03实验二 减数分裂染色体制片及观察

【实验题目】染色体标本制作与观察【实验目的】1、掌握小鼠睾丸细胞染色体标本的基本制作过程和Giemsa染色法，了解各操作步骤的原理。

2、了解常用实验动物染色体的数目及特点。

3、认识不同生物染色体的特征，学会做染色体组型图。

【实验材料与用品】1.器材：显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、手术剪、解剖盘、胶头滴管、离心管、离心机、小烧杯、冰箱、酒精灯、小烧杯等2.材料：小鼠3. 试剂：蒸馏水、0.9%NaCl溶液、0.3%KCl溶液，固定液（甲醇：冰醋酸=3:1）、秋水仙素【实验原理】一、制作染色体标本的先决条件①细胞具有旺盛的分裂能力：选择活跃的组织，如胸腺、骨髓、睾丸、小肠；或施加药物使细胞分裂（PHA）②设法得到大量的分裂中期细胞：利用秋水仙素二、染色体染色体是基因的载体。

真核细胞染色体的数目和结构是重要的遗传特性之一。

制备染色体标本是细胞学最基本的技术之一，优良的染色体制片是进行染色体显带、组型分析、原位杂交等的先决条件。

染色体的制备在原则上可以从所有发生有丝分裂的组织和细胞悬浮液中得到。

最常用的途径是从骨髓细胞、血淋巴细胞、、和组织培养的细胞中制备染色体。

本实验采用的方法是从小鼠的睾丸细胞中获取。

染色体的形态结构在细胞增殖周期中是不断的运动变化的，一般在有丝分裂中期，染色体形态最典型、最易辨认和区分。

因此，制备染色体标本获取的是中期细胞。

染色体特征：数目、长度（绝对长度、相对长度）、着丝粒位置（M/SM/ST/T)、随体与次缢痕的数目大小和位置、带型分析描述染色体的四个参数：①相对长度=（每条染色体的长度）/（单倍常染色体之和+X染色体）*100，相对长度可以用来表示每条染色体的长度。

②臂指数=（长臂的长度）/(短臂的长度)，臂指数可以用来确定臂的长度。

③着丝粒指数=（断臂长度）/（染色体全长）*100，着丝粒指数可以决定着丝粒的相对位置。

④染色体臂数（NF），根据着丝粒的位置来确定。

三、操作原理小型动物的染色体制片最好最有效的材料就是骨髓组织（由于分裂活动旺盛，睾丸也可）利用睾丸细胞的制片技术虽然需要离心以及细致的操作，但基本程序并不复杂。

减数分裂装片制作与观察1 引言减数分裂是有性生殖的生物形成配子时进行的一种特殊的细胞分裂形式。

减数分裂后产生的配子染色体数为体细胞的一半，称作单倍体（haploid）细胞。

有性生殖过程中雌雄配子的结合使得合子细胞的染色体数目与正常体细胞相同，从而保证了子代与亲代染色体数目的稳定。

而另一方面，减数分裂过程中，染色体配对时非姊妹染色单体发生交换，使得染色体上的基因得以重组，因而后代的表型更具多样性。

减数分裂相与又是分裂之间存在较大的差异。

减数分裂可划分为减数第一次分裂和减数第二次分裂。

减数第一次分裂具有较长的前期，可划分为细线期、偶线期、粗线期、双线期和浓缩期（终变期）。

在该时期中发生同源染色体的联会和非姊妹染色单体的交换。

2 实验材料及器材雄性蝗虫一只（每组一只）、显微镜、解剖针、解剖剪、载玻片、盖玻片、平皿、改良苯酚-品红染液、生理盐水、吸水纸3 实验步骤1.取材取雄性蝗虫，从尾部两侧剪开体壁，直至双翅基部，掀开背板露出内部器官。

