功能化磁性纳米粒子联合质谱技术用于金属硫蛋白的富集及鉴定研究
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DOI:10.11895/j.issn.0253鄄3820.171285
功能化磁性纳米粒子联合质谱技术用于
金属硫蛋白的富集及鉴定研究
何新宇1摇王冰1摇周洋洋1摇卞晓军1,2,3摇颜娟*1,2,3
1(上海海洋大学食品学院,上海201306)摇摇2(上海水产品加工及贮藏工程技术研究中心,上海201306)3(农业部水产品贮藏保鲜质量安全风险评估实验室(上海),上海201306)
摘摇要摇金属硫蛋白(Metallothionein,MT)是一种具有结合金属能力和高诱导特性的低分子量蛋白质,因此常被作为一种重要的生物标志物用于水环境重金属污染评估。传统的金属硫蛋白富集检测方法耗时较长,操作复杂。本研究制备了金包覆四氧化三铁的核壳纳米粒子(Fe3O4@AuNPs),具有磁场的快速响应和特殊的
光学特性的优点,并且可利用Au鄄S的强亲和力实现纳米粒子对金属硫蛋白的快速富集,进一步将纯化的蛋白质通过基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱(MALDI鄄TOF/MS)进行分析检测。结果表明,Fe3O4@Au纳米粒
子可以直接从复杂的溶液中富集MT,采用MALDI鄄TOF/MS鉴定分析,检出限达10fg/mL。
关键词摇金属硫蛋白;低丰度;磁性纳米材料;金纳米粒子;核壳结构;质谱
摇2017鄄10鄄01收稿;2018鄄02鄄27接受本文系国家自然科学基金项目(Nos.21775102,21405167)和海洋工程国家重点实验室(上海交通大学)开放课题项目(No.1609)资助*E鄄mail:j鄄yan@shou.edu.cn1摇引言
金属硫蛋白(Metallothionein,MT)广泛存在于生物界,其金属含量高,无芳香氨基酸,富含半胱氨
酸,是一种功能独特的低分子量(<9000Da)金属结合蛋白[1]。目前研究发现,除鸟类外,几乎能从所
有的哺乳动物、鱼类、无脊椎动物、两栖类和某些植物以及真核、原核微生物中分离得到MT,且不同
种属、不同组织来源的MT具有相似的氨基酸顺序。MT最为显著的特点是它与金属离子有很强的鳌
合力[2],并且MT在生物体内可被环境中的重金属诱导,欧共体及某些国际科学组织将其作为水环境
中重金属污染评估的生物标志物[3]。因此,建立MT的富集检测方法对环境治理、食品安全检测甚至
疾病诊断等领域都具有重要的现实意义。然而,目前对MT的研究面临很多问题:首先,MT丰度很低,
很难直接从复杂的生物样品中直接检测到MT;其次,目前大多数研究是通过对动物体利用重金属胁迫
诱导,再从动物体的消化腺、肝胰腺等部位提取MT进行研究。传统的提取方法主要是Tris鄄HCl缓冲溶
液或蔗糖溶液进行匀浆离心[4,5],之后再通过凝胶过滤和离子交换相结合的层析法分离纯化,最终利用
金属亲和层析、巯基和蛋白质检测等方法鉴定[6~8]。这种传统操作方法耗时较长,操作复杂,样品用量
以及损耗较大,且对人员的操作技术有较高要求。因此,发展高效特异且操作简便的MT富集检测方法
已经成为相关研究领域的热点和难点。
质谱(Massspectrometry,MS)技术为蛋白质检测技术提供了新的发展契机。质谱技术的高准确性、
高灵敏性和自动化操作等优点,使蛋白质的检测鉴定变得较为方便简单[9,10]。即便如此,这种技术也仍
然面临着不容忽视的挑战:蛋白质样品成分复杂、丰度差别极大,导致即使使用高灵敏的质谱技术,有
时也难以获得准确有效的分析鉴定结果[11]。因此,在对蛋白质进行鉴定之前,通常要对其进行预处
