DNA的序列互补。
其中的一段是在目标DNA序列的正向链上引物，另一段是在反向链上的引物。
3. 延伸（Extension）：将温度升至72℃，引入热稳定的DNA聚合酶，使其延伸引物，生成新的DNA链。
延伸的速度约为300-1000个碱基每分钟。
如此一来，经过一次PCR循环，两条由引物引导的DNA链将被复制一次，重复进行多次PCR循环，DNA量会呈指数增长。
PCR操作步骤：1.DNA模板制备：从细胞中提取DNA，常用方法有裂解法和酶切法。
通过这些方法获得的DNA片段可作为PCR的模板。
2.引物设计：根据所需扩增的DNA序列设计引物。
引物通常由15-30个核苷酸组成，选择引物时要注意避免二聚体形成和引物之间的副产物形成。
3.反应体系设置：将PCR反应液配置至PCR试管或96孔板中，反应体系一般包括PCR缓冲液、dNTPs、模板DNA、引物、Mg2+离子和聚合酶等成分。
4.PCR循环程序：通常包括初步变性程序、循环变性程序和末端延伸程序。
初步变性程序为94-96℃，1-3分钟；循环变性程序为94-96℃，10-30秒；退火温度为50-65℃，20-60秒；延伸温度为72℃，20-60秒，延伸时间根据目标片段的长度确定，每一循环的延伸时间通常为片段长度的1-2秒。
PCR扩增反应的操作第一节PCR扩增反应的基本原理一、聚合酶链式反应（PCR）的基本构成PCR是聚合酶链式反应的简称，指在引物指导下由酶催化的对特定模板（克隆或基因组DNA）的扩增反应，是模拟体内DNA复制过程，在体外特异性扩增DNA片段的一种技术，在分子生物学中有广泛的应用，包括用于DNA作图、DNA测序、分子系统遗传学等。
PCR基本原理: 是以单链DNA为模板，4种dNTP为底物，在模板3’末端有引物存在的情况下，用酶进行互补链的延伸，多次反复的循环能使微量的模板DNA得到极大程度的扩增。
在微量离心管中，加入与待扩增的DNA片段两端已知序列分别互补的两个引物、适量的缓冲液、微量的DNA膜板、四种dNTP溶液、耐热Taq DNA聚合酶、Mg2+等。
反应时先将上述溶液加热，使模板DNA在高温下变性，双链解开为单链状态；然后降低溶液温度，使合成引物在低温下与其靶序列配对，形成部分双链，称为退火；再将温度升至合适温度，在Taq DNA聚合酶的催化下，以dNTP 为原料，引物沿5’→3’方向延伸，形成新的DNA片段，该片段又可作为下一轮反应的模板，如此重复改变温度，由高温变性、低温复性和适温延伸组成一个周期，反复循环，使目的基因得以迅速扩增。
因此PCR循环过程为三部分构成：模板变性、引物退火、热稳定DNA聚合酶在适当温度下催化DNA链延伸合成（见图）。
1．模板DNA的变性模板DNA加热到90~95℃时，双螺旋结构的氢键断裂，双链解开成为单链，称为DNA的变性，以便它与引物结合，为下轮反应作准备。
变性温度与DNA中G-C含量有关，G-C间由三个氢键连接，而A-T间只有两个氢键相连，所以G-C含量较高的模板，其解链温度相对要高些。
故PCR中DNA变性需要的温度和时间与模板DNA的二级结构的复杂性、G-C含量高低等均有关。
对于高G-C含量的模板DNA在实验中需添加一定量二甲基亚砜（DMSO），并且在PCR循环中起始阶段热变性温度可以采用97℃，时间适当延长，即所谓的热启动。
PCR扩增的原理和操作步骤PCR，即聚合酶链式反应（Polymerase Chain Reaction），是一种在分子生物学中广泛应用的技术，用于快速扩增特定的 DNA 片段。
这项技术的发明极大地推动了生物学、医学、遗传学等领域的研究和发展。
PCR 扩增的原理基于 DNA 的半保留复制机制。
简单来说，就是通过模拟细胞内 DNA 复制的过程，在体外实现特定 DNA 片段的大量扩增。
在 PCR 反应中，需要以下几个关键的要素：1、模板 DNA：这是我们想要扩增的目标 DNA 片段。
2、引物：是一小段与模板 DNA 两端特定序列互补的寡核苷酸，它们决定了扩增的起始位置和范围。
3、四种脱氧核苷酸（dNTPs）：分别是 dATP、dTTP、dCTP 和dGTP，作为合成新 DNA 链的原料。
