细菌室标本采集及保存要求

细菌室标本操作流程
细菌室是进行细菌培养和鉴定的重要实验室，操作流程的规范
性和严谨性对于实验结果的准确性至关重要。

下面将详细介绍细菌
室标本操作的流程。

1. 样本接收：首先，接收来自临床的标本，如血液、尿液、脑
脊液等，标本应该在规定时间内送到细菌室，并在接收时进行标记，包括标本来源、送检医生、送检时间等信息。

2. 样本处理：接收到标本后，需要进行处理，包括标本的分装、保存和处理。

不同类型的标本需要采取不同的处理方法，确保标本
的完整性和质量。

3. 样本培养：将处理好的标本进行培养，通常采用琼脂培养基，根据标本的性质选择不同的培养基。

培养条件包括温度、湿度、氧
气含量等，需要根据不同的细菌种类进行调整。

4. 细菌鉴定：培养出的细菌需要进行鉴定，包括形态学特征、
生理生化特性、抗生素敏感性等。

通常采用显微镜观察细菌形态，
进行生化试验和抗生素敏感性试验。

5. 结果记录：对鉴定结果进行记录，包括细菌种类、数量、鉴
定方法、结果等信息。

确保结果的准确性和可追溯性。

6. 报告发放：将鉴定结果整理成报告，发送给临床医生，帮助其进行治疗方案的制定。

7. 清洁消毒：操作结束后，对实验室进行清洁消毒，确保实验室的卫生和安全。

细菌室标本操作流程需要严格遵守操作规程，确保实验结果的准确性和可靠性。

同时，操作人员需要具备专业知识和技能，保证操作的规范性和安全性。

只有这样，才能为临床诊断和治疗提供可靠的实验结果。

微生物标本采集及保存要求引言微生物标本的采集和保存是微生物学研究和诊断的基础。

正确的采集和保存方法能够确保标本的质量和完整性，并提供可靠的结果。

本文将介绍微生物标本采集和保存的要求，旨在帮助人们正确进行微生物标本的处理。

1. 标本采集前的准备在进行微生物标本采集之前，准备工作是至关重要的。

以下是一些需要注意的事项：•准备采集工具和材料: 预先准备好所需的采集工具和材料，如无菌容器、无菌拭子等。

•确保个人卫生: 采集标本前，采集人员应洗手，佩戴适当的个人防护设备，例如手套和口罩，以防止交叉感染。

•了解采集部位和要求: 在采集标本前，了解所要采集的部位和采集要求，以便采集人员能够正确操作。

2. 标本采集步骤下面是一些常见微生物标本的采集步骤：2.1 血液标本血液标本是常见的微生物病原体检测标本之一。

以下是血液标本的采集步骤：1.选择合适的采集部位: 常用的采集部位有静脉内和指尖采血。

根据需要选择合适的采集部位。

2.消毒采集部位: 使用适当的消毒剂对采集部位进行消毒，以减少细菌的污染。

3.利用无菌注射器或放血针采集血液: 选择合适的采血设备，按照正确的技术和步骤采集适量的血液。

4.将血液转移到无菌容器中: 将采集到的血液转移到适当的无菌容器中，如血培养瓶或离心管。

2.2 呼吸道标本呼吸道标本用于检测呼吸道感染。

以下是常见的呼吸道标本采集步骤：1.依照需要选择合适的采集方法: 常见的呼吸道标本采集方法包括咽拭子、鼻拭子、喉拭子等，根据需要选择合适的采集方法。

2.使用无菌拭子采集标本: 使用无菌拭子轻轻刮取相应部位的分泌物，注意避免刮伤黏膜。

3.将拭子转移到无菌容器中: 将采集到的标本拭子放入无菌容器中，并确保容器密封。

2.3 尿液标本尿液标本常用于病原体的检测和诊断。

以下是尿液标本的采集步骤：1.准备容器和适当的采集方法: 准备无菌容器和适当的采集方法，如尿杯或导尿管。

2.进行尿液采集: 采集尿液时应注意保持个人卫生，避免污染。

微生物标本的正确采集正确采集微生物标本是进行病原学检查的关键步骤，因为只有采集到合适的标本，才能够准确、客观地检测出病原菌，为诊断和治疗提供科学依据。

以下是一些采集微生物标本的正确方法：一、注意清洁和消毒在采集标本前，必须对手部进行清洁和消毒，以减少污染的可能性。

使用肥皂和水清洁手部，或者使用酒精消毒剂消毒手部。

同时，还需要对采集标本所使用的器械进行消毒，确保无菌操作。

二、选择正确的标本类型不同的微生物感染会有不同的症状和体征，因此需要根据患者的具体情况选择正确的标本类型。

例如，对于呼吸道感染，可以使用鼻咽拭子、痰液等；对于胃肠道感染，可以使用大便标本等。

三、正确采集标本1.采集前准备：了解患者的病史和症状，确定需要采集的标本类型，准备好采集所需的器械和消毒用品。

2.采集方法：根据不同的标本类型，采用正确的采集方法。

例如，对于痰液标本，需要让患者用力咳嗽，将痰液咳出并放入收集器中；对于大便标本，需要让患者取适量的大便放入收集器中。

3.采集量：采集的标本量应该足够，以便进行实验室检测和分析。

一般来说，采集的标本量应该不少于检测所需量的两倍。