可见一对淡黄色的精巢位于消化管背面。

用镊子取出精巢置于平皿中，滴数滴生理盐水以保持湿润。

用镊子或解剖针将精巢分离开，可见大量细条状的精细小管。

2.制作装片从盒中取出载玻片，尽量擦干。

用镊子夹取1-2条精细小管置于载玻片上，用吸水纸将水小心地吸干，注意不要将精细小管吸走。

在精细小管上滴加一滴改良苯酚-品红染液，室温下染色10-15min。

盖上盖玻片，在盖玻片上垫1-2层吸水纸，一手稳住载玻片和盖玻片防止发生滑动，另一只手用解剖针柄敲击盖玻片以使精细小管中的细胞分散。

3.镜检先用4倍或10倍物镜观察，当找到良好视野后换40倍物镜或100倍物镜（需要使用镜油）。

寻找和识别减数分裂各个时期的细胞。

并选择两个典型的细胞分裂相进行手绘。

4 实验结果从显微镜下寻找到减数分裂各个时期的细胞。

前期Ⅰ细线期：染色体呈细纤维样，虽然已经完成复制，但看不到成双的染色体。

偶线期：同源染色体发生联会，但此时四分体的结构并不清晰可见。

实验3 减数分裂制片技术和显微镜观察一、实验目的1. 学习花粉母细胞涂抹制片技术，观察细胞减数分裂时期染色体变化规律及特征并绘图。

2.观察花蕾或花药长度与减数分裂时期的关系。

二、实验原理减数分裂是生物在性母细胞成熟形成配子过程中发生的一种特殊有丝分裂，它包括连续两次的细胞分裂阶段，最终分裂为染色体数目减半的四个子细胞，从而发育为雌性或雄性配子（n）。

由于植物花药取材容易，操作和鉴定比较方便，故一般都取用花粉母细胞作为减数分裂制片材料。

在生物发育的适宜时期取样、固定、涂片等程序，便可在显微镜下观察到减数分裂过程中染色体的行为变化。

三、实验材料lily百合（2n=24）四、实验步骤（一）取材lily百合：通常花蕾长度18mm（花药长度8mm）时为花粉母细胞分裂始期。

花蕾约40mm（花药长17mm）时为减数分裂终期。

采集18-40mm不同长度的花蕾，固定，保存。

（二）制片从小花中取出花药1~3 枚置于载玻片 滴一滴醋酸洋红溶液 用镊子按压花药 去尽肉眼可见残渣 染色2分钟 盖上盖玻片 在低倍镜下寻找花粉母细胞 高倍镜下观察各分裂相细胞染色体的特征及变化规律.选择典型分裂相的临时片1~2张 在酒精灯火焰上缓缓烘干（不能沸腾！） 将玻片放入液氮罐，在液氮表面冷冻1分钟 取出玻片放在白纸上，手按盖玻片一边，用刀片从另一边将盖玻片揭开置于白纸上（有材料的一面朝上） 滴一滴中性树胶在载玻片上的材料处 原位盖上盖玻片→树胶凝固后镜检。

1. 取花药1枚（截）置载玻片中央2. 加1滴染色液3.用镊子按压，并镊除可见残渣4.放上盖玻片（三）显微镜观察先在低倍镜下寻找具分裂相的花粉母细胞，然后依次转换到高倍镜观察减数分裂各个时期染色体的行为和形态特征。

区分4 类细胞：1 形状较大，圆形，核大，着色较浅的是花粉母细胞。

2 形状较小、着色较深的是花药壁体细胞。

3 形状居中略呈扇形的是四分体的小孢子。

4 形状较大，内部透明并有明显外壳的是成熟的花粉粒。

一、实验目的1.了解动物精母细胞减数分裂各时期的主要特点2.掌握动物精母细胞减数分裂染色体标本装片的制作技术二、实验原理减数分裂是生物在性母细胞成熟时配子形成过程中发生的一种特殊的细胞分裂，它包括连续两次的细胞分裂阶段：第一次分裂为染色体数目的减数分裂，第二次为染色体数目的等数分裂。

两次分裂可根据染色体变化特点分为前期、中期、后期和末期。

在减数分裂过程中，同源染色体之间发生联会、交换和分离，非同源染色体之间进行自由组合，最终分裂成为染色体数目减半的四个子细胞。

精卵细胞经过受精结合成为受精卵发育为新的个体，这样又恢复了原有染色体的数目。

三、实验材料、用具及药品实验材料：蝗虫（2 n = 23）的精巢；实验用具：显微镜、小手术剪、解剖针、小弯镊、载玻片等；实验药品：甲醇、冰乙酸、改良品红染色液等。

四、实验步骤1.取材：剪开蝗虫体壁，找到黄色的团状块即精巢；2.固定：用无水乙醇和甲酸3:1 制成的卡诺氏液对材料固定4-12 h；另取材料固定20 mins，作为对比观察油脂量；3.染色：夹取一小枚管状精巢，放置于载玻片上，滴加适量醋酸洋红（17-23 mins）或改良品红（12-18 mins）染色；4.压片镜检：用解剖针挑取少量材料（1条精小管）到1张新载玻片上，加1滴新鲜染料，捣碎成雾状，加盖玻片，覆吸水纸压片，镜检。

