神经干细胞的培养
- 格式:doc
- 大小:13.50 KB
- 文档页数:2
一44一重庆医科大学学报2∞8年第33卷增刊l(J oum aI of C h ong qi ng M ed i caI U n.vers i ty2∞8.V o|.33No.s1)基础研究文章编号:0253—3626(2008)sl—0044—04大鼠神经干细胞分离和培养的实验研究何梅-,王学峰,马珊珊:,席志芹(1.重庆医科大学附属第一医院神经内科,重庆400016;2.山西医科大学第一附属医院神经内科,太原030001)【摘要】目的:探索体外培养大鼠神经干细胞(N eur al st e m ceus,N s cs)的方法和实验条件,建立一种较为可靠的神经干细胞培养方法。
方法:分别选取孕14~16ds D胎鼠和新生1d的sD大鼠进行神经干细胞培养,采用单纯机械吹打和机械吹打加酶消化丽种方法进行消化,对培养出的细胞进行神经干细胞、神经元、神经胶质细胞的免疫细胞化学和免疫荧光鉴定。
结果:用2种来源的大鼠培养出的原代细胞,均表达N es t i n,诱导分化后的细胞表达G FA P和M A P-2。
结论:大鼠神经十细胞的原代分离与培养的关键是单细胞悬液的获得,消化液浓度太高或消化时间太长,容易因消化过度致细胞损伤甚至死亡。
胎鼠来源者神经球形成早,数量多。
增殖活力更强,但原代取材过程易被污染。
新生鼠来源者鼠源易获得,组织取材过程操作简单,但神经干细胞成球率低。
【关键词】神经干细胞;细胞培养;免疫荧光;免疫生化【中国图书分类法分类号】R74l【文献标识码】A【收稿日期】2007一08—29St udV on i soI at j on and cul t ur e O f neur aI s t em C e¨s f r O m r at br ai nH E M ei.e£击0D epdr t m em《N e酣ol ogy,t k F订st A航l谴ed H ospi斌,C hongqi唱M ed记击U n洳er s畸)【A bst ract】O巧ec渤e:To es讪l i s h岫m em od of cul t ur i ng neur al哟m ceus(N s cs)妇n ra t brai n.胁跏ds:E14~16sD吣一br yoni cm£brai n粕d pos t nat aJ one—da y(P1)r a t br aj n w e r e r es pecti vel y ch ose t o cul t l l r e ne u m l st e m ceU s,an d t’帕diges t ive m et h—ods t}l at s i m pk m e ch肌i ca l di ges t i on a nd m e chan i ca l com bi ned诵t}l che m i c al diges t主on w e r e u8ed t o det e兀ni ne t l l e bes t condi—t ions i n pr i m ar y cuhur e.I m m un∞yt oc hem i st I y and i m m u noⅡu or e sce nc e w er e us ed t0i dent i母N SC s,ne urons a nd neum di al cel l s.R8s饿捃:B o t h t l l e pri m a巧ceu s f r o m t w o dⅢbr ent ki nds0f ra t bm i ns ex pr es sed nes ti n aJ l t i g en粕d t}l e di任br en t i ated cel l s ex—pr e ssedG F A P锄d M AP一2明t i gen.