大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得

小鼠尾静脉注射细节
第一，固定小鼠。

50ml管最好。

盖子中间挖洞，大小适合鼠尾伸出。

管身挖几个洞，方便透气。

多余空间要用棉花填塞，防止小鼠在管中前后移动。

第二，注射器选择。

(针头大小，G自己换算吧)我从1ml的注射器针头到胰岛素针头，以及胰岛素专用注射器全都用过，表示有一种黄色胰岛素专用针头最好用。

粗细，长度，硬度都刚好。

(硬度很重要)打10只左右要换针头，因为不锋利，影响手感。

第三，酒精棉球擦拭。

目的是能清楚的看到血管。

第四。

注射。

这个细节就特别多，只能做的人用绳命去总结。

古代武学大师都把自己看家绝学总结成几句话，这是很有道理的，只能达意，不能言传。

尾部拉直，35-45度入针，至针尖切面的2/3进入后，将注射器平行鼠尾，匀速插入血管0.5-1cm，推药。

最重要的就是匀速前进0.5-1cm这一步。

是否插入血管中，全凭这一段的手感。

顺滑，圆润，无阻力。

重要的事，说三遍，全凭感觉，全凭感觉，全凭感觉。

大鼠静脉麻醉方法
小伙伴，今天咱们来聊聊大鼠静脉麻醉这事儿。

然后呢，就是选择麻醉药物啦。

像戊巴比妥钠之类的就是比较常见的。

不过用药量可得算好哦，太多了对小老鼠可不好，太少了又起不到麻醉的效果。

这就像做菜放盐，得不多不少刚刚好。

一般按照大鼠的体重来计算合适的药量，就像是给不同身材的小老鼠定制专属的麻醉套餐。

在注射的时候呢，要特别小心。

用那种很细的注射器针头，轻轻的刺进尾巴静脉。

这一步就像在做一个超级精细的小手工，得小心翼翼的。

如果扎偏了，小老鼠可能会疼，而且麻醉药也不能准确地进入血管。

当看到注射器里的药液缓缓推进血管，就像给小老鼠注入了一个安静的魔法。

注射完之后呀，就等着小老鼠慢慢进入麻醉状态啦。

它可能会变得越来越安静，眼睛也没那么有神了。

这时候你可别以为就万事大吉喽。

得在旁边好好看着它，就像照顾一个生病的小宝贝。

要观察它的呼吸是不是平稳，身体有没有什么异常的反应。

如果发现小老鼠呼吸急促或者有其他不对劲的地方，那可能就得采取点措施啦，比如说调整它的姿势，或者看看是不是药量出了问题。

还有哦，不同的大鼠可能对麻醉的反应会有点差异。

就像每个人的酒量不一样似的。

有的大鼠可能很快就麻倒了，有的可能还会挣扎一会儿。

所以每一次给大鼠做静脉麻醉都像是一次小小的冒险，充满了未知，但只要我们细心又耐心，就能顺利完成这个小挑战啦。

总之呢，大鼠静脉麻醉虽然有点小复杂，但只要掌握了要点，就像学会了一个小魔法，可以让我们在实验或者其他需要的情况下，让小老鼠安安静静地接受我们的操作啦。

小鼠尾静脉注射的心得体会Prepared on 22 November 2020小鼠尾静脉注射的心得体会IV比IP困难许多，我练习了非常久了之后，才抓到窍门。

由于当时没有一个人能指导我，所以我的IV技术可说是完全自己摸索出来的。

当我遇到困难时，找了许多课本、网络，可是读了却做不出来，果然theory跟practical之间还是有差距的。

一般书本所形容的IV很简洁，但实际情况要复杂许多，因此不先训练，是一定打不好静脉针的。

照例，打针之前，先量体重、准备要打的液体、做好稀释、load好进针筒里面。

准备好完这些后，就开始要抓老鼠了。

但打IV不能靠普通的restraint方法，因为打静脉要很固定的，不能有丝毫动摇。

因此需要一个restrainer，就是一个小小的塑胶东东，来困住老鼠，但它的尾巴可以掉出来。

你就抓住它的尾巴，然后往尾巴上的静脉打针。

这个restrainer一定要把老鼠牢牢地关在里面，一点都不能动才可以。

这时就要尽量把老鼠压在里面，压成一团也没问题，只要不要弄到它骨折，或者呼吸困难就可以了。