五、观察结果及分析图1 蝗虫细胞减数分裂（40×，醋酸洋红，固定20min）图2 蝗虫细胞终变期（局部截图，改良品红）图3 蝗虫细胞第一次减数分裂中期（局部截图，改良品红）图4 蝗虫细胞第一次减数分裂后期（局部截图，改良品红）图5 蝗虫细胞第二次减数分裂中期（局部截图，改良品红）图6 蝗虫细胞第二次减数分裂后期（局部截图，改良品红）。

遗传学实验报告栀子花开8 6生物有志班梦想实验学院实验1 植物有丝分裂染色体制备一、实验目的主要掌握有丝分裂染色体制片技术；了解有丝分裂各个时期染色体的特征。

二、实验原理各种生长旺盛的植物组织，如根尖、茎尖、愈伤组织等常进行着活跃的细胞分裂。

通过对材料进行适当的固定处理，酶解和染色，就可以在显微镜下观察到细胞内染色体的变化过程。

有丝分裂中期的染色体长度较短，具有典型的形态特征，易于记数和分析。

因此，在细胞的分裂过程中，进行药物或冰冻处理，可阻止纺锤体的形成，使细胞分裂停止在中期。

同时，对组织细胞进行酸性水解或酶解处理，降解细胞之间的果胶质和细胞的纤维素壁，使细胞易于散开。

三、实验材料、器具及试剂大麦、玉米及洋葱等根尖。

显微镜、水浴锅、镊子、载玻片、盖玻片、小瓶、酒精灯、滤纸等。

固定液：95％乙醇:冰醋酸＝3:1；染液：甲基改良品红；处理液：0.002M8-羟基喹林水溶液，0.075M KCl；酶解液：2.5％纤维素酶和2.0％果胶酶水溶液。

