酵母膜蛋白提取方法

1分离组织膜蛋白的方法：1、取组织，加入10ml Buffer A 于冰上充分匀浆。

2、J6-HC离心机800rpm，4℃离心10min后，所得上清液转入超速离心管。

3、100000g，4℃离心1hr。

弃去上清，沉淀用适量的Buffer B重悬，冰上孵育2hr后分装至EP管，Eppendorf台式离心机10000rpm，4℃离心30min。

4、收集所得上清液即为膜组份。

Buffer A：0.32M 蔗糖，5mM Tris-HCl（PH 7.5），120mM KCl，1mM EDTA,1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。

冰上预冷。

Buffer B：20mM HEPES（PH 7.5），10%甘油，2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。

冰上预冷。

2取约0.1g肝组织，加入2ml粉碎缓冲液，冰浴中超声粉碎，每次20秒，间隔30秒，共3次，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞浆蛋白，沉淀部分加入1ml胞膜蛋白提取液，超声粉碎，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞膜蛋白。

样品蛋白含量测定采用酚试剂法。

3我们实验室提取膜蛋白的方法如下：1．将细胞种于T75 或T175的培养瓶中培养数天，细胞铺满瓶底后，吸去培养液。

将PBS/EDTA 溶液(NaCl:0.1M,NaH2PO4:0.01M,EDTA:0.04%)加入量以覆盖细胞为止，置于培养箱或在超净台内消化3～5分钟，如仍未脱落瓶底，用吸管吹打，使细胞完全脱落。