∞似砌6s暮D竹:ne key poi nt of pr i m ar y N SC s cul t ur e w鹊obt ai ni ng t he m on叩l鹊t s u叩ens i on.0ver di gest i on l ed t o c eu i nj u r y ev en de am.N SC s舶m em br yoni c ra t br ai n had bet t er pm l i f er at i on abi l i t y粕d co ul d f0肌ceⅡcl ones ea r l i er粕d m or e t}I an N SC s f南m new b om E a t br ai n,but t11e y w e r e e鹊i er t o be contam i nat ed.0h t ai n i ng new b om m t bm i n锄d i sol ati on N SC s舶m new bom ra t br ai n w er e e鹊i er,b ut N SC s舶m new bom ra t br ai n had w o璐e pm l如m t i on abi l吼【K ey w or ds】N eur al st e m ce ns;ceu cu l t u r e;I m m un onu or esc enc e;I m m uno cyt o che m i st r yN S cs是一种原始的未分化细胞,它有和成熟神经细胞相同的基因,且具有自我增殖和多向分化的潜能,神经干细胞研究是21世纪生命科学研究的重要领域。
Y27632对体外培养的大鼠神经干细胞增殖和分化的
影响的开题报告
一、研究背景
神经干细胞是一类具有自我更新和多能分化潜能的细胞。
在生物医
学领域,神经干细胞的应用前景非常广泛,例如可用于治疗神经系统退
行性疾病和中枢神经系统损伤等领域。
因此,提高神经干细胞的增殖和
分化效率是研究的重点之一。
而Y27632是一种针对Rho激酶的抑制剂,具有诱导形态学改变、增强细胞粘附和改变细胞骨架等作用,因此被广
泛应用于细胞培养中。
本研究旨在探究Y27632对于大鼠神经干细胞体外培养的影响。
二、研究内容
1.探究Y27632对大鼠神经干细胞增殖的影响。
选取一定浓度的Y27632加入到大鼠神经干细胞培养基中,采用
MTT法检测细胞增殖情况,观察加入Y27632后神经干细胞增殖程度的变化。
2.探究Y27632对大鼠神经干细胞分化的影响。
将大鼠神经干细胞培养在不同剂量的Y27632培养基中,观察神经干细胞的分化情况,并运用Immunofluorescence染色和实时荧光定量PCR 等技术方法对各细胞类型进行鉴定。
三、研究意义
探究Y27632对大鼠神经干细胞增殖和分化的影响,能为神经干细胞的体外培养提供新的方法和途径,进一步推进干细胞研究领域的发展。
同时,该研究还能为神经系统疾病和损伤的治疗提供有力的基础研究支持。
小鼠胚胎中脑神经干细胞分离、培养及分化刘兵;刘洪涛;戴冀斌;彭超华;黄娟【摘要】目的:探讨小鼠胚胎中脑分离神经干细胞的体外培养方法,以获取高纯度的神经干细胞,为神经干细胞的深入研究提供试验材料。
方法:无菌条件下分离孕12~13 d小鼠胚胎中脑曲,制成单细胞悬液,碱性成纤维生长因子(bFGF)和B27存在的培养基中培养扩增,通过免疫细胞化学染色鉴定神经干细胞及子代细胞的分化方向,流式细胞术检测TH阳性神经元比例。
结果:培养的部分细胞体外分裂增殖,同时表达神经干细胞特异性抗原nestin,并向神经细胞和胶质细胞分化并经流式细胞仪检测自然分化为多巴胺能神经元的比例为3.25%。
结论:小鼠胚脑中脑存在具有多分化潜能的神经干细胞,它们能在体外稳定培养、传代和分化。
【期刊名称】《长江大学学报:医学卷》【年(卷),期】2006(000)012【总页数】4页(P)【关键词】神经干细胞;培养;分化;中脑【作者】刘兵;刘洪涛;戴冀斌;彭超华;黄娟【作者单位】长江大学医学院;武汉大学医学院;武汉大学医学院;湖北荆州;湖北荆州;湖北武汉【正文语种】中文【中图分类】Q813神经干细胞(neural stem cells, NSCs)是一类广泛存在于胚胎及成体中枢神经系统的早期未分化细胞,被认为是神经系统的“发源地”[1]。
应用神经干细胞移植的方法修复神经系统脑的损伤与治疗人类神经退行性疾病中更显示出其优越性,其中最具有代表性的就是怕金森病,然而,这种方法在患者中广泛应用的障碍就是胚脑移植的问题。
本试验对小鼠胚胎中脑神经干细胞的分离和培养进行了尝试,为神经干细胞的进一步研究奠定基础。
1 材料与方法1.1 材料1) 实验动物孕12~13 d昆明小鼠(E12~13 d,SPF级),由武汉大学医学院实验动物中心提供。
2) 试剂 DMEM/F12培养基,特优级胎牛血清(FBS),B27均购自GIBCO公司;碱性成纤维生长因子(bFGF)购自Peprotech公司;胰酶(Trypsin)、DNA酶1(DNase1)、左旋多聚赖氨酸(PLL)和DAPI购自SIGMA公司。
