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西洋参茎叶皂苷碱降解成分研究（Ⅱ）马双刚1,2徐绥绪2姜永涛1 宋少江2 白景3刘珂1( 1. 山东省天然药物工程技术研究中心，山东烟台 264003；2. 沈阳药科大学中药药学院，辽宁沈阳 110016；3. 锦州医学院，辽宁锦州 121001）摘要：目的研究西洋参茎叶皂苷碱降解成分。
方法采用硅胶柱色谱并结合HPLC分离纯化，通过波谱分析鉴定其化合物结构。
结果继续西洋参茎叶皂苷碱降解产物中分离得到另外4个微量成分，分别鉴定为：达玛-20(21) ,24-二烯-3β,12β-二醇（Ⅰ）、达玛-20(21) ,24-二烯-3β, 6α,12β-三醇（Ⅱ）、20(S)-达玛-25(26)-烯-3β,6α,12β,20,24ξ-五醇（Ⅲ），20(S)-达玛-23-烯-25-过氧羟基-3β,6α,12β,20-四醇（Ⅳ）。
结论碱降解20位S构型未改变，化合物(Ⅰ)、（Ⅱ）、（Ⅲ）、（Ⅳ）均为首次用碱解法从西洋参茎叶皂苷中得到。
化合物（Ⅱ）、（Ⅲ）、（Ⅳ）为三个新化合物，并利用2D-NMR技术分别对其氢和碳的化学位移进行了全归属。
关键词：西洋参；皂苷元；碱降解；达玛-20(21) ,24-二烯-3β, 6α,12β-三醇；20(S)-达玛-25(26)-烯-3β,6α,12β,20,24ξ-五醇；20(S)-达玛-23-烯-3β,6α,12β,20-四醇；NMR全归属Studies on p roducts by a lkaline d egradation from Ginsenosides in the l eaves and s tems of Panax quinquefolium (Ⅱ)MA shuang-gang1,2, XU sui-xu2,JIANG yong-tao1, SONG shao-jiang2, BAI jing3, LIU ke1(1. Shandong Engineering Research Center for Natural Drugs, Yantai Shandong 264003;2. School of Chinese Medical, Shenyang Pharmaceutical University, Shenyang Liaoning 1100163.Jinzhou Medical College , Jinzhou Liaoning 121001)[ABSTRACT] AIM: To study products by alkaline degradation from ginsenosides in the leaves and stems of Panax quinquefolium L. METHOD: Isolation and purificatin were carried out on silica gel and HPLC; the chemical constituents we re structurally elucidated by spectral analysis. RESULT: In continuation of our studies on products by alkaline degradation from ginsenosides in the leaves and stems of Panax quinquefolium , four minor compounds were elucidated as: dammar-20(21),24-diene-3β,12β-diol (Ⅰ), dammar-20(21),24-diene-3β, 6α,12β-triol (Ⅱ),20(S)-dammar-25(26)-ene-3β, 6α,12β,20,24ξ-pentanol (Ⅲ),20(S)-dammar-23-ene-25-hydroperoxyl-3β,6α,12β,20 -tetrol (Ⅳ). CONCLUSION: The configunation of20-position of ginsenosides was not changed by alkaline degradation. All the compounds were obtained by alkaline degradation from ginsenosides in the leaves and stems of Panax quinquefolium for the first time. The complete assignments of 1H and 13C NMR chemical shifts of compounds Ⅱ-Ⅳ, three new compounds, were acquired by means of 2D NMR spectra.Key words: Panax quinquefolium L., ginsenosides, alkaline degradation, aglyon; dammar-20(21),24-diene-3β, 6α,12β-triol ;20(S)-dammar-25(26)-ene-3β, 6α,12β,20,24ξ-pentanol ;20(S)-dammar-23-ene-25- hydroperoxyl-3β,6α,12β,20 -tetrol (Ⅳ); NMR complete assignments前已报道[ 1]从西洋参(Panax quinquefolium L. )茎叶皂苷碱降解产物中分离得到5种皂苷元，本文继续报道得自西洋参茎叶皂苷碱解产物中的另外4种微量达玛烷型皂苷元，其中化合物（Ⅱ）、（Ⅲ）、(Ⅳ)为三个新化合物，且以化合物(Ⅲ)、（Ⅳ）为苷元的人参皂苷在西洋参中尚未发现。