4、 DNA 聚合酶：能够催化新的 DNA 链合成。
5、缓冲液：提供适宜的反应环境，维持 pH 值和离子强度等条件的稳定。
PCR 扩增的过程通常包括三个主要步骤，即变性、退火和延伸，这三个步骤不断循环，使得 DNA 片段得以指数级扩增。
第一步是变性。
将反应体系加热至 94 98℃，使模板 DNA 的双链解开，变成两条单链。
第二步是退火。
降低温度至 50 65℃，引物与模板 DNA 单链上的互补序列结合。
第三步是延伸。
将温度升高到 72℃左右，DNA 聚合酶以引物为起点，按照碱基互补配对原则，将 dNTPs 逐个连接到引物的 3'端，合成新的 DNA 链。
经过一轮这样的循环，一个 DNA 分子变成了两个。
然后再重复这三个步骤，新合成的 DNA 分子又可以作为模板进行扩增，经过多次循环，目标 DNA 片段的数量就会呈指数级增长。
接下来，我们详细了解一下 PCR 操作的具体步骤。
首先是准备阶段。
1、设计引物：根据目标 DNA 片段的序列，使用专业的软件或在线工具设计合适的引物。
引物的长度一般在 18 25 个碱基之间，GC 含量适中，避免形成二级结构等。
pcr扩增的原理和步骤
PCR（聚合酶链反应）是一种用于体外扩增DNA的技术，它能够通过特定的引物和DNA聚合酶实现目标DNA序列的大量复制，使得微量的DNA可以在短时间内得到足够多的复制产物。
PCR的原理可以概括为三个主要步骤：变性、引物结合和延伸。
第一步是变性，即将所需扩增的DNA样本加热至94-98°C，使其双链DNA变为两条单链DNA。
此步骤会破坏氢键，使DNA分子解聚，并暴露出目标序列。
第二步是引物结合，通过在变性的DNA溶液中加入两个特异性的引物。
这两个引物的设计是相互互补的，并且定向分别与目标DNA序列的起始和终止位点结合。
引物与目标序列结合后，温度降低至50-65°C，使引物与带有目标序列的DNA分子发生特异性的酵素结合。
第三步是延伸，即在引物结合的条件下，通过在37-75°C之间的适宜温度下加入DNA聚合酶和适宜的核苷酸三磷酸，使DNA聚合酶从引物的3'末端起始位置开始合成新的DNA链。
在延伸过程中，DNA聚合酶沿着DNA模板链朝着反向方向进行复制，并合成与模板链互补的新链。
以上三个步骤构成了PCR扩增的基本过程，通过不断循环这三个步骤，可以使得目标DNA序列不断复制，并得到大量的
扩增产物。
每个PCR周期将使目标序列的数量成倍增加，因此，经过若干个PCR周期后，可以得到足够多的扩增产物用于后续的分析和应用。
pcr扩增的原理和步骤PCR扩增的原理和步骤。
PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种分子生物学技术，用于扩增DNA片段，是现代生物学研究中不可或缺的重要工具。
PCR 扩增技术的原理和步骤对于理解和应用PCR技术具有重要意义。
本文将详细介绍PCR扩增的原理和步骤，帮助读者更好地理解和掌握这一技术。
一、PCR扩增的原理。
PCR扩增的原理基于DNA的复制和酶的作用。
PCR反应体系包括DNA模板、引物（primer）、四种dNTPs（dATP、dCTP、dGTP、dTTP）、DNA聚合酶和缓冲液。
PCR反应通过热循环的方式，使DNA 模板在不断变化的温度条件下进行DNA链的解旋、引物的结合和DNA聚合酶的合成，最终实现目标DNA片段的扩增。
二、PCR扩增的步骤。
1. 反应体系的准备。
将DNA模板、引物、dNTPs、DNA聚合酶和缓冲液按照一定比例混合，得到PCR反应体系。
反应体系中的DNA模板可以是基因组DNA、cDNA或其它DNA样本，引物是用于引导DNA聚合酶合成DNA链的短寡核苷酸序列。
2. Denaturation（变性）。
将PCR反应体系加热至94-98°C，使DNA双链解旋成两条单链。
3. Annealing（退火）。
将反应体系降温至50-65°C，使引物与目标DNA序列互补结合，形成引物-模板复合体。
4. Extension（延伸）。
将反应体系温度升至72°C，DNA聚合酶在引物的引导下合成新的DNA链，延伸至整个DNA模板。