4.采集时间：采集标本的时间也有讲究。

例如，对于呼吸道病毒的检测，最好在患者发病的早期采集标本；对于肠道病毒的检测，最好在患者发病后一周内采集标本。

5.保存方式：采集完标本后，需要妥善保存。

一般来说，应该将标本保存在适当的介质中，如保存液或培养基中，以保持标本的活性和完整性。

同时，还需要注意温度和湿度等环境因素对标本的影响。

四、避免污染和交叉感染在采集标本的过程中，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染和交叉感染。

例如，在采集痰液标本时，应该让患者先用清水漱口，再用无菌棉签擦拭咽部，以减少口腔和咽部的细菌污染。

同时，还需要注意实验室内的清洁卫生和消毒工作，确保实验室内的空气和环境符合要求。

五、及时送检采集完标本后，需要及时送检。

一般来说，应该将标本尽快送到实验室进行检测和分析。

微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。

下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。

采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。

采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。

送检尽快送检，一般不超过2小时。

若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。

2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。

5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

6.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

7.采样后应立即送检，最好在2h内。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。

对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。

临床微生物学标本采取和处理的规范化要求正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键.标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果,给临床以误导，延误对患者的正确治疗。

为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。

一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。

1．采集方法:静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后,直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固.如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中,再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。

2。

采血时间以及血培养份数:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本,可使细菌检出率高达99％.对间歇性寒战或发热的患者,应在寒战或体温高峰到来之前0。

5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。

特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则：（1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2~3份血液标本培养.(2)可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养,如果24小时后阴性,再采集两份血标本培养。

(3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24~36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。

