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不同类型的缺氧对小鼠的影响实验ppt课件

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小白鼠实验性缺氧.pptx

小白鼠实验性缺氧.pptx

（1）准备一氧化碳发生装置
将1只小鼠放入广口瓶中，观
察其正常表现后与一氧化碳发生装置连接
用刻度吸管取甲酸3
ml放于试管内，沿试管壁缓慢加入浓硫酸2 ml，塞紧瓶口（间断加热）
观察各项指标。
（2）当小白鼠出现中毒表现（痉挛、跌倒）时，立即关闭CO发生
装置，迅速将小白鼠放入通风处进行抢救。待小白鼠恢复正常后，再
2019-11-12
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2019-11-12
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2019-11-12
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分别做
红（甲）、 蓝（乙）、 无（丙）标记
分别腹腔注射 1%咖啡因、 2%乌拉坦、生理盐水
（注射剂量：0.1ml/10g）
（2）安静15分钟，放入广口瓶中（已加钠石灰少许） 观察记录小鼠
缺氧前呼吸次数、深度和粘膜颜色等指标 塞紧瓶塞，开始记录存 活时间，并每 3min重复观察其他指标1次，如有其他变化，随时记录， 直至动物死亡。
小白鼠实验性缺氧
哈尔滨医科大学机能实验学中心
2019-11-12
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1
病例
某患者，女，45岁，误将亚硝酸钠白色粉末晶体当做 食盐食入约1 g，出现呕吐、腹痛、呼吸困难，抽搐、昏迷， 呼吸频率加快且幅度显著增加。心率90次/分，律不齐，各瓣膜 听诊区闻病理性杂音，电图显示：窦性心动过缓、频发室性早搏、 完全性右束支传道阻滞，出现室颤。皮肤粘膜的颜色呈咖啡色， 血液颜色变为暗红色，动脉血氧分压PaO2为6.3kPa， 动脉血氧容量CO2max为28.8 mmol/L，动脉血氧含量CaO2为 19.93 mmol/L，动脉氧饱和度SO2为55%。 临床诊断为严重亚硝酸盐中毒性缺氧。对此患者进行紧急抢救， 给予美兰（亚甲蓝）20mg以50％葡萄糖40ml稀释后静脉缓注， 同时予高流量吸氧，大剂量维生素C，ATP，辅酶A，细胞色素C， 输葡萄糖液，速尿静脉注射，抢救成功。

几种类型的小鼠缺氧实验

几种类型的小鼠缺氧实验
Hale Waihona Puke 缺氧——几种类型的小鼠缺氧实验
实验目的和要求
通过在动物身上复制乏氧性、血 液性和组织中毒性等缺氧模型，观察 缺氧时动物的活动、呼吸、血液和粘 膜颜色等指标的改变以及动物的存活 时间，加深理解各类缺氧的发病原因 和机制。
实验动物
每组取成年小鼠7只，新生小鼠1只。 成年鼠称重、编号。 选出两对体重相等或最相近（误差在1g以
HBO2 HB＋O2 2100
亲和力= HB＋CO HBCO = 200 ~ 300
HB＋O2 HBO2
1
②吸入气钟中CO达0.1％，血中HBCO可达50％
③ HBCO使氧曲线左移，血液向组织释放氧减少
④抑制RBC糖酵解，2,3-DPG减少，氧离曲线左移
亚硝酸钠中毒
高铁血红蛋白血症（methemoglobinemia)
／10g体重注射）； 3. 观察指标同实验一的2、4项。
实验五：年龄因素的影响
1. 取成年鼠和新生幼鼠各1只； 2. 新生鼠置入青霉素小瓶中，瓶口盖
棉花；与成年鼠共同置入广口瓶并 密闭。 3. 观察活动、呼吸情况和存活时间。
注意事项
1. 所用广口瓶须密闭不漏气，且各瓶容量应一致。 2. 动物死亡后要立即取血，血液要充分与抗凝剂混合，
量要准（即液滴大小相同），各管血滴数要一致， 否则对比性差。试管应事先编号，以免搞错。 3. 记录时间要准确，以一只表为准。 4. 氰化钾有剧毒，勿沾染皮肤、粘膜，尤其是破损处。 5. 要认真仔细观察小鼠活动情况，呼吸深度和尾、耳、 口颜色的变化。
实验结果
几种类型缺氧指标的改变
乏氧性
血液性
组织 年龄
2. 血液颜色 3. 呼吸变化 4. FiO2变化

