实验动物的捉拿和给药方法

药理学实验指导（供自学助考班用）实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识；2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。

【器材】1ml、5ml、20ml注射器，大、小鼠灌胃针头，4号、6号注射针头，250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼)，天平秤、砝码。

【药品】0.9%生理盐水。

【动物】小白鼠、大鼠、家兔。

【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍，食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢；右手将双下肢拉直，左手无名指及小指将其压住而固定。

此法用于淋巴囊注射。

毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部，拇指和无名指小指握持双下肢，右手持刺针进行操作。

2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。

双手法：右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。

单手法：小白鼠置于笼盖上，先用左手食指与拇指抓住鼠尾，手掌尺侧及小指夹住尾根部，然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。

3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人，捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠，先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与手掌握住背部和腹部。

不要用力过大，切勿捏其颈部，以免窒息致死。

4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大，其吃重点越分散)。

将兔提起，以左手托住其臀部，使兔呈坐位。

二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig)：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道。

如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。

常用灌胃量为0.1～0.2ml/10g。

皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。

注药量一般为0.1～0.2ml/10g。

肌肉注射(im)：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。

动物实验的基本操作（动物的捉拿与给药方法）小鼠捉拿法有二种：一种是用右手提起尾部，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后上方轻拉，此时小鼠前肢紧紧抓住粗糙面，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤并用小指和手掌尺侧夹持其尾根部固定手中；另一种抓法是只用左手，先用拇指和食指抓住小鼠尾部，再用手掌尺侧及小指夹住尾根，然后用拇指及食指捏住其颈部皮肤。

大鼠捉拿时，右手抓住鼠尾基部，将大鼠放在粗糙面上，左手戴上防护手套或用厚布盖住大鼠，抓住其整个身体并固定其头部以防咬伤。

捉拿时勿用力过猛，勿捏其颈部，以免引起窒息。

家兔捉拿时一手抓住其颈背部皮肤。

轻轻将兔提起，另一手托住其臀部。

猫捉拿时先轻声呼唤，再慢慢将手伸入猫笼中，轻抚猫的头、颈及背部，抓住其颈背部皮肤并以另一手抓其背部。

如遇凶暴的猫，不让接触或捉拿时，可用套网捉拿，必要时可用固定袋将猫固定。

实验动物的给药方法1．灌胃法小鼠灌胃法将小鼠放在粗糙面上，左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤，无名指或小指将尾部紧压在手掌上，使小鼠腹部朝上，注意使口腔和食管成一直线。

右手持灌胃针管从小鼠口角插入口腔内，经舌面紧贴上腭进入食管，进针2~3cm 后，如此时动物安静并无呼吸异常，即可将药注入。

如遇阻力或动物憋气时则应抽出重插，不能强插以免刺破食管或误入气管使动物死亡。

兔灌胃法用兔固定箱，可一人操作。

右手将开口器固定于兔口中，舌压在开口器下面，左手将导管经开口器中央小孔插入。

如无兔固定箱，则需两人协作进行，一人就坐，腿上垫好围裙，将兔的躯体夹于两腿间，左手紧握双耳，固定其前身，右手抓住其两前肢。

另一人将开口器横放于兔上下颌之间，固定在舌面上,将导管自开口器中央的小孔插入，慢慢沿兔口腔上腭壁插入食道约15～18cm。

插管完毕将胃管的外口端放入水杯中，切忌伸入水过深。

如有气泡从胃管逸出，说明不在食道内而是在气管内，应拔出来重插。

如无气泡逸出，则可将药推入，并以少量清水冲洗导尿管保证管内药液全部进入胃内。

实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1．蛙和蟾蜍通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢，右手将下肢拉直，左手用无名指及小指夹住（图1）。

图1 蟾蜍捉持法2．小鼠（1）双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。

迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图2）。

图2 小鼠双手捉持法（2）单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤（图3）。

图3 小鼠单手捉持法3. 大鼠大鼠容易激怒咬人，捉持时应戴防护手套。

先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与掌部握住背部和腹部。

注意不要捏其颈部，以防用力过大、过久，窒息死亡。

4．家兔一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，使兔呈蹲坐姿势（图4）。

切不可用手握持双耳提起兔子。

图4 家兔捉持法5．豚鼠豚鼠性情温和，不咬人，用手轻轻握住身体即可抓起。

6. 猫应戴好防护手套。

轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻抚猫头、颈和背部，一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住腰背部。