因为1次血培养不足以说明问题,可能会遗漏阳性结果。

（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时;应改变血培养方法,以获得罕见或苛养的微生物。

（5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本.3。

采血部位:采血部位通常为肘静脉。

疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。

疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。

检验科实验室标本处理与储存技巧在检验科实验室中，标本的处理与储存技巧是非常重要的，直接关系到实验结果的准确性和可靠性。

本文将从标本的处理、储存条件和常见问题解决方面进行详细介绍。

一、标本的处理1. 标本采集：标本的采集是整个实验过程中的第一步，需要注意以下几点：- 选择合适的采集容器，确保不会造成标本的污染或损坏。

- 采集完整标本，不可有残缺或漏液。

- 标本采集过程中要保持无菌操作，避免外部细菌的污染。

2. 标本预处理：标本采集完成后，需要进行预处理以确保标本的质量：- 对于液体标本，需要离心分离固体和液体部分。

- 对于固体标本，需要进行切片或研磨等处理。

- 标本预处理过程中要避免温度过高或过低，避免对标本造成损伤。

二、标本的储存条件1. 温度：不同种类的标本需要不同的储存温度，一般来说，冰箱是最常用的存储设备。

具体温度要求如下：- 血液标本：通常需要在4摄氏度下储存。

- 细胞标本：需要在-20摄氏度或更低的温度下储存。

- 生化标本：需要在2-8摄氏度下储存。

2. 湿度：标本储存时要避免受潮或过于干燥，一般来说，相对湿度在60%-70%之间是比较合适的。

3. 光线：标本储存的地方要避免直射阳光，光线对某些标本可能会产生影响。

4. 时效性：不同种类的标本有着不同的存储时效性要求，必须在规定的时间内进行检测分析，否则结果可能会出现偏差。

三、常见问题与解决方案1. 标本污染：对于标本污染的问题，应加强实验室内部的清洁和消毒工作，同时在采集、处理和储存标本时要遵守操作规程，避免交叉感染。

2. 标本保存不当：标本保存不当可能导致标本变质或失效，因此在储存标本时要注意温度、湿度等条件，确保标本质量。

3. 标本信息混乱：为避免标本信息混乱，应对每个标本建立相应的信息档案，并采用统一的编号系统，确保标本与信息的对应准确无误。

综上所述，检验科实验室中标本的处理与储存技巧至关重要，仅仅依靠仪器和设备是不够的，只有严格按照标准操作规程，做好标本的采集、处理和储存工作，才能确保实验结果的准确性和可靠性。

细菌培养标本采集及注意事项细菌培养标本采集是临床微生物学检验中的重要环节，它对于细菌的分离、鉴定和药敏试验具有重要意义。

正确的标本采集能够提高细菌培养的准确性和药敏试验的可靠性，从而对临床诊断和治疗提供准确的依据。

以下是一些细菌培养标本采集的注意事项：1.选择合适的标本：根据临床症状和病情，选择合适的标本进行采集。

例如，咽部感染可以采集口咽拭子、咳痰、深喉拭子等标本进行细菌培养。

2.采集前洗手：采集标本前，采集者应进行手部消毒或洗手，以减少细菌的污染。

同时，佩戴清洁的手套也是必要的。

3.标本容器的选择：根据需要进行细菌培养的部位和类型选择合适的标本容器。

通常情况下，采用无菌的容器，且应有足够的容量满足后续操作的需要。

4.采集技术和操作：采集者应具备相应的技术和操作能力，以保证标本的质量和准确性。

遵循无菌操作，避免污染。

不同部位的采集有不同的技术要求，需要注意不同部位的解剖和生理特点。

5.采集适量的标本：采集者应确保要采集的标本量足够，以满足后续的分离和鉴定操作。

对于多种标本的采集，应遵循采集优先级和适宜量，以减少不必要的浪费和重复采样。

6.保护标本：标本采集后，应及时处理和保存，以防止标本的污染和失活。

保持标本的完整性，尽量避免液体标本的泄漏和固体标本的破碎。

7.标本的迅速送检：标本采集后应及时送到实验室进行处理，以保持标本的新鲜和避免细菌生长过多或失活。

不同类型的标本有不同的送检要求，应注意标本是否需要特殊的保存和运输条件。

8.注意个别特殊情况：有些特殊类型的标本采集有特殊的要求，如液体标本的胫前组织穿刺、关节穿刺液等，需要专业医师操作，且操作过程更加复杂和精细。

此外，对于病程较长、曾接受治疗的患者，应注意标本的采集时机和对抗生素的处理。

9.记录标本信息：在标本采集过程中，应及时、准确地记录标本的相关信息，如采集日期、患者姓名、住院号、标本类型、采集部位等。

这些信息对于后续的结果解读和结果报告都具有重要的作用。

临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。

2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。

3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。

3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。

标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。

4-适量标本4.1标本采集应足量。

标本量过少，可能会导致假阴性结果。

4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。

常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前，或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间，保证在留取标本后1小时内送至检验科。

粪便标本:自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺.液体粪便则取絮状物，一般取1~3ml，直接装入粪便容器中送检。

清洁中段尿标本：应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上.最好留取早晨清洁中段尿标本。

注意:容器内是无菌的，所以打开容器盖后，应拿在手中,不要随意乱放。

留取方法：(1）患者睡前少饮水；（2)清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮,仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围；（3）开始排尿,将前段尿排出，弃去，不要停顿，直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中，立即送检。