不同类型缺氧小鼠观察课件

不同类型缺氧小鼠观察课件
不同类型缺氧小鼠观 察课件
目录
• 引言 • 缺氧小鼠模型的建立 • 缺氧小鼠的生理变化 • 缺氧小鼠的组织病理学改变
目录
• 缺氧小鼠的基因表达变化 • 缺氧小鼠的治疗和干预措施 • 结论与展望
01
引言
缺氧的背景和重要性
01
缺氧是影响人类健康的重要因素 之一，特别是在高原、潜水、航 空等环境下，缺氧对人体的影响 更加显著。
血管舒缩功能异常
缺氧会影响小鼠的血管舒缩功能，导致血液循环 出现障碍。
神经系统的变化
意识状态改变
缺氧会导致小鼠的意识状态发生改变，可能出现昏迷或惊厥。
运动协调性下降
缺氧会导致小鼠的运动协调性下降，出现肢体瘫痪或颤抖等症状。
脑组织损伤
长时间缺氧会导致小鼠的脑组织损伤，影响其神经功能。
04
缺氧小鼠的组织病理学改 变
药物治疗
药物治疗是针对缺氧小鼠进行药 物治疗的方法，通过药物的作用
改善缺氧状态。
常用的药物包括血管扩张剂、抗 凝剂、抗炎药等，需要根据不同
类型的缺氧选择合适的药物。
药物治疗需要注意药物的剂量和 给药方式，避免对小鼠造成不良
反应。
其他干预措施
其他干预措施包括机械通气、吸 氧等，可以改善缺氧小鼠的呼吸
特点
模拟急性缺氧情况，如高 山、潜水等，时间较短， 对小鼠的生理影响较大。
慢性缺氧小鼠模型
原理
通过长时间逐渐降低氧气 浓度，模拟慢性缺氧状态。
方法
将小鼠置于低氧舱内，逐 渐降低氧气浓度至10%以 下，并保持数周至数月。
特点
模拟慢性缺氧情况，如高 原、慢性阻塞性肺疾病等， 时间较长，对小鼠的生理 影响较小。
02
缺氧对人体的生理功能和代谢会 产生影响，严重时会导致生命危 险。因此，研究缺氧对人体的影 响具有重要意义。

几种类型的小鼠缺氧实验 ppt课件

几种类型的小鼠缺氧实验 ppt课件

1. 存活时间，死 亡原因和机制
2. 血液颜色 3. 呼吸变化 4. FiO2变化
5. 年龄差异 6. 美蓝的作用 7. 实验一装置的
原理
（完）
氧浓度（％）
钠石灰瓶小鼠 玻璃珠瓶小鼠
时间 两瓶中氧浓度变化关系（模式图）
几种类型的小鼠缺氧实验
①结合速率= HB＋COHBCO= 1
HB＋O2 HBLeabharlann 2 10HB-Fe2+
＋
NaNO2
氧化
HB-Fe3+
＋
NaNO
－ 2
正常人MHB含量占HB总量的0.07~0.38%，相 当于0.03g%左右
NaNO2中毒时MHB含量占HB总量的10%以上， 相当于1.5g%以上
HB-Fe3+ ＋ 美蓝
还原
HB-Fe2+
几种类型的小鼠缺氧实验
Cyt aa3-Fe3+ ＋ CN－ → Cyt aa3-Fe3+-CN－
CO
NaNO2 +NS
NaNO2 +美蓝
KCN
成年
新生
存活时间 （min）
血液颜色
－－
呼吸变化
FiO2
(％)
－－ －－－－－－
几种类型的小鼠缺氧实验
1. 各组缺氧存活时间不同及死亡的原因和机 制是什么？
2. 各组血液颜色生成的原因；美蓝的作用是 什么？
3. 各组的呼吸变化有何不同，为什么？ 4. 实验一FiO2变化的原因、机制是什么？
几种类型的小 鼠缺氧实验
——几种类型的小鼠缺氧实验
几种类型的小鼠缺氧实验
通过在动物身上复制乏氧性、血 液性和组织中毒性等缺氧模型，观察 缺氧时动物的活动、呼吸、血液和粘 膜颜色等指标的改变以及动物的存活 时间，加深理解各类缺氧的发病原因 和机制。

