免疫试验设计演示文稿
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免疫学实验设计题目:StreamlineDireetHST分离卵黄抗体班级:2011级临床医学本科(12)班姓名:StreamlineDireetHST分离卵黄抗体班级:2011级临床医学本科(12)班作者及学号:一、实验背景1、卵黄抗体即卵黄免疫球蛋白(Egg Yolk Immunoglobulin,lgY),目前研究较多的是鸡卵黄抗体。
母鸡接受免疫后,在卵黄成熟期,血液中的免疫球蛋白IgG选择性的转移到卵黄中形成IgY。
IgY是一种7S免疫球蛋白,分子量180kD,由两条重链(分子量22~30kD)组成,等电点接近5.2。
IgY的结构虽与IgG相似,但其Fc段氨基酸组成与IgG相差很大,不结合类风湿因子,不与蛋白A、G以及哺乳动物Fc受体和补体结合。
在免疫检测中,可代替哺乳动物来源的抗体,提高监测的特异性及敏感性。
已经证明特异性IgY对人及动物的许多疾病具有一定的预防和治疗作用,与其他用于被动治疗的免疫球蛋白相比,IgY具有价廉易得、稳定性好、可口服等优点,在疾病的免疫检测和防治方面具有良好的前景。
IgY具有以下优点:(1)由于鸡与哺乳动物的种系关系较远,可产生针对哺乳动物保守蛋白的抗体(在哺乳动物体内难以产生),用于免疫学测定“同时IgY不与类风湿因子(RF)及哺乳动物补体结合,减少了免疫检测的干扰,提高准确性”。
(2)经特定抗原免疫后,母鸡产生对抗原的持久性应答,可不断获得特异性的多克隆抗体,其均来源于同一个体,抗体均一性好。
(3)卵黄中的IgY含量明显高于鸡血清中lgG的含量,约为巧一25mg/mL卵黄在相同的免疫时间内,由一只鸡所生鸡蛋中提取的抗体量是由一只兔的血清制备的120倍。
(4)IgY还可抵抗幼龄动物的胃酸屏障作用,并可抗肠道中胰蛋白酶和胰凝乳蛋白酶的消化。
鸡蛋提供了廉价易得的IgY来源,从一枚鸡蛋中可获得100~250 mg IgY。
如何将大量的卵黄抗体提取出来,是决定IgY能否被广泛应用的一个重要前提。
大肠杆菌菌体抗原免疫小鼠实验方案的设计实验材料1. 1试剂与器材生理盐水、酒精、碘酊、试管、吸管、三角烧瓶、离心机、剪刀、镊子、注射器、离心管。
1. 2无菌器皿的制备试管、大平皿、三角烧瓶、注射器、吸管、离心管, 经洗液处理后, 用自来水冲洗干净, 再用蒸馏水冲洗3 次, 用纸包好后, 用干烤箱( 160℃) 干烤2 小时。
一、制备免疫原1、细菌的培养:用接种环挑取大肠杆菌,放入肉汤培养基中培养。
37℃培养24小时后,用注射器吸取3ml菌液注入300ml肉汤培养基中,37℃振荡培养24小时。
2、比浊:1.175%BaCl2 0.5ml,1%H2SO4 99.5ml,制作比浊液。
比浊标准为0.5麦氏比浊。
3、取菌液稀释至上述浊度:菌液细菌浓度为1×10ˆ9/L。
4、灭活:隔水煮沸2到2.5小时。
5、灭菌效果检查:取适量煮沸后的肉汤培养液涂布在琼脂培养基上,37℃培养24小时,看是否有菌落生长。
二、选择免疫动物并进行标记选择家兔作为实验动物,挑选年龄在6个月以上当年繁殖的雄性,体重1-2公斤,健康家兔一只,免疫前用苦味酸涂沫在动物的背部,作出明确的标记,避免混淆。
三、阴性对照标本的留取1.采血方法(1)静脉采血法:将家兔放在固定盒内,拔去拟采血部位的毛,用电灯照射加热或用电吹风吹热或用二甲苯棉球擦耳壳,使耳部血管扩张。
用粗针头刺破耳缘静脉或以刀片在血管上切一小口,让血液自然流出即可。
取血后用棉球压迫止血。
亦可用针头插入耳线静脉取血,其操作步骤基本与耳缘静脉注射相似。
最好有一助手帮助压紧耳根部,这样采血时比较容易。
(2)颈动脉放血:使动物仰卧固定四肢,颈部剪毛、消毒后纵向切开前颈部皮肤长约10cm,用止血钳将皮肤分开夹住,剥离皮下组织,露出肌层,用刀柄加以分离,即见搏动的颈动脉。
小心将颈动脉和迷走神经剥离长约5cm,选择血管中段,用止血钳夹住血管壁周围的筋膜。
远心端用丝线结扎,近心端用动脉钳夹住,用酒精棉花球消毒血管周围,用无菌剪刀剪一V形缺口。