自然咳痰标本:患者清晨起床后，用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙.先轻咳,咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳，从气管咳出呼吸道深部的痰，直接吐入清洁、无菌的容器中。

常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前，或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间,保证在留取标本后1小时内送至检验科。

粪便标本：自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺.液体粪便则取絮状物，一般取1～3ml，直接装入粪便容器中送检。

清洁中段尿标本：应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上。

最好留取早晨清洁中段尿标本。

注意:容器内是无菌的，所以打开容器盖后，应拿在手中，不要随意乱放.留取方法：(1）患者睡前少饮水；(2)清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗,再用清水冲洗尿道口周围；（3）开始排尿，将前段尿排出，弃去，不要停顿，直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中，立即送检。

自然咳痰标本：患者清晨起床后,用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌，有假牙者应取下假牙。

先轻咳，咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳，从气管咳出呼吸道深部的痰，直接吐入清洁、无菌的容器中。

细菌培养标本的采集、转运和储存方法一、痰标本1、采集时间：最好于应用抗菌药前，采集清晨第一口新鲜痰液。

2、采集方法：（1）自然咳痰：用清水漱口（包括咽喉部）3次后用力咳痰，从呼吸道深部咳出第一口新鲜痰液于无菌容器内或输送培养基中。

（2）帮助咳痰：不易获得痰的患者可雾化吸入加温的氯化钠（45℃10％氯化钠水溶液）。

（3）支气管镜或支气管毛刷：由医生采集，建议直接种入输送培养基。

（4）胃内采集痰标本：婴幼儿不会咳痰而且常把痰误咽入胃中。

可在清晨，用胃管插入胃内，用注射器抽出胃液。

（5）小儿采集痰标本：用压舌板刺激咳嗽使肺部和器官的分泌物喷出，用拭子采取标本送检，如不能立即送检应种入输送培养基。

3、转运和储存：如在2小时内送检，可常温下放置；如不能立即送检，可放置4℃冰箱，但最好不要超过24小时。

二、血液标本1、采集时间：尽可能在用抗菌药前，心内膜炎除外；对已应用抗菌药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。

2、采集方法：依次使用75%酒精、碘伏、75%酒精清洁采集部位皮肤；一般选取肘静脉，疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉为宜。

注意：不要与血气和血沉标本一起采集；不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜在静脉导管或静脉留置口采血。

3、采血量：两套4瓶，分需氧和厌氧，从两个部位抽血。

成人每套血量不少于16-20ml，先将10ml注入需氧瓶，再将剩余血注入厌氧瓶。

儿童每套血1-10ml，采血量是总血量的1％(儿童败血症含菌量是成人的10-100倍)。

4、采血间隔：如第一次采集2套（4瓶）血培养标本，在以后的2-5天不必采血，但除外心内膜炎和导管相关性败血症。

5、转运和储存：血培养瓶务必立即送至细菌室，因故不能立即送检时，应将已接种的瓶放在室温，切勿放在冰箱存放。

三、粪便标本1、采集时间：腹泻患者应在用抗菌药前、急性期采集；沙门菌感染、肠热症应在2周内采集；厌氧菌感染出现症状即可采集。

2、采集方法：自然排便者可用小木棒挑取有脓血和黏液部位的粪便2-3克，如液状粪便取絮状物盛于无菌的、密封的、不吸水的、容器内或直接盛于增菌液或保存液中；对不易获得粪便患者及幼儿，可用直肠拭子采集后置保存液或输送培养基中送检。

图文细菌培养标本的采集运送与处理细菌培养标本的采集、运送和处理是临床微生物学工作中至关重要的环节之一。

正确的操作能够保障标本的质量，减少误诊率，提高诊断准确性。

本文将介绍细菌培养标本的采集、运送和处理注意事项，为临床人员提供一些指导性意见。

采集标本的注意事项采集时间标本采集应在患者服用抗生素前或停药时间超过7天后进行。

因为在抗生素作用下，细菌数量减少，可能导致假阴性结果。

而停药时间不足7天，则可能出现抗生素抑制菌体繁殖的影响，导致假阴性结果。

采集部位细菌培养标本的采集要点是要选择适当的部位，从病变部位采集标本，以尽可能多地含有病原体。

采集前要先进行消毒处理，避免检测结果的偏差。

常见的采样部位有：•血液：静脉血、动脉血•尿液：中段尿、早晨第一次排尿•痰液：清晨空腹，深喉刺激后咳出的痰液•脑脊液：用腰穿法获取•分泌物：如脓性分泌物，要清洁创面后进行采集采集器具采集器具应为无菌的容器和器械，避免造成二次污染。