一般老鼠虽然喜欢关在一个圆圆的筒子里，但因为IV需要的是绝对的动弹不得，所以它会被关压到蛮不舒服的。

而且老鼠不喜欢别人去碰它的尾巴的，所以打尾巴针对它们来说是相当痛的。

如果不牢牢困住，就算有一点点的位置，它也会挣扎的，它一挣扎，你就打不到了。

为什么那么困难呢就是因为老鼠尾巴的静脉其实不大，很小而已，只要稍微移动，很容易就打错地方了。

打静脉的针头我一般用30G，是比26G更加细的针头。

我把步骤简化如下：1)把针尖向下，即bevelup，这样比较容易刺进去，位置也能很精准2)从尾巴的最后面开始试，不要一开始就刺比较靠近身体的部位，因为如果弄错了，还可以一直往上继续试，但如果一刺就刺靠近身体的，就没办法再上了3)老鼠尾巴有静脉的地方会泛有红色的，就对准红色的线条4)尾巴要抓紧，不要有丝毫动摇，有时候老鼠会挣扎，就要大力一点抓尾巴5)刺进去时，尽量把针摆得跟尾巴越平行越好，因为稍微有一点角度就打不进去了(平行的话针就会在血管里面，如果有角度可能会刺过血管到血管下面的组织去)6)可以尽量刺深一点，只要是平行就好，刺得够深的话整支针可以挂在那里不会掉下来的7)往后拉一拉plunger，如果看到血，位置就对了！8)位置对的话，保持针的不动，然后注射，注射的时候会觉得很顺畅，而且可以亲眼看到红色的血管慢慢被你所注射的液体所flushed，所以红色就会慢慢变成白色9)最后把针拉出来，针口的位置会流一点血(代表真的是血管嘛)，然后用一块棉花按按扎针的部位就可以了那错误又会怎样发生咧举例如下：1)明明是看到自己刺到红色的线条了，可是往后拉的时候没看到血，只是感觉真空压力，这时就可以肯定刺错位置了，刺到尾巴的其他组织上，要拉出来再找一个地方刺，一般不要再刺回同样一个位置2)开始注射后发现很难注射，plunger遇到很大的阻力似的，其实这也是打错了，不在血管里面就会这样，这时你就会看到你打针的部位周围开始泛白，但这个泛白跟血管里面泛白不同，这个泛白就围绕在你打针的部位，而且尾巴的那个部分会开始肿胀。

小鼠尾静脉注射：高手经验谈1、固定：小鼠一定要固定好，注射时尾巴不能动。

我一直用小鼠固定器固定，另外一人用手指轻轻夹住尾巴的根部，这样一般能固定的很好。

（我自己是找一个去500或者1000ml的烧杯，倒卡在桌子上，小鼠放在里面露出尾巴即可）2.对血管的选择,一般来说,小鼠尾部有三条静脉,左右两边各一根而且比较浅,容易穿刺；中间一根位置较深,不是很容易穿到,建议尽量不选择.另外穿刺选择尾部中下2/3~1/2处比较好,因为此处皮肤较薄,我的体会是可以采用75%酒精反复擦拭穿刺血管,使其充盈,并且使皮肤的角质层软化,利于穿刺. 或者在注射之前，小鼠尾巴用温水（水温约50度左右）泡大约2分钟，这样能使血管充分舒张。

用干棉球擦干。

血管应选择两侧的血管，从下向上扎。

这样的好处是万一一次扎不进，还可以继续使用此血管。

3.针的选择：书上说使用1毫升的注射器.有人在实践中采用的是头皮针,后接1毫升注射器.因为头皮针针头更小,对血管的损伤更小,适合多次连续给药，其次使用头皮针穿刺后,我们可以通过回血来判断穿刺是否成功.（我的体会是4号半1毫升注射器,已经足够且很容易进针）4、注射手法：左手食指和中指上下夹注你所选择血管的靠近身体的一边,无名指和小指垫起一块纱布或者纸巾(建立一个穿刺的平面的作用),拇指压住所选血管的尾尖端,上下夹住血管的距离应以不影响右手持针上下移动为宜.(否则容易人为建立穿刺的角度,而使右手持穿刺针穿刺过深,导致穿刺失败.)右手持穿刺针,稍微挑起皮肤一点,就可以平着进针,看到回血表明成功,还可以回抽,见到回血后表明穿刺已进入血管,可以给药.用左手将鼠尾拉直，右手持1ml注射器的中下1/3部位，针斜面向上，在尾部的下1/3-1/2处进针，针与皮肤稍成一角度（10度左右），进针后要将针头稍向上挑，然后将针向里送一点。

