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脱落细胞学检查、DNA 倍体分析与血清肿瘤标志物联合检测诊断恶性胸腹水的价值杨倩【摘要】Objective:To compare the clinical value of the detection of exfoliative cytology,serum tumor markers and DNA heteroploid analysis in the diagnosis of malignant pleural effusion and ascite. Methods:The exfoliative cytology, serum tumor markers, DNA heteroploid analysis in 128 patients with peural effusion and ascite were investigated, the sensibilities between three tests were compared. Results:The positive rate of exfoliative cytology testing was 43. 75%. The positive rate of exfoliative cytology joint DNA heteroploid analysis was 83. 33%,with individual exfoliative cytology,the positive rate was statistically significant(P<0. 01). The positive rate of serum tumor markers joint testing was 81. 25%, the difference had statistically significant compared with CA125 and AFP single detection(P<0. 01). Conclusions:The jiont detection of exfoliative cytology,serum tumor markers and DNA heteroploid analysis can improve the detection rate of malignant pleural effusion and ascite.%目的：：比较脱落细胞学检查、DNA倍体分析与血清肿瘤标志物联合检测对恶性胸腹水的诊断价值。
胸腹水脱落细胞学检查涂片方法的改进【摘要】临床对于胸腹水脱落细胞学的常规检测主要以涂片检查为主，此方法可以准确快速的得出是否存在恶性肿瘤细胞情况，此检测法便捷且不易对患者造成明显的痛苦，是当前临床疾病诊断的重要措施。
然而在具体的实施过程中，通常由于涂片过厚、细胞退变或是细胞重叠等相关因素造成涂片检测细胞数量不够以及结构不清的情况，此类现象若发生于恶性肿瘤的血性胸腹水标本时，因一些红细胞对涂片质量造成干扰，从而使诊断结果受到影响，如若疑难病患者在进行细胞免疫组织化学染色，同样也会影响判断阳性结果。
基于此，在实施检验工作时应当避免涂片质量的各类影响因素，可使用改进方法来处理疑似病例的胸腹水沉淀物，以此获得了准确的检验结果，下面我们具体对胸腹水脱落细胞学检查涂片的改进方法进行总结。
【关键词】胸腹水；脱落细胞学检查；涂片方法；改进方法一．血性胸腹水涂片红细胞破坏法血性胸腹水涂片的制作方法的重要作用不仅仅可以对红细胞进行破坏，而且还能维持其它细胞的完整度。
而常规的制作方式沉淀物内易见较多红细胞，因此，也会对肿瘤细胞的检测结果产生影响，使用低渗氯化钾溶液能使红细胞被破坏，加入甲醇能起到一定的固定效果，而加入冰醋酸则可起到凝固蛋白的作用。
当百分之五十的乙醇与胸腹水混合之后，低渗的酒精可以破坏绝大多数的红细胞，并且还能固定癌细胞，如此一下，肿瘤细胞的阳性检出率也会因此而提升，具体的操作方法如下：低渗氯化钾液与甲醇共有两类操作方法，其一：乙醇（50%）红细胞破坏法。
将乙醇（50%）与血性胸水同等量混合均匀，使用离心机以每分钟2000转的速度离心处理10分钟，将上层灰白色沉淀物取出，并将其涂在胶片上(APES)；其二：冰醋酸液红细胞破坏法，取氯化钾溶（4.8g）与蒸馏水（1000ml）混合形成低渗氯化钾液(0.66mol/L)。
首先，取15ML血性胸腹水，并将其倒至离心管中，同样以每分钟2000转的速度进行10分钟的离心处理，留沉淀物。
腹水脱落细胞学检查的操作流程英文回答：Procedure for Cytological Examination of Ascitic Fluid.Cytological examination of ascitic fluid, also known as peritoneal fluid, is an important diagnostic tool used to detect various diseases and conditions. The procedure involves collecting a sample of ascitic fluid and examining it under a microscope to identify any abnormal cells orother abnormalities. Here is a step-by-step