机能实验学：不同类型的缺氧及其发生机制

机能实验学：不同类型的缺氧及其发生机制
p111
不同类型的缺氧及其发生机制
实验目的
❖观察乏氧性缺氧、血液性缺氧对小白鼠呼 吸、中枢神经及血液系统的影响。
❖掌握乏氧性缺氧、血液性缺氧的常见病因、 发生机制。
❖了解美兰在抢救高铁血红蛋白血症中的作 用机理。
实验原理 O2
外呼吸
血液
组织呼吸
循环
气体运输
Hb
Hb
供氧 正常情况下氧的运输和利用
用氧
放入缺氧瓶内(缺氧瓶内预先 放入钠石灰袋)，凡士林封瓶 口，接水银检压计，每3分钟 记录缺氧瓶内动物的呼吸频率、 幅度及节律，活动状态，皮肤 变化，以及水银面上升的高度, 直到动物死亡。
二、亚硝酸盐中毒及美兰 救治
体重相近的的两只小白鼠，观察动物的一般 状态，呼吸频率、幅度，耳廓、掌底、唇周
和尾巴的颜色。
观察项目
缺氧对机体有哪些影响
神经系统 呼吸系统
组织细胞
血液系统
循环系统
不同类型缺氧对机体的影响
呼吸变化（呼吸频率和深度） 缺氧种类 实验前（次/10S） 实验后3min 6min 9min 12min 死亡时间
低张性 ＣＯ 亚硝酸盐 美兰
各种原因引起的缺氧 呼吸变化有何不同？
不同类型缺氧对机体的影响
缺氧种类 正常 皮肤粘膜、血液、肝脏颜色变化 神经系统表现
低张性 ＣＯ 亚硝酸盐 美兰
小白鼠口唇及血液颜色 在不同缺氧中有何改变？
注意事项
1.缺氧瓶装置一定要密闭。 2.小鼠捉取方法！ 3.左下腹腔注射：针进入腹腔有落空感。 3.抽取美兰的剂量要准确，且勿让美兰沾污
周围环境。 4.计数小鼠呼吸频率的方：腹式呼吸，快、呼吸系统 血液系统 神经系统
血液性缺氧
实验总结

小白鼠实验性缺氧.pptx

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2019-9-21
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4
原
理
氧代谢四大环节： 外界氧气的含量与肺组织的摄取氧 血液系统的携带氧 循环系统的运输氧 组织细胞的利用氧 缺氧：由于组织氧的供应减少或对氧的利用障碍， 而引起
机体代谢、功能和形态结构异常变化的病理过程。
2019-9-21
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5
缺氧的分类
低张性缺氧
2019-9-21
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Hale Waihona Puke 7常用血氧指标血氧分压（PO2):溶解于血液的氧分子所产生的张力； 血氧容量（CO2max）:100ml血液中的血红蛋白，在氧分压 为13.3kPa（100mmHg）,温度为38℃时，所能结合氧的最 大毫升数； 血氧含量(CO2): 标准状态下，100ml血液中实际含有的氧量 （毫升数）； 血氧饱和度(SO2) :Hb的氧饱和度，即Hb结合氧的百分数 约等于血氧含量和血氧容量的比值。
小白鼠实验性缺氧
哈尔滨医科大学机能实验学中心
2019-9-21
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1
病例
某患者，女，45岁，误将亚硝酸钠白色粉末晶体当做 食盐食入约1 g，出现呕吐、腹痛、呼吸困难，抽搐、昏迷， 呼吸频率加快且幅度显著增加。心率90次/分，律不齐，各瓣膜 听诊区闻病理性杂音，电图显示：窦性心动过缓、频发室性早搏、 完全性右束支传道阻滞，出现室颤。皮肤粘膜的颜色呈咖啡色， 血液颜色变为暗红色，动脉血氧分压PaO2为6.3kPa， 动脉血氧容量CO2max为28.8 mmol/L，动脉血氧含量CaO2为 19.93 mmol/L，动脉氧饱和度SO2为55%。 临床诊断为严重亚硝酸盐中毒性缺氧。对此患者进行紧急抢救， 给予美兰（亚甲蓝）20mg以50％葡萄糖40ml稀释后静脉缓注， 同时予高流量吸氧，大剂量维生素C，ATP，辅酶A，细胞色素C， 输葡萄糖液，速尿静脉注射，抢救成功。