如果在血管里，则无阻力，并且能看见针。

若针看得很清晰，则扎到了皮下，若针看不清，则扎深了。

小鼠尾静脉注射的心得体会第一篇：小鼠尾静脉注射的心得体会小鼠尾静脉注射的心得体会IV比IP困难许多，我练习了非常久了之后，才抓到窍门。

由于当时没有一个人能指导我，所以我的IV技术可说是完全自己摸索出来的。

当我遇到困难时，找了许多课本、网络，可是读了却做不出来，果然theory跟practical之间还是有差距的。

一般书本所形容的IV很简洁，但实际情况要复杂许多，因此不先训练，是一定打不好静脉针的。

照例，打针之前，先量体重、准备要打的液体、做好稀释、load 好进针筒里面。

准备好完这些后，就开始要抓老鼠了。

但打IV不能靠普通的restraint方法，因为打静脉要很固定的，不能有丝毫动摇。

因此需要一个restrainer，就是一个小小的塑胶东东，来困住老鼠，但它的尾巴可以掉出来。

你就抓住它的尾巴，然后往尾巴上的静脉打针。

这个restrainer一定要把老鼠牢牢地关在里面，一点都不能动才可以。

这时就要尽量把老鼠压在里面，压成一团也没问题，只要不要弄到它骨折，或者呼吸困难就可以了。

一般老鼠虽然喜欢关在一个圆圆的筒子里，但因为IV需要的是绝对的动弹不得，所以它会被关压到蛮不舒服的。

而且老鼠不喜欢别人去碰它的尾巴的，所以打尾巴针对它们来说是相当痛的。

如果不牢牢困住，就算有一点点的位置，它也会挣扎的，它一挣扎，你就打不到了。

为什么那么困难呢？就是因为老鼠尾巴的静脉其实不大，很小而已，只要稍微移动，很容易就打错地方了。

打静脉的针头我一般用30G，是比26G更加细的针头。

我把步骤简化如下：1)把针尖向下，即bevel up，这样比较容易刺进去，位置也能很精准2)从尾巴的最后面开始试，不要一开始就刺比较靠近身体的部位，因为如果弄错了，还可以一直往上继续试，但如果一刺就刺靠近身体的，就没办法再上了3)老鼠尾巴有静脉的地方会泛有红色的，就对准红色的线条4)尾巴要抓紧，不要有丝毫动摇，有时候老鼠会挣扎，就要大力一点抓尾巴5)刺进去时，尽量把针摆得跟尾巴越平行越好，因为稍微有一点角度就打不进去了(平行的话针就会在血管里面，如果有角度可能会刺过血管到血管下面的组织去)6)可以尽量刺深一点，只要是平行就好，刺得够深的话整支针可以挂在那里不会掉下来的7)往后拉一拉plunger，如果看到血，位置就对了！8)位置对的话，保持针的不动，然后注射，注射的时候会觉得很顺畅，而且可以亲眼看到红色的血管慢慢被你所注射的液体所flushed，所以红色就会慢慢变成白色9)最后把针拉出来，针口的位置会流一点血(代表真的是血管嘛)，然后用一块棉花按按扎针的部位就可以了那错误又会怎样发生咧？举例如下：1)明明是看到自己刺到红色的线条了，可是往后拉的时候没看到血，只是感觉真空压力，这时就可以肯定刺错位置了，刺到尾巴的其他组织上，要拉出来再找一个地方刺，一般不要再刺回同样一个位置2)开始注射后发现很难注射，plunger遇到很大的阻力似的，其实这也是打错了，不在血管里面就会这样，这时你就会看到你打针的部位周围开始泛白，但这个泛白跟血管里面泛白不同，这个泛白就围绕在你打针的部位，而且尾巴的那个部分会开始肿胀。

小鼠尾静脉注射技巧一小鼠保定：据说有专门給小鼠尾静脉注射用的保定装置，叫什麽我不知道，因为我没用，但这个可以用。

师姐给我做示范的时候，是用一个小烧杯罩住小鼠，把尾巴拽出来操作，这种方法好像好多人都在用，可是，需要另一个人按住烧杯才行。

我在网上看到有个人把50ml的离心管帽中央打了一个可以把小鼠尾巴伸出来的洞，离心管尖端锯开一个小口通气，试验时把小鼠放进离心管，拽住尾巴塞入帽上的小孔，把帽拧上就行了。