性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持，操作中应防其利爪和牙齿伤人。

7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套，用绳带固定于耳后颈部；凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部，然后套上嘴套。

狗嘴也可用绳带固定，操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结，再绕到颈后部打结，以防绳带滑落。

狗麻醉后四肢固定于手术台上，取下嘴套或绳带，将一金属棒经两侧嘴角，穿过口腔压于舌上，再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴，并固定于手术台上。

应将狗舌拉出口腔，以防窒息。

二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。

适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。

口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。

若为保证剂量准确，可应用灌胃法。

基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。

【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。

抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。

2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。

将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。

压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。

【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。

3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。

穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。

若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。

移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。

注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。

【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。

在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。

实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。

一般给药剂量。

⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。

一般给药剂量。

⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。

一般给药剂量为肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为。

⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。

将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。

一般给药剂量为【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。

4、当第三只小鼠出现垂头，俯卧时，立即静脉缓慢注射5%氯化钙溶液，直至恢复站立。

针对药理学有关知识容与实验课的要求，拟开设以下几个方面的实验：实验一:药理学实验的基本知识及基本技能训练（4学时）实验目的与要求：通过实验使学生掌握药理实验有关的动物选择、应用、捉拿、给药、采血等基本知识及基本技能的训练。

要点：一、常用动物捉持方法⑴小鼠捉持⑵家兔捉持二、常用动物给药方法⑴小鼠灌胃——；皮下注射——；腹腔注射——；肌肉注射——；尾静脉注射——；⑵家兔灌胃——；耳缘静脉给药——；三、常用动物取血方法⑴小鼠后眼眶静脉丛取血——用拇指和食,中指捏住鼠颈部,利用捏紧的压力,使静脉丛淤血.将一特制硬玻璃吸管(约长15cm,前端拉成管壁略厚的毛细管),从眼角插入眼睑和眼球之间,轻轻香眼底方向移动，并略加捻转，血即自然顺便玻璃管流出。

⑵眼眶动脉、静脉取血——左手抓住小鼠，拇指和食指尽量将头部皮肤捏紧，使眼球突出，用无钩弯镊将眼球摘除，将鼠倒置，血即流出1. 小鼠捉持法以右手捉小鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，向后轻拉小鼠尾部，使小鼠固定于粗糙面上。

用左手的拇指、食指和中指捏住小鼠两耳及头部皮肤，无名指、小指和掌心夹住背部皮肤和尾部，使头部朝上，颈部拉直但不宜过紧，以免窒息（见图1—1）。

另一种捉持方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴，后用手掌及小指和无名指夹住其尾部，再以拇指及食指抓住两耳和头部皮肤（见图1—2）。

前者易学，后者便与快速捉拿给药。

图1—1 小鼠的捉拿方法1 图1—2 小鼠的捉拿方法22. 小鼠灌胃以左手捉持小鼠，头部朝上，使其头颈充分拉直。

右手拿起装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面紧沿上腭进入食道（见图1—3）如插入正确，灌胃针头容易进入，如遇阻力，可能插入气管，应退出再插。

灌胃液最多不超过0.1ml。

图1—3小鼠的灌胃法图1—4小鼠的皮下注射法3. 小鼠皮下注射将小鼠至于铁丝网上，左手抓住小鼠，以拇指扣食指捏起背部皮肤，右手持注射器刺入背部皮下注射药液。

（见图1—4）。

实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。

【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。

实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。

针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。

(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。

注射量一般不超过0.25 ml/10g。

(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。

(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。

2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。

多采用腹囊给药。

由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。

如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。

注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。

2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。

药理实验实验⼀常⽤动物的捉拿与给药⽅法【实验⽬的】1、了解⼩⿏的饲养⽅法2、练习并掌握⼩⿏的捉拿与给药⽅法【实验材料】1、器材：⿏笼、饮⽔瓶、⼤烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：⽣理盐⽔、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：⼩⽩⿏，20～30g【实验⽅法】1、捉拿与固定：⽤右⼿捉住⿏尾，将其提起置于⿏笼或者粗糙平⾯上，向后轻拉⿏尾，⽤左⼿的拇指和⾷指抓住⼩⿏两⽿及颈背部⽪肤，将⼩⿏置于左⼿掌⼼，以⼩指夹住⼩⿏尾巴即可。