5. 循环扩增。
通过以上三个步骤的循环，每个循环使目标DNA片段的数量翻倍，扩增出大量目标DNA片段。
三、PCR扩增的应用。
PCR扩增技术在生命科学研究、医学诊断、法医学鉴定、种群遗传学等领域有着广泛的应用。
例如，在基因克隆、基因突变分析、病原体检测、DNA指纹鉴定等方面发挥着重要作用。
总结，PCR扩增技术通过热循环反应，实现对DNA片段的快速扩增。
简述PCR扩增的原理和步骤一、背景简介PCR（Polymerase Chain Reaction）即聚合酶连锁反应，是一种在分子生物学中广泛应用的技术，其原理是通过循环性的DNA复制过程，在体外大量扩增特定DNA片段。
PCR扩增技术的发展极大地推动了基因工程、医学诊断和遗传学研究等领域的进展。
二、PCR扩增的原理PCR扩增的原理是通过特定的酶和引物使靶DNA序列在体外进行酶催化反应，从而实现目标DNA的扩增。
主要涉及以下三个步骤：变性、退火和扩增。
•变性（Denaturation）：将待扩增的DNA样本加热至94-98摄氏度，使DNA双链解开成两条单链。
这个步骤中，高温会导致DNA的氢键断裂，使双链DNA解旋成单链DNA。
•退火（Annealing）：将温度降低至50-65摄氏度，使两条单链DNA的引物与靶DNA序列互相结合。
引物是特异性碱基序列，与待扩增的DNA序列的两端互补配对。
•扩增（Extension）：将温度升高至72摄氏度，引入热稳定性DNA聚合酶。
该酶会沿着引物朝着3’方向合成新的DNA链。
此步骤中，引物会向前、向后识别并结合到两条单链DNA的特异DNA酶切位点，然后在这些位置上进行DNA链合成。
这样，每个循环会产生两个新的DNA分子。
三、PCR扩增的步骤1.样本处理：从待扩增的样本中提取出DNA，并进行纯化。
这一步骤是为了去除样本中的RNA、蛋白质等物质，以保证反应的准确性和特异性。
2.引物设计：根据目标DNA的序列，设计引物。
引物通常由20-30个核苷酸组成，需要具有与目标DNA序列的两端互补的碱基序列。
3.PCR反应：在PCR反应管中加入待扩增的DNA样本、引物、核苷酸和DNA聚合酶等反应物，并按照特定的温度和时间进行反应。
一般情况下，PCR反应包括变性、退火和扩增三个步骤，其循环次数取决于所需扩增的DNA的数量。
4.扩增产物检测：通过凝胶电泳或其他相关技术，检测PCR扩增产物的大小和纯度。
pcr扩增的原理和步骤PCR扩增的原理和步骤。
PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种重要的分子生物学技术，它可以在体外迅速复制DNA片段，使之成倍增加。
PCR技术的发明为分子生物学、医学诊断和法医学等领域的研究提供了重要工具。
本文将介绍PCR扩增的原理和步骤。
一、PCR扩增的原理。
PCR扩增的原理是通过DNA聚合酶酶的作用，将DNA片段在体外进行反复的复制，从而实现DNA的倍增。
PCR扩增主要包括三个步骤，变性、退火和延伸。
1. 变性。
PCR反应开始时，将待扩增的DNA双链解旋成两条单链。
这一步需要高温（通常为94-98摄氏度）来打开DNA双链，使之变性成两条单链。
2. 退火。
在变性后，降温使引物与目标DNA序列结合。
引物是一小段与待扩增DNA序列互补的寡聚核苷酸链，它们分别结合到目标DNA序列的两端。
这一步通常在50-65摄氏度进行。
3. 延伸。
在退火后，DNA聚合酶开始在引物的引导下合成新的DNA链。
它从引物的3'端开始合成DNA链，向引物的5'端延伸。
这一步需要适当的温度（通常为72摄氏度）和四种脱氧核苷酸（dNTPs）。
通过不断重复这三个步骤，可以在较短的时间内获得数以百万计的DNA片段。
二、PCR扩增的步骤。
PCR扩增的具体步骤如下：1. 反应体系的准备。
首先需要准备PCR反应体系，包括目标DNA模板、引物、DNA聚合酶、dNTPs、缓冲液和辅助物质。
将这些成分按照一定比例混合均匀，制备PCR反应液。
2. 变性。
将PCR反应液放入PCR仪中，进行变性步骤。
一般情况下，变性温度为94-98摄氏度，时间约为1-3分钟。
3. 退火。