guide to the operation flow for cytological examination of ascitic fluid:1. Patient preparation: Before the procedure, thepatient should be informed about the process and any potential risks or discomfort. Informed consent should be obtained. The patient may be asked to fast for a certain period of time prior to the procedure.2. Collection of ascitic fluid: Ascitic fluid istypically obtained through a procedure called paracentesis. The patient is positioned in a reclining or sitting position, and the abdomen is cleaned with an antiseptic solution. A local anesthetic may be used to numb the area where the needle will be inserted. A sterile needle is then inserted into the peritoneal cavity, and the ascitic fluid is collected into a syringe or a vacuum container.3. Preparation of the sample: Once the ascitic fluid is collected, it is transferred into a sterile container. The sample should be handled with care to avoid contamination. The container should be properly labeled with the patient's identification details.4. Centrifugation: To concentrate the cells present in the ascitic fluid, the sample is subjected to centrifugation. Centrifugation separates the cells from the fluid portion of the sample, allowing for a more accurate examination of the cellular components.5. Slide preparation: After centrifugation, a small amount of the concentrated cell pellet is placed onto aglass slide. The sample is spread evenly across the slide using a spreader or a pipette. Multiple slides may be prepared to ensure an adequate representation of thecellular material.6. Fixation: The prepared slides are then fixed using a fixative solution, such as alcohol or formalin. Fixation helps preserve the cellular structures and prevents degradation during subsequent staining and examination.7. Staining: Different staining techniques can be usedto enhance the visibility of the cellular components. The most commonly used stain for cytological examination of ascitic fluid is the Papanicolaou stain, which highlights the nuclear details of the cells.8. Microscopic examination: Once the slides are stained, they are examined under a microscope by a cytotechnologistor a pathologist. The cells are evaluated for their morphology, presence of abnormal features, and any signs of malignancy.9. Reporting: The findings of the cytological examination