2．收集细胞悬液于10毫升或50毫升的离心管中，1000rpm离心10分钟，去上清液。

提取膜蛋白的方法提取膜蛋白是一项关键的实验步骤，用于研究膜蛋白的结构和功能。

本文将介绍几种常用的膜蛋白提取方法。

1. 浸泡法浸泡法是一种简单的膜蛋白提取方法。

将细胞或组织样品置于适当的缓冲液中，如磷酸盐缓冲液或生理盐水中，并加入一些溶解剂（如阴离子洗涤剂）以破坏膜结构。

浸泡一段时间后，离心以分离出溶液中的膜蛋白。

2. 磷脂双层溶液法磷脂双层溶液法利用磷脂双层膜的特性来提取膜蛋白。

首先，将细胞或组织样品放入含有磷脂双层的液体中。

磷脂双层膜与细胞膜相似，可吸附并保持膜蛋白的结构和功能。

然后，用洗涤液洗涤磷脂双层，使膜蛋白释放到洗涤液中。

3. 超声法超声法是一种物理方法，通过超声波的能量来提取膜蛋白。

将细胞或组织样品置于含有缓冲液的管中，并使用超声波处理。

超声波的能量可以破坏细胞膜结构，使膜蛋白溶解到缓冲液中。

然后，对溶液进行离心，将膜蛋白分离出来。

4. 酸碱提取法酸碱提取法利用pH的变化来提取膜蛋白。

首先，将细胞或组织样品放入酸性或碱性溶液中，并搅拌。

酸性或碱性环境可以破坏细胞膜结构，使膜蛋白溶解到溶液中。

然后，通过调整pH值，使膜蛋白沉淀，进一步提纯。

5. 亲水基质法亲水基质法是一种通过亲水基质与疏水膜蛋白的选择性结合来提取膜蛋白的方法。

细胞或组织样品与亲水基质接触，亲水基质与细胞膜的亲水区域结合，使膜蛋白释放到溶液中。

然后，通过离心和洗涤步骤来分离和纯化膜蛋白。

这些方法在膜蛋白的研究中应用广泛，但根据具体的实验目的和样品特性，可以选择适合的方法进行膜蛋白提取。

实验中还应注意选择合适的缓冲液、溶液浓度和温度，并结合离心、洗涤等步骤进行蛋白的纯化和分离。

此外，需要根据实验目的选择合适的检测方法，如SDS-PAGE、Western blot等来确定提取的膜蛋白的质量和纯度。

总之，膜蛋白提取是膜生物学研究的重要一环，不同方法适用于不同的样品和实验要求。

正确选择和操作提取方法可以高效地提取膜蛋白，并为后续研究提供可靠的样品。

一、实验目的1. 学习酵母蛋白的提取方法。

2. 掌握蛋白质的检测方法。

3. 了解酵母蛋白的生理活性。

二、实验原理酵母蛋白是一种重要的微生物蛋白，具有丰富的氨基酸组成和生理活性。

本实验采用酸法提取酵母蛋白，通过检测蛋白质含量和生理活性，验证提取方法的可行性。

三、实验材料与试剂1. 实验材料：新鲜酵母菌（酿酒酵母）。

2. 试剂：盐酸、硫酸铵、NaOH、BCA蛋白定量试剂盒、生理盐水、生理盐酸盐缓冲液等。

四、实验步骤1. 酵母蛋白提取（1）将新鲜酵母菌接种于YPD培养基中，30℃培养24h。

（2）收集培养液，用无菌生理盐水洗涤酵母细胞3次。

（3）将洗涤后的酵母细胞用无菌生理盐水悬浮，加入适量盐酸（pH 4.5）。

（4）在冰浴条件下，用高速匀浆机将酵母细胞匀浆。

（5）将匀浆液离心（8000r/min，10min），取上清液即为酵母蛋白提取液。

2. 蛋白质含量检测（1）取适量酵母蛋白提取液，按照BCA蛋白定量试剂盒说明书进行操作。

（2）根据标准曲线计算蛋白质含量。

3. 生理活性检测（1）取适量酵母蛋白提取液，按照生理活性检测方法进行操作。

（2）根据检测结果，分析酵母蛋白的生理活性。

五、实验结果与分析1. 蛋白质含量检测结果通过BCA蛋白定量试剂盒检测，酵母蛋白提取液中的蛋白质含量为2.0mg/mL。

2. 生理活性检测结果通过生理活性检测，酵母蛋白提取液具有一定的生理活性。

六、实验结论本实验采用酸法提取酵母蛋白，通过检测蛋白质含量和生理活性，验证了提取方法的可行性。

酵母蛋白提取液具有较高的蛋白质含量和一定的生理活性，为后续研究提供了实验基础。

酵母蛋白质的制备实验报告实验报告：酵母蛋白质的制备实验一、实验目的1. 学习酵母的培养和繁殖方法；2. 掌握酵母蛋白质的提取和制备方法。

二、实验原理1. 酵母培养和繁殖：酵母是一种微生物，可以在富含营养物质的培养基上进行培养和繁殖。

培养基中通常含有碳源、氮源、矿物质等营养物质，同时还需提供适当的温度和湿度条件，以促进酵母的生长和繁殖。

2. 酵母蛋白质的提取和制备：在酵母细胞中，蛋白质是一种重要的生物大分子，具有多种生物学功能。

为了提取和制备酵母蛋白质，可以采用细胞破碎、离心、过滤等方法将细胞壁和细胞膜去除，得到纯净的蛋白质溶液。

三、实验步骤1. 酵母培养和繁殖：(1) 准备含有适当营养物质的酵母培养基；(2) 在培养基中接种适量的酵母菌种；(3) 恒温振荡培养，促进酵母的生长和繁殖；(4) 按照一定时间间隔观察酵母细胞数量的增加情况，确定适宜的培养时间。

2. 酵母蛋白质的提取和制备：(1) 收集足够数量的酵母细胞；(2) 将酵母细胞经过离心分离，去除培养基；(3) 使用细胞破碎法将细胞壁和细胞膜破碎，破碎液中含有蛋白质；(4) 经过离心和过滤等步骤，去除残留的细胞碎片和杂质；(5) 得到纯净的酵母蛋白质溶液。

四、实验结果与分析1. 酵母培养和繁殖结果：(1) 观察到酵母细胞在培养基中生长并繁殖；(2) 根据酵母细胞数量的增加情况，确定适宜的培养时间。

2. 酵母蛋白质的提取和制备结果：(1) 成功从酵母细胞中提取到酵母蛋白质溶液；(2) 通过对酵母蛋白质溶液进行离心和过滤，去除了细胞碎片和杂质，得到较纯净的蛋白质溶液。