我觉得这招挺好，照着做了一个，不用怕小鼠回身咬人，很安全也很省钱，不用买仪器了，而且，我找了个铁架台（带夹子那种的），把小鼠塞进离心管后，可以把离心管固定在铁架台上，操作就更方便了。

二小鼠尾静脉：把小鼠塞进离心管前，我先在小鼠尾巴正背侧用记号笔画了一个竖道，拧上帽后，不管小鼠在离心管里面怎麽翻转打滚，把尾巴拉出来可以轻松地判定尾巴的背侧方向，不会整混了。

可以注射的静脉有两根，在正背侧的两边，很容易就能看到，但看到不代表能把针插进去，想进针顺利，尾静脉能够膨胀就行了，开始我把小鼠尾巴放到50度热水里泡这，静脉也膨胀了，也可以进针，可就是尾巴湿漉漉的，很容易滑手，水还得勤热着，不然就凉了，要不就得在旁边放个水浴锅或者电磁炉什麽地，太麻烦了。

后来，还是我师姐厉害，她让我拿个打火机，把尾巴拉出来，一燎，就完事了，而且还能把尾巴上的毛燎掉，我现在就用这种方法，很好使，打火机在尾巴上来回快速燎两下，等两三秒钟侧面的尾静脉颜色就变得特别深，深红色吧好像，不过燎的时间一定把握好，时间短了，静脉不膨胀，长了尾巴会烫坏甚至着火，建议开始时快一点燎，多燎两次就知道应该多久是最好地了。

三进针：我用的是1ml的针，每次注射大约100~200ul。

按照上述方法处理完尾静脉后，左手中指和食指夹住鼠尾大约二分之一处，大拇指和无名指夹住尾巴下部，别太靠近尾尖，容易失手，还有，就是中指和食指固定位置后把鼠尾前部分顺着离心管帽上的孔往里塞，直到这两根手指卡到官帽，放置注射的时候小鼠挣扎而打偏。

尾静脉注射技巧
尾静脉注射是指将药物注射入小鼠、大鼠尾部的静脉，通常用于实验室动物的药理研究、毒理研究和生物学实验等研究领域。

以下是尾静脉注射的技巧：
1.准备好注射器、药物和针头。

注射器选择0.5毫升或1毫升的，针头可以选择30号或32号。

2.将小鼠或大鼠置于实验台上，用70%乙醇清洁尾部。

3.可以用温水浸泡尾巴5-10分钟，使尾巴血管扩张，易于找到尾静脉。

4.用手指轻轻压迫尾部，将血液推至尾的远端，找到尾的基部，可以在尾基部用光镜找到明显的血管。

5.用消毒的针头轻轻扎破皮肤，针头与血管成约45度角度插入尾静脉，向远端轻轻推进，直到看到血液。

6.吸取药液，将药物注入尾静脉内。

7.拔出针头，用棉球或压迫止血器压迫注射部位，避免流血。

8.观察研究动物的反应状态，如有异常情况及时处理。

注射完毕后，可以将小鼠或大鼠放回笼子内，并留意其情况，通常注射后应保持动物安静，24小时内不给予水和食物。

需要注意的是，尾静脉注射对动物可能存在一定的刺激和压迫，应根据具体实验需要和动物功能状态选择注射液量和注射频率，避免超量或过
度注射导致动物伤害和严重不良反应。

同时也要严格按照实验室动物合法管理要求进行操作，减少对动物的伤害。

由于小鼠体型小，生长繁殖快，成本低，易于控制，因此常被用作医学实验动物。

但由于小鼠尾静脉细，穿刺难度大，很大程度上制约了实验的成功与否。

本实验室经过长期的动物实验，掌握了单人小鼠尾静脉注射技术，保证了实验的顺利完成。

在做好实验前的准备工作后，用左手拇指、食指和中指捏住小鼠尾部1/3处，将小鼠尾巴拉直、绷紧，进行常规皮肤消毒，用75%乙醇反复擦拭一侧尾静脉，至血管清晰可见后，右手持注射器（4号针头，规格045），针头斜面向上，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾部末端处（1/3~1/4）向近心端进针，此处皮肤较薄，血管明显突出表皮，进针容易。

然后左手将尾部和注射器固定好，右手轻推注射器缓慢给药，如无阻力，表示穿刺成功，若出现阻力，且尾部肿胀变白，应立即拔出针头，保护血管避免药物外渗，重新进行静脉穿刺。