西洋参中皂苷类成分的研究作者：鲍建材、刘刚、郑友兰、张崇禧西洋参（Panax quinquefolius L.）系五加科人参属植物，原产于加拿大和美国，由于其具有广泛的生物活性和独特的药理作用，多年来一直深受世界各国人民的喜爱。
西洋参中的化学成分比较复杂，包括皂苷类、挥发油类、氨基酸类、糖类和聚炔类等，但主要是皂苷类成分。
人类对西洋参的研究可追溯到19世纪，早在1854年美国一学者便从西洋参中分离得到了第一个皂苷类成分，但对西洋参全面深人的研究却始于20世纪70年代。
迄今为止，中外学者已从西洋参中分离鉴定出的皂苷类成分有3种：达玛烷型（Dammarane），齐墩果烷型（Oleanane），奥克梯隆醇型（Ocotillol）。
而分离出的人参皂苷40余种。
根中皂苷的研究1976年，李向高从美国产西洋参中分离得到3种皂苷元，即人参二醇、人参三醇和齐墩果酸皂苷元。
1978年日本学者真田修一等从日本长野引种的西洋参中分离出人参皂苷Ro、Rb1、Rb2、RC、Rd、Re。
1982年Besso，H．等分离出7种皂苷，即Rg1、Rg2、Rb3、Rb1、F2，绞股蓝皂苷Ⅺ和西洋参皂苷R1（quenquinoside-R1）。
张崇禧从国产西洋参中分得人参皂苷RO、Rb1、Rb3。
Rc、Rd、Re等。
1983年魏均娴等从西洋参根中分得Ro、Rb1、Rg1、Re和pseudo-ginsenoside-F11（简称P-F11），P-F11是西洋参中的特有成分，是鉴别西洋参和人参的显著标志。
1985年松浦等从西洋参根中分离出13种皂苷，包括人参皂苷Rb1。
Rb2、Rb3、Rc、Rd、Re、Rg1、Rg2、F2。
拟人参皂苷F11（pseudoginsenoside-F11），绞股蓝苷XVⅡ（gynostenoside-XV Ⅱ）和一种新的皂苷，即西洋参皂苷R1。
1987年徐绥绪等从辽宁栽培的西洋参根中分得：RO、Rb1、Rb2、Rd、Re、Rg1。
ＨＰＬＣ－ＰＡＤ法测定西洋参类保健食品中１０种皂苷的含量吴晓云ꎬ刁飞燕ꎬ李秀慧ꎬ刘春霖ꎬ李启艳(山东省食品药品检验研究院ꎬ山东济南２５０１０１)摘要:目的㊀建立同时测定西洋参类保健食品中人参皂苷Ｒｇ１㊁Ｒｇ２㊁Ｒｇ３㊁Ｒｂ１㊁Ｒｂ２㊁Ｒｂ３㊁Ｒｃ㊁Ｒｄ㊁Ｒｅ㊁Ｒｆ含量的高效液相色谱－二极管阵列检测法(ＨＰＬＣ－ＰＡＤ)ꎮ方法㊀采用ＫｒｏｍａｓｉｌＣ１８(４.６ｍｍˑ２５０ｍｍꎬ５μｍ)色谱柱ꎻ以乙腈(Ａ)－水(Ｂ)为流动相进行梯度洗脱ꎻ流速１.０ｍＬ ｍｉｎ－１ꎻ检测波长２０３ｎｍꎻ柱温３５ħꎮ结果㊀１０种人参皂苷的浓度在其各自线性范围内ꎬ与峰面积呈良好的线性关系ꎬｒ值均ȡ０.９９ꎮ该方法平均回收率为９３.０％~１０１.８％ꎬＲＳＤ均小于４.０％(ｎ＝６)ꎮ结论㊀本法准确可靠㊁灵敏度高㊁重现性好ꎬ可作为西洋参类保健食品的质量控制方法ꎮ关键词:高效液相色谱－二极管阵列检测法ꎻ保健食品ꎻ西洋参ꎻ人参皂苷中图分类号:Ｒ９２７.２㊀文献标识码:Ａ㊀文章编号:２０９５－５３７５(２０２０)０６－０３３６－００５ｄｏｉ:１０.１３５０６/ｊ.ｃｎｋｉ.ｊｐｒ.２０２０.０６.００６Ｓｉｍｕｌｔａｎｅｏｕｓｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｏｆ１０ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅｓｉｎｈｅａｌｔｈｆｏｏｄｏｆＰａｎａｘＱｕｉｎｑｕｅｆｏｌｉｕｍｂｙＨＰＬＣ－ＰＡＤＷＵＸｉａｏｙｕｎꎬＤＩＡＯＦｅｉｙａｎꎬＬＩＸｉｕｈｕｉꎬＬＩＵＣｈｕｎｌｉｎꎬＬＩＱｉｙａｎ(ＳｈａｎｄｏｎｇＩｎｓｔｉｔｕｔｅｆｏｒＦｏｏｄａｎｄＤｒｕｇＣｏｎｔｒｏｌꎬＪｉｎａｎ２５０１０１ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ:Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ㊀ＴｏｅｓｔａｂｌｉｓｈａｎＨＰＬＣ－ＰＡＤｍｅｔｈｏｄｆｏｒｔｈｅｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｏｆ１０ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅｓ(ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅＲｇ１ꎬＲｇ２ꎬＲｇ３ꎬＲｂ１ꎬＲｂ２ꎬＲｂ３ꎬＲｃꎬＲｄꎬＲｅａｎｄＲｆ)ｉｎｈｅａｌｔｈｆｏｏｄｏｆＰａｎａｘｑｕｉｎｑｕｅｆｏｌｉｕｍ.Ｍｅｔｈｏｄｓ㊀ＴｈｅａｎａｌｙｓｉｓｗａｓｃａｒｒｉｅｄｏｕｔｏｎａｎａｎａｌｙｔｉｃａｌｃｏｌｕｍｎＫｒｏｍａｓｉｌＣ１８(４.６ｍｍˑ２５０ｍｍꎬ５μｍ)ｗｉｔｈｇｒａｄｉｅｎｔｅｌｕｔｉｏｎｂｙａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ(Ａ)－ｗａｔｅｒ(Ｂ)ꎬａｔｔｈｅｄｅｔｅｃｔｉｏｎｗａｖｅｌｅｎｇｔｈｏｆ２０３ｎｍａｎｄａｆｌｏｗｒａｔｅｏｆ１.