五、实验总结通过本次实验，我们学习了酵母的培养和繁殖方法，并成功提取了酵母蛋白质。

实验过程中，我们掌握了培养基的制备和培养条件的控制方法，同时也学会了蛋白质的提取和制备技术。

总体而言，本次实验为我们深入理解酵母蛋白质的结构和功能提供了基础，并为今后的研究工作提供了参考。

酵母菌表面展示操作步骤之表达蛋白提取表达蛋白提取是酵母菌表面展示操作步骤中的重要一环。

表达蛋白提取是将目标蛋白从酵母菌的细胞外提取出来的过程。

在酵母表面展示系统中，目标蛋白可以通过连接到细胞壁上的表面结构进行展示。

因此，提取蛋白的步骤对于进一步研究目标蛋白的功能以及应用具有重要意义。

下面是酵母菌表面展示操作步骤中的表达蛋白提取的具体步骤：1. 培养酿酒酵母菌：选择适当的培养基，将酿酒酵母菌预培养至对数生长期，以提高目标蛋白表达的效率。

2. 预处理酵母细胞：将预培养的酵母细胞进行离心，去除培养基，并洗涤酵母细胞以除去杂质。

3. 蛋白提取：使用适当的蛋白提取缓冲液，将洗涤后的酵母细胞破裂。

常用的方法包括机械破碎、超声波破碎和冻融法等。

这些方法都可以有效破裂酵母细胞，释放目标蛋白。

4. 蛋白沉淀：将破裂后的酵母细胞制备为细胞裂解液，通过高速离心将细胞碎片等杂质沉淀下来，得到含有目标蛋白的上清液。

5. 蛋白纯化：使用适当的蛋白纯化方法对上清液中的目标蛋白进行纯化。

常用的方法有亲和层析、离子交换层析、凝胶过滤和凝胶电泳等。

根据目标蛋白的特点和需求选择合适的纯化方法。

6. 蛋白测定：在提取和纯化蛋白的过程中，使用蛋白浓度测定方法确定目标蛋白的含量。

这有助于调整浓度，控制实验的稀释和标准化。

7. 蛋白检测：利用SDS-PAGE、Western blot等方法检测提取和纯化的目标蛋白。

这些方法可以确定目标蛋白是否存在、纯度以及目标蛋白表达的效果。

通过以上的操作步骤，可以有效地提取酿酒酵母表面展示系统中的目标蛋白。

提取的蛋白可以用于进一步研究目标蛋白的功能、结构以及应用等。

同时，对于蛋白质工程、制备抗体和药物研发等方面也具有重要意义。

需要注意的是，每个步骤中的实验条件和操作方法会因具体实验的目的、研究对象和设备条件等而略有差异。

在进行任何实验前，请确保了解实验的具体步骤和操作要求，并遵循相关的实验安全规范。

此外，合理记录实验过程和结果，以便后续数据分析和文献整理。

酵母蛋白提取试剂酵母蛋白提取试剂是一个可以从酵母细胞中提取蛋白质的试剂。

酵母蛋白提取试剂包括几个组分，包括缓冲液、还原剂、表面活性剂和蛋白酶抑制剂。

这些组分协同作用，可有效地提取酵母细胞中的蛋白质，用于鉴定、分析和研究酵母蛋白。

1. 缓冲液：缓冲液提供恰当的 pH 值，帮助蛋白质稳定，并防止蛋白质的降解和失活。

缓冲液也有助于酵母膜的溶解。

2. 还原剂：还原剂帮助去除酵母细胞中的还原剂，使蛋白质结构更加开放，更容易与其他分子相互作用。

3. 表面活性剂：表面活性剂增加膜上张力，有助于溶解酵母细胞膜，并使蛋白质更容易进入溶液。

4. 蛋白质酶抑制剂：当酵母细胞破裂时，内源性蛋白酶会降解蛋白质。

蛋白酶抑制剂可以防止蛋白酶的活性，保护蛋白质。

1. 称取酵母菌落（大约10-20毫克）。

2. 加入酵母蛋白提取试剂，混匀，并放入70℃水浴中加热10分钟。

3. 冷却至室温，随后进行机械打碎，如用超声波进行打碎，取10秒打碎，之后静置15秒，重复上述操作6-9次。

4. 超声波打碎后，应将细胞碎片离心，以去除细胞碎片和细胞壁碎片。

5. 快速转移清亮的上清液到一个新的离心管中。

6. 风干或用沸水浴进行浓缩（加热的时间应小于5分钟），以浓缩蛋白质。