理。目前常用的预处理方法主要是超滤离心法、有机溶剂沉淀法、凝胶过滤色谱法等[12~14];尤其是对
于具备重要临床诊断意义的低丰度蛋白而言,预处理的效果会极大地影响鉴定结果[15]。然而,对MT
进行预处理的传统方法耗时久,样品损耗大,操作繁琐,亟需开发低丰度MT富集新方法。
纳米材料为发展新的蛋白质富集方法提供了新思路。随着纳米材料在可控合成、组装和修饰等方
面的快速发展,纳米材料在生物技术中的应用范围也越来越广[16~19],包括一些直接将DNA本身作为一
种纳米材料的应用研究[20~22],越来越多的功能化纳米材料被应用于药物释放[23,24]、生物大分子分离、第46卷2018年7月摇摇摇摇摇摇摇摇摇摇摇分析化学(FENXIHUAXUE)摇研究报告ChineseJournalofAnalyticalChemistry摇摇摇摇摇摇摇摇摇摇摇第7期1069~1076生物传感器[25]和固定化酶等方面。近年来,基于纳米金属粒子和磁性纳米材料的复合纳米粒子的制备
及应用成为纳米材料领域中的研究热点。这种复合纳米粒子不但表现出在外加磁场中的磁响应性、化
学稳定性、生物相容性,还具有独特的光学性质及与巯基化试剂的反应活性[26~28]。它的合成方法主要
有微乳液法、组装法与种子生长法等[29],通过不同的合成方法,可以制备得到不同结构和组成、不同尺
寸和形状的复合纳米粒子,如核壳结构、哑铃状等。Fe3O4@Au核壳纳米粒子是在磁性纳米粒子表面包
WashMagneticfield
Detection80604020060008000100001200014000m/zIntensity(%)
Fe3O4@AuNPsMTBovineserumalbumin
图1摇Fe3O4@AuNPs富集MT过程示意图
Fig.1摇Schematicillustrationoftheenrichmentandidentificationofmetallothionein(MT)withFe3O4@AuNPs覆Au壳层制备而得,广泛应用在磁性生物分离[30]、
生物传感检测[31,32]、核磁共振成像(MRI)造影剂[33]
以及磁靶向药物输送等诸多领域[27,34~36]。磁性纳米
粒子的磁分离特性与纳米金的良好生物相容性使得Fe3O4@Au核壳纳米粒子适用于低丰度蛋白的富集
与检测。然而,将其应用于MT的富集并与MALDI鄄TOF/MS联用进行蛋白鉴定的相关研究尚未见报道。
本研究利用Fe3O4@Au核壳纳米粒子和质谱技
术联用进行了MT的富集和分析鉴定(如图1)。首
先合成Fe3O4纳米粒子,并通过柠檬酸钠的还原作
用,在Fe3O4表面包覆一层金壳,获得金磁核壳纳米
粒子,然后利用核壳粒子与蛋白形成的Au鄄S键与磁
分离特性,对MT进行富集,实现MT的快速分离富
集,利用MALDI鄄TOF/MS对富集的蛋白进行鉴定分
析。结果表明,基于Fe3O4@Au核壳纳米粒子和质谱技术联用的MT富集检测方法具有良好的检测特异
性和灵敏度(检出限为10fg/mL)。本研究为低丰度痕量蛋白质的研究提供了新方法,在蛋白质组学等
相关研究领域也具有较为广阔的应用前景。
2摇实验部分
2.1摇仪器与试剂NicoletiS5红外光谱仪(美国ThermoFisher公司);JEM鄄2010透射电子显微镜(日本电子公司);
RW20DZM.n电子恒速搅拌器(德国IKA公司);UV鄄2540紫外可见分光光度计(日本岛津公司);BrukerDaltonicsMALDI鄄TOF/MS(德国Bremen公司);ZetasizerNano鄄ZS90电位仪(Malvern公司);XRD
(D2Phaser,Bruker公司)。28%(m/V)氨水溶液、FeCl2·4H2O、FeCl3·6H2O(国药集团化学试剂有限公司);HAuCl4·3H2O