０ｍＬ ｍｉｎ－１.Ｔｈｅｃｏｌｕｍｎｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｗａｓ３５ħ.Ｒｅｓｕｌｔｓ㊀Ａｌｌｃａｌｉ￣ｂｒａｔｉｏｎｃｕｒｖｅｓｓｈｏｗｅｄｇｏｏｄｌｉｎｅａｒｉｔｙｗｉｔｈｉｎｔｈｅｉｒｌｉｎｅａｒｒａｎｇｅｓ(ｒȡ０.９９).Ｔｈｅａｖｅｒａｇｅｒｅｃｏｖｅｒｉｅｓｗｅｒｅｂｅｔｗｅｅｎ９３.０％~１０１.８％ꎬＲＳＤ<４.０％(ｎ＝６).Ｃｏｎｃｌｕｔｉｏｎ㊀ＴｈｉｓｍｅｔｈｏｄｗａｓａｃｃｕｒａｔｅꎬｈｉｇｈｌｙｓｅｎｓｉｔｉｖｅａｎｄｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｌｅꎬａｎｄｃａｎｂｅｕｓｅｄｔｏｃｏｎｔｒｏｌｔｈｅｑｕａｌｉｔｙｏｆｈｅａｌｔｈｆｏｏｄｏｆＰａｎａｘＱｕｉｎｑｕｅｆｏｌｉｕｍ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ:ＨＰＬＣ－ＰＡＤꎻＨｅａｌｔｈｆｏｏｄꎻＰａｎａｘＱｕｉｎｑｕｅｆｏｌｉｕｍꎻＧｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ㊀㊀西洋参为五加科人参属植物ꎬ是名贵的中药材ꎬ人参皂苷是其主要活性成分ꎬ主要有人参皂苷Ｒｇ１㊁Ｒｂ１㊁Ｒｂ２㊁Ｒｃ㊁Ｒｄ和Ｒｅ等ꎮ以西洋参为原料的保健食品具有缓解体力疲劳ꎬ增强免疫力㊁抗氧化和抗肿瘤等作用[１]ꎮ目前ꎬ西洋参类保健食品的剂型有硬胶囊㊁软胶囊㊁片剂和口服溶液等ꎬ主要以总皂苷作为标志性成分ꎬ总皂苷的测定主要采用香草醛－高氯酸或硫酸显色后用紫外分光光度法测定[２]ꎬ该方法存在专属性差ꎬ操作复杂和干扰因素多等缺点ꎮ为此ꎬ徐灿辉等[３]改进了西洋参类保健食品中人参皂苷测定方法ꎬ建立了西洋参类保健食品中７种参皂苷含量高效液相色谱(ＨＰＬＣ)测定的方法ꎮ此外ꎬ人参皂苷测定方法还有超高效液相色谱(ＵＰ￣ＬＣ)[４]㊁高效液相色谱－质谱联用法(ＨＰＬＣ－ＭＳ)[５－６]等ꎮ在众多资料中ꎬ主要研究西洋参根茎叶提取物中人参皂苷含量ꎬ但对西洋参类保健食品中１０种人参皂苷含量测定的报道较少ꎮ本试验通过参考西洋参药材中皂苷测定的有关文献[７－９]ꎬ建立高效液相色谱法同时测定多种剂型西洋参类保健食品中１０种人参皂苷ꎬ为质量标准的提升提供依据ꎮ１㊀试验部分１.１㊀仪器㊀液相色谱仪(Ａｇｉｌｅｎｔ１２６０高效液相色谱仪ꎬ美国安捷伦公司)ꎬ配二极管阵列检测器㊀作者简介:吴晓云ꎬ女ꎬ主管药师ꎬ研究方向:保健食品化妆品检验ꎬＥ－ｍａｉｌ:ｗｕｘｉａｏｙｕｎ８２３＠１２６.ｃｏｍ㊀通信作者:李启艳ꎬ女ꎬ博士研究生ꎬ副主任药师ꎬ研究方向:保健食品化妆品检验ꎬＴｅｌ:０５３１－８１２１６７０８ꎬＥ－mail:152****8118＠１６３.ｃｏｍ(ＰＡＤ)ꎻ电子天平(ＭｅｔｔｌｅｒＴｏｌｅｄｏＭＳꎬ梅特勒－托利多)ꎻ数控超声波清洗器(ＫＱ－５００ＤＥ型ꎬ昆山市超声仪器有限公司)ꎻ恒温水浴锅(北京永光明)ꎮ１.２㊀试药与供试品㊀乙腈(色谱纯ꎬＨｏｎｅｙｗｅｌｌ)ꎻ甲醇(色谱纯ꎬＨｏｎｅｙｗｅｌｌ)ꎻ超纯水ꎻ正丁醇(分析纯ꎬ国药集团)ꎻ氨水(分析纯ꎬ国药集团)ꎮ标准品:人参皂苷Ｒｂ１㊁Ｒｂ２㊁Ｒｂ３㊁Ｒｇ１㊁Ｒｇ３㊁Ｒｄ㊁Ｒｅ由中国食品药品检定研究院提供ꎬ含量分别为９５.９％㊁９３.８％㊁９７.０％㊁９６.３％㊁１００％㊁９４.４％㊁９７.４％ꎬ人参皂苷Ｒｇ２㊁Ｒｃ㊁Ｒｆ由上海甄准生物科技有限公司提供ꎬ含量分别为９８.０２％㊁９９.１１％㊁９９.６２％ꎮ供试品均由市场购得ꎬ名称与剂型见表１ꎮ表１㊀１２种供试品的名称和剂型名称剂型Ｓ０１康富来牌西洋参口服液口服溶液Ｓ０２金日牌西洋参口服液口服溶液Ｓ０３新光牌西洋参口服液口服溶液Ｓ０４日圣牌西洋参氨基酸口服液口服溶液Ｓ０５无限能牌西洋参胶囊硬胶囊Ｓ０６雪佳牌西洋参珍珠胶囊硬胶囊Ｓ０７康富丽牌洋参淫羊藿软胶囊软胶囊Ｓ０８福来了牌西洋参含片片剂Ｓ０９喜之源牌西洋参含片片剂Ｓ１０金日牌西洋参含片片剂Ｓ１１康富来牌洋参含片片剂Ｓ１２百合康牌螺旋藻洋参片片剂２ 方法与结果２.１㊀色谱条件㊀色谱柱:ＫｒｏｍａｓｉｌＣ１８(４.６ｍｍˑ２５０ｍｍꎬ５μｍ)ꎻ流动相:乙腈(Ａ)－水(Ｂ)ꎬ梯度洗脱(０~４０ｍｉｎꎬ１７％Ａң１９％Ａꎻ４０~６０ｍｉｎꎬ１９％Ａң２９％Ａꎻ６０~７５ｍｉｎꎬ２９％Ａꎻ７５~１００ｍｉｎꎬ２９％Ａң４０％Ａꎻ１００~１０５ｍｉｎꎬ４０％Ａң１７％Ａ)ꎻ流速１.０ｍＬ ｍｉｎ－１ꎻ检测波长２０３ｎｍꎻ柱温３５ħꎻ进样量:１０μＬꎮ２.２㊀对照品储备液及对照品混合工作液配制㊀分别精密称定人参皂苷Ｒｇ１㊁Ｒｇ２㊁Ｒｇ３㊁Ｒｂ１㊁Ｒｂ２㊁Ｒｂ３㊁Ｒｃ㊁Ｒｄ㊁Ｒｅ㊁Ｒｆ对照品适量ꎬ置于２５ｍＬ量瓶中ꎬ用甲醇溶解并定容ꎬ制成人参皂苷单体浓度分别为２.４０９㊁２.１４１㊁０.０４７１２㊁１.９４７㊁１.７５８㊁２.１３８㊁２.２５０㊁２.０６２㊁２.０７７㊁２.００８ｍｇ ｍＬ－１的对照品储备液ꎮ分别取１０种人参皂苷对照品储备液适量ꎬ加甲醇稀释制成６个浓度的混合对照品工作液ꎮ２.３㊀供试品溶液的制备２.３.１㊀片剂㊁胶囊剂供试品溶液的制备㊀片剂㊁胶囊剂ꎬ取内容物研磨混匀后ꎬ片剂２ｇꎬ胶囊剂１ｇꎬ精密称定ꎬ置于１００ｍＬ锥形瓶中ꎬ精密加水饱和正丁醇５０ｍＬꎬ密塞ꎬ放置过夜ꎬ超声处理(功率２５０Ｗꎬ频率５０ｋＨｚ)３０ｍｉｎꎬ滤过ꎬ弃去初滤液ꎬ精密量取续滤液２０ｍＬꎬ用氨试液洗涤两次ꎬ每次２０ｍＬꎬ正丁醇提取液蒸干后ꎬ残渣加甲醇适量使溶解ꎬ作为供试品溶液ꎮ２.