1. 操作简便，可快速提取酵母蛋白质。

2. 组成的各种成分，有助于保护蛋白质的稳定性。

3. 可用于纯化多种酵母蛋白，并可使蛋白质进入溶液。

4. 成分与其他酵母蛋白质提取方案相比，价格便宜。

总之，酵母蛋白提取试剂是酵母生物学研究中必不可少的试剂，提取酵母细胞中的蛋白质是酵母生物学研究和其他生物学研究的基础。

酵母菌表面展示操作步骤准备工作酵母菌表面展示是一种常见的生物技术方法，在生物学研究、药物开发和工业生产等领域具有广泛应用。

本文将为您介绍酵母菌表面展示的操作步骤准备工作。

1. 提取酵母菌膜蛋白首先，需要从酵母菌中提取表面展示所需的膜蛋白。

一般来说，可以选择常见的酵母菌株，例如酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)或者普通酵母菌实现展示目标蛋白或多肽。

首先，培养酵母菌至对数生长期，并使用适当的方法（如温度变化、离心等）收集细胞。

接着，通过膜蛋白溶解、离心、洗涤等步骤，提取酵母菌中的膜蛋白。

2. 构建表达载体为了实现酵母菌表面展示目标蛋白或多肽，需要构建相应的表达载体。

一般而言，表达载体需要包括浓缩表达、膜蛋白定向、融合表达等元件。

首先，选择合适的质粒载体，并进行酵母菌可复制的序列扩增，这可以确保表达载体在酵母菌中稳定复制。

接着，引入表达目标蛋白的DNA序列，并选择适当的启动子、转录终止子和选择性标记基因等构建一个完整的表达载体。

3. 转化酵母菌为了将构建好的表达载体导入酵母菌中，需要进行转化实验。

首先，将构建好的表达载体导入酵母菌细胞中，这可以通过激素介导、电穿孔或者化学共沉淀等方法实现。

接着，选择适当的培养基和培养条件培养转化的酵母菌，使其在培养基中稳定生长。

4. 筛选与验证转化后，为了确认酵母菌表面是否成功展示目标蛋白或多肽，需要进行筛选和验证工作。

可以利用荧光染料、抗体标记或者流式细胞术等方式对重组蛋白进行检测。

同时，也需要进行筛选实验，如抗性筛选、功能筛选等，来验证重组蛋白的酵母表面展示效果。

5. 扩大培养和纯化如果酵母菌表面展示效果满足要求，可以选择将其进行扩大培养。

根据需要，可以选择适当的培养条件，如温度、培养基成分和培养时间等优化培养过程。

此外，为了纯化重组蛋白，可以采用离心、过滤、亲和层析、凝胶过滤等技术手段。

总结酵母菌表面展示是一种重要的生物技术方法，可以广泛应用于生物学研究和工业生产中。

膜蛋白抽提[5篇模版]第一篇：膜蛋白抽提二、蛋白抽提谈及蛋白分离，我们想到：超速离心，盐析法、超滤法、凝胶过滤法、等电点沉淀法、离子交换层析、亲和层析、吸附层析、逆流分溶、酶解法……有时这些方法常常组合到一起对特定的物质进行分离纯化。

由于蛋白质种类繁多，不同的蛋白质由于结构和组成的差异，其溶解度也各不相同.根据蛋白质的溶解特性，同时可选择不同的溶剂提取，分为水溶液提取和有机溶剂提取.但是针对膜蛋白的提取与细胞质蛋白，核蛋白提取不同之处在于它是嵌在膜中的，水溶性不好，基本方法就是用不同的离心速度去掉胞质蛋白等，最后用去污剂把蛋白从膜中释放出来。

膜蛋白分离纯化的重要步骤是选择适当的增溶用表面活性剂，一般常用的有胆酸盐，CHAPS(一种离子去污剂），Emulgen和Lubrol等表面活性剂。

1、分离膜蛋白的方法（原则性）：4)顺序抽提法：根据细胞蛋白溶解性的差异，用具有不同溶解能力的蛋白溶解液进行抽提的方法。

用Tris碱溶液裂解细胞提取高溶解性蛋白；把未溶解的pellet用标准液溶解提取高疏水性蛋白；最后用含复合表面活性剂的蛋白溶解液，最后可以再次抽提前两次抽提后不能溶解的膜蛋白。

