动物的捉拿 不同途径给药

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。

⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

药理学实验指导（供自学助考班用）实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识；2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。

【器材】1ml、5ml、20ml注射器，大、小鼠灌胃针头，4号、6号注射针头，250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼)，天平秤、砝码。

【药品】0.9%生理盐水。

【动物】小白鼠、大鼠、家兔。

【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍，食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢；右手将双下肢拉直，左手无名指及小指将其压住而固定。

此法用于淋巴囊注射。

毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部，拇指和无名指小指握持双下肢，右手持刺针进行操作。

2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。

双手法：右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。

单手法：小白鼠置于笼盖上，先用左手食指与拇指抓住鼠尾，手掌尺侧及小指夹住尾根部，然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。

3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人，捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠，先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与手掌握住背部和腹部。

不要用力过大，切勿捏其颈部，以免窒息致死。

4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大，其吃重点越分散)。

将兔提起，以左手托住其臀部，使兔呈坐位。

二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig)：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道。

如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。

常用灌胃量为0.1～0.2ml/10g。

皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。

注药量一般为0.1～0.2ml/10g。

肌肉注射(im)：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。

动物实验操作的基本知识一、实验动物抓拿固定（一）小白鼠(mouse)右手抓住其尾，放在鼠笼铁纱网上，然后用左手拇指及食指沿其背向前抓住其颈部，并以左手的小拇指和掌部夹住其尾固定在手上(图3-1)。

取尾血及尾静脉注射时，可将mouse固定在金属或木制的固定器上。

（二）大白鼠(rat)实验者应戴帆布手套，用右手将鼠尾抓住提起，放在粗糙的台面或鼠笼上，抓住鼠尾向后轻拉，左手抓紧两耳和头颈部皮肤，余下三指紧捏鼠背部皮肤，如果rat后肢挣扎厉害，可将鼠尾放在小指和无名指之间夹住，将整个鼠固定在左手中，右手进行操作（图3-2）。

若进行手术或解剖，则应事先麻醉或处死，然后用棉线活结缚四肢，用棉线固定门齿，背卧位固定在大鼠固定板上。

需取尾血及尾静脉注射时，可将其固定在大鼠固定盒里，将鼠尾留在外面供实验操作。

（三）豚鼠(cavy)Cavy具有胆小易惊的特性，因此抓取时要求快、稳、准。

一般方法是：以右手拇指和食指夹住两前肢及头部，使整个颈胸部皆在手掌中（不要抓得太紧以免窒息），左手抓住两后肢，使腹部向上，而后进行操作（图3-3）。

（四）蛙或蟾蜍(frog or toad)捉拿方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定，以中指、无名指、小拇指压住其左腹侧和后肢，拇指和食指分别压住左，右前肢，右手进行操作（图3-4）。

在捉拿toad时，注意勿挤压其两侧耳部突起之毒腺，以免毒液射到眼中。

实验如需长时间观察，可破坏其脑和脊髓以后放在蛙板上固定进行操作。

（五）家兔(rabbit)用右手抓住其颈背部皮毛，轻提动物，再以左手托住其臀部，使家兔的体重主要落在左手掌心，然后按实验要求固定（图3-5）。

作兔耳血管注射或取血时，可用兔盒固定。

作各种手术时，可将家兔麻醉后固定在手术台上。

固定方法常采用仰卧位固定，四肢用粗棉线固定，头用兔头固定夹固定或用棉线钩住家兔门齿再固定在兔台头端铁柱上。

（六）狗(dog)犬性凶恶，能咬人，因此进行实验时第一个步骤就是要绑住犬嘴，驯服的犬绑嘴时可从侧面靠近轻轻扶摸其背部皮毛，然后用寸带迅速兜住犬的下颌，绕到上颌打一个结，在绕回下颌打第二个结，然后将寸带引至头后颌颈部打第三个结，并多系一个活结（以备麻醉后解脱）。

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。

2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。

2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量。

⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。

一般给药剂量。

⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为。

⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。

一般给药剂量为【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

4、当第三只小鼠出现垂头，俯卧时，立即静脉缓慢注射5%氯化钙溶液，直至恢复站立。

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。

一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。

⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。

一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

试验动物保定方法-CAL-FENGHAI.-(YICAI)-Company One1一、实验动物的捉拿、固定及给药方法1.小白鼠：右手抓住鼠尾，放在台上或鼠笼盖铁丝网下，然后用左手拇指沿其背部向前抓住其颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住其尾固定在手上。

