黄蜀葵花总黄酮对缺血性损伤保护作用的实验研究进展

黄蜀葵花中黄酮类成分对前脂肪细胞增殖、分化及胰岛素抵抗的影响黃蜀葵花中富含黃酮类成分，具有保护心血管、改善肾功能等作用。

该文采用3T3-L1前脂肪细胞诱导分化的成熟脂肪细胞，建立胰岛素抵抗模型，分为正常组，模型组，异槲皮苷（HY）、金丝桃苷（JY）、槲皮素（QT）、槲皮素-3′-O-葡萄糖苷（QG）、棉皮素-8-O-β-葡萄糖醛酸（GG）给药组，BCA法检测细胞培养液中葡萄糖的含量，荧光定量qPCR检测PPARγ，C/EBPα，SREBP-1，脂联素，内酯素，抵抗素基因mRNA的表达水平。

结果显示，5种黄酮类化合物5 μmol·L-1浓度时可促进3T3-L1前脂肪细胞的增殖，浓度为100 μmol·L-1时可抑制前脂肪细胞的增殖；与正常组比较，模型组细胞对葡萄糖摄取量降低（P＜0.01）；与模型组相比，5种黄酮类化合物100 μmol·L-1 给药组细胞葡萄糖消耗量显著上升（P＜0.01），PPARγ，C/EBPα，脂联素表达明显增加（P＜0.01），SREBP-1，抵抗素，内酯素的表达明显降低（P＜0.01），促使脂肪细胞分化。

研究表明，HY，JY，QT，QG，GG能调控前脂肪细胞增殖，促进脂肪细胞分化及糖脂代谢相关因子PPARγ，C/EBPα，SREBP-1，脂联素，内酯素，抵抗素的表达，促进前脂肪细胞分化，增加葡萄糖利用，从而改善胰岛素抵抗。

标签：锦葵科；黄属葵花；胰岛素抵抗；黄酮类成分；3T3-L1脂肪细胞[Abstract] Abelmoschus manihot was rich in flavonoids，which has been reported the activity on protecting angiocarpy and improving renal function. This study aimed to explore the action mechanism of five flavonoids from A. manihot on how to ameliorating insulin resistance through the regulation of the glucose and expression of PPARγ，C/EBPα，SREBP-1，resistin，visfatin，adiponectin in 3T3-L1 adipocytes. After the 3T3-L1 preadipocytes were differentiated into mature adipocytes，insulin resistance model was built. Insulin resistance adipocytes were treated with 5，100 μmol·L-1 quercetin，isoquercitrin，hyperoside，quercitrin-3′-O-glucoside，gossypetin-8-O-β-glucoside. The glucose was indirectly determined by BCA kit. The mRNA expression levels of PPARγ，C/EBPα，SREBP-1，resistin，visfatin，adiponectin were detected by real-time quantitative PCR. Results showed that five flavonoids at 5 μmol·L-1 could accelerate preadipocytes proliferation and inhibit that at 100 μmol·L-1 Compared with the normal group，glucose uptake reduced significantly in model group （P＜0.01）. With the treatment of five flavonoids at 100 μmol·L-1，glucose consumption increased significantly （P＜0.01）. The high expression of PPARγ，C/EBPα，adiponectin expression was significantly increased （P＜0.01），and low expression of SREBP-1，resistin，visfatin after respective administration with five flavonoids at 100 μmol·L-1 promoted adipocyte differentiation. This study showed that，HY，JY，QT，QG，GG can control preadipocytes proliferation，promote adipocyte differentiation and regulate the expression of relative factors with lipid metabolism，such as PPARγ，C/EBPα，SREBP-1，adiponectin，resistin，visfatin，increasing glucose utilization and improving insulin resistance in 3T3-L1 adipocyte.[Key words] Malvaceae；Abelmoschus manihot；insulin resistance；flavonoids；3T3-L1 adipocytedoi：10.4268/cjcmm20162424黄蜀葵花为锦葵科Malvaceae秋葵属Abelmoschus黄蜀葵Abelmoschus manihot （L.）Medic.的干燥花冠，始载于《嘉佑本草》，先后收录于《本草纲目》与2010年版《中国药典》。

黄蜀葵化学成分及药理活性研究进展
刘爽;江蔚新;吴斌
【期刊名称】《中国现代中药》
【年(卷),期】2010(012)008
【摘要】主要综述了近年来国内外学者对黄蜀葵的化学成分和药理活性的研究概况,为进一步开发应用此类资源提供资料参考.
【总页数】5页(P5-9)
【作者】刘爽;江蔚新;吴斌
【作者单位】哈尔滨商业大学,黑龙江,哈尔滨,150076;中国科学院上海药物研究所,上海,201203;哈尔滨商业大学,黑龙江,哈尔滨,150076;中国科学院上海药物研究所,上海,201203
【正文语种】中文
【中图分类】R2
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《黄芩茎叶总黄酮对大鼠心肌缺血再灌注JAK-STAT通路的干预作用》篇一黄芩茎叶总黄酮对大鼠心肌缺血再灌注JAK-STAT通路的干预作用一、引言近年来，心血管疾病已成为全球范围内的主要健康问题，其中以心肌缺血再灌注损伤最为常见。