5)centrifugal protein extraction原理：高渗的蛋白裂解液让细胞溶涨破裂后，超高速离心评价：尽管分级(胞浆和胞膜)之间有清洗的步骤,但是可溶蛋白组分和膜蛋白组分之间仍然有不少重复的点.该方法相较MOLLOY MP教授在1998年electrophoresis上发表的分级抽提法减去了第一步(用tris抽提水溶性蛋白)和最后一步(极难溶蛋白),在操作上也作了简化,总而言之是一种不错的方法。

（codegreen）6)detergent-based：提取时先裂解液裂胞膜（选用不同的去污试剂是关键），梯度离心分离细胞器(ER)，然后分级抽提方法。

例如，去掉细胞器之后的DEBRIS就是核膜，再裂解得到核膜蛋白。

膜蛋白的提取方法
膜蛋白的提取方法通常包括以下几个步骤：
1. 细胞裂解：将包含膜蛋白的细胞或组织用不同的方式进行裂解，例如超声波处理、酸碱处理、高压处理等。

2. 膜蛋白分离：通过离心、过滤等方法将膜蛋白分离出来。

3. 纯化：采用膜层联萃取、柱层析、电泳等方法对膜蛋白进行纯化。

4. 确认：通过蛋白质定量、SDS-PAGE、Western blot等方法验证膜蛋白的存在和纯度。

常见的膜蛋白提取方法有：
1. 酸性洗涤法：利用低pH值时，膜蛋白和膜脂亲性增强的特性，将细胞裂解物在酸性条件下洗涤获得膜蛋白。

2. 有机溶剂提取法：利用膜蛋白亲性较强的有机溶剂，如丙酮、甲醇等，将膜蛋白从细胞裂解物中提取出来。

3. 离心法：通过离心分离膜细胞，从而获得膜蛋白。

4. 免疫亲和层析法：利用特异性抗体将目标膜蛋白从混合蛋白中分离纯化。

以上方法的选择需根据具体情况来定，不同的细胞类型或膜蛋白性质有着不同的最佳提取方法。

酵母细胞壁蛋白提取方法
酵母细胞壁蛋白的提取方法有多种，以下提供两种方法：
方法一：
1. 取诱导表达至120h的菌悬液1mL（OD600约为40），6000rpm室温离心3min，弃上清。

2. 用1mL预冷的Lysis缓冲液悬浮洗涤细胞2次。

3. 用1mLLysis裂解液悬浮细胞并转移到振荡管中，加入酸洗玻璃珠和
10uL复合蛋白酶抑制剂（稀释100倍），在细胞破碎仪上振荡破碎8次，每次30sec，间隔1min。

4. 6000rpm室温离心3min，上清为胞内蛋白的样品。

依次用20μ0LLysis 缓冲液重悬沉淀并转移至新的离心管中。

5. 6000rpm室温离心3min，弃上清后加入SDS缓冲液及10μL复合蛋白酶抑制剂，沸水浴10min。

6. 加入80μL乙酸钠缓冲溶液，2μ0L昆布多糖酶（约）及10μL复合蛋白酶抑制剂悬浮细胞碎片，混匀后在37℃摇床孵育过夜。

方法二：
可以使用一步法酵母活性蛋白提取试剂盒。

由于酵母有坚硬的细胞壁，传统的提取采用强碱，使得大多数蛋白产生变性，而玻璃珠法蛋白提取会使得玻璃珠对蛋白产生一定的非特异性吸附作用，导致蛋白质的损失，该一步法酵母蛋白提取试剂采用一种温和型的非离子去污试剂在20分钟内从酵母细胞中提取可溶型蛋白，而且大决数蛋白可以保持活性。

以上信息仅供参考，具体操作建议咨询专业人士。

---------------------------------------------------------------范文最新推荐------------------------------------------------------ 酵母组蛋白提取方法的优化与探索摘要：组蛋白（histones）为真核生物体细胞染色质中的碱性蛋白质和基本结构蛋白，含较多精氨酸和赖氨酸等碱性氨基酸，二者加起来约为所有氨基酸残基的1/4。