小鼠胚胎神经干细胞的分离及贴壁培养方法杨骐昌;宋晓峰;韩平【摘要】Objective To develop a modified method of adherent culturing NSCs to replace the traditional suspension culturing method.Methods Neural stem cells(NSCs)were isolated from brain of fetal mouse at 15.5-day fetal age.In culture bottle which had been pre-coated with poly-L-ornithine hydrochloride/fibronectin(PO/FN),the cells were adherently cultured and passaged.The cell morphology was observed under inverted microscope.NSCs and their differentiated cells were identified by immunofluorescence.Results NSCs obtained in this study were successfully adherently cultured and expressed specific markers.Conclusion NSCs are successfully adherently cultured in this study.As compared with the traditional suspension culturing method,adherent culturing is simpler and has lower wastage of passage.It is easy to observe cell morphology and differentiation by this method.It is also helpful to culturing and storage of NSCs.%目的探索一种改进的贴壁培养神经干细胞的方法.方法从胚胎期为15.5d 的胎鼠大脑皮层中提取神经干细胞,在PO/FN(Poly-L-ornithine hydrochloride/Fibronectin)包被处理后的培养瓶中进行贴壁培养并传代,在倒置显微镜下观察神经干细胞的细胞形态,并通过免疫荧光法鉴定神经干细胞及其子代细胞进行分化操作之后的情况.结果原代神经干细胞细胞形态清晰,免疫荧光标记物明显.结论相对于传统神经球悬浮培养法该法处理简便,传代损耗低,容易观察到细胞形态和分化阶段,更有助于神经干细胞的培养和存储.【期刊名称】《华中科技大学学报(医学版)》【年(卷),期】2017(046)003【总页数】6页(P312-316,340)【关键词】神经干细胞;贴壁培养;包被处理;免疫荧光;悬浮培养【作者】杨骐昌;宋晓峰;韩平【作者单位】南京航空航天大学生物医学工程系,南京211100;南京航空航天大学生物医学工程系,南京211100;南京医科大学第一附属医院产科,南京210005【正文语种】中文【中图分类】R329神经系统是人体内起主导作用的功能调节系统,在神经系统的发育期间,神经干细胞(neural stem cells,NSCs)会向其他脑部区域迁移,并分化为特异性细胞[1],提供了大量脑组织所需的细胞,其增殖与分化对神经发育起到至关重要的作用[2]。
神经生物干细胞定义干细胞是指机体在其毕生过程中、某些特定时期具有自我更新(self-renewal)和分化(differentiation)能力的细胞群。
干细胞也称前体细胞(precursor cell)或祖细胞(progenitor cell)。
干细胞的概念最早由Evans于20世纪80年代初提出,他们在实验中发现来源于小鼠囊胚的内皮细胞团,能在体外培养,是一种高度未分化的细胞,具有发育成为各种细胞的潜能,一旦生理需要,这些干细胞可按照发育途径通过分裂而产生分化细胞。
干细胞具有两个基本功能:多种潜能和自我更新能力。