are documented in a report. The report includes a description of the cellular components observed, any abnormalities detected, and a final interpretation or diagnosis.10. Follow-up: The results of the cytological examination are communicated to the referring physician, who will discuss the findings with the patient and determine the appropriate course of action.中文回答：腹水脱落细胞学检查操作流程。
胸腹水脱落细胞学检验质量管理的初步体会胸腹水脱落细胞学检验是体液检验学的一个重要组成部分，其质量管理滞后。
本文简要介绍本科的操作规范及管理方面的初步体会。
1 标本管理1.1提供标识抗凝管由实验室提供含EDTA—K2抗凝剂塑料软塞10ml标识试管。
1.2接收查对制度严格执行标本查对制度。
认真查对标识试管上的病人姓名、床号和联号，查看送检单检查项目、送检标本是否符合要求，并按序登记、编号，记录接收时间。
1.3准备载玻片推荐载玻片厚度为1-1.2mm，长宽25.4-76.2mm，一端有磨砂区。
准备载玻片6张，分别在磨砂区写上患者姓名和编号。
1.4离心和倾液规定即刻离心，2500r/min离心5min。
离心后试管的细胞沉渣端向里，一手持离心管缓慢弃去上清液,至80度左右保持30s,另一手持棉球吸去残液，沉渣量应少于0.1ml。
离心后红细胞显著过多时，应吸取白细胞层涂片。
也可加入低渗氯化钾溶液10ml破坏红细胞，离心后沉淀物制片[1]。
1.5推片要求将管底沉淀细胞摇散，使其沿管壁缓慢滴于载玻片上，制成5-6张涂片。
也可用移液器吸取进行涂片。
涂片与一般涂片制备不同，规定推制的涂片膜面宜厚但必须有良好的尾部，涂片长宽以（2-2.5）cm×（3.5-4）cm左右为宜。
若管底残留灰白色微细胞团（块）须用小棒或移液器取之压碎拉片或展片。
1.6涂片处理原则取3-4张涂片Wright-Giemsa染色。
1~2张作细胞免疫化学染色，按要求固定。
1.7未用和未染色涂片的处理涂片干燥后叠放，其最上一张涂片面必须朝下。
2 标本运送和保存临床医师采集胸腹水标本并按要求盛于含EDTA—K2抗凝剂的塑料软塞10ml标识试管后，应于0.5-1h内送到实验室。
对于特殊情况不能及时送达者可将标本置于4℃冰箱保存。
3 普通染色及其质量保证3.1染色盒染色需在染色盒中进行。
染色盒常用病理湿盒，有多种规格，常用25cm-30cm，内有2排染色架，每排可放置8张涂片进行染色，端边有一流水孔。
脱落细胞学检查对胸腹腔积液的临床诊断价值摘要】目的：分析并探讨脱落细胞学检查对胸腹腔积液的临床诊断价值，得出结果可为后续的临床诊断提供有价值的依据。
方法：选择我院2015-01-01至2017-01-31收治的130例胸腹腔积液患者为研究对象,对所有患者假阳性率、假阴性率、阴性率、阳性率进行判定，分析脱落细胞学检查对胸腹腔积液的临床诊断价值。
结果：对130例患者样本进行检查后，积液细胞学检查具体结果如下所示：阴性（Ⅰ级）患者为105例（80.77%），假阳性（Ⅱ级）患者为10例（7.69%），阳性（Ⅲ级）患者为15例（11.53%）。
检测结果为假阳性和阳性患者共有25例(23.81%)，其中明确确定诊断为恶性肿瘤的患者共有4例，检出率为（3.07%）。
结论：细胞形态学是诊断恶性胸腔积液的金标准，用于胸腹水细胞学检查，不仅具有较高的阳性检出率，且操作起来简单方便。
【关键词】脱落细胞学检查；胸腹腔积液；临床诊断价值【中图分类号】R730.4 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752（2018）27-0241-02正常情况下，人体胸腔内会存有10～30ml的少量液体；但若毛细血管吸收下降且其通透性增强等均会影响胸液的渗出、吸收环节，如液体超过300ml便会使胸腔内形成积液。
胸腹腔积液的发病原因较为复杂，其中包括胸腹腔炎症、肿瘤等多种原因，既可由胸腹膜本身的病变引起，也会在其它器官发生病变时出现该病症，如胸痛、发热等症状，病变过程中可以产生胸腔积液[1]。
因此，对该疾病患者进行早期的临床检查非常重要，体格检查、影像学检查、细胞学检查均属于临床常用的几种诊断方法。
本文主要针对我院收治的130例胸腹腔积液患者,临床选择脱落细胞学检查,分析脱落细胞学检查对胸腹腔积液的临床诊断价值，现将临床分析报告如下。
1.资料与方法1.1 基线资料我院2015-01-01至2017-01-31收治的130例胸腹腔积液患者为研究对象，其中男性79例，女性51例，年龄最大者84岁，最小者22岁，平均年龄（59.53±4.66）岁。
胸腹水脱落细胞学检验质量管理的初步分析形态学观察是检验胸腹水脱落细胞学中最为经典的一种检验手段，但是就管理而言，目前胸腹水脱落细胞学检验的质量管理较差，本文将初步对胸腹水脱落细胞学检验质量管理进行分析体会。
1标本质量管理1.1提供标识抗凝管：实验室需要提供10ml的标识试管，这些试管需要有含EDTA-K2的抗凝剂软塞。
1.2接收查对制度：管理人员需要根据查对制度严格按照制度执行。