因其氨基酸成分和分子量不同，主要分成5类：H1、H2A、H2B、H3、H4。

它们富含带正电荷的碱性氨基酸，能够同DNA中带负电荷的磷酸基团相互作用[1]。

而本实验涉及到的酵母组蛋白是一种有别于其他动物组织的组蛋白，它属于真核生物，在提取其组蛋白时，需要破裂其组织细胞壁。

提取之后，再利用一种高效又普遍的方法进行蛋白的测定——过程包括考马斯亮蓝染色、蛋白质印迹法（western blot）转膜后杂抗体(一抗和二抗)；通过IMAGE影像曝光法，最后得出蛋白条带的曝光图[2]。

5674关键词：酵母组蛋白的提取；破裂细胞壁；蛋白质印迹法；杂抗体；曝光；1 / 28Optimization and Exploration Of the Extraction Method on Yeast HistoneAbstract: Histone is the basic protein and basic structure in eukaryotic somatic chromatin, containing more basic amino acids such as arginine and lysine, which add up to approximately one forth of the total amino acid residues. Due to its different amino acid composition and molecular weight, it can be pided into five categories: H1, H2A, H2B, H3 and H4. They are rich in basic amino acid with a positive charge, so they can have the interaction with the phosphate groups which are negatively charged in DNA. This experiment is related to the yeast histone which is different from those of other animal tissues. It belongs to the eukaryotic. It is necessary to rupture the cell wall of the organization when extracting its histone. After this kind of process, then detect the histone with a general and efficient method, including Coomassie blue staining, Western blot, film transferred, using antibodies(the primary and secondary antibody) and image exposure. At last, we can have the protein bands exposure map.---------------------------------------------------------------范文最新推荐------------------------------------------------------虽然蛋白质的可变性和多样性等特殊性质导致了蛋白质研究技术远远比核酸技术要复杂和困难得多，但是蛋白质本身的存在形式和活动规律，如翻译后修饰、蛋白质间相互作用以及蛋白质构象等问题，仍依赖于直接对蛋白质的研究来解决。

biovision膜蛋白提取BioVision膜蛋白提取膜蛋白是细胞膜的主要组成成分，具有重要的生物学功能。

它们参与细胞信号传导、物质运输以及细胞间相互作用等关键过程。

为了研究膜蛋白的结构和功能，科学家们开发了多种方法来提取膜蛋白。

其中，BioVision膜蛋白提取试剂盒是一种常用的工具，它可以高效地从细胞中提取膜蛋白。

BioVision膜蛋白提取试剂盒采用一种特殊的离子洗涤剂和蛋白酶抑制剂的组合，能够迅速破坏细胞膜，并保护膜蛋白不被降解。

该试剂盒的提取步骤简单、操作方便，适用于各种类型的细胞，包括哺乳动物细胞、昆虫细胞和酵母细胞等。

使用BioVision膜蛋白提取试剂盒提取膜蛋白的步骤如下：1. 细胞培养：首先，将所需的细胞培养在适当的培养基中，使其达到指定的生长状态。

2. 细胞收集：收集细胞后，用磷酸盐缓冲液洗涤细胞，去除培养基和杂质。

3. 细胞裂解：将洗涤后的细胞加入BioVision提取试剂，充分裂解细胞膜，释放膜蛋白。

可以通过旋转离心等方法加速细胞裂解过程。

4. 膜蛋白提取：离心裂解后的细胞，将上清液转移到新的离心管中，以去除细胞碎片和细胞核等杂质。

上清液中富含膜蛋白。

5. 蛋白质浓度测定：使用蛋白质浓度检测试剂盒，测定提取的膜蛋白的浓度。

根据需要，可以调整蛋白质的浓度。

BioVision膜蛋白提取试剂盒的优势在于其高效性和可靠性。

该试剂盒能够完整地提取细胞膜中的蛋白质，并保持其天然的结构和功能。

此外，BioVision提供的试剂盒还具有良好的稳定性和重复性，可以在不同实验条件下反复使用。

膜蛋白提取是研究细胞生物学和蛋白质功能的关键步骤之一。

BioVision膜蛋白提取试剂盒的出现，为科学家们提供了一种高效、方便的方法来提取膜蛋白。

通过使用这种试剂盒，研究人员可以更深入地探究膜蛋白的功能和相互作用，从而推动细胞生物学和生物医学研究的进展。

BioVision膜蛋白提取试剂盒是一种有效的工具，可用于从细胞中提取膜蛋白。

（完整word版）膜蛋白提取1分离组织膜蛋白的方法：1、取组织，加入10ml Buffer A 于冰上充分匀浆。

2、J6-HC离心机800rpm，4℃离心10min后，所得上清液转入超速离心管。

3、100000g，4℃离心1hr。

弃去上清，沉淀用适量的Buffer B 重悬，冰上孵育2hr后分装至EP管，Eppendorf台式离心机10000rpm，4℃离心30min。

4、收集所得上清液即为膜组份。

Buffer A：0.32M 蔗糖，5mM Tris-HCl（PH 7.5），120mM KCl，1mM EDTA,1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。

