第五章-微生物检验方法

第五章微生物检验方法1 微生物检验方法总则General principles1 范围本部分规定了化妆品微生物学检验的基本要求。

本部分适用于化妆品样品的采集、保存及供检样品制备。

2 仪器和设备2.1 天平，0-200g，精确至0.1g。

2.2 高压灭菌器。

2.3 振荡器。

2.4 三角瓶，250mL、150mL。

2.5 玻璃珠。

2.6 玻璃棒。

2.7 灭菌刻度吸管，10mL、1mL。

2.8 恒温水浴箱。

2.9 均质器或研钵。

2.10 灭菌均质袋。

3 培养基和试剂3.1 生理盐水成分：氯化钠8.5g蒸馏水加至1000mL制法：溶解后，分装到加玻璃珠的三角瓶内，每瓶90mL，121℃高压灭菌20min。

3.2 SCDLP液体培养基成分：酪蛋白胨17g大豆蛋白胨3g氯化钠5g磷酸氢二钾2.5g葡萄糖2.5g卵磷脂1g吐温80 7g蒸馏水1000mL制法：先将卵磷脂在少量蒸馏水中加温溶解后，再与其他成分混合，加热溶解，调pH为7.2—7.3分装，每瓶90mL，121℃高压灭菌20min。

注意振荡，使沉淀于底层的吐温80充分混合，冷却至25℃左右使用。

注：如无酪蛋白胨和大豆蛋白胨，也可用多胨代替。

3.3 灭菌液体石蜡。

制法：取液体石蜡50mL，121℃高压灭菌20min。

4703.4 灭菌吐温80。

制法：取吐温80 50mL，121℃高压灭菌20min。

4 样品的采集及注意事项4.1 所采集的样品，应具有代表性，一般视每批化妆品数量大小，随机抽取相应数量的包装单位。

检验时，应从不少于2个包装单位的取样中共取10g或10mL。

包装量小于20g的样品，采样时可适当增加样品包装数量。

4.2 供检样品，应严格保持原有的包装状态。

容器不应有破裂，在检验前不得打开，防止样品被污染。

4.3 接到样品后，应立即登记，编写检验序号，并按检验要求尽快检验。

如不能及时检验，样品应置于室温阴凉干燥处，不要冷藏或冷冻。

4.4 若只有一个样品而同时需做多种分析，如微生物、毒理、化学等，则宜先取出部分样品做微生物检验，再将剩余样品做其他分析。

4.5 在检验过程中，从打开包装到全部检验操作结束，均须防止微生物的再污染和扩散，所用器皿及材料均应事先灭菌，全部操作应在符合生物安全要求的实验室中进行。

5 供检样品的制备5.1 液体样品5.1.1 水溶性的液体样品，用灭菌吸管吸取10mL样品加到90mL灭菌生理盐水中，混匀后，制成1：10检液。

5.1.2 油性液体样品，取样品10g，先加5mL灭菌液体石蜡混匀，再加10mL•灭菌的吐温80，在40℃—44℃水浴中振荡混合10min，加入灭菌的生理盐水75mL（在40℃—44℃水浴中预温），在40℃—44℃水浴中乳化，制成1：10的悬液。

5.2 膏、霜、乳剂半固体状样品5.2.1 亲水性的样品：称取10g，加到装有玻璃珠及90mL•灭菌生理盐水的三角瓶中，充分振荡混匀，静置15min。

用其上清液作为1:10的检液。

5.2.2 疏水性样品：称取10g，置于灭菌的研钵中，加10mL灭菌液体石蜡，研磨成粘稠状，再加入10mL灭菌吐温80，研磨待溶解后，加70mL灭菌生理盐水，在40℃—44℃水浴中充分混合，制成1：10检液。

5.3 固体样品称取10g，加到90mL灭菌生理盐水中，充分振荡混匀，使其分散混悬，静置后，取上清液作为1：10的检液。

使用均质器时，则采用灭菌均质袋，将上述水溶性膏、霜、粉剂等，称10g样品加入90mL灭菌生理盐水，均质1min—2min；疏水性膏、霜及眉笔、口红等，称10g样品，加10mL灭菌液体石蜡，10mL吐温80，70mL灭菌生理盐水，均质3min—5min。

4712 菌落总数检验方法Aerobic Bacterial Count1 范围本规范规定了化妆品中菌落总数的检验方法。

本规范适用于化妆品菌落总数的测定。

2 定义2.1 菌落总数Aerobic bacterial count化妆品检样经过处理，在一定条件下培养后（如培养基成分、培养温度、培养时间、pH值、需氧性质等），1g （1mL）检样中所含菌落的总数。