按照分化潜能的大小,干细胞可以分为3种类型:(1) 全能干细胞(totipotent stem cells),能产生机体任何细胞类型,进一步形成机体的组织、器官并形成个体,如胚胎干细胞能够产生来自所有3个胚层的细胞,依所在组织不同而特化为不同类型的细胞;(2) 多能干细胞(multipotent stem cells),这种细胞具有分化为多种组织细胞的潜能,但是不能形成个体,发育潜能受到一定限制,最典型的例子是骨髓造血干细胞;(3) 单能干细胞(unipotent stem cells),常指成体中的细胞,这类细胞只能向一种类型或密切相关的两种类型的细胞分化,能够保证组织的稳定自我更新,补充因正常衰老或损伤而丧失的细胞,如上皮组织基底层的干细胞。
总之,生命体通过干细胞的分化增殖来实现细胞的更新及保证持续生长。
1、神经干细胞的定义1989年,Temple等从13天大鼠胚胎脑隔区取出细胞进行培养,发现这些细胞发育成神经元和神经胶质细胞。
其后从成年鼠纹状体、海马齿状回等处分离出能在体外不断增殖,并具有向神经元和星形胶质细胞分化潜能的细胞群。
20世纪90年代初,Reynolds 等从成年小鼠脑纹状体分离出能在体外不断分裂增殖,具有多种分化潜能的细胞群,正式提出了“神经干细胞”的概念,以一种新的观念代替了传统的认为神经组织一成不变的观念。
神经干细胞的培养
一、神经干细胞的分离和传代
无菌条件下取新生SD大鼠(出生48h内)脑组织,D-Hanks液充分漂洗后,在解剖显微镜下剥离脑膜,准确分离海马,用眼科剪将海马剪碎后,再转移到DMEM/F12(1:1)加B27 和bFGF(20ng/ml)的无血清培养基,吸管吹打机械分离制作单细胞悬液,台盼蓝染色后细胞计数,调整细胞浓度为5×104~5个/ml,置于24孔培养板中培养,每孔加入细胞悬液500μl。
待神经球形成后再次机械分离克隆制作单细胞悬液,仍以5×104个/ml的细胞浓度置于24孔培养板中培养,每孔加入细胞悬液500μl。
此后每7d机械分离克隆传代1次,方法同前。
二、BrdU标记
将BrdU溶于无血清培养基,过滤除菌后加入神经球形成后再次机械分离克隆制作的单细胞悬液中(BrdU终浓度为5μmol/L),培养7d待新的神经球形成后,将神经球转移到预先涂布有多聚赖氨酸的培养板中,贴壁2h行BrdU免疫细胞化学染色。
三、神经干细胞的诱导分化
选取部分上述传代后形成的次代神经球种植于预先涂布有多聚赖氨酸的24孔培养板中,并加入有血清培养基(含10%胎牛血清的DMEM/F12),一部分神经球于贴壁2h后行Nestin免疫细胞化学染色,另一部分神经球继续培养,观察其生长分化情况。
另将一部分次代神经球机械分离制成单细胞悬液后加入有血清培养基贴壁培养,7d后分别行Tuj1 、GFAP 、Galc 免疫细胞化学染色。
四、条件培养液的制备
取1g鸡胚的后肢骨骼肌组织,加入9mlD-Hanks液中冰浴匀浆15min,离心获得上清液,过滤除菌后,加两倍体积DMEM/F12培养基制成条件培养液备用。
五、神经干细胞的定向诱导分化
将一部分次代神经球机械分离制成单细胞悬液后分别加入条件培养液和有血清培养基(含10%胎牛血清的DMEM/F12)中对照贴壁培养,7d后均行ChA T免疫细胞化学染色。
六、免疫细胞化学染色
培养细胞用4%多聚甲醛固定30min后,PBS充分漂洗,然后按ABC法分别行鼠抗Nestin,鼠抗Tuj1,兔抗GFAP,鼠抗Galc,鼠抗Brdu免疫细胞化学染色,用DAB和H2O2作为呈色剂,阳性着色为棕黄色。
具体方法为:
(1)0.05M PBS漂洗10min×3次
(2)0.3%H2O2/0.05M PBS室温30min
(3)0.3%Triton-100/0.05M PBS 37 ℃,15min
(4)0.05M PBS漂洗10min×3次
(5)5%羊血清/0.05M PBS 37 ℃,15min
(6)I抗(2%羊血清/0.05M PBS配)4℃,48h
(7)0.05M PBS漂洗10min×3次
(8)II抗(2%羊血清/0.05M PBS配,1:200)37 ℃,1.5h
(9)0.05M PBS漂洗10min×3次
(10)AB复合物(0.05M PBS配,1:100)37 ℃,1.5h
(11)0.05M PBS漂洗10min×3次
(12)Tris-HCl缓冲液37 ℃,15min
(13)DAB显色20min
(14)蒸馏水漂洗10min×3次
然后,为进一步证明实验组的细胞是胆碱能神经元,将已作完ChAT免疫细胞化学染色的细胞用PBS终止显色以及进一步封闭非特异性结合位点后,仍用ABC法行Tuj1免疫细胞化学染色,用含有NiCl的DAB和H2O2作为呈色剂,双标阳性细胞着色为蓝黑色。