选择采集器具时，应以病变部位大小、特点及病因为基础选择适当的采集方法和器械。

标本采集量标本采集量的大小会影响到检验结果的准确性。

采集过程中，应尽量采集足够量的标本，以避免过多或过少对检测结果的影响。

一般来说，采集量不得少于2mL。

标本的运送和保存标本运送标本运送应保证其质量，在保持标本稳定性的同时，避免造成地区性污染。

运输时应按照相关规定要求，采取避光、避热、避冻等措施。

运送过程中，标本应保持无菌状态，防止被粉尘、脏物等污染。

标本保存在采集后未能及时运送的标本，应保存在4℃～8℃冰箱内，以避免培养所需的营养物质的耗损，影响后续检测结果。

冰箱应定期整理清洗，并进行温度调整，以避免异常温度对标本品质的影响。

标本处理标本处理前的准备工作在进行标本处理之前，需要对关键环节进行准备，如检查及清理工作区、准备必要器械和环境、做好相应的操作准备。

标本的处理方法标本处理一般包括离心、涂片、加药涂布和灭菌。

标本处理应按照相关规定进行，避免外界因素干扰或影响检测结果。

留取细菌培养标本的要求[留取细菌培养标本的要求]正确采集细菌标本进行细菌学检查，是正确检验病人细菌感染的关键，因此留取细菌检验标本应注意以下几点：1.如何采集血液标本?血液标本应在病人发热1～2日或发热高峰采集培养为宜。

此时阳性率高。

采集时应以无菌手续由静脉取血5～10ml，立即注入适当的液体增菌培养瓶内，并迅速轻摇，使充分混匀，以防凝固，并有利于细菌生长。

作厌氧菌培养时，抽血后应立即接种厌氧培养基中，避免接触空气，并尽快送往细菌室放入温箱，避免温度对细菌生长不利。

另外磺胺类药物和抗生素可影响细菌检出的结果，因此采集标本应力争在抗菌药物治疗之前，否则应提醒细菌室，选用可以中和抗生素的培养基，这样血液中残留的抗生素被中和掉，有利于细菌生长，以便准确地检测出种类。

2．脓及创伤感染标本的留取。

(1)应首先用无菌生理盐水清洗脓液及病灶的杂菌，再采集标本，以免影响检验结果。

(2)一般用棉拭子采取脓液及病灶的深部的分泌物，瘘管也可以无菌手续采取组织放入无菌试管内送检。

(3)脓肿标本以无菌注射器抽取为好，也可在切开排脓时，以无菌棉拭子采取，也可以将沾有脓汁的最内层敷料放人无菌平皿中送检。

(4)厌氧菌感染的脓液常有腐臭应予注意。

采集和运送标本是否合格，对厌氧培养是否成功至关重要，特别要注意两点：①避免正常菌群所污染；②由采集至接种前尽量避免接触空气。

标本采取完毕应立即送往细菌室检测。

如一时来不及送，应在室温内作暂短保存，一般认为不要冷藏，因冷藏对某些细菌有害，而且在低温时氧的溶解度较高。

3．痰液标本的留取。

(1)痰液标本的采集以清晨为好，因此时痰量多，含菌量大。

标本收集前，病人最好用清水漱口数次，除去口腔内大部分杂菌。

然后用力自气管深部咳出痰液，吐人无菌器皿内，及时送检。

咳痰时应尽量防止唾液及鼻咽部的分泌物混入，以减少污染。

(2)若病人痰量较少，需要检查结核菌时，则应收集24小时痰液，以提高阳性率。

(3)支气管分泌物内含的细菌常能正确地反映出下呼吸道中的病理变化，标本的采集应由专科医生利用支气管镜直接从患者支气管内采取。