变性后，将温度降至50-65摄氏度，使引物与目标DNA序列结合。
这一步通常持续30秒至1分钟。
4. 延伸。
在退火后，将温度升至72摄氏度，开始DNA聚合酶的延伸作用。
延伸时间的长短取决于所扩增DNA片段的长度，通常为1-2分钟。
PCR扩增的原理及过程PCR（Polymerase Chain Reaction）是一种可以在体外大量扩增特定DNA片段的技术，它用于基因分析、疾病检测、犯罪侦查等许多领域。
PCR技术的出现使得科学家能够快速高效地获得足够多的DNA样本，有助于深入研究DNA的结构和功能。
PCR的原理是依赖于DNA的复制过程，它分为三个主要步骤：变性、引物结合和延伸。
1.变性：PCR开始时，DNA样本中的双链DNA要被变性处理，即加热到94-98°C，使其脱离双链，成为单链。
这个步骤的目的是将DNA解开，使模板链可以用于DNA复制。
2.引物结合：引物是PCR反应中另外两条引导单链DNA复制的小片段，它与目标DNA序列的两端互补。
变性之后，引物将结合到目标DNA序列的两端，形成双链DNA的片段，其中引物与目标序列的连接部分即为PCR扩增后所需的目标序列。
引物的设计是PCR反应成功的关键，它的选择要确保能够特异性地与目标序列结合。
3.延伸：引物结合后，需要一个DNA聚合酶来延伸引物，合成一条新的DNA链。
延伸步骤通常在50-72°C的温度下进行。
在此温度下，延伸反应的条件适合DNA聚合酶的活性，而不会使DNA链断裂。
DNA聚合酶会从引物的3'端开始向5'方向进行复制，延伸出一个新的DNA链。
此过程需要不断重复，才能得到足够多的目标DNA序列。
这三个步骤完成后，PCR循环可以进行，即将温度逐渐变化以重复上述步骤。
典型的PCR循环包括：变性（94-98°C）1分钟，引物结合（55-65°C）1分钟，延伸（72°C）1分钟。
每一个PCR循环会在前一轮的基础上增加一倍的目标DNA序列，所以经过多个循环后，目标DNA序列的数量就会成指数级增长。
整个PCR过程将在一个特殊的PCR反应管里进行。
该管通常包含目标DNA样本、引物、DNA聚合酶、dNTPs（正常细胞中存在的4种单个核苷酸构建单元）和一些缓冲剂。
PCR 扩增的原理和步骤聚合酶链反应(polymerasechain reaction PCR)技术是20世纪80年代中期发展起来的一项基因检测即一种体外核酸扩增技术。
它具有许多优点：特异性、易重复、高效性等，可以在几个小时完成过去几天或者更长时间完成的实验，因此这项技术在生物医学领域具有划时代的意义。
但是，传统PCR技术有它的缺点，它通过电泳对扩增反应的最终产物进行定性分析而不能对起始模板准确定量，同时也无法对扩增反应实时检测且在实验过程中易污染而出现假阳性。
人们为了寻找更为灵敏、快速、简便、高特异性的方法进行了许多探索研究，直到1996 年由美国Applied Biosystems公司推出了一种新的定量试验技术—荧光定量PCR(F lurogenic Quantitative Polymerase Chain Reaction，FQ-PCR；real-time quantitati ve PCR,RT-qPCR or qPCR)，它是通过荧光染料或荧光标记的特异性探针，标记跟踪PCR产物进行实时监测反应，利用与之相适应的软件对产物进行分析，计算待测样品模板的初始浓度，实现了PCR 从定性到定量质的跨越，具有里程碑意义。
目前，此项技术已应用于干细胞研究、肿瘤学和遗传疾病研究、病原体检测和传染病研究、药物分析、药物基因组学、植物学研究和农业生物科技等多领域研究中。
本文对实时荧光定量PCR 的原理、分类和应用进行阐述。
一、实时荧光定量PCR技术的原理real-time quantitative PCR 技术是指在 PCR 反应体系中加入荧光基团，通过荧光信号不断累积而实现实时监测PCR全程，然后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
在荧光定量PCR技术中有2个概念比较重要。