注射完毕后，左手拇指压住注射部位拔出针头，用干棉球轻压针眼止血。

此操作由单人完成，简单易行且成功率较高。

用75%乙醇反复擦拭静脉能有效扩张静脉血管，使之清晰可见。

因传统的小鼠尾静脉注射都是两人合作进行操作，若配合不当，易造成穿刺失败。

而单人操作时，小鼠的顺应性较好，既节省了人力又节约了时间。

实验中用75%乙醇反复擦拭两侧静脉扩张血管，选择一条扩张明显的血管进行注射，其效果优于其他扩血管方法，如：热水浸泡法、涂抹二甲苯、灯泡热烤等。

另外，由于实验中往往需要对大量小鼠进行反复多次注射，上述的方法在操作时比较繁琐，耗时较长，如果掌握不好温度和时间容易影响穿刺效果，并且极易造成对小鼠的伤害，影响实验结果。

通过以上的实验经验，我们总结了单人小鼠尾静脉注射的基本要领：①要有足够的信心和耐心，保持心态平稳。

②室温控制在25℃以上，光线充足。

③熟悉小鼠尾静脉的解剖位置，选准静脉，注射部位一定从小鼠静脉远端开始逐步向上，保护好血管。

④用75%乙醇反复擦拭，看清静脉血管的走向，做到心中有数。

⑤进针时一定要掌握好进针角度，进针后固定好小鼠尾部与针头，以防小鼠乱动致针头脱出血管。

小鼠尾静脉注射操作要点
1. 嘿，你知道吗，小鼠尾静脉注射关键之一就是得找对位置呀！就像射箭要瞄准靶心一样，得准确找到那细细的尾静脉。

比如用手指轻轻按住小鼠尾巴根部，让静脉鼓起来，这时候可千万别手抖啊！要不然可就扎偏啦。

2. 一定要保持耐心呀！这可不是一下子就能搞定的事儿，就跟你拼图似的，得慢慢来。

注射的时候别着急，慢慢推进药液，你着急了，小鼠也会感受到你的慌张呀！比如稍微快点推药，小鼠可能就会乱动哦。

3. 消毒这个步骤可别小瞧了啊！这就好比出门前要整理好衣服一样重要。

要用酒精好好擦擦，不然感染了可不得了。

就像你受伤了不消毒会发炎一样呢！
4. 注射的角度也很有讲究哦！太斜了不行，太直了也不行，这就像走平衡木一样，得把握好那个度。

比如说角度不对，药液可能就进不去或者漏出来啦。

5. 还有呀，要控制好力度呀！不能太轻也不能太重，这和你开门时用的力气差不多吧。

太轻了门打不开，太重了会把门弄坏呀！要是注射力度不对，小鼠会很不舒服的呢。

6. 最后啊，多练习才能熟能生巧呀！刚开始可能会失败，别灰心，谁还没有个学习的过程呀！就像学骑自行车，一开始会摔倒，但多练几次就会啦。

每次练习都要总结经验，这样下次就会做得更好啦！我觉得呀，只要掌握好这些要点，小鼠尾静脉注射也没那么难嘛！。

小鼠静脉注射这也是常见的操作，稍微有点难度，没有指导的话，一开始可能会感觉有点手足无措。

但是可以肯定的说，只要掌握了方法，小鼠的尾静脉注射还是很容易的。

操作步骤：1. 首先要固定小鼠，最简单的固定方法就是把小鼠放在盒子里面，让它的尾巴伸在盒盖的外面，用手抓住小鼠尾巴，轻轻往外拽，就可以固定好小鼠了。

这种固定方法，小鼠可以在盒子里面活动，固定的也不是很牢固，但是只要你尾静脉注射的手法很熟练，就足以用来注射了。

还有的固定方法就是用一个小的圆筒，最好是金属做的，（可以在当地的铁匠铺，或者买白铁铺里面定做）首先是金属比较结实，而且可以用来固定在铁架台上，方便操作。

圆筒的一段有个盖子可以拿下来，盖子中间有个小孔，可以让小鼠的尾巴伸出来（中间的小孔可以用胶布缠一下，防止锐利的边缘割伤小鼠尾巴）。

另外一段可以用金属网的结构，网的形状可以做成子弹头的头端形状。

网状结构可以让光线透近来，方便小鼠钻进圆筒里面。

圆筒的长度约10cm，直径约3～4cm，可以做个系列长度和直径的圆筒，适合不同大小的小鼠。

2. 固定好小鼠后就是注射了，一般用一次性的1ml的注射器就可以了，玻璃的1ml的注射器也可以用，针头用4号的就可以了。

3. 注射前首先要让小鼠的血管充盈。

可以采用75%的酒精棉球擦拭的方法或者采用温水浸泡的方法。

若小鼠的血管很不清楚，推荐采用温水浸泡的方法，水温以不烫手为宜。

温水浸泡2～3分钟后，取出小鼠尾巴，用干棉球擦拭。

等一会儿，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了。

若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡，切不可冒险注射，除非你手法很熟练，另当别论。

4. 小鼠尾部共有四条血管，一般认为左右的两条静脉比较容易注射，多采用这两条静脉进针。

一般要求进针部位靠近小鼠的尾端，这样若注射失败的话，还可以再向上选择进针点。