所得结果只包括一群本方法规定的条件下生长的嗜中温的需氧性和兼性厌氧菌落总数。

测定菌落总数便于判明样品被细菌污染的程度，是对样品进行卫生学总评价的综合依据。

3 仪器和设备3.1 三角瓶，250mL。

3.2 量筒，200mL。

3.3 pH计或精密pH试纸。

3.4 高压灭菌器。

3.5 试管，18mm×150mm。

3.6 灭菌平皿，直径90mm。

3.7 灭菌刻度吸管，10mL、1mL。

3.8 酒精灯。

3.9 恒温培养箱，36℃±1℃。

3.10 放大镜。

3.11 恒温水浴箱，55℃±1℃。

4 培养基和试剂4.1 生理盐水：见总则中3.1。

4.2 卵磷脂、吐温80—营养琼脂培养基成分：蛋白胨20g牛肉膏3g氯化钠5g琼脂15g卵磷脂1g吐温80 7g蒸馏水1000mL制法：先将卵磷脂加到少量蒸馏水中，加热溶解，加入吐温80，将其他成分（除琼脂外）加到其余的蒸馏水中，溶解。

加入已溶解的卵磷脂、•吐温80，混匀，调pH值为7.1472—7.4，加入琼脂，121℃高压灭菌20min，储存于冷暗处备用。

4.3 0.5%氯化三苯四氮唑（2,3,5-triphenyl terazolium chloride，TTC）成分：TTC 0.5g蒸馏水100mL制法：溶解后过滤除菌，或115℃高压灭菌20min，装于棕色试剂瓶，置4℃冰箱备用。

5 操作步骤5.1 用灭菌吸管吸取1：10稀释的检液2mL，分别注入到两个灭菌平皿内，每皿1mL。

另取1mL注入到9mL 灭菌生理盐水试管中（注意勿使吸管接触液面），更换一支吸管，并充分混匀，制成1:100检液。

吸取2mL，分别注入到两个灭菌平皿内，每皿1mL。

如样品含菌量高，还可再稀释成1:1000，1:10000，……等，每个稀释度应换1支吸管。

5.2 将融化并冷至45℃—50℃的卵磷脂吐温80营养琼脂培养基倾注到平皿内，每皿约15mL，随即转动平皿，使样品与培养基充分混合均匀，待琼脂凝固后，翻转平皿，置36℃±1℃培养箱内培养48h±2h。

另取一个不加样品的灭菌空平皿，加入约15mL卵磷脂吐温80营养琼脂培养基，待琼脂凝固后，翻转平皿，置36℃±1℃培养箱内培养48h±2h，为空白对照。

5.3 为便于区别化妆品中的颗粒与菌落，可在每100mL卵磷脂吐温80营养琼脂中加入1mL 0.5%的TTC溶液，如有细菌存在，培养后菌落呈红色，而化妆品的颗粒颜色无变化。

6 菌落计数方法先用肉眼观察，点数菌落数，然后再用5倍—10倍的放大镜检查，以防遗漏。

记下各平皿的菌落数后，求出同一稀释度各平皿生长的平均菌落数。

若平皿中有连成片状的菌落或花点样菌落蔓延生长时，该平皿不宜计数。

若片状菌落不到平皿中的一半，而其余一半中菌落数分布又很均匀，则可将此半个平皿菌落计数后乘以2，以代表全皿菌落数。

7 菌落计数及报告方法7.1 首先选取平均菌落数在30—300之间的平皿，作为菌落总数测定的范围。

当只有一个稀释度的平均菌落数符合此范围时，即以该平皿菌落数乘其稀释倍数报告之（见表1中例1）。

7.2 若有两个稀释度，其平均菌落数均在30—300之间，•则应求出两菌落总数之比值来决定，若其比值小于或等于2，应报告其平均数，若大于2•则以其中稀释度较低的平皿的菌落数报告之（见表1中例2及例3）。

7.3 若所有稀释度的平均菌落数均大于300，则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数报告之（见表1中例4）。

7.4 若所有稀释度的平均菌落数均小于30，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数报告之（见表1例5）。

7.5 若所有稀释度的平均菌落数均不在30—300之间，其中一个稀释度大于300，而相邻的另一稀释度小于30时，则以接近30或300的平均菌落数乘以稀释倍数报告之（见表1中例6）。

7.6 若所有的稀释度均无菌生长，报告数为每g或每mL小于10CFU。

7.7 菌落计数的报告，菌落数在10以内时，按实有数值报告之，大于100时，采用二位有473精品资料可编辑修改效数字，在二位有效数字后面的数值，应以四舍五入法计算。

为了缩短数字后面零的个数，可用10的指数来表示（见表1报告方式栏）。

在报告菌落数为“不可计”时，应注明样品的稀释度。

表1 细菌计数结果及报告方式 例次 不同稀释度平均菌落数 10-1 10-2 10-3 两稀释度 菌数之比菌落总数 （CFU/mL 或CFU/g ）报告方式 （CFU/mL 或CFU/g ）11365 164 20─ 16400 16000或1.6×1042 2760 295 46 1.638000 38000或3.8×1043 2890 271 60 2.22710027000或2.7×104 4 不可计 4650 513 ─ 513000510000或5.1×105527 11 5─270270或2.7×1026 不可计 305 12 ─3050031000或3.1×104 7 0 0 0 ─ ＜1×10＜10。