(1)荧光域值(t hreshold)的设定： PCR 反应的前 15 个循环的荧光信号作为荧光本底信号，荧光域值的缺省设置是3～15 个循环的荧光信号标准偏差的10 倍。
(2)Ct 值：C 代表Cycle，t 代表 threshold，Ct 值的含义是每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数。
在实时荧光定量PCR中，对全程PCR扩增过程进行实时检测，根据反应时间和荧光信号的变化可以绘制成一条曲线。
一般来说，整条曲线可以分3个阶段：荧光背景信号阶段、荧光信号指数扩增阶段和平台期。
在荧光背景信号阶段，扩增的荧光信号与背景无法区分，无法判断产物量的变化。
在平台期，扩增产物已不再呈指数级的增加，所以反应终产物量与起始模板量之间已经不存在线性关系，通过反应终产物也算不出起始DNA 拷贝数。
只有在荧光产生进入指数期，PCR产物量的对数值与起始模板量之间存在线性关系，所以在P CR 反应处于指数期的某一点上来检测 PCR 产物的量，由此来推断模板最初的含- 1 -量而进行定量分析。
研究表明，每个模板的Ct 值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系，起始拷贝数越多，Ct 值越小。
通过已知起始拷贝数的标准品可得到标准曲线，只要获得未知样品的Ct 值，即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。
二、实时荧光定量PCR技术荧光化学分类和定量方法1.实时荧光定量 PCR 常用的荧光化学分类实时荧光定量常用的荧光化学分类有SYBR Green I法和Tag Man探针法。
SYBR Green I 是一种具有绿色激发波长的染料，最大吸收波长约为497 nm，发射波长最大约为520 nm，可以和所有的dsDNA双螺旋小沟区域结合。
因为在游离状态下SYBR Green I发出的荧光较弱，但是当它与双链DNA结合后，荧光就会大大增强，而且荧光信号的增加与PCR 产物的增加完全同步。
此法的优点是它可以监测任何dsDNA序列的扩增，检测方法较为简单，成本较低，但也正是由于荧光染料能和任何dsDNA结合，如非特异性扩增产物和引物二聚体也能与染料结合而产生荧光信号，使实验产生假阳性结果，因此其特异性不如探针法[6]。
因为非特异性产物和引物二聚体的变性温度要比目标产物的低，所以可以在熔解曲线(melting curve)反应过程中利用软件分析仪器收集到信号进行鉴别。
TaqMan 探针法是具有高度特异性的定量 PCR 技术。
它的工作原理是在 PC R 反应体系中存在一对 PCR 引物和一条探针，探针的 5′端标记有报告基团， 3′端标记有荧光淬灭基团，探针只与模板特异结合，其结合位点在两条引物之间。
当探针完整的时候，报告基团的荧光能量被淬灭基团吸收，所以仪器搜集不到信号，随着反应的进展，Taq酶遇到探针，利用3′→外5′切核酸酶的活性把探针切断，导致报告基团的荧光能量不能被淬灭基团吸收，产生了荧光信号，因此信号的强度就代表了模板DNA的拷贝数。
2.实时荧光定量 PCR 技术定量方法在实时荧光定量PCR中模板定量有两种：绝对定量和相对定量。
绝对定量指的是用已知的标准曲线来推算未知的样本的量。
绝对定量的标准样品一般是指含有和待测样品相同扩增片段的克隆质粒、含有和待测样品相同扩增片段的cD NA ，PCR 的产物，把它们分别稀释为不同的浓度作为模板进行反应。
横坐标为标准品拷贝数的对数值，纵坐标为得到的CT值，可做出标准曲线，根据未知样本的CT值，可在标准曲线中得到样本的拷贝数进而对未知样本进行定量。
相对定量是在一定样本中靶序列相对于另一参照样本的量的变化，也就是比较经过处- 2 -理的样本和未经处理的样本之间的相对基因表达差异。
常用方法有标准曲线法和2－△△CT 法，后者是分析基因表达相对变化的一种简便方法。
三、实时荧光定量PCR技术的应用实时荧光定量PCR具有灵敏度高、特异性高和精确性高的优点，此项技术已被应用于分子生物学、医学、食品检测和环境监测等多个领域。