３.２㊀口服溶液供试品溶液的制备㊀口服溶液ꎬ精密量取８.０ｍＬ供试品至分液漏斗中ꎬ用水饱和正丁醇振摇提取３次ꎬ每次１０ｍＬꎬ合并正丁醇提取液ꎬ用氨试液洗涤２次ꎬ每次１０ｍＬꎬ正丁醇提取液蒸干后ꎬ残渣加甲醇适量使溶解ꎬ作为供试品溶液ꎮ２.４㊀线性关系考察㊀分别取６个浓度的混合对照品工作液ꎬ进样１０μＬꎬ记录峰面积ꎬ以对照品浓度Ｘ(μｇ ｍＬ－１)为横坐标ꎬ对照品的峰面积Ｙ为纵坐标ꎬ绘制标准曲线ꎬ求得回归方程ꎮ得到１０种人参皂苷在相应线性范围内均具有良好的线性ꎬ相关系数都在０.９９以上ꎬ结果见表２ꎮ表２㊀标准曲线方程的结果成分标准曲线方程相关系数(ｒ)线性范围/μｇ ｍＬ－１Ｒｇ１Ｒｇ２Ｒｇ３Ｒｂ１Ｒｂ２Ｒｂ３ＲｃＲｄＲｅＲｆＹ＝１.７７０Ｘ＋４.６１３Ｙ＝３.０８４Ｘ＋２.０２１Ｙ＝２.３８１Ｘ－０.３５８４Ｙ＝２.３７７Ｘ＋２９.６７Ｙ＝２.４３３Ｘ＋１.３１９Ｙ＝２.５２０Ｘ＋２.２１０Ｙ＝２.８０６Ｘ＋３.６２９Ｙ＝２.３０３Ｘ－１２.９３Ｙ＝２.８５６Ｘ＋６.０６３Ｙ＝３.９８２Ｘ＋２.２５７０.９９９９０.９９９９０.９９９９０.９９９８０.９９９９０.９９９９０.９９９９０.９９９８０.９９９９０.９９９９４.８１８~２４０.９４.２８２~２１４.１１.１７８~４７.１２３.８９４~１９４.７３.５１６~１７５.８４.２７６~２１３.８４.５００~２２５.０４.１２４~２０６.２４.１５４~２０７.７４.０１６~２００.８２.５㊀试样重复性试验㊀准确量取６份口服溶液供试品(Ｓ０１)８.０ｍＬ至分液漏斗中ꎬ以下按 ２.３.２ 项下方法操作ꎬ制备供试品溶液ꎮ准确称取６份胶囊剂供试品(Ｓ０５)１ｇꎬ６份片剂供试品(Ｓ０８)２ｇꎬ置于１００ｍＬ锥形瓶中ꎬ以下按 ２.３.１ 项下方法操作ꎬ制备供试品溶液ꎮ分别取３种剂型供试品溶液１０μＬ注入液相色谱仪ꎬ以保留时间定性ꎬ测定峰面积ꎬ计算供试品中１０种人参皂苷的含量ꎮ３种剂型供试品中人参皂苷含量ＲＳＤ(ｎ＝６)均小于３％ꎬ结果表明方法重复性良好ꎬ结果见表３ꎮ２.６㊀系统适应性考察㊀取１０种人参皂苷混合对照品工作液１０μＬ进样ꎬ计算１０种人参皂苷的理论板数ꎮ得到人参皂苷Ｒｇ３㊁Ｒｇ１㊁Ｒｅ㊁Ｒｆ㊁Ｒｇ２㊁Ｒｂ１㊁Ｒｃ㊁Ｒｂ２㊁Ｒｂ３㊁Ｒｄ的理论板数分别为１０３４２７㊁５０７３２㊁１０４４９０㊁１５７２８４㊁１２０４５７㊁８２８７６㊁２５３４４０㊁２６０９９１㊁４１０６２８㊁２３９５５４ꎬ分离度分别为５.４㊁１.６㊁３２.６㊁１５.１㊁２.２㊁４.０㊁４.８㊁１.６㊁８.０ꎮ对于供试品ꎬ虽然存在基质干扰影响分离度ꎬ但是３种剂型供试品中１０种人参皂苷均能达到基线分离ꎬ分离度均能达到１.５以上ꎮ表３㊀重复性试验结果剂型口服溶液(Ｓ０１)胶囊剂(Ｓ０５)片剂(Ｓ０８)含量平均值/ｍｇ ｍＬ－１ＲＳＤ(％)含量平均值/ｍｇ ｇ－１ＲＳＤ(％)含量平均值/ｍｇ ｇ－１ＲＳＤ(％)Ｒｇ３０.０２０２.６０.９３５２.４０.２１１２.３Ｒｇ１０.０４０２.０４.６７３１.９０.１２２２.５Ｒｅ０.０５１１.７１９.３２５２.１０.２３４１.７Ｒｆ０.０２１２.９－－－－Ｒｇ２０.２９６０.６２.６５２１.３０.２１７１.４Ｒｂ１０.４３５０.６４８.６２６０.７０.４２４１.２Ｒｃ０.１５９１.０１１.８４２１.１１.７４６１.７Ｒｂ２０.１２０１.２２.１６１１.６１.４７１１.５Ｒｂ３０.０５４２.６３.６５４２.３３.０３０２.５Ｒｄ０.４８１０.８２１.５００１.３０.８２９１.８㊀注: － 表示未检出或低于定量限２.７㊀精密度试验㊀取１０种人参皂苷混合对照品工作液１０μＬ连续进样５次ꎬ以测得的峰面积响应值作评价标准ꎬ得到１０种人参皂苷的ＲＳＤ(ｎ＝５)均小于３.０％ꎬ表明在本方法仪器条件下ꎬ仪器精密度良好ꎮ２.８㊀稳定性试验㊀分别取供试品Ｓ０１㊁Ｓ０５㊁Ｓ０８ꎬ按 ２.３ 项下方法操作ꎬ得到供试品溶液ꎬ室温下放置２４ｈꎬ分别在０㊁２㊁４㊁８㊁１２㊁２４ｈ取１０μＬ进样ꎬ得到１０种人参皂苷峰面积ＲＳＤ(ｎ＝６)都在３.０％以内ꎬ表明供试品溶液在２４ｈ内稳定ꎮ２.９㊀回收率试验㊀准确量取６份已知含量的供试品(Ｓ０１)４.０ｍＬ至分液漏斗中ꎬ分别精密加入人参皂苷对照品储备液适量(对照品加入量与供试品中各人参皂苷含量之比为１ʒ１)ꎬ以下按 ２.３.２ 项下方法操作ꎬ即可得到加标溶液ꎮ准确称取已知含量的供试品(Ｓ０５)０.５ｇꎬ供试品(Ｓ０８)１ｇꎬ各６份ꎬ分别精密加入人参皂苷对照品储备液适量(对照品加入量与供试品中各人参皂苷含量之比为１ʒ１)ꎬ置于１００ｍＬ锥形瓶中ꎬ以下按 ２.３.１ 项下方法操作ꎬ即可得到加标溶液ꎮ取１０μＬ注入液相色谱仪ꎬ以保留时间定性ꎬ测定峰面积ꎬ得到１０种人参皂苷的平均加样回收率(ｎ＝６)ꎬＲＳＤ均小于４.０％ꎬ结果见表４ꎮ表４㊀回收率结果剂型成分口服溶液(Ｓ０１)胶囊剂(Ｓ０５)片剂(Ｓ０８)试样平均含量/ｍｇ平均回收率(％)ＲＳＤ(％)试样平均含量/ｍｇ平均回收率(％)ＲＳＤ(％)试样平均含量/ｍｇ平均回收率(％)ＲＳＤ(％)Ｒｇ３０.０８０９６.３２.１０.４６８９３.３１.９０.２１１９７.９２.５Ｒｇ１０.１６０９８.２３.３２.３３７９９.１２.８０.１２２９５.０２.６Ｒｅ０.２０４９６.６３.２９.６６６１００.３３.１０.２３４１０１.８３.６Ｒｆ０.０８４９８.８１.０－１０１.２１.５－１０１.３３.４Ｒｇ２１.１８４９４.４１.０１.３２７９３.７１.７０.２１７１００.４２.１Ｒｂ１１.７４０９６.４１.５２４.３２３９６.５１.