另一抓法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾尖，后用手掌及小指夹住其尾巴，再以拇指及食指捉住其颈部皮肤。

前一方法易学，另一方法稍难，但便于快速捉拿给药。

小鼠灌胃（PO）法：将小鼠固定后，右手持装有灌胃器的注射器，自口角外插入口腔，沿上颚插入食道。

如遇阻力，可将注射器拔出再插，以免穿破食道或误入气管，造成动物死亡。

灌胃容量一般为～10g，不超过只。

小鼠皮下注射法：两人合作，一人一手抓住小白鼠头部皮肤，另一手抓住鼠尾。

另一人注射药物。

注射部位在背部皮下组织。

如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好药液的注射器针头插入背部皮下组织。

如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好的药液的注射器针头插入背部皮下将药注入。

注射量不超过只。

小鼠腹腔注射法：左手持鼠，右手持注射器从下腹左或右侧（避开膀胱）朝头部方向刺入，宜先刺入皮下，经2～3mm再刺入腹腔，此时针头与腹壁的角度约45度。

针尖插入不宜太深或太近上腹部，避免刺破内脏，注射量一般为～只。

小鼠尾静脉注射法：将小鼠置于固定器内，使其尾巴露出，用70%酒精擦尾部，或将鼠尾浸入50℃热水中。

待尾部静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。

注射容量不超过只。

2.兔：用手抓起它脊背近后颈处皮肤，抓的面积越大其持重点越分散。

如家兔肥大，应再以另一手托住它的臀部，将持重点承托于手上。

将兔作仰卧位，一手仍抓住颈部皮肤，另一手顺其腹部抚摸至膝关节，压住关节。

另一人用绳带捆绑四肢，使兔腹部向上，固定在兔手术台上。

头部则用兔头固定夹固定。

兔灌胃法：二人合作，一人固定家兔于两膝之间，一手固定兔头，使头部后仰，另一手将开口器插入兔口，并向后翻转数次，使兔舌伸直并压在开口器下面。

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】逐步学会常用实验动物的捉拿和给药方法【内容】（一）小白鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法以右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀抓处，轻轻向后拉鼠尾，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指使鼠背靠在上面，然后以无名指及小指压住鼠尾，使小鼠完全固定（见实验图-1）。

2．给药方法⑴灌胃：小白鼠固定后，使其口部朝上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻地进入食管，如动物安静、呼吸无异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液（见实验图-2）。

灌胃量为0.1～0.25ml∕10g。

⑵腹腔注射：小白鼠固定后，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔（角度太小易刺入皮下）。

针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏。

注射量一般为0.1～0.2ml∕10g。

⑶皮下注射：固定小鼠后，右手持注射器，将针头刺入其背部皮下注入药液。

注射量一般不超过0.25ml。

⑷肌内注射：由两人合作，一人固定小白鼠后，另一人持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液。

注射量一般每腿不超过0.1ml。

（二）蟾蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法一般由左手握蛙，用食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。

2．给药方法多采用淋巴囊注射。

蛙的皮下有许多淋巴囊（见实验图-3），注入药液易吸收。

一般采用腹囊给药。

注射量每只可达0.25～1.0ml。

（三）家兔的捉拿和给药方法⒈捉拿法用左手抓住兔的颈背部皮肤将其提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。

⒉给药方法⑴灌胃：由两人合作，一人固定兔身（或用固定器将兔固定），另一人用开口器（见实验图-4）将兔口撑开，并将兔舌压在开口器下面横放于兔口中。

取适当的橡胶管涂以液体石蜡，从开口器的中央孔插入，沿上颚实验图-3 蟾蜍的给药部位实验图-4 家兔的灌胃法实验图-5 家兔的耳缘静脉注射后壁缓缓送入食管约15cm左右，即可进入胃内。

兽医药理学实验实验报告书写题目目的原理材料：实验动物、器材、药品方法：用自己的语言简单扼要描述出来结果：要求真实清楚讨论，将实验结果比较分析，实验中有哪些不足之处，结果异常或失败的原因结论：将实验结果归纳总结实验一：实验动物的捉拿及给药方法一、小白鼠的捉拿和给药方法1、捉拿法：以右手捉住小鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀爬处，轻轻向后拉鼠尾，趁其不备，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指靠在鼠背上，然后以无名指压住鼠尾，小指压住其左下肢，使小鼠完全固定。