但是进针部位也不可以太靠下，因为越往下，静脉越细，操作越难，一般以小鼠尾巴下三分之一的位置比较好。

5. 最关键的就是进针了。

大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得- -大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。

小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。

通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。

在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。

如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。

或者用这个方法：1 小鼠要固定好，自制一个笼子，前面通气，中间最好有一个挡板，让小鼠不能后退，筒子后面开一个口，尾巴从这里出来，这样固定牢靠；2、注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；3、先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；4、进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。

至于能否穿进，个人手感如何，全靠自己啦。

多练习，一定很快掌握的，不难，绝对不难！我练习10余只小鼠就比较熟练了2. 用酒精棉球擦拭尾巴,使血管扩张;或者用热水或者热毛巾焐热，使静脉扩张；选用适当的针头，越细越好；在尾部较靠近上段的地方注射，这里血管比较大。

用酒精或热水擦拭，擦拭的时候，可把尾巴用力扯在桌面上。

注射状态为尾巴发白，紧靠白色的尾骨两侧清晰可见两根红色静脉。

3.用左手的食指,中指,无名指及大拇指将小鼠尾巴固定,; 手法：握住1ml注射器前面0.1ml处。

右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处按此手形进针；看针尖前面那个斜面有3/4（关键），如果血管充盈则进1/2，进入，停，上挑针头，进针；左右轻摆动，如可动，可注射。

原则是：把你第一次打进的手形，完全固定下来，每次都重复。

4.注射:注射时左手扯尾，使尾巴紧贴桌面，尾巴与桌边紧贴转弯处为进针部位，一般选择距尾尖1/4或1/3处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易。

小鼠尾静脉注射的几点体会本文从网络收集而来，上传到平台为了帮到更多的人，如果您需要使用本文档，请点击下载按钮下载本文档（有偿下载），另外祝您生活愉快，工作顺利，万事如意！论文导读：小鼠尾静脉注射是药理，毒理实验中常用的注射方法，也是医学学生必备的技能之一，本文主要总结了医学本科生小鼠尾静脉注射实验中的几点体会。

关键词：小鼠尾静脉注射，体会在医学研究中，小鼠常常被选为实验对象，进行药理、毒理实验、肿瘤实验及各种急、慢性实验。

小鼠目前的给药方式有灌胃给药，腹腔注射，皮下注射，尾静脉注射等[1] 。

尾静脉注射是一项重要的给药方法，由于小鼠尾静脉较细，尾静脉难度大，在学生实验中的广泛应用受到了限制。

发表论文。

为此，笔者把实践过程中得出了一些经验介绍如下，以供大家交流。

发表论文。

1.器材与方法器材：1ml一次性注射器，棉球，纱布，毛巾或面纱手套方法简介：将小鼠固定在小鼠固定器中，使其尾巴露出。

用手指压迫尾根部的两侧片刻，一手食指从下面托起尾尖部,与拇指捏住并微微转动,使左或右侧的静脉向上，一手持4号或号针头注射器，在距尾尖1／2或1／3处进针。

发表论文。

一次注射量为~ ml/10 g体重。

注射完后拔出针尖，把尾部向注射侧弯曲或以棉球压迫止血[2]。

2.小鼠尾静脉注射的体会实验开始之时，应注意检查小鼠固定器是否完好，注射针头是否变钝，否则应注意更换，以免由于实验器材的问题造成不必要的困扰，影响实验的进度。

小鼠尾部的血运十分丰富，在其背、腹及左右两侧有数条动静脉伴行的血管丛。

其中背、腹各一根的动脉与左右各一根的静脉最为明显。

动脉的位置相对较深且管腔相对较小，不容易刺入，因此常常选择两侧的静脉，且两侧的静脉较容易固定，它的直径平均小于±0 .5 mm，但当遇到热水,7 5 ％酒精，或远红外线的烘烤时，尾静脉呈明显扩张，平均为±0 .7 mm[3]。