４０.４２５９５.５２.４Ｒｃ０.６３６９４.４１.３５.９２３９８.２２.５１.７５０９６.２２.６Ｒｂ２０.４８０９６.０２.３１.０８１９３.９２.４１.４７４９７.５２.８Ｒｂ３０.２１６９３.０２.５１.８２８１００.１２.６３.０３６１０１.２３.２Ｒｄ１.９２４９３.３１.５１０.７５４９８.６２.２０.８３１９４.０２.４㊀注: － 表示未检出或低于定量限２.１０㊀检出限与定量限㊀Ｓ/Ｎ＝３时ꎬ得到检出限ＬＯＤꎬ人参皂苷Ｒｇ１㊁Ｒｇ２㊁Ｒｇ３㊁Ｒｂ１㊁Ｒｂ２㊁Ｒｂ３㊁Ｒｃ㊁Ｒｄ㊁Ｒｅ㊁Ｒｆ检出限分别为０.００２４㊁０.００２１㊁０.００２９㊁０.００１９㊁０.００１８㊁０.００２１㊁０.００２２㊁０.００２１㊁０.００２１㊁０.００２０μｇꎻＳ/Ｎ＝１０时ꎬ得到定量限ＬＯＱꎬ定量限分别为０.００６０㊁０.００５４㊁０.００７４㊁０.００５０㊁０.００４４㊁０.００５３㊁０.００５６㊁０.００５２㊁０.００５２㊁０.００５０μｇꎮ２.１１㊀供试品的测定㊀取１２批供试品ꎬ按照按 ２.３ 制备供试品溶液ꎬ每批平行处理２份ꎬ按上述色谱条件进行测定ꎬ将峰面积代入 ２.４ 线性回归方程计算含量ꎬ结果见图１~２及表５ꎮ表５㊀供试品中１０种成分含量测定结果含量/ｍｇ ｍＬ－１或ｍｇ ｇ－１编号Ｓ０１Ｓ０２Ｓ０３Ｓ０４Ｓ０５Ｓ０６Ｓ０７Ｓ０８Ｓ０９Ｓ１０Ｓ１１Ｓ１２Ｒｇ３０.０２００.００９０.０１００.０７８０.９３５０.１６９０.４９４０.２１１０.２１２０.２７５０.４１７０.４８９Ｒｇ１０.０４００.０７１０.０１５－４.６７３０.７６７１.７２２０.１２２０.２０９０.６７４０.８９３０.４３６Ｒｅ０.０５１０.２４００.０６６－１９.３２５１.４１８４.１２７０.２３４０.７０９３.０８５３.８０９１.３５０Ｒｆ０.０２１－－０.０１９－０.０２５－－－－０.０１６－Ｒｇ２０.２９６０.０６２０.１４７－２.６５２０.５４５１.０２４０.２１７０.１１３０.０８４０.２３９０.２６１Ｒｂ１０.４３５０.６６５０.６３１－４８.６２６１.３５４０.４０７０.４２４０.１０２６.７７７８.６３３－Ｒｃ０.１５９０.１２００.０８３－１１.８４２０.６５６０.６７５１.７４６０.６３７２.０６６２.７６６０.０９３Ｒｂ２０.１２００.０３９０.０１９－２.１６１０.３６１１.９８７１.４７１０.３８２０.３３９０.４８７０.５３６Ｒｂ３０.０５４０.０９５０.０２３－３.６５４０.３６９６.７５８３.０３０１.５６５０.５９００.８３４２.２２９Ｒｄ０.４８１０.２７３０.２３８－２１.５００１.４９８６.０１６０.８２９０.９７６３.２０３３.７５２３.１５４合计１.６８１.５７１.２３０.１０１１５.３７７.１６２３.２１８.２８４.９１１７.０９２１.８５８.５５㊀注: － 表示未检出或低于定量限㊀１.Ｒｇ３(２０.０ｍｉｎ)ꎻ２.Ｒｇ１(４５.０ｍｉｎ)ꎻ３.Ｒｅ(４５.８ｍｉｎ)ꎻ４.Ｒｆ(６５.９ｍｉｎ)ꎻ５.Ｒｇ２(７７.６ｍｉｎ)ꎻ６.Ｒｂ１(８０.０ｍｉｎ)ꎻ７.Ｒｃ(８３.６ｍｉｎ)ꎻ８.Ｒｂ２(８６.９ｍｉｎ)ꎻ９.Ｒｂ３(８７.８ｍｉｎ)ꎻ１０.Ｒｄ(９３.０ｍｉｎ)图１㊀１０种人参皂苷对照品图谱㊀１.Ｒｇ３(２０.０ｍｉｎ)ꎻ２.Ｒｇ１(４５.０ｍｉｎ)ꎻ３.Ｒｅ(４５.８ｍｉｎ)ꎻ４.Ｒｆ(６５.９ｍｉｎ)ꎻ５.Ｒｇ２(７７.６ｍｉｎ)ꎻ６.Ｒｂ１(８０.０ｍｉｎ)ꎻ７.Ｒｃ(８３.６ｍｉｎ)ꎻ８.Ｒｂ２(８６.９ｍｉｎ)ꎻ９.Ｒｂ３(８７.８ｍｉｎ)ꎻ１０.Ｒｄ(９３.０ｍｉｎ)图２㊀供试品Ｓ０１中１０种人参皂苷图谱３ 讨论３.１㊀前处理考察㊀由于保健食品剂型种类多ꎬ而每种剂型的基质比较复杂ꎬ导致１０种人参皂苷更难同时分离ꎮ首先ꎬ通过比较３种不同的提取试剂ꎬ水饱和正丁醇㊁甲醇和乙醇ꎬ最终得到水饱和正丁醇提取效率最高ꎮ其次ꎬ选用水饱和正丁醇分别采用回流提取㊁液－液萃取㊁浸泡放置过夜超声提取和直接超声提取４种提取方式进行比较ꎬ结果表明:对于片剂和胶囊剂ꎬ浸泡过夜超声提取与回流提取得到皂苷含量最高ꎬ又因为前者操作简单ꎬ且提取的多糖等杂质较少ꎬ最终采用浸泡过夜超声提取ꎻ对于口服溶液ꎬ回流提取与液－液萃取都能得到较高总皂苷含量ꎬ优先选取重现性好且操作较简单的处理方法ꎬ因此采用水饱和正丁醇振摇多次萃取ꎮ３.２㊀流动相及梯度的选择㊀本文对甲醇－水ꎬ乙腈－水和乙腈－０.１％磷酸溶液３种不同流动相进行比较ꎬ结果表明ꎬ人参皂苷在低波长范围内检测时ꎬ乙腈比甲醇背景噪音低ꎬ可获得较好的分离效果ꎬ并且乙腈与水混合黏度小ꎬ可以有效降低系统压力ꎬ而加入磷酸对整体分离情况没有明显改善且磷酸盐对色谱柱损耗大ꎬ最终选择乙腈－水作为最佳流动相ꎮ１０种人参皂苷中Ｒｇ１和ＲｅꎬＲｂ２和Ｒｂ３较难分离ꎮ人参皂苷Ｒｇ１和Ｒｅ极性非常相似ꎬ较难分离ꎬ且供试品在人参皂苷Ｒｇ１和Ｒｅ附近有杂质干扰ꎬ最终选择合适梯度ꎬ在４５ｍｉｎ左右达到基线分离ꎮＲｂ２和Ｒｂ３是同分异构体ꎬ并且两者含量很低ꎬ容易包裹在杂质峰中ꎬ本试验在保证峰形和柱效的前提下完成了两种皂苷的基线分离ꎮ故最终采用梯度洗脱使每种皂苷达到较好分离效果ꎮ３.３㊀样品测定结果分析㊀由表５可见ꎬ１２批供试品１０种皂苷含量之和差异很大ꎬ含量最高的为硬胶囊ꎬ片剂和软胶囊次之ꎬ口服溶液最低ꎮ每批供试品中ꎬ单种人参皂苷占１０种皂苷比例各不相同ꎬ经过分析发现ꎬＲｂ１㊁Ｒｃ㊁Ｒｄ㊁Ｒｅ４种所占比例最大ꎬ７批供试品含这４种皂苷比例为６７.０％~８８.５％ꎬ４批供试品的比例为３９.０％~５３.