四、实验步骤步骤1：1、浸种催芽：取少许种子放入培养皿中，加水浸没，于30℃左右浸种1－2天。

当种子萌动时，把水倒去，在铺有湿滤纸的培养皿中催芽。

2、预处理：根长至0.5-1.0cm时切取根尖，投入0.002M8-羟基喹林水溶液中处理；18℃，1-1.5h。

3、前低渗：吸去预处理液，加入0.075M KCl，或水低渗处理10-30min。

4、固定：用95％乙醇:冰醋酸＝3:1固定30min以上，也可固定后放入4℃冰箱保存。

水洗3次，每次10min。

5、酶解：加入2.5％纤维素酶和2.0％果胶酶水溶液，在37℃酶解处理70－120min（根据软化程度而定）。

6、后低渗：倒去酶液后用蒸馏水冲洗2－3次，在水中停留30min以上，即可直接用于制片。

也可换入固定液保存。

7、火焰干燥制片：放2－3个根尖在载片上，加一小滴固定液，用镊子将根尖敲碎至浆状。

再滴2－3滴固定液，迅速用镊子夹住载片在酒精灯火焰上加热至着火，然后吹灭火焰。

实验二.植物花蕾减数分裂制片及观察实验目的：通过植物花蕾的减数分裂制片和观察，了解减数分裂的过程和规律。

实验原理：植物花蕾的生长过程中，花蕾内的细胞发生减数分裂，形成雌、雄配子体。

减数分裂是生殖细胞分裂的一种，其特点是染色体数目减半。

在减数分裂的过程中，先经过一次有丝分裂，产生两个相同染色体数目的间期细胞。

然后，再进入第二次分裂，其中染色体在核质中自由排列并分离，最终形成四个单倍体的生殖细胞。

实验材料：1. 茄子或百合等植物花蕾。

2. 75%酒精。

3. 1%苏丹红染液。

4. 光学显微镜。

5. 盖玻片。

实验步骤：1. 取一颗开花前的茄子或百合的花蕾，用剪刀将花瓣、花药等植物细胞切除，只留下花蕾的基部。

2. 将花蕾浸泡在75%酒精中，静置24h以上，使花蕾内的细胞中的液体充分挥发。

3. 用镊子将花蕾基部剪下，用小刀将其切成纵平面。

4. 将切好的花蕾放入1%苏丹红染液中，静置3min，然后去除余染。

5. 用移液管将少量蒸馏水滴在切片上，覆盖盖玻片。

6. 在显微镜下观察制片，寻找减数分裂过程中的染色体纹理和细胞形态等。

实验注意事项：1. 制片时要注意操作技巧，避免受伤。

2. 操作前要对刀具进行消毒处理，避免污染。

3. 在苏丹红染液中染色时，要避免过染或不均匀染色，影响观察结果。

4. 在显微镜下观察时，要注意调节放大倍数和光线，以便更清晰地观察到细胞结构和染色体的纹理等。

实验结论：通过本次实验，可以深入地了解到植物花蕾减数分裂的过程和规律。

在实验过程中，观察到同一细胞中的染色体形态各异、数目减半等现象，进一步说明减数分裂是生殖细胞分裂中的重要过程。

同时，实验让我们对植物细胞结构和染色体的形态等有了更加深刻的认识，为生物学知识的深入学习和研究提供了基础知识。

动植物减数分裂过程中染色体行为的观察实验背景：对于雄性动物，减数分裂是精子发生过程的一部分。

在减数分裂过程中染色体只复制一次，而细胞要分裂两次，最终形成的配子中染色体数仅为性母细胞的一半。

受精时雌雄配子结合，恢复亲代染色体数，从而保持了物种染色体数的恒定。

实验目的：通过植物的小孢子母细胞或动物的精母细胞为材料观察减数分裂过程。

这次试验我们以玉米及蝗虫为材料制备染色体标本，观察、比较动植物减数分裂过程染色体的行为。

实验材料：显微镜一台，眼科镊一只，解剖针载玻片，盖玻片，滤纸片，苯酚品红染液，蝗虫精巢实验步骤：1、取材用剪刀减去蝗虫双翅，再由腹部的背面剖开，其中橘黄色的团块即使一对精巢，外含大量脂肪的薄膜，使整个精巢呈黄色。

将精巢投入0.7%的生理盐水中，剔去脂肪，就可以看见精巢中细小的纤维状曲细精管。

2、固定将剃去脂肪的精巢投入卡诺固定液中，室温下固定2-6小时，转入70%乙醇，存放在4摄氏度的冰箱里备用。

3、制片及镜检载玻片上滴一滴染料，挑取3-4条曲细精管置于其中，染色6-10分钟，压片，用手指压住一角，在旁边敲击盖玻片一段时间，最后用手指按压，使所有的细胞位于同一平面内，在显微镜下观察，在四十倍物镜下观察。

实验结果:结果分析:显微镜下观察到的图片;细线期偶线期粗线期双线期终变期末期中期Ⅱ后期Ⅱ末期Ⅱ精子结果分析:在实验过程中显微镜下观察不同时期蝗虫细胞时，会发现处于分裂前期的细胞数目最多。

前期的细线期、偶线期并不十分明显。

而粗线期、双线期和终变期每个时期有各自独特的特征，粗线期的染色体粗且短，每天染色体基本都能数清。

配对的染色体实为两个二分体紧靠在一起，结果为一个四分体。

双线期进一步缩短，同源染色体开始排斥，相互分离，分离时可能有一两点扭在一起。

终变期同源染色体进一步浓缩变短，各种二价体形状更加明显。

哺乳动物染色体制片与观察实验报告实验目的本实验旨在通过制作哺乳动物染色体制片，观察和探索哺乳动物染色体的结构和特点。

实验材料- 哺乳动物染色体样本（例如人类、小鼠等）- 表皮组织刮片- 表皮细胞培养基- 血红素盐酸盐溶液- 醋酸（5％）- 钠苏尔法米红（0.1％）实验步骤1. 采集表皮组织刮片：使用无菌的刮片工具从待观察的部位取得表皮细胞样本，并将其转移到表皮细胞培养基中。

2. 表皮细胞培养：将表皮细胞样本转移到培养皿中，加入适量的表皮细胞培养基，放入恒温培养箱中，保持适当的温度（通常为37摄氏度）和湿度，培养一段时间，直至细胞增殖到一定数量。