2、给药方法：1）灌胃：以左手固定小鼠后，使其腹部朝上，颈部伸直，右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面沿上颚壁轻轻进入食管，当推进2～3cm时，灌胃器的前端到达膈肌水平，此时可稍感有抵触。

一般在此位置推注药液即可。

灌胃量为每10g体重0.1～0.3ml 。

2）腹腔注射：将小鼠固定后，使其呈头低臀高位，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔，进针部位不宜太高，刺入不宜太深，以免伤及内脏。

注射量一般为每10g 体重0.1～0.3ml 。

3）皮下注射：左手固定小鼠，右手持注射器，将针头刺入背部皮下注入药液。

注射量一般为每每10g体重0.05～0.2ml 。

4）肌肉注射：小鼠因肌肉较少，很少采取肌肉注射，若需要，则由两人合作，一人固定小鼠后，另一人持注射器，将针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。

注射量每条腿不超过0.1ml。

5）尾静脉注射：将小鼠固定，使鼠尾露出。

用酒精棉球涂搽尾部，使血管扩张。

用左手拉住尾尖，从左右两侧尾静脉中选择一条扩张最明显的，右手持注射器（选用4号针头），将针头由尾端向心刺入血管，用左手拇指与食指固定针头和血管，推入药液。

注射量为每10g体重0.1～0.2ml二、家兔的捉拿和给药方法：1、捉持法：用左手抓住颈背部皮肤将家兔提起，右手托住其臀部，使家兔呈坐位姿势。

动物实验基本操作一（固定、性别判定、标识）【实验目的】在做动物试验时，为确保给药、实验顺利进行，防止被动物咬伤、准确辨别动物性别、准确标识动物，要学会用正确方法捉拿实验动物、掌握辨别动物性别的方法以及掌握标识动物的方法。

【实验对象】SD大鼠，KM小鼠，雌雄各半，体重180-250g。

【实验器材和药品】器材：鼠笼、大小鼠固定器、方木板、美式图钉、细绳、防护手套药品：苦味酸80%~90%酒精饱和溶液、20%乌拉坦【实验步骤】一、小鼠的捉拿1、徒手固定：用右手提起尾巴中部，放在鼠笼盖或其他粗糙面上。

向后上方轻拉，此时，小鼠前肢紧紧抓住粗糙表面。

左手拇指和食指迅速捏住小鼠颈背部皮肤，再置小鼠于左手心，并以左手掌心和中指夹住小鼠背部皮肤，无名指压住小鼠尾根部，将其固定于手中。

右手可行注射或其它操作。

2、固定器固定：尾静脉注射或给药时，将小鼠放进固定器中或者大小和重量适当的容器（如烧杯），只露出尾巴，该类容器能够压住尾部，避免其活动。

勿固定过紧造成窒息死亡。

进行腹腔手术或心脏采血时，先准备一个15-20cm的方木板，边缘钉入五颗钉子。

将小鼠四肢分别用20-30cm的线绳捆绑，线的另一头分别绑在方木板的钉子上，并且在头部上颚切齿牵引一根线绳，也固定在钉子上，达到完全固定。

二、大鼠的捉拿4-5周内的大鼠，方法同小鼠。

周龄较大的，则：1、首先戴好防护手套。

2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。

3、左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行。

4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤，完成抓取保定。

三、性别判定小鼠、大鼠性别判定（1）幼鼠外生殖器与肛门间隔短的是♀，外生殖器与肛门间隔长的是♂。

（2）成年动物可直接肉眼辨认，雄性有膨起的阴囊和阴茎，雌性动物有阴道口。

四、动物的标记小鼠的短期标记法：苦味酸80%~90%酒精饱和溶液（黄色），标出属于自己的编号【注意事项】1、实验人员要有精神准备：掌握方法，胆大心细，做好防护。

附：实验基本操作1.小鼠捉拿固定小鼠性情温顺，一般不会主动咬人，但抓取时动作也要轻缓。

抓取时先将小鼠放在粗糙物（如鼠笼）上面，用右手提起鼠尾，将小鼠轻轻向后拉，这样可使小鼠前肢抓住粗糙面不动，用左手拇指和食指捏住鼠头皮肤和双耳，其余三指和掌心夹住其背部皮肤及尾部，这样小鼠便可被完全固定在左手中（图1），此时右手可作注射或其它实验操作，也可将小鼠固定在特制的固定器中。

2. 小鼠灌胃法以左手捉住小鼠，使其腹部朝上，右手持灌胃器（以1-2mL注射器上连接细玻璃灌胃管或把注射针头磨钝稍加弯曲制成的灌胃针头），灌胃管长约4-5cm，直径约1mm。