８％ꎬ１种供试品(Ｓ０４)比例为０ꎮ对于供试品(Ｓ０４)ꎬ根据«保健食品检验与评价技术规范»(２００３年版)中规定的紫外分光光度法进行总皂苷检测ꎬ得到总皂苷含量为８０ｍｇ １００ｍＬ－１ꎮ本文建立的ＨＰＬＣ－ＰＡＤ法可对西洋参类保健食品中皂苷成分进行初步鉴定ꎬ最终用紫外分光光度法进行总皂苷检测ꎮ４ 结论本文共收集口服溶液㊁片剂和胶囊剂１２批西洋参类保健食品ꎬ通过测定其线性范围㊁系统适用性㊁重复性㊁精密度㊁稳定性㊁检出限㊁定量限和回收率试验ꎬ结果令人满意ꎮ试验表明ꎬ在本文供试品制备方法和色谱条件下ꎬ人参皂苷Ｒｇ３㊁Ｒｇ１㊁Ｒｅ㊁Ｒｆ㊁Ｒｇ２㊁Ｒｂ１㊁Ｒｃ㊁Ｒｂ２㊁Ｒｂ３㊁Ｒｄ能够达到完全分离ꎬ所建立的方法操作简便ꎬ重复性好ꎬ可以用来对以西洋参为原料的保健食品进行质量控制ꎮ参考文献:[１]㊀尚金燕ꎬ李桂荣ꎬ邵明辉ꎬ等.西洋参的药理作用研究进展[Ｊ].人参研究ꎬ２０１６ꎬ２８(６):４９－５１.[２]杜金凤ꎬ宋鉴达ꎬ朱传翔ꎬ等.比色法测定人参保健饮料中人参总皂苷含量[Ｊ].现代食品ꎬ２０１７ꎬ６(１１):７９－８０. [３]徐灿辉ꎬ何维为.西洋参保健食品中７种人参皂苷的高效液相色谱法测定[Ｊ].食品与药品ꎬ２０１５ꎬ１７(４):２７３－２７７.[４]崔勇ꎬ李青ꎬ刘思洁ꎬ等.固相萃取－超高效液相色谱法同时测定人参中１１种人参皂苷的含量[Ｊ].中国卫生检验杂志ꎬ２０１２ꎬ２２(３):４７５－４７７.[５]黄艳菲ꎬ刘永恒ꎬ李艳丹ꎬ等.ＨＰＬＣ－ＭＳｎ法测定加拿大原产地西洋参不同入药部位的人参皂苷含量[Ｊ].中国实验方剂学杂志ꎬ２０１３ꎬ１９(１１):８６－９１.[６]张海江ꎬ蔡小军ꎬ程翼宇.高效液相色谱－电喷雾质谱法鉴别人参㊁西洋参和三七的皂苷提取物[Ｊ].中国药学杂志ꎬ２００６ꎬ４１(５):３９１－３９４.[７]毕福钧ꎬ钟顺好ꎬ顾利红.ＲＲＬＣ法与ＨＰＬＣ法在红参和西洋参人参皂苷含量测定中的分析比较[Ｊ].药物分析杂志ꎬ２０１０ꎬ３０(９):１７２０－１７２４.[８]张崇禧ꎬ鲍建才ꎬ李向高ꎬ等.ＨＰＬＣ法测定人参㊁西洋参和三七不同部位中人参皂苷的含量[Ｊ].药物分析杂志ꎬ２００５ꎬ２５(１０):１１９０－１１９４.[９]薛燕ꎬ闻莉.西洋参根及茎叶皂苷提取物中１２种主要皂苷成分的分析研究[Ｊ].药物分析杂志ꎬ２００９ꎬ２９(１):７９－８１.(上接第３３５页)参考文献:[１]㊀ＤＵＭＯＲＴＩＥＲＧꎬＧＲＯＳＳＩＯＲＤＪＬꎬＡＧＮＥＬＹＦꎬｅｔａｌ.ＡＲｅｖｉｅｗｏｆＰｏｌｏｘａｍｅｒ４０７ＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌａｎｄＰｈａｒｍａｃｏ￣ｌｏｇｉｃａｌＣｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ[Ｊ].ＰｈａｒｍＲｅｓꎬ２００６ꎬ２３(１２):２７０９－２７２８.[２]国家药典委员会.中华人民共和国药典２０１５年版(四部)[Ｓ].北京:中国医药科技出版社ꎬ２０１５:５３０. [３]ＪＩＡＯＪ.Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌａｔｅｄｎｏｎｉｏｎｉｃｓｕｒｆａｃｔａｎｔｓａｎｄｔｈｅｉｒａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｉｎｔｏｐｉｃａｌｏｃｕｌａｒｄｒｕｇｄｅｌｉｖｅｒｙ[Ｊ].ＡｄｖＤｒｕｇＤｅｌｉｖＲｅｖꎬ２００８ꎬ６０(１５):１６６３－１６７３.[４]ＳＭＩＴＨＣＭꎬＨＥＢＢＥＬＲＰꎬＴＵＫＥＹＤＰꎬｅｔａｌ.ＰｌｕｒｏｎｉｃＦ－６８ｒｅｄｕｃｅｓｔｈｅｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌａｄｈｅｒｅｎｃｅａｎｄｉｍｐｒｏｖｅｓｔｈｅｒｈｅｏｌｏｇｙｏｆｌｉｇａｎｄｅｄｓｉｃｋｌｅｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅｓ[Ｊ].Ｂｌｏｏｄꎬ１９８７ꎬ６９(６):１６３１－１６３６.[５]ＡＲＭＳＴＲＯＮＧＪ.Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎｏｆｒｅｄｂｌｏｏｄｃｅｌｌ－ｉｎｄｕｃｅｄｐｌａｔｅｌｅｔａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎｉｎｗｈｏｌｅｂｌｏｏｄｂｙａｎｏｎｉｏｎｉｃｓｕｒｆａｃ￣ｔａｎｔꎬｐｏｌｏｘａｍｅｒ１８８(ＲｈｅｏｔｈＲｘｉｎｊｅｃｔｉｏｎ)[Ｊ].ＴｈｒｏｍｂＲｅｓꎬ１９９５ꎬ７９(５－６):４３７－４５０.[６]ＨＯＰＰＥＮＳＴＥＡＤＴＤꎬＥＭＡＮＵＥＬＥＭꎬＭＯＬＮＡＲＪꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｏｆｐｕｒｉｆｉｅｄｐｏｌｏｘａｍｅｒ１８８ａｎｄｖａｒｉｏｕｓｄｅｘｔｒａｎｓｏｎｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅｓｅｄｉｍｅｎｔａｔｉｏｎｒａｔｅｉｎｈｅａｌｔｈｙｓｕｂｊｅｃｔｓａｎｄｐａ￣ｔｉｅｎｔｓｗｉｔｈｓｉｃｋｌｅｃｅｌｌｄｉｓｅａｓｅ(１１３９.６)[Ｊ].ＦａｓｅｂＪꎬ２０１３ꎬ１２２(２１):４７６４.[７]ＷＡＮＧＴꎬＣＨＥＮＸꎬＷＡＮＧＺꎬｅｔａｌ.