首先需要管理人员在每一支标识试管上写明受检查的病患的姓名、性别、年龄、病床号等相关信息，之后对照送检的单子进行对照检查，查看送检的样本是否已按照送检单上的要求做好相应准备，同时在送检单上填好送检的时间和编号等相关信息。
1.3准备载玻片：对于胸腹水脱落细胞学检验最好使用长宽规格为25.4mm*76.2mm厚度规格在1到1.2mm的载玻片，同时该载玻片的一端需要有磨砂的区域，在此区域上写好病患的编号以及姓名等基本信息。
此外还需要准备好6张载玻纸。
1.4离心和倾液规定：将溶液进行离心处理，离心速度为1/ 52500r/min，离心之后取上层的清液，将试管中的细胞沉淀物用棉球吸走。
取离心之后的白细胞作成涂片。
1.5推片要求：对于试管底部沉淀的细胞，需要进行摇散处理，将这些物质顺着试管的管壁缓慢地滴在载玻片上，之后进行制片处理，将这些物质制作成5到6张涂片。
这类涂片的制作需要注意膜面的厚度，需要尽可能的厚一些。
1.6涂片处理原则：使用Wright—G iem sa 对一部分涂片进行染色处理，对另外一部分涂片进行细胞免疫化学染色的方法进行相关染色处理。
1.7未用和未染色涂片的处理：待涂片放置干燥之后，将涂片叠放在一起，最上面的一张涂片需要将其表面朝下，防止出现潮湿或是被虫子啃食以及被污染等现象。
2标本运送和保存医师根据实验室需要提供10ml的标识试管，这些试管需要有含EDTA-K2的抗凝剂软塞。
在医师完成采样后需要在0.5到1h之内及时送到实验室。
脱落细胞学检查联合胸腹水乳酸脱氢酶在恶性胸腹水中的诊断价值沈宇【摘要】目的探究脱落细胞学检查联合胸腹水乳酸脱氢酶(LDH)在恶性胸腹水中的诊断价值.方法方便选取2015年7月-2017年7月在该院接受治疗的85例胸腹水患者作为研究对象,根据良恶性不同,将患者分为良性组(n=36例)与恶性组(n=49例),均采取脱落细胞学+LDH检查,比较两组患者胸、腹水中LDH及其相对应血清LDH比值与敏感性、特异性.结果恶性胸腹水患者LDH水平及相对应血清中的LDH比值分别为(421.42±62.13)、(1.83±0.62),均显著高于良性胸腹水患者,两组比较差异有统计学意义(t=12.477、5.367,P＜0.05).恶性组患者断特异性(95.12％)、敏感性(91.84％)均高于良性组患者断特异性(77.78％)、敏感性(72.22％),差异有统计学意义(x2=6.579、5.803,P＜0.05).结论对恶性胸腹水患者给予脱落细胞学检查联合胸腹水乳酸脱氢酶诊断,能够有效鉴别良、恶性胸腹水,诊断特异性、敏感性高,能够提升诊断正确性,可广泛应用于临床,具有较高临床诊断价值.【期刊名称】《中外医疗》【年(卷),期】2018(037)032【总页数】3页(P184-186)【关键词】脱落细胞学;胸腹水乳酸脱氢酶;恶性胸腹水;诊断价值【作者】沈宇【作者单位】江苏省徐州市睢宁县中医院检验科,江苏徐州221200【正文语种】中文【中图分类】R5作为临床上一种极为常见的病症，胸腹水诱发因素复杂多样，患者多伴随不同程度的呼吸困难、恶心、呕吐等，严重时甚至会发展成为恶性胸腹水，严重威胁着患者的生命健康[1]，影响着患者的生活质量，因此，对胸腹水的诊断及鉴别尤为重要，其直接影响到患者的治疗效果及预后[2]。
诊断恶性胸腹水的手段有化学检查、细菌学检查、脱落细胞检查等，传统临床上对恶性胸腹水的诊断主要以脱落细胞学为主，具有创伤小、操作简单的优势，其尽管能够实现对恶性胸腹水的诊断，具有较高特异性，然而敏感性低，再加上传统图片方法极易受到人为因素及环境因素的影响，导致其阳性检出率仅为40%～60%，漏诊率高[3]。
胸腹水癌细胞形态学检验诊断分析摘要：目的对胸腹水癌细胞形态学检验诊断价值进行评价分析，为今后的临床检验与诊断提供可靠的参考依据。
方法收集2022年1月～2022年12月我院癌细胞胸腹水标本321份，对其展开细胞形态学检验，并对检验结果进行统计分析。
结果本组321份胸腹水标本经细胞学检查发现癌细胞者140例，阳性率为43.61%；免疫组化检测中发现癌胚抗原（CEA）阳性率达82.14%。
结论胸腹水癌细胞形态学检查在临床诊断中的准确性较高，临床价值显著。
关键词：胸腹水；腺癌；鳞癌；癌细胞形态学；细胞免疫临床上胸腹水脱落肿瘤细胞学检验诊断为检验学中的一个弱项，究其原因发现主要包括以下三点[1]：①出版的相关专著多从病理学方法与视角进行介绍，因此对于检验医学细胞形态学诊断不适用；②检验医学对胸腹水脱落细胞学检验诊断基础、技能教学、培养的投入不足；③胸腹水肿瘤细胞学，即便是同一病例的标本也经常会表现出千姿百态的形态，因此在评估的过程中需要借助临床和病理基础，因此普遍中实现不足。
本次研究出于对胸腹水癌细胞形态学检验诊断价值进行评价分析，现汇报结果如下。
1.2方法1.2.1研究方法对以上统计的癌细胞胸腹水标本展开细胞学形态学检验，并对检验结果展开统计学分析。
1.2.2检验方法将抽取的胸腹水放置在EDTA-K2抗凝剂塑料带盖标识的专用试管中，在0.5～1h内完成离心处理，弃去上清液，倾斜至80°～90°，保持30后，另一手持棉球吸去残夜，使残渣残留在50ul以下，吸取6ul推成有尾部的厚片，5～6张。
2结果本组321份胸腹水标本经细胞学检查发现癌细胞者140例，阳性率为43.61%。
本组有20例阳性标本接受了镜检，体部区检出15例，尾部区全部检出。
形态学检查发现，癌细胞表现为体积增大，胞质囊泡样、细胞大小相对一致，呈现为菊花团状结构、印戒样异常大细胞、腺管样和类上皮排列、"半月形"特征的对称核大细胞。