免疫反应实验设计免疫反应实验是一种重要的实验方法,用于研究生物体对外源抗原的免疫应答过程。
本文将介绍一种免疫反应实验的设计。
实验目的:本实验旨在研究小鼠对特定抗原的免疫反应及其效果。
实验材料和仪器:1. 小鼠(实验组和对照组各10只);2. 特定抗原(抗原A);3. 细胞培养培养基(RPMI 1640);4. 透明化学药品及试剂;5. 免疫检测设备:ELISA板读取器、流式细胞仪等。
实验步骤:1. 小鼠实验组和对照组的处理:- 实验组:将实验组小鼠每天注射一定剂量的抗原A,连续注射10天;- 对照组:对照组小鼠注射生理盐水,与实验组一样的注射时间和剂量。
2. 血样收集:- 在注射结束后的第11天,分别从实验组和对照组的小鼠尾静脉采集血液样本;- 血样收集后,离心血液,收集上清液即血清。
3. 血清处理:- 将血清分装到离心管中,加入透明化学药品与试剂,如洗涤缓冲液和抗体及底物;- 根据实验需要,进行酶联免疫吸附试验(ELISA)或其他相关实验。
4. 数据分析:- 通过ELISA板读取器等设备,测量和记录实验组和对照组小鼠血清中特定抗原相关指标的光密度或浓度;- 使用统计软件(如SPSS)进行数据处理和相关统计分析,比较实验组和对照组的实验结果。
实验控制:1. 保证实验组和对照组的小鼠来源、年龄、性别和饲养环境等条件的统一;2. 控制实验组小鼠注射抗原A的剂量和时间,确保每只小鼠注射剂量的准确性和一致性;3. 相同的操作程序和处理方法,以减少实验误差和结果的差异。
结果分析:通过实验得到的数据可以对比实验组和对照组小鼠的免疫反应情况。
如果实验组小鼠的免疫反应明显高于对照组,可以说明该抗原在小鼠体内诱导了特异性的免疫反应。
实验数据的统计学分析将进一步验证实验结果的可靠性和显著性。
实验应用:免疫反应实验设计可以应用于各种研究领域,如疫苗研发、自身免疫疾病研究、药物免疫学评价等。
通过实验设计,可以深入了解生物体对特定抗原的免疫应答机制,为疾病预防和治疗提供理论基础和实验依据。
一、课题名称:细胞因子诱导的杀伤细胞对淋巴瘤荷瘤鼠的抗肿瘤作用的研究二、立题依据:恶性肿瘤是危害人类健康的严重的疾病之一,近年来恶性肿瘤的发病率呈逐渐上升趋势。
随着分子生物学研究的不断深入和综合治疗方法的不断完善,肿瘤的诊治水平得到了很大的提高。
目前,生物治疗已成为继手术、化疗及放疗之外的第四种治疗肿瘤的手段,是目前研究肿瘤治疗的热点之一。
迄今为止,CIK 细胞对淋巴瘤细胞株体外研究的报道较多,但对荷瘤鼠的体内研究及 CIK 细胞对肿瘤血管生成的影响研究较少。
三、实验目的:细胞因子诱导的杀伤细胞是一种异质细胞群,从外周血、骨髓或脐带血中分离出的单个核细胞在多种刺激因子(IL-2、IL-1、IFN-γ、抗 CD3 单克隆抗体)作用下,经过一定时间的培养而获得的一种免疫活性细胞。
CIK 细胞同时具有 T 细胞的抗肿瘤活性和 NK 细胞的非 MHC 限制性杀瘤的特点。
因其在体外扩增速度快,杀伤活性高,杀瘤谱广,不良反应少,可提高患者的免疫功能,消除微小残留,被认为是抗肿瘤过继细胞免疫治疗的首选方案。
本实验通过应用 CIK 细胞治疗淋巴瘤荷瘤鼠,应用免疫组化法比较治疗组与对照组的淋巴瘤组织的VEGF、MVD 的差异,探索 CIK 细胞抗肿瘤的新机制,为 CIK 细胞在儿童淋巴瘤的临床应用提供依据。
四、实验对象:淋巴瘤荷瘤鼠。
建立淋巴瘤荷瘤鼠并分组:在 Balb/c-nu/nu 裸鼠左上肢肩胛处皮下接种 T 细胞淋巴瘤 Jurkat 细胞 1.2×108/ml,0.2ml/只。
建立淋巴瘤荷瘤鼠模型。
待裸鼠成瘤后,随机分为两组,每组 5 只,治疗组予瘤旁注射体外培养 2 周的 CIK 细胞 3×107/ml,0.2ml/只,对照组予瘤旁注射 0.2ml 的生理盐水,隔日注射 1 次,连续注射 3 次。
五、实验材料:1.试剂及仪器:RPMI-1640 培养基、胎牛血清、二甲基亚砜、注射用链霉素、基因重组人IL-2、鼠抗人CD3Mcab、基因重组人INF-γ、人淋巴细胞分离液、兔抗人VEGF多克隆抗体、兔抗人vWF因子相关抗原抗体、生物素标记抗兔IgG 抗体、DAB显色液检测试剂盒、SP检测试剂盒。