《小白鼠实验性缺氧》课件

《小白鼠实验性缺氧》课件

失衡。
缺氧的原因
03
缺氧可以由多种原因引起，如呼吸系统障碍、血液性缺氧、组
织性缺氧等。
缺氧对机体的影响
01
02
03
神经系统损伤
缺氧会导致脑组织损伤， 引起意识障碍、昏迷等症 状。
呼吸系统异常
缺氧会导致呼吸急促、呼 吸困难等症状，严重时可 能导致窒息。
心血管系统紊乱
缺氧会导致心率失常、血 压下降等症状，严重时可 能导致心脏骤停。
实验性缺氧的应用
实验性缺氧不仅可用于研究缺氧 的病理生理机制，还可用于评估 药物对缺氧的保护作用和治疗效 果。
02
实验原理
缺氧的生理机制
氧气在体内的运输
01
氧气通过呼吸系统进入体内，通过血液运输到各个组织和器官
，供细胞代谢使用。
缺氧的判定标准
02
缺氧是指组织或细胞得不到充足的氧气供应，导致氧气的供需
组织性缺氧
由于组织细胞利用氧的能力降低或耗 氧量增加，导致组织细胞氧供不足引 起的缺氧。
理解实验性缺氧的意义
实验性缺氧的意义
通过实验性缺氧研究，可以深入 了解缺氧的发生机制、病理生理 变化和防治措施，为临床治疗提 供理论依据和实践指导。
实验性缺氧的方法
实验性缺氧可以通过控制氧气供 应、改变血红蛋白性质、药物干 预等方法实现。
实验性缺氧的方法
窒息法
使小白鼠处于密闭环境中 ，逐渐消耗氧气，造成缺 氧状态。
药物法
使用药物抑制呼吸酶活性 ，导致小白鼠缺氧。
物理法
通过物理手段改变小白鼠 的呼吸环境，如改变气压 等，造成缺氧状态。
03
实验步骤
实验动物准备
选择实验动物
选择健康、体重相近的小白鼠，确保其处于良好 的健康状态。