操作时，先从小鼠口角将灌胃管插入口腔内，然后用灌胃管向后上方压迫小鼠头部，使口腔与食道呈一直线，再将灌胃管沿着上颚壁轻轻推入食道（图2），当推进约2-3cm时可稍感有阻力，表明灌胃管前部已到达膈肌，此时即可推进注射器进行灌胃，若注射器推注困难，应抽出重插，若误入气管给药，可使小鼠立即死亡，注药后轻轻拔出灌胃管，一次灌药量为0.1-0.3mL/10g体重。

3. 腹腔注射法以左手固定小鼠，腹部向上，注射部位应是腹部的左、右下外侧1/4的部位，因为此处无重要器官。

用右手将注射器针头刺入皮下，沿皮下向前推进3-5mm，接着使针头与皮肤呈45度角刺入腹肌，继续向前推进，通过腹肌进入腹腔后感觉抵抗力消失，此时可注入药液，一次注射量为0.1-0.2mL/10g体重（图3）。

图1 小鼠捉拿方法图2 小鼠灌胃法图3 小鼠腹腔注射法药理学实验不同给药途径对药物作用的影响【目的】观察不同给药途径对硫酸镁药理作用的影响。

【原理】给药途径不同，不仅影响到药物作用的快慢、强弱及维持时间的长短，有时还可改变药物作用的性质、产生不同的药理作用。

硫酸镁口服基本不吸收而发挥容积性导泻作用，注射给药则产生吸收作用。

【实验材料】1、动物：小鼠2只。

2、药品：4%硫酸镁。

3、器材：注射器、鼠笼【方法与步骤】取小鼠2只，称重后标记，一只腹腔注射4%硫酸镁0.2mL/10g，另一只以同样剂量灌胃，观察并记录小鼠出现的症状，将结果填入下表。

实验动物的给药途径和方法及药量计算方法实验动物给药途径和方法的选择是影响实验结果的重要因素之一、根据药物的性质和实验的目的，常用的给药途径包括经口给药、皮下注射、静脉注射、肌肉注射等。

下面将介绍各种给药途径和方法的原理、特点和适用范围，并简述药物给量的计算方法。

1.经口给药(口服给药)经口给药是实验中最常用的给药途径之一、药物通过口腔、食道、胃和肠道进入血液循环，对实验动物产生作用。

优点是简单易行，不需要特殊技术。

但经过胃肠道吸收的药物受到肠道酶和肝脏的一次进过效应。

2.皮下注射皮下注射是在动物的皮下组织中注射药物。

特点是便捷简单，对实验动物能够均匀吸收。

注射部位一般选择在背部的腰椎处。

3.静脉注射静脉注射是将药物直接注射到动脉或静脉血管中，使药物迅速进入循环系统。

该方法能够实现药物的快速作用，但需要特殊的技术和专业的操作，同时需要根据实验动物的体重和药物的性质掌握合适的给药速度。

4.肌肉注射肌肉注射是将药物注射到动物的肌肉组织中。

与皮下注射相比，肌肉注射的吸收更快且更完全，对实验动物的作用更持久。

通常将注射部位选择在大肌肉组织上，例如大腿肌肉。

药物给量的计算方法：药物给量的计算需要根据实验动物的体重、药物的浓度和给药途径进行合理估算。

给药量=目标血药浓度×剂量体积/药物浓度×动物体重其中，目标血药浓度是研究中设定的药物效果所需要达到的血药浓度；剂量体积是每次给药所需用到的药物体积；药物浓度是给药液体中药物的浓度；动物体重是实验动物的体重。

在实验中，根据药物的生物利用度和实际需要，还需要将计算得到的给药量按照一定比例进行折算。

此外，在药物给量计算中还需考虑到给药途径的生物利用度、药物代谢和排泄速度、给药次数等因素。

需要注意的是，给药量的计算只是一个初步估算值，实验中仍需根据动物对药物的反应及目标血药浓度进行进一步调整。

综上所述，实验动物的给药途径和方法、药物给量的计算方法是实验设计中重要的考虑因素。

医学实验手册：动物给药一、小鼠的捉拿与固定鼠灌胃给药：将灌胃针安在注射器上，吸入药液。

左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持注射器将灌胃针插入口中，用灌胃针管压其上腭，使口腔和食道成一条直线，再沿咽后壁徐徐插入食管。