压迫尾根部使血管充盈，此外，使用40”C左右的热水浸泡鼠尾l 0~2 0 s或使用75％酒精棉球强檫，软化角质，还可以灯泡靠近鼠尾烤均可以使血管更加充盈、清晰。

小鼠尾静脉注射的几点体会论文导读：小鼠尾静脉注射是药理，毒理实验中常用的注射方法，也是医学学生必备的技能之一，本文主要总结了医学本科生小鼠尾静脉注射实验中的几点体会。

小鼠尾静脉注射，体会在医学研究中，小鼠常常被选为实验对象，进行药理、毒理实验、肿瘤实验及各种急、慢性实验。

小鼠目前的给药方式有灌胃给药，腹腔注射，皮下注射，尾静脉注射等[1]。

尾静脉注射是一项重要的给药方法，由于小鼠尾静脉较细，尾静脉难度大，在学生实验中的广泛应用受到了限制。

发表论文。

为此，笔者把实践过程中得出了一些经验介绍如下，以供大家交流。

发表论文。

1.器材与方法器材：1ml一次性注射器，棉球，纱布，毛巾或面纱手套方法简介：将小鼠固定在小鼠固定器中，使其尾巴露出。

用手指压迫尾根部的两侧片刻，一手食指从下面托起尾尖部,与拇指捏住并微微转动,使左或右侧的静脉向上，一手持4号或4.5号针头注射器，在距尾尖1／2或1／3处进针。

发表论文。

一次注射量为0.05~0.1ml/10g体重。

注射完后拔出针尖，把尾部向注射侧弯曲或以棉球压迫止血[2]。

2.小鼠尾静脉注射的体会2.1实验开始之时，应注意检查小鼠固定器是否完好，注射针头是否变钝，否则应注意更换，以免由于实验器材的问题造成不必要的困扰，影响实验的进度。

2.2小鼠尾部的血运十分丰富，在其背、腹及左右两侧有数条动静脉伴行的血管丛。

其中背、腹各一根的动脉与左右各一根的静脉最为明显。

动脉的位置相对较深且管腔相对较小，不容易刺入，因此常常选择两侧的静脉，且两侧的静脉较容易固定，它的直径平均小于0.60.5mm，但当遇到热水,75％酒精，或远红外线的烘烤时，尾静脉呈明显扩张，平均为0.90.7mm[3]。

2.3压迫尾根部使血管充盈，此外，使用40"C左右的热水浸泡鼠尾l0~20s或使用75％酒精棉球强檫，软化角质，还可以灯泡靠近鼠尾烤均可以使血管更加充盈、清晰。

[4]局部还可以使用血管扩张药如硝酸甘油[5]。

【求助】小鼠尾静脉注射，注射了三十只，只成功了两只！求教！各位ＧＧＪＪ：我做小鼠尾静脉注射，注射了三十只，只成功了两只！求教最好用几号针头？尾巴如何处理？将针头扎入静脉，可以看回血么？可是小鼠奥！还有扎入静脉后，注射的时候，尾巴与注射器该如何抓，才不会移位置？谢谢！据说小鼠比大鼠还好注射呢。

关于注射的操作帖子，本版有好多。

你可以search一下。

建议，先找几只练练手，熟练了在正式做。

>..............................谢谢谢谢谢谢我喜欢大鼠尾静脉!~感觉比小鼠好大!~--------------------------------------------------------------------------------谢谢谢谢谢谢?????????????????????????我觉得都难打，太小了。

我做过小黑鼠的尾静脉注射，也来说说体会：首先，要用固鼠器固定好，尽量把鼠尾拉直，用酒精擦鼠尾（必要时再用手拍打），好让静脉充分扩张，在鼠尾两侧可找到两条尾静脉（小黑鼠比较难看一点，但认真还是可以看到的）。

用细针头皮下进针（我用的是4号）从远端打起，后面的皮薄一点，较容易打成功（个人看法），打成功时进针会很顺畅，注药没有阻力，一般不会自己回血，若不成功再往近端打，但一般一条血管打过三次还不成功的话最好先暂停，因为刺激后血管会收缩，很难打，歇一会儿换另一边打。