1.在分子生物学领域的研究应用（1）定量核酸浓度传统方法是用琼脂糖凝胶电泳或者分光光度计测定核酸浓度，其结果不准确而且易污染，实时荧光定量PCR 可以解决这些问题，它准确性、灵敏度高且无污染，对一些传染性疾病进行定量分析、病原微生物和病毒含量检测，此项技术都是首选。
（2）研究基因表达应用实时定量PCR技术可以对基因时间、空间表达水平差异进行比较。
例如，对特定基因用物理、化学、药物等不同方法处理后的差异进行比较，为人们的科学研究提供依据。
（3）用于单核苷酸多态性(SNP)检测分析人们对疾病的易感性和对同一种药物治疗同一种疾病的效果是有差异性的，遗传物质DNA的多态性RELP，STR，ABO血型和SNP是个体差异的遗传基础。
SNP 在人类基因组中广泛存在，是人类可遗传变异中最常见的一种，在遗传性疾病的研究中具有重要意义。
（4）DNA甲基化检测DNA 甲基化是表观遗传学重要的标记信息，通过实时荧光定量PCR 技术获得基因组甲基化水平数据对表观遗传学的时空特异性研究具有重要意义。
2.在医学领域的研究应用（1）用于病原体检测常规PCR不能定量，在操作中易污染导致出现假阳性结果，应用实时荧光定量PCR技术可以解决这些问题。
目前，此项技术已应用于检测丙肝病毒、宫颈癌及其癌前病变有关的人类乳头瘤病毒、抗结核药物治疗后定量检测病人痰样本病原体DNA含量，为疾病的诊断和治疗提供依据。
用此项技术还可以一次性检测大量大肠杆菌样本，简便准确，是食品检测方面的一个突破。
- 3 -（2）肿瘤基因检测肿瘤发生机制非常复杂，发病机理尚未清楚，随着基因分子水平研究不断发展，肿瘤基因发生突变等遗传学改变是致癌性发生的根本原因已被广泛接受。
癌基因表达异常和突变在多种肿瘤早期和良性阶段就已出现，通过实时荧光定量P CR 检测可检测到基因突变，准确测定其表达量，为肿瘤早发现、早诊断、早治疗及疗效和预后的判断提供依据。
（3）用于药物选择和疗效判断化疗过程中主要问题是病人对化疗药物的耐药，检测肿瘤耐药基因的表达水平是选择化疗药物的依据。
检测微小残留病变的变化情况对于调整治疗策略和对病人进行个体化治疗非常重要。
（4）用于优生优育诊断唐氏综合征是由染色体异常所导致的，在产前通过实时荧光定量PCR 技术做染色体核型分析，可以最大限度地防止患儿的出生，是防止此病的有效措施。
此项技术还可以对孕产妇进行叶酸利用能力检测，为孕产妇提供叶酸补充具有指导意义。
此项技术对于降低严重缺陷儿出生率、提高人口素质起到了积极的推动作用。
3.在食品检测方面的应用食品安全是与人民群众生活息息相关的问题。
食品在生产、储藏、运输、销售等一系列过程中不可避免地存在受到微生物污染的可能性，检测食品中的致病菌至关重要。
例如，对2007～2008年上半年丽水地区的生畜肉、熟肉、蔬菜等172 份样本进行7个微生物项目的检测，沙门菌的检出率最高，生畜肉中的微生物污染最为严重，可以有效地提醒人们要对沙门菌污染高度重视，进而采取预防措施防控食源性疾病的发生。
4.在环境监测方面的应用实时荧光定量PCR技术已经被国内外应用在环境监测中，提高了监测水平。
此项技术可以检测河流中环境微生物随着季节变化的情况。
还可以用来对地表水和饮用水中致病菌进行检测以便及时预告地表水污染情况以及采取相应有效措施避免大范围污染。
水体中即使有少量沙门氏菌污染也会危害健康，此项技术可以帮助人们找到其污染源，便于及时安排沙门氏菌接种。
应用此技术，以炭疽芽孢杆菌特异的pagA，rpoB2cap引物探针检测比较4 种被炭疽疫苗株污染的土壤- 4 -中炭疽的量，检测出底限为 2.5万拷贝/g土壤(pagA)，这样可以直接从环境样品中检测炭疽菌，对炭疽防治具有重要意义。
四、结语实时荧光定量PCR技术自问世以来，由于具有定量准确、快速、特异性强、灵敏度高、操作简便等优点而受到人们的青睐。
广泛应用于基础研究、医学诊断、食品检测和环境监测等领域，应用价值很高，解决了许多难题，产生了许多社会效益和经济效益。
随着科学技术的不断进步，此项技术将得到更进一步的发展和完善，也必将存在更加广阔的应用空间。
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