3. 细胞收集：当细胞增殖到一定程度时，将培养皿中的细胞用生理盐水冲洗，以去除培养基中的残留物。

4. 染色体制片制备：将经过冲洗的细胞用生理盐水悬浮，滴于一块干净的玻璃片上，使细胞均匀分布。

然后从玻璃片的一端倾斜，使细胞均匀地涂布在玻璃片上。

待玻璃片干燥后，放入醋酸（5％）中固定细胞。

5. 细胞处理：将醋酸固定的玻璃片放入血红素盐酸盐溶液中，静置一段时间，左右观察细胞的形态。

6. 染色：将经过血红素盐酸盐处理的玻璃片转移到钠苏尔法米红溶液中，静置一段时间，使细胞染色。

7. 清洗与封片：将玻璃片转移到蒸馏水中，轻轻冲洗几次，然后用纸巾吸干水分。

在制片机上加热一段时间，待玻璃片完全干燥后，将其与载片胶片粘合在一起，制成染色体制片。

实验结果与讨论通过观察染色体制片，我们可以明显地看到哺乳动物细胞中染色体的形态和数量。

在制片过程中，醋酸的固定作用有助于细胞形态的保持，血红素盐酸盐和苏尔法米红的处理使染色体变得更加可见和易于观察。

实验结果显示，哺乳动物染色体一般为线状结构，且数量多为偶数。

根据染色体的形状、大小和着色情况，我们可以初步判断其所属的染色体类型（如性染色体、常染色体等），进一步研究染色体的特点。

这个实验不仅可以帮助我们了解哺乳动物染色体的基本结构和形态，还可以在遗传学和进化生物学研究方面提供重要的数据和信息。

实验二减数分裂制片技术一、实验目的1、了解植物生殖细胞的形成过程；2、熟悉减数分裂各时期的特点，加深对减数分裂的认识；3、掌握植物花粉母细胞的压片技术和方法。

二、基本原理减数分裂（meiosis）,又称成熟分裂（maturation division）是在性母细胞成熟时，配子形成过程中所发生的一种特殊方式的有丝分裂。

性母细胞（2n）连续进行两次核分裂（第一次分裂和第二次分裂），形成四个染色体数目减半的配子(n)。

经过受精，雌雄配子（n）融合为合子，又恢复了体细胞染色体数目（2n）。

确保了亲代与子代间染色体数目的恒定性，从而保证了物种相对的遗传稳定性。

在适当的时候采集植物的花蕾制备染色体标本就可在显微镜下观察到植物细胞的减数分裂。

整个减数分裂可分为下列各个时期：第一次分裂前期Ⅰ减数分裂的特点之一就是前期Ⅰ特别长，而且又较复杂。

通常根据细胞核内结构变化特征又将这一期分成五个时期，即细线期、偶线期、粗线期、双线期和终变期。

细线期（leptotene）：这是减数分裂的开始时期，染色质开始浓缩为细而长的丝状，首尾不分，且细线局部可见到念珠状颗粒，即染色粒。

此时，虽然染色体已经复制为二个染色单体，但在显微镜下还看不出结构上的双重性。

偶线期(zygotene)：各同源染色体开始配对（pairing），出现联会现象。

2n 个染色体联会为n对染色体。

染色体形态与细线期差别不大。

在显微镜下不易与细线期分开，但可根据染色体分散状态及粗细变化判断其是靠近细线期还是趋于偶线期。

粗线期（pachytene）：二价体逐渐缩短变粗，同源染色体配对完毕，这种二价体包含了四条染色单体，又称四合体(tetrad)。

此时，非姊妹染色单体间出现交换（crossing over）,造成遗传物质的重组。

双线期(diplotene)：配对的同源染色体进一步缩短变粗，由于同源染色体间发生过互换，开始分离而出现交叉（chiasmata）现象。

此时染色体呈现扭花状。

动植物减数分裂过程中染色体行为的观察摘要减数分裂是指有性生殖的个体在形成生殖细胞过程中发生的一种特殊分裂方式，不同于有丝分裂和无丝分裂，减数分裂仅发生在生命周期某一阶段，它是进行有性生殖的生物性母细胞成熟、形成配子的过程中出现的一种特殊分裂方式。