Ｐｏｌｏｘａｍｅｒ－１８８ＣａｎＡｔｔｅｎｕａｔｅＢｌｏｏｄ–ＢｒａｉｎＢａｒｒｉｅｒＤａｍａｇｅｔｏＥｘｅｒｔＮｅｕｒｏ￣ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅＥｆｆｅｃｔｉｎＭｉｃｅＩｎｔｒａｃｅｒｅｂｒａｌＨｅｍｏｒｒｈａｇｅＭｏｄｅｌ[Ｊ].ＪＭｏｌＮｅｕｒｏｓｃｉꎬ２０１５ꎬ５５(１):２４０－２５０.[８]ＧＵＪＨꎬＧＥＪＢꎬＬＩＭꎬｅｔａｌ.Ｐｏｌｏｘａｍｅｒ１８８ＰｒｏｔｅｃｔｓＮｅｕ￣ｒｏｎｓａｇａｉｎｓｔＩｓｃｈｅｍｉａ/ＲｅｐｅｒｆｕｓｉｏｎＩｎｊｕｒｙｔｈｒｏｕｇｈＰｒｅｓｅｒ￣ｖｉｎｇＩｎｔｅｇｒｉｔｙｏｆＣｅｌｌＭｅｍｂｒａｎｅｓａｎｄＢｌｏｏｄＢｒａｉｎＢａｒｒｉｅｒ[Ｊ].ＰＬｏＳＯｎｅꎬ２０１３ꎬ８(４):ｅ６１６４１.[９]ＭＯＧＨＩＭＩＳＭꎬＨＵＮＴＥＲＡＣ.Ｐｏｌｏｘａｍｅｒｓａｎｄｐｏｌｏｘａｍ￣ｉｎｅｓｉｎｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇａｎｄｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｍｅｄｉｃｉｎｅ[Ｊ].ＴｒｅｎｄｓＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌꎬ２０００ꎬ１８(１０):４１２－４２０.[１０]陆伟ꎬ朱友ꎬ别振英ꎬ等.顶空－气相色谱－质谱联用法同时测定食品包装纸中的环氧乙烷㊁环氧丙烷㊁环氧氯丙烷和二氧六环[Ｊ].食品安全质量检测学报ꎬ２０１６ꎬ７(１０):４１７４－４１７８.。
不同产地西洋参总皂苷及单体皂苷Rb1、Re、Rg1的含量测定魏晓雨;陈增松;田义新;赵智灵;魏伟【期刊名称】《人参研究》【年(卷),期】2016(028)005【摘要】目的测定国内外不同产地西洋参总皂苷及单体皂苷Rg1、Re、Rb1的含量.方法采用比色法测定总皂苷含量,用高效液相色谱测定单体皂苷含量.结果国内外不同产地西洋参中总皂苷及单体皂苷有较大差异,除吉林长白西洋参外,其他产地西洋参资源均符合国家标准.结论西洋参资源质量受生长环境影响较大,我国部分西洋参资源质量低于原产地,因此应加强西洋参的育种工作,为更好的利用和开发西洋参资源奠定实验基础.【总页数】4页(P19-22)【作者】魏晓雨;陈增松;田义新;赵智灵;魏伟【作者单位】吉林农业大学中药材学院,长春130118;长白县人参产业发展服务中心,长白134400;吉林农业大学中药材学院,长春130118;吉林农业大学中药材学院,长春130118;吉林农业大学中药材学院,长春130118【正文语种】中文【相关文献】1.不同时期人参、西洋参根中单体皂苷Rg1、Re、Rb1、Rb2含量的比较 [J], 李乐;张春阁;李小沛;吕林;赵立春;张亚玉2.西洋参中人参皂苷Rg1人参皂苷Re和人参皂苷Rb1的含量测定 [J], 刘莉;程龙琼;周世玉3.HPLC法测定不同产地西洋参中人参皂苷Rg1、人参皂苷Re、人参皂苷Rb1含量 [J], 李岚;陈华4.不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量比较 [J], 李义志;毛春芹;陆兔林;马新飞5.长芦人参、西洋参中总皂苷及单体皂苷Re,Rg1,Rb1的含量测定 [J], 姜婷;刘婷婷;李春雷;任跃英;骆长林;康岩因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
不同年生西洋参的植物形态和有效成分含量比较摘要：对1-4年生长白县栽培西洋参进行采收，研究不同年生西洋参植物形态和有效成分含量。
用比色法测定总皂苷含量，用常规方法测定折干率。
根据不同年生西洋参有效成分变化和产量形成规律，结果显示，吉林省长白县的西洋参最佳采收年限为4年。
关键词：西洋参；人参总皂苷中图分类号：S567.5+1 文献标识码：A 文章编号：1674-0432（2011）-12-0060-1基金项目：吉林省教育厅“十二五”科学技术研究项目——西洋参加工技术优化研究（吉教科合字[2011]第429号。
西洋参（Panax quinquefolium L.）主要以干燥的根供药用，西洋参以根入药，又称洋参、西洋人参、花旗参、美国人参和广东人参等[1]。
作为西洋参规范化种植的一项关键技术，其中比较重要的是产品质量问题，现有技术中，包括采收时间、加工工艺等共性技术均是影响西洋参产业发展关键因素。
因此有必要在已有的研究基础上，进一步对我国所有代表性西洋参产区的西洋参进行采收的共性问题进行研究。
根据国家有关西洋参质量控制的关键指标，提高我国产西洋参产品质量，弘扬西洋参在我国人民和世界人民医疗卫生事业中的作用。
1 材料与方法1.1 试验材料取吉林省长白县西洋参规范化种植基地的1-4年生的鲜西洋参样品，以皂苷等成分为参考指标，研究不同年生西洋参的生理状况和内在质量，以期确定其适宜采收年限。
1.2 试验方法1.2.1 总皂苷含量的测定总皂苷含量采用比色法[2]。
1.2.2 生理指标的测定总糖、还原糖和淀粉含量的测定采用3，5-二硝基水杨酸比色法；可溶性糖含量的测定采用蒽酮硫酸法；脂肪含量采用索氏抽提法；以上测定方法均参考文献[3]。
2 结果分析2.1 不同年生的西洋参的植物形态特征比较西洋参随着参龄增长，由于物质、能量的交换和积累而产生形态变化，各项植物形态特征变化均有一定的规律，将1-4年生西洋参不同部位的形态特征进行测定，形态特征具体记载方法参考文献[4]，测定数据为20株鲜西洋参的平均值，见表1。