针插入时应无阻力，若感到阻力或动物挣扎时，应拔出重插，以免损伤或穿破食管以及误入气管。

操作要点与注意事项：（一）将动物固定成垂直体位，使其头、颈、身体成一条直线；（二）灌胃前将动物禁食，以免动物灌胃后呕吐；（三）灌胃针不可插入过深，一般插入小鼠3～4cm，大鼠4～6cm后即可注入药物；（四）常用灌胃量：小鼠0.2～1ml，大鼠1～4ml，豚鼠1～5ml。

小鼠灌胃大鼠灌胃二、注射给药1、皮下注射（H/SC）剃去注射部位毛发并用酒精消毒，左手将皮肤提起，右手持注射器刺入皮下，针头轻轻左右摆动，易摆动说明已刺入皮下，然后缓慢地将药物注入皮下。

推药过程中能明显观察到注射部位逐渐肿胀，注射完拔出针头后用无菌棉签压住进针部位片刻以免药物外漏。

注射剂量大鼠一般小于1ml/100g，小鼠一般为0.1～0.3ml/10g。

2、皮内注射（id）将药液注入皮肤的表皮和真皮之间，用于观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应，接种、过敏实验等一般作皮内注射。

先将注射部位毛发剃去，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，在两指之间进行针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并稍刺入，将药液注入皮内，注射部位呈现小丘疹状隆起，且皮肤上的毛孔极为明显。

如果注射时感觉比较费力，说明注射正确；如果感觉比较容易，说明已注入皮下，要拔出针头重新注射。

注射剂量大鼠一般小于0.1ml/次，小鼠一般小于0.05ml/次。

3、肌肉注射（im）肌肉注射一般在动物麻醉后进行，或者由两个人操作，一人固定动物，另一人执行注射。

一般注射部位为大腿后侧肌肉。

酒精消毒注射部位后，左手抓住后肢，右手持针插入肌肉，试着回抽针筒，如有血液或液体回流，表示不适当，需重新插入。

实验动物的捉拿和给药方法结果分析
在进行实验动物的捉拿和给药时，需要遵循科学道德和动物福利的原则。

具体的方法和结果分析将根据具体实验的目的和设计而有所不同。

以下是一般性的回答：
实验动物的捉拿可以采用种种不同的方法，比如使用适当大小的笼子进行引导捕捉，或者使用特定的设备和工具进行捉拿。

在进行捉拿过程中，需要注意动物的安全和福利，避免对动物造成不必要的伤害或痛苦。

给药方法可以根据实验的需要和动物的特点进行选择，常见的包括口服给药、注射给药、皮下给药、静脉给药等。

给药剂量和频次应根据实验的目的、动物的体重、种类以及对实验结果的影响因素进行合理的设定。

结果分析需要根据实验的具体设计和目的进行，可以使用统计学方法对数据进行处理和分析。

常见的分析方法包括描述统计，如平均值和标准差的计算，以及实验组间的比较，如t检验、方差分析等。

分析结果应结合相关背景知识和先前研究成果进行解释和讨论，以得出科学可靠的结论。

需要注意的是，实验动物的使用需遵守相关法律法规和伦理规范，确保动物的福利和利益。

同时，实验过程中应注意实验手段的科学性、合理性和准确性，以及数据的真实性和可靠性。

药理学实验指导供自学助考班用)实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识；2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。

【器材】1ml、5ml、20ml注射器，大、小鼠灌胃针头，4号、6号注射针头，250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼)，天平秤、砝码。

【药品】0.9%生理盐水。

【动物】小白鼠、大鼠、家兔。

【内容】一、实验动物的捉拿方法1 、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍，食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢；右手将双下肢拉直，左手无名指及小指将其压住而固定。

此法用于淋巴囊注射。

毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部，拇指和无名指小指握持双下肢，右手持刺针进行操作。

2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。

双手法：右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。

单手法：小白鼠置于笼盖上，先用左手食指与拇指抓住鼠尾，手掌尺侧及小指夹住尾根部，然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。

3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人，捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠，先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与手掌握住背部和腹部。

不要用力过大，切勿捏其颈部，以免窒息致死。

4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大，其吃重点越分散)。

将兔提起，以左手托住其臀部，使兔呈坐位。

二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig) ：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道。

如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。

常用灌胃量为0. 1〜0. 2ml/10g。

皮下注射(ih) ：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。

注药量一般为0.1〜0.2ml/10g。

肌肉注射(im) ：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。