还有一点，信心很重要！！有了信心才能找到感觉。

所以楼主一定要坚信自己能行，这样才能很轻松打中了谢谢，我练练不过还是难，痛苦中．．．．．．．．．首先，我觉得你打不进去小鼠的尾静脉，不应该发这个帖子，有这个时间和工夫，还不如去练习。

尽管我体验过几十只老鼠只打进去几只的崩溃心情。

我记得刚刚开始打尾静脉，很多老鼠都打废了，中午的时候我一个人在动物房对着一笼老鼠有放声大哭的冲动，心里难过得要命，可就是打不进去，我一个师姐买了包子让我吃了再做，包子是和眼泪一起吞到肚子里的，下午5点多回家以后我才意识到，一整天从早上起床到下午五点，我除去吃了师姐的一个包子外，没有吃任何东西，没有喝一口水，甚至没有上过厕所。

我分享的经验也只局限在我做过的那几个实验方法当中。

1、第一个就是尾静脉注射的问题，看到好多虫子都想采用尾静脉注射给药，尾静脉注射呢其实到最后都讲究的是手感，但是如果作为新手的话，小妖还是觉得必须得拿老鼠来练手，这是必须的！
2、注射器呢一般选用1ml的注射器。

3、大鼠的尾巴上其实有三根静脉，在尾巴的正面有一根，但是这一根是凹陷在尾巴里面的，一般不采用注射这一根静脉，在尾巴的两个侧面各有一根静脉，通常都注射的是这两根静脉，因为这两根静脉是凸出来的。

4、冬天注射的时候可以将尾巴在热水里面浸泡一阵，这样让血管扩张，大鼠的尾端一般比较脏，再不是太冷的情况之下，小妖都是用酒精棉球擦拭大鼠的尾部，这样过后皮变得也好穿透一些。

5、另外注射部位通常在尾巴的下端皮要薄一些，这样比较容易的插进针头，同时也好进入血管中。

6、另外如果注射的时间久了过后，你可以采取用拇指和食指压住两侧的血管，另外一只手有上往下拨，这样能将血集中到一段静脉当中，方便注射。

7、通常情况下判断针头是否进入血管的主要方法就是看回血，但有的时候也没有回血，这样你就可以轻轻的推注射器，如果推的阻力不大，甚至是几乎没有阻力，并且看到静脉血管变白了就是进入血管了，要是没有进入血管的话，就会发现皮下会有一个隆起，并且推注的阻力也会很大。

小妖自己的判断就是感觉进入血管了后回抽针头一小点，再往前推一小点，如果往前推的过程是比较空的，没有阻力的那基本上都是进入了血管当中了。

8关于注射的剂量的问题，尽量控制在0.3~0.8ml左右。

好了，这次就主要分享下静脉注射的问题，等下次小妖想好了再分享另外的实验经验，希望对要静脉注射的虫子们有所帮助!。

大鼠尾静脉采血的技巧
1. 嘿，一定要找好位置呀！就像找宝藏一样得仔细，大鼠尾静脉就在那呢，你要是找错了可就麻烦啦！比如说，要是没找准位置就下针，那不是白折腾嘛。

2. 进针可别太犹豫呀！果断一点，想象一下你戳破一个气球的瞬间，就是那种干脆！要是犹犹豫豫的，大鼠都不耐烦啦！你看，上次小王就是因为太磨蹭，弄了半天都没采到血。

3. 采血速度得控制好哇！太快太慢都不行，就如同开车，速度得适中。

要是太快了，大鼠不得难受得乱动，要是太慢，血都凝住了还怎么采呀！记得有一次我没控制好，哎呀，那场面。

4. 角度很关键呐！要恰到好处，这和投篮一样，角度不对怎么能进呢！要是角度错了，根本采不到血呀，白忙活一场。

5. 别紧张呀，你一紧张大鼠都能感觉到！就像考试紧张就容易出错一样，一紧张手一抖，那可就糟了。

就像小张上次，紧张得不行，结果弄得乱七八糟。

6. 采完血得处理好呀！这就像打完仗要打扫战场一样，不能乱糟糟的不管啦。

要是不处理好，大鼠多遭罪，咱们也不专业呀！那次小李采完就不管了，被狠狠批评了一顿。

7. 多练习才是王道啊！就像练武功一样，越练越厉害。

只有多练习，才能掌握这些技巧，做到采血轻松又准确！
我的观点结论就是：大鼠尾静脉采血看似简单，实则有很多技巧和门道，只有掌握好这些，才能做得又快又好！。