2、给药法⑴灌胃：将⼩⿏固定，⼝朝上，颈部拉直，右⼿持灌胃针，先从⼝⾓处插⼊⼝腔，再沿上颚轻轻插⼊⾷管。

⼀般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑵腹腔注射：将⼩⿏固定，右⼿持注射器⾃下腹部⼀侧刺⼊⽪下后，再刺⼊腹腔，缓慢注⼊药物。

⼀般给药剂量0.1-0.3ml/10g。

⑶⽪下注射：两⼈合作，⼀⼈左⼿抓住⼩⿏头部，右⼿拉住⼩⿏尾巴固定⼩⿏，另外⼀⼈⽤左⼿提起⽪肤，右⼿持注射器刺⼊⽪下注⼊药物。

⼀般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌⾁注射：最好两⼈合作，⼀⼈固定⼩⿏，另外⼀⼈将针头迅速垂直刺⼊后肢外侧肌⾁，回抽⽆回⾎即可注⼊药物，⼀侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。

⑸静脉注射：⼀般采⽤尾静脉注射。

将⼩⿏固定，使尾巴露出来，在50℃热⽔中浸泡或者⽤75%酒精擦拭尾巴，使⾎管扩张，左⼿拉住⿏尾，右⼿持注射器，从⿏尾巴末梢开始进针，注⼊药液。

⼀般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【⼼得体会】实验⼆不同给药途径对药物作⽤的影响【实验⽬的】观察不同给药途径对药物作⽤的影响【实验材料】4、器材：⼤烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：⼩⿏，18～22g【实验⽅法】1、取⼩⿏3只，称重编号，分别放⼊⼤烧杯中，观察⼩⿏的正常活动，记录半个⼩时内活动、呼吸、粪便情况。

2、给药：⼀号⼩⿏灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g⼆号⼩⿏肌⾁注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号⼩⿏静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察⼩⿏的反应及活动，记录半⼩时内⼩⿏活动、呼吸及粪便变化。

常见实验动物的捉持和给药方法一、小白鼠的捉持和给药方法1、捉持方法右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼）上面，轻向后拉其尾；此时小鼠前肢抓住粗糙面不动；用左手拇指和食指捏住双耳及头部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤及尾部，便可将小鼠完全固定。

腾出右手，可以给药。

此外，也可单手捉持，难度较大，但速度快。

先用拇指和食指抓住小鼠尾巴，用小指、无名指和手掌压住尾根部，再用腾出的拇指、食指及中指抓住鼠双耳及头部皮肤而固定。

2、给药方法ａ.灌胃法小鼠固定后，使腹部朝上，颈部拉直，右手用带灌胃针头的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口交插入口腔，再从舌背进沿上腭进入食道。

若遇阻力，应退出后再插，切不可用力过猛，防止损伤或误入气管导致动物死亡。

灌胃量一般不超过0.25ml/10g。

ｂ.腹腔注射法抓鼠方法同上，右手持注射器（5～6号针头），从耻骨联合上一侧向头端以30度角刺入腹腔（应避开膀胱）。

可先刺入皮下2～3mm，再刺入腹腔，以防药液外漏。

针头刺入部位不宜太高太深，以免刺破内脏。

注射量一般为0.1～0.25ml/10g。

ｃ.皮下注射法一般两人合作。

一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾；另一人左手提高背部皮肤，右手持住注射器（针头号同上），将针头刺入提起的皮下。

若一人操作，左手小指和手掌夹住鼠尾，拇指和食指提起背部皮肤，右手持注射器给药。

一般用量为0.05～0.25ml/10g。

ｄ.肌肉注射法两人合作时，一人抓鼠方法同上，另一人左手拉直一侧后肢，右手持注射器，注射部位多选后腿上部外侧（针头号同上）。

如一人操作，抓鼠方法类似腹腔注射，只是药液注射在肌肉内。

每腿的注射量不宜超过0.1ml。

ｅ.尾静脉注射法将小鼠置于待置的固定筒内，使鼠尾外露，并用酒精或二甲苯棉球涂擦，或插入40℃～50℃温水中浸泡片刻，使尾部血管扩张。

左手拉尾，选择扩张最明显的血管；右手持注射器（4～5号针头），将针头刺入血管，缓慢给药。