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吸入气中氧分压降低 肺通气、换气功能障碍 静脉血分流入动脉
血液性缺氧
血红蛋白含量减少、供氧不足 血红蛋白结构、功能异常
循环性缺氧
全身循环功能障碍 局部循环功能障碍
组织性缺氧
线粒体功能受抑制用氧障碍 呼吸酶合成减少 线粒体损伤
2019-7-28
谢谢欣赏
6
缺氧时体征及血氧改变
呼吸运动的变化规律（频率、幅度、节律） 循环系统的变化规律（心率、心肌收缩力，心输出量） 皮肤粘膜颜色的变化规律（紫绀、苍白等） 存活时间的变化 中枢神经系统的变化规律 血氧变化
2019-7-28
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8
各种类型缺氧的血氧特点
类型
血氧特点 动脉血氧分压 动脉血氧含量 动脉血氧容量 动脉血氧饱和度 动静脉氧含量差 静脉血氧分压 静脉血氧含量 静脉血氧容量 静脉血氧饱和度
乏氧性缺氧 血液性缺氧 循环性缺氧 组织性缺氧
N
N
N
N
N
N
N
N
N
N
N
N或
N
N
N
N
N
2019-7-28
谢谢欣赏
注射乌拉坦的小白鼠对缺氧的耐受性最强。
2019-7-28
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21
Discuss and Analysis
（二）血液性缺氧动物实验 【基本体征】
出现明显的烦躁不安，最终动物死亡。 CO中毒时动物皮肤、黏膜出现明显的樱桃红； 亚硝酸钠中毒时动物皮肤、黏膜出现紫绀； 呼吸相对平稳，加深加快出现较晚，最后呼吸停止。
2019-7-28
谢谢欣赏
7
常用血氧指标
血氧分压（PO2):溶解于血液的氧分子所产生的张力； 血氧容量（CO2max）:100ml血液中的血红蛋白，在氧分压 为13.3kPa（100mmHg）,温度为38℃时，所能结合氧的最 大毫升数； 血氧含量(CO2): 标准状态下，100ml血液中实际含有的氧量 （毫升数）； 血氧饱和度(SO2) :Hb的氧饱和度，即Hb结合氧的百分数 约等于血氧含量和血氧容量的比值。
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4
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周五上午本室) (Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８ 平均值 (X± SD)
肾上腺素 ＋酚妥拉明组
17.50
17.93 19.50 16.74 20.00
缺氧耐受性的影响因素等打下基础。 学习掌握小鼠实验操作的基本方法。
15
二、实验项目
乏氧性缺氧 血液性缺氧
✓ CO中毒性缺氧 ✓ NaNO2中毒性缺氧 循环性缺氧 组织性缺氧 ✓ KCN中毒
16
三、实验材料 缺氧瓶和钠石灰 一氧化碳生成装置及相关试剂（浓硫酸、甲酸） 两种浓度亚硝酸钠溶液：5% 和 1% 10%硫代硫酸钠溶液、0.1%氰化钾溶液 生理盐水 天平、1ml注射器、小鼠手术用器械
肾上腺素 ＋酚妥拉明组
１８.４６
１３.３３ １３.２３ ８.００ ９.５８ ２１.３０
１２.４０
１３.４８ 13.72 ±4.34
肾上腺素+生理盐水组
１８.３３ ２４.２９ １１.８５ １０.４５ １７.１０ １７.８２ １７.２２ １６.２５
16.66 ±4.22
生理盐水组
１１.２５ １２.６３ １４.６４ ８.３３ １１.２０ １９.６２ ８.７０ １４.５
5
肾上腺素组+NS
6
肾上腺素+酚妥拉明
7
生理盐水
8
9
10
11
心 率 （ 次 /m in ）
900
Adr
800
﹡
Adr+Atrop
﹡
700
600
500
400
300
200
100
0
前
1
2
3
4
5
给药前后时间（min）
图2 中毒剂量肾上腺素对小鼠心率的影响及大剂量阿托品 的干预作用( ﹡ VS 合用阿托品组：P<0.01)
17
四、方法、步骤及观察指标
18
观察指标 每项实验前均要观察小白鼠在正常时的一般情况、呼吸频率和深度、皮肤黏膜等的
颜色。（定量指标） 呼吸频率的观察方法：腹式呼吸。 （定量指标） 观察存活时间（min）
19
1. 乏氧性缺氧 将称量体重后小白鼠，取2只体重相同的小白鼠先观察正常的 呼吸和皮肤黏膜颜色，再按0.2ml/10g体重的剂量向小鼠腹腔 注射实验试剂，即将其放入盛有定量钠石灰的缺氧瓶内； 然后塞紧瓶塞，记录时间，每隔5分钟重复观察，直到动物死 亡，记录并比较用不同试剂后动物的存活时间及其差异。
3
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周三下午本室) (Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８ 平均值 (X± SD)
肾上腺素 ＋酚妥拉明组
肾上腺素+生理盐水组
12.61 ±3.67
2
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周三上午本室) (Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８ 平均值 (X± SD)
肾上腺素 ＋酚妥拉明组
21
3. NaNO2中毒性缺氧
取2只体重相近的小白鼠，观察正常表现。 将3支注射器内都抽好药物，腹腔内分别注射：
0.3ml 5%NaNO2
+ 0.3ml 1% 美兰
然后观察反应并记录动物存活时间。
0.3ml 5%NaNO2
+ 0.3ml NS
机制: Hb-Fe2+
NaNO2 Hb-Fe3+.OH
NaOH •CaO Wide-mouth bottle
20
2. CO中毒性缺氧
3ml methanoic acid (HCOOH) + 2ml concentrated sulfuric acid (H2SO4)
H2SO4 HCOOH ——Δ-—→H2O+CO↑
观察呼吸变化、皮肤和黏膜颜色； 记录存活时间。
20.43
11.00
11.30 16.80 ±3.71
肾上腺素+生理盐水组
23.75 20.91 15.61 20.40 18.50 26.11 15.91 18.64 20.00 ±3.64
生理盐水组
8.08 8.67 9.05 8.12 8.57 8.89 8.75 8.64 8.60 ±0.34
美兰
22
4. KCN中毒性缺氧 取2只体重相近的小鼠，称重，观察正常表现。 4支注射器内都抽好药物，腹腔内分别注射：
12
组别
n
X±s）
Adr+NS
8
16.8±51.1
Adr+Atrop
6
异x 常心律次数（
x
10.9±26.1﹡
Adr+Pu

6
Adr+Me
177.2±91.3﹡ 6
140.5±42.6﹡ ﹡vs 肾上腺素与生理盐水合用组： P<0.01
13
缺氧 (P. 263)
14
一、实验目的 通过本实验，为学习和掌握缺氧的类型、发病机制、机能代谢变化及
病理生理学实验二 Pathophysiological Experiments（Ⅱ）
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周二本室) (Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８ 平均值 (X± SD)
１2.00 １8.84 12.96 15.00 11.82
14.67
15.65
12.00 14.12 ±2.43
肾上腺素+生理盐水组
17.78 22.22 17.69 16.36 16.25 16.91 26.19 19.64 19.14 ±3.47
生理盐水组
10.00 9.58 12.22 10.50 8.75 10.00 11.54 9.09 10.21 ±1.18
１1.43 10.48 10.00 14.80 11.50
10.36
15.56 12.06 ±2.21
16.17 19.58 12.41 22.03 14.76
24.55
22.38 18.91 ±4.44
生理盐水组
9.09 10.00 10.36 11.85 12.38 11.25 9.58 10.64 ±1.22