不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Ｒｇ１、Ｒｅ、Ｒｂ１的含量比较【摘要】目的测定不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量。
方法利用紫外分光光度法、高效液相色谱法比较不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量。
结果不同产地的红参总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量相差相对较大。
结论应该重视红参的种植、采收、加工炮制等的进一步规范化研究。
【Abstract】Objective To compareginsenosides and ginsenosideRg1、Re、Rb1 contents of Red ginsengof different origins.Methods The content of ginsenosides was determined by UV and ginsenosideRg1，Re，Rb1by HPLC.Results The content of ginsenosides and ginsenosideRg1，Re，Rb1of different origins were relatively diffenent.Conclusion We should pay more attention to the standard research of agricultural and processing of red ginseng.【Key words】Red Ginseng；Ginsenosides；Ginsenoside Rg1、Re、Rb1红参(Radix et Rhizoma Ginseng Rubra)为五加科植物人参Panax ginseng C.A.Mey.的栽培品经蒸制后的干燥根及根茎，具有大补元气，复脉固脱，益气摄血之效，临床上用于体虚欲脱，肢冷脉微，气不摄血，崩漏下血；心力衰竭，心源性休克。
红参中主要含有:皂苷类、挥发性成分、脂溶性成分、多糖等，其中皂苷类为主要活性物质基础之一，但市场上的红参中皂苷类成分含量差异相对较大，本实验采用紫外分光光度法、高效液相色谱法比较不同产地红参中总皂苷及人参皂苷Rg1、Re、Rb1的含量。
HPLC法测定不同产地西洋参中人参皂苷Rg1\人参皂苷Re\人参皂苷Rb1含量作者：李岚陈华来源：《中国医药导报》2011年第20期[摘要] 目的：对不同产地西洋参中人参皂苷Rg1、人参皂苷Re、人参皂苷Rb1三种主要药效成分进行高效液相色谱的含量测定。
方法：采用C18柱，以乙腈-0.1%磷酸溶液为流动相进行梯度洗脱，流速为1.1 ml/min，检测波长为203 nm，柱温为30℃。
结果：人参皂苷Rg1、Re、Rb1、在测定范围内有良好的线性关系，其平均回收率为97.2%~99.0%，RSD为1.61%~2.03%。
结论：该方法准确可靠，重现性好，应用性强。
[关键词] HPLC；西洋参；人参皂苷Rg1；人参皂苷Re；人参皂苷Rb1[中图分类号] R917 [文献标识码]A [文章编号]1673-7210（2011）07（b）-103-03Determination of ginsenoside Rg1, ginsenoside Re, ginsenoside Rb1 from different regions by HPLCLI Lan, CHEN HuaJiangzhong Pharmaceutical Co. Ltd., Nanchang 330029, China[Abstract] Objective: To detect ginsenoside Rg1, ginsenoside Re, ginsenoside Rb1 of three active principles in American ginseng from different regions by HPLC. Methods: A C18 column was used by gradient elution of acetonitrile -0.1% H3PO4 solution as the mobile phase, the flow rate was 1.1 ml/min and the detective wavelength was set at 203 nm, the column temperature was set at 30℃. Results: All of the three compounds showed good linearities and recoveries were in the range of97.2%-99.0% with RSD of 1.61%-2.03%. Conclusion: The method is accurate and suitable for the determination of ginsenoside Rg1, ginsenoside Re, ginsenoside Rb1.[Key words] HPLC; American ginseng; Ginsenoside Rg1; Ginsenoside Re; Ginsenoside Rb1西洋参为五加科人参属植物西洋参 Panax quinquefolius L. 的干燥根。