本实验通过获取蝗虫精巢中的精管，经固定、染色、压片后镜下观察不同分裂时期的发育细胞，了解减数分裂时期染色体的动态变化过程，并熟练制片操作。

1.引言减数分裂是生殖细胞的分裂方式,对种族绵延有着十分重要的意义。

在减数分裂的过程中，细胞连续进行两次的核分裂，而染色体只复制一次，减数分裂结束形成了四个子细胞，每个子细胞中的染色体数目减半。

然后经过受精作用，雌雄配子又重新结合，形成了二倍体的合子。

减数分裂确保了染色体数目的恒定，从而使物种在遗传上具有了相对稳定性。

蝗虫染色体数目较少(雄性2n=23，XO；雌性2n=24，XX)，且染色体较大，双线期和终变期交叉十分明显(用植物材料则不易看到这个结构)。

自然界中蝗虫分布较广，可以用于分析染色体交叉的结构、分布和频率等优势[1], 因此被广泛用于减数分裂过程的观察。

在蝗虫的曲细精管内，从上到下依次排列着不同发育时期的生殖细胞，在这次实验中，通过对蝗虫精巢中的曲细精管进行染色（染液是改良苯酚品红）、制片和镜检，我们观察到了蝗虫减数分裂时期的动态过程和各时期分裂相的特点。

2.材料和方法2.1 实验材料固定的蝗虫精巢，解剖针，载玻片，盖玻片，显微镜，眼科镊；染液：改良苯酚品红。

2.2 实验方法2.2.1 取材根据个体大小和蝗虫腹部末端的下生殖板，选取若干只雄蝗虫，用剪刀剪去双翅，在翅基部的后方（相当于腹部背侧前段），用解剖剪将其体壁剪开，剪刀上方两侧各有一块黄色的团块，即是一对精巢。

将精巢放入0.7%的生理盐水中，剔去脂肪，可看到精巢中有许多排列在一起的曲细精管。

2.2.2 固定固定的目的是采用渗透力强的固定液将组织、细胞迅速杀死，使蛋白质沉淀，并尽量保持原有状态，有利于后续的解离、染色等。

实验三细胞减数分裂制片与减数分裂过程的观察[实验目的]1．学习和掌握细胞减数分裂染色体标本的制片技术和方法。

2．通过观察进一步熟悉减数分裂的全过程及各个时期染色体的动态变化和形态特征。

[实验原理]减数分裂是发生在配子形成过程中一种特殊形式的有丝分裂，分裂过程中染色体结构也呈周期性变化，并在特定时期呈现稳定的形态特征，因而也是进行染色体形态、结构与数目鉴定的有利时期。

减数分裂包含两次连续的有丝分裂——减数第一分裂和减数第二分裂；每次分裂都可分为紧密衔接的前、中、后、末四个时期，以前期Ⅰ变化最为复杂，又可分为细线期、偶线期、粗线期、双线期和终变期。

通过减数分裂所形成的四分体细胞（或雌、雄配子），其染色体数目只有体细胞的一半。

减数分裂过程中染色体出现同源配对、非姊妹染色单体间片段交换、同源染色体相互分离等一系列独特行为，为远缘杂种的分析及三大遗传定律的论证等遗传研究提供了直接或间接的证据。

减数分裂细胞染色体制片取材以高等动、植物雄性生殖分裂较为方便。

在适当的时机采集动物精巢或植物花蕾(花序)，经适当技术处理，压片就可在显微镜下观察到细胞的减数分裂过程。

[实验材料]1．水稻蝗虫（Oxya intricata stal）其染色体数为：雌虫（2n=2x=24,XX）；雄虫（2n=2x=23,XO）。

雌虫比雄虫个体长，腹部末端为产卵器，呈分叉状。

雄虫腹部末端为交配器，形似船尾。

2．性成熟的雄性小白鼠（Mus musculus，2n=2x=40）。

3．植物类材料黑麦(Secale cereale, 2n=2x=14)、大麦(Hordeum sativum, 2n=2x=14)、玉米(Zea mays, 2n=2x=20)、普通小麦(Triticum aestivum, 2n=6x=42)、大葱(Allium fistolosum, 2n=2x=16)的幼嫩(雄)花序；蚕豆(Vicia faba, 2n=2x=12)、豌豆(Pisum sativum, 2n=2x=14)、萝卜（Raphanus sativus,2n=2x=18），韭菜（Allium tuberosum, 2n=2x=32），柚（Citrus grandis,2n=2x=18,36），梨(Pyrus communic,2n=2x=34)，苹果（Pyrus malus,2n=2x=34），茶（Camellia sinensis,2n=2x=30）等的幼嫩花蕾(或其固定材料)等；[实验器具、药品]显微镜，计时器；染缸，染色板，酒精灯，白绸，镜头纸，培养皿，材料瓶，载玻片，盖玻片，镊子，解剖刀，解剖针，镊子，刀片，木夹，吸水纸，标签，铅笔等常用工具。