(99.9%,美国StremChemical公司);牛血清白蛋白(BSA,生工生物工程(上海)股份有限公司);标准
兔肝(MT,99%,上海源叶生物公司),以上试剂均为分析纯。2,5鄄二羟基苯甲酸(DHB)、三氟乙酸(TFA)均为质谱纯(Sigma鄄Aldrich公司)。实验用水均为去离子水。
2.2摇实验方法2.2.1摇Fe3O4纳米粒子的合成摇参照文献[37]的方法,首先称取1.622gFeCl3·6H2O和0.9941gFeCl2·4H2O,加入40mL去离子水,然后将反应混合物加热并进行机械搅拌,试剂完全溶解且沸腾后,
立即加入5mL氨水溶液(28%,m/V)。继续加热10min后,添加4.4g柠檬酸钠,继续加热搅拌30min,冷却到室温,用去离子水彻底清洗沉淀物3次,定容至40mL,得到Fe3O4纳米粒子的溶液。2.2.2摇Fe3O4@Au纳米粒子的合成摇参照文献[37]的方法,100mL去离子水中加入3mL1%氯金酸
溶液,加热搅拌直到沸腾。快速添加5mL预先合成的Fe3O4纳米粒子溶液,快速搅拌,可以清楚地看到Fe3O4纳米粒子的颜色发生快速变化,由黑色变为红棕色。20min后停止加热,继续搅拌,直到溶液冷却到室温。
用永磁体沉淀和分离合成的Fe3O4@Au纳米粒子,然后用去离子水洗涤5次,再次在去离子
水中分散,配制成10mLFe3O4@Au溶液,呈红棕色。
2.2.3摇Fe3O4@Au对MT的富集摇参照文献[37]的方法,配制BSA(1mg/mL)溶液,在BSA溶液中加0701摇摇分析化学第46卷入不同含量的MT,充分混匀,制备MT和BSA的蛋白混合物溶液。将Fe3O4@Au(10滋L)分散在不同配
比的蛋白混合溶液中,振荡5min后,磁场分离,用去离子水洗涤3次。采用MALDI鄄TOF/MS进行检测,
基质为乙腈鄄水(70颐30,V/V)溶液,其中含有10mg/mLDHB及0.1%TFA,吸取1滋L样品点在靶上,
环境条件下自然晾干,然后吸取1滋L基质覆盖在样品上,环境条件下自然晾干。检测中不同位置收集
总点数为800次,使用激光频率为20Hz,光强可变化。
3摇结果与讨论
3.1摇Fe3O4@Au核壳纳米颗粒的表征
3.1.1摇TEM分析摇目前,制备纳米Fe3O4的方法有很多,如水热反应法、中和沉淀法、化学共沉淀法、
沉淀氧化法、微波辐射法等,其中以化学共沉淀法最为简便。本研究中,采用化学共沉淀法制备的纳米Fe3O4结晶度好、粒径分布较为均一((8依2)nm),达到了超顺磁临界尺寸[38],超声分散后,在水相中形
成黑色胶体,且在外加磁场下,具备较好的磁响应性(图2A和B)。柠檬酸钠还原氯金酸,混合溶液中
的纳米Fe3O4粒径发生变化。从TEM图(图2C鄄D)可见,纳米Fe3O4表面包覆连续壳层,制备的核壳纳
米粒子粒径为(25依2)nm,纳米水溶液无明显沉淀,呈现澄清红棕色。同时具有良好的磁响应性,此实
验结果与相关文献[35]一致。对Fe3O4@Au核壳纳米粒子进行了高分辨精细分析,可以清晰分辨出纳
米粒子的核壳结构(图2D及插图)。
ABDC
100nm100nm20nm20nm10nm6.16nm
图2摇TEM表征结果图以及溶液样品:A,B.Fe3O4纳米颗粒;C,D.Fe3O4@Au纳米颗粒;D图右下角
为Fe3O4@Au纳米颗粒的HRTEM图
Fig.2摇Transmissionelectronmicroscopy(TEM)imagesandsolutionsamplesofFe3O4NPs(AandB)and
Fe3O4@AuNPs(CandD);AtthelowerrightofthefigureDisHRTEMimageofFe3O4@AuNPs
3.1.2摇紫外鄄可见吸收光谱分析摇紫外鄄可见吸收光谱的表征结果表明,磁分离洗涤过程,两种颗粒均