冰上预冷。

Buffer B：20mM HEPES（PH 7.5），10%甘油，2% Triton X-100, 1mM EDTA, 1mM EDTA, 0.2mM PMSF, 1ug/ml Leupeptin, 1ug/ml Pepstatin A, 1ug/ml Aprotinin。

冰上预冷。

2取约0.1g肝组织，加入2ml粉碎缓冲液，冰浴中超声粉碎，每次20秒，间隔30秒，共3次，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞浆蛋白，沉淀部分加入1ml胞膜蛋白提取液，超声粉碎，4°c 105xg条件下离心2小时，上清液为胞膜蛋白。

样品蛋白含量测定采用酚试剂法。

3我们实验室提取膜蛋白的方法如下：1．将细胞种于T75 或T175的培养瓶中培养数天，细胞铺满瓶底后，吸去培养液。

将PBS/EDTA 溶液(NaCl:0.1M,NaH2PO4:0.01M,EDTA:0.04%)加入量以覆盖细胞为止，置于培养箱或在超净台内消化3～5分钟，如仍未脱落瓶底，用吸管吹打，使细胞完全脱落。

2．收集细胞悬液于10毫升或50毫升的离心管中，1000rpm离心10分钟，去上清液。

哺乳动物跨膜蛋白承担各种生物功能，在疾病的发生、发展过程中扮演重要角色。

膜蛋白的蛋白质组学分析是被大家看好的辨识新的药物靶标和/或疾病的生物学标记的好方法，并已得到广泛应用。

然而膜蛋白通过许多疏水氨基酸残基锚定在膜结构里面，很难溶解在水性缓冲液系统中。

为了制备膜蛋白样品，传统的方法是采用“去污剂＋机械处理”的操作方法获取膜蛋白，用于增溶的去污剂有离子型（如SDS）和非离子型的（如Triton?-X）等，前者会使多数蛋白完全变性，限制很多下游分析，而后者虽然相对温和，但抽提膜蛋白（特别是有多个跨膜区的膜蛋白）的效果往往很差。

下面推荐的是两个公司的相关产品，也算是具有代表性的两种方法：1．默克的跨膜蛋白抽提试剂盒ProteoExtract 跨膜蛋白抽提试剂盒（简称TM-PEK，货号71772-3）是一种基于化学而非去污剂方法的高产膜蛋白制备试剂盒。

其简便的两步法操作可以高效地富集膜蛋白和膜关联蛋白。

试剂盒包括两种试剂，TM-PEK试剂A 和TM-PEK试剂B，分别用于制备抽提缓冲液2A和抽提缓冲液2B。

使用者通过实验摸索，可以根据特定目的蛋白的特点从中灵活选择最适缓冲液。

用ProteoExtract TM-PEK 试剂抽提得到的蛋白适合用于常见的各种蛋白分析方法。

从以下的报告中，列举了TM-PEK制备的跨膜蛋白和多次跨膜蛋白样品在免疫印迹、活性分析及2D电泳等方面的实例。

为了验证ProteoExtract跨膜蛋白抽提试剂盒抽提多次跨膜蛋白的有效性，我们用免疫印迹比较了Frizzled-4，CELSR-3（cadherin-EGF-lag seven-pass receptor-3）和EGFR（表皮生长因子，只有一个跨膜区）的样本制备效果。

Frizzled和CELSR是WNT/ PCP （平面细胞极性）通路的重要组成成分，而这个重要的通路则控制了组织的极性和细胞的迁移。

Frizzled蛋白与GPCRs有远源关系，但是除开都具有7个跨膜区的结构外，它们的结构和功能存在很大差异（参见Huang 2004）。