该过程涉及多种信号转导通路，如JAK/STAT通路。

而黄芩茎叶总黄酮（Scutellariae Flavones，SF）作为传统中药的有效成分，具有抗氧化、抗炎及保护心肌等作用。

本文旨在研究黄芩茎叶总黄酮对大鼠心肌缺血再灌注JAK/STAT通路的干预作用，为心血管疾病的预防和治疗提供新的思路和方向。

二、材料与方法1. 材料实验采用健康SD大鼠，购买自某动物实验中心。

黄芩茎叶总黄酮购自某中药材公司，经纯化处理后使用。

实验所需试剂及仪器均符合实验要求。

2. 方法（1）动物分组与处理：将大鼠随机分为对照组、模型组、治疗组。

模型组和治疗组进行心肌缺血再灌注处理，治疗组在处理前给予黄芩茎叶总黄酮。

（2）检测指标：检测各组大鼠心肌组织中JAK/STAT通路相关基因及蛋白表达水平，以及心肌损伤程度等指标。

（3）数据分析：采用SPSS软件进行数据分析，比较各组之间的差异。

三、结果1. JAK/STAT通路相关基因及蛋白表达水平与对照组相比，模型组大鼠心肌组织中JAK/STAT通路相关基因及蛋白表达水平明显升高。

而治疗组大鼠在给予黄芩茎叶总黄酮后，JAK/STAT通路相关基因及蛋白表达水平明显降低，接近于对照组水平。

2. 心肌损伤程度模型组大鼠心肌损伤程度明显高于对照组，而治疗组大鼠心肌损伤程度较模型组有所减轻。

四、讨论本实验结果表明，黄芩茎叶总黄酮对大鼠心肌缺血再灌注JAK/STAT通路的干预作用显著。

JAK/STAT通路在心肌缺血再灌注过程中发挥重要作用，其过度激活可能导致心肌细胞损伤。

而黄芩茎叶总黄酮能够抑制该通路的激活，从而减轻心肌损伤。

此外，黄芩茎叶总黄酮还具有抗氧化、抗炎等作用，可能通过多种途径共同发挥保护心肌的作用。

黄蜀葵花总黄酮提取工艺优化及其对黄嘌呤氧化酶的抑制作用分析发布时间：2023-06-19T00:49:04.614Z 来源：《医师在线》2023年3月5期作者：白喜妹何忠剑余瑾[导读]黄蜀葵花总黄酮提取工艺优化及其对黄嘌呤氧化酶的抑制作用分析白喜妹何忠剑余瑾（杭州康恩贝制药有限公司；浙江杭州 310051）摘要：提取黄蜀葵花总黄酮成分主要应用超声波法、乙醇回流法等，但都存在提取效率低的问题，随着十二烷基硫酸钠的应用，提升增容效果，提高了黄酮成分提取效率。

因此，本文使用超声SDS提取黄蜀葵花总黄酮，通过对提取工艺的优化能够提高提取效率。

并析总黄酮对于黄嘌呤氧化酶的抑制作用。

关键词：黄蜀葵花；总黄酮；提取工艺；黄嘌呤氧化酶引言：黄蜀葵花总黄酮成分具有良好的利尿、抗癌以及抗疲劳作用，可作为黄嘌呤氧化酶（XOD）抑制剂应用。

XOD作为人体生成尿酸的主要催化酶，人体嘌呤含量过高可能会造成尿酸过高，引起高尿酸血症，更容易提高糖尿病、高血压等并发症。

黄酮成分更加安全有效，在药物和保健品中得到应用。

1.材料和设备准备黄蜀葵花（经过60℃烘干粉碎处理后使用40目过筛备用）、无水乙醇、氢氧化钠、十二烷基硫酸钠、亚硝酸钠、粉碎机、真空泵、超声波清洗器以及紫外可见分光光度计。

2.实验方法首先对黄蜀葵花进行粉碎处理，对粉碎粉末过筛（40目）处理，保证粉末均匀。

称取2.5g放置于锥形瓶内，添加70%乙醇和SDS后，充分搅拌后，使用超声提取。

抽滤过程中保证待过滤物质稳定于漏斗中央，避免没有经过过滤就从缝隙中流入[1]。

经过抽滤后提取浓缩液，使用60%乙醇定容（50ml）处理。

使用移液枪提取5ml样本，放置于容量瓶（25ml）中，测定总黄酮容量。

3.绘制标准曲线使用芦丁标准样本12mg，添加60%乙醇定容后，充分摇匀，使用移液枪吸取样本，放置于容量瓶内，添水至5ml，依次添加NaNO2溶液（5%，1ml，静置6min）、Al（NO3）3溶液（10%，1ml，静置6min）、NaOH溶液（10%，10ml）。

黄蜀葵花治疗乳糜尿26例及实验研究
熊宁宁;余江毅;邓颖
【期刊名称】《辽宁中医杂志》
【年(卷),期】1996(23)5
【摘要】本文报告了在临床上采用单味中药黄蜀葵花治疗２６例乳糜尿，痊愈１８例，好转４例。

总有效率８４．６２％。

其中有湿热见证者有效２１／２２例，无湿热见症者有效１／４例。

黄蜀葵花醇提物相当生药２．４ｇ／ｋｇ，连续给药４天，对二甲苯所致的小鼠耳廓肿胀抑制率达１８．５９％。

黄蜀葵花醇提物相当生药６ｇ／ｋｇ，连续给药１４天，对琼脂所致大鼠肉芽肿增生抑制率达３２．２０％。

提示具有清热利湿、解毒和络、消炎作用的黄蜀葵花治疗乳糜尿，尤其是对有湿热见证者疗效满意。

【总页数】2页(P232-233)
【关键词】黄蜀葵花;乳糜尿;中医药疗法
【作者】熊宁宁;余江毅;邓颖
【作者单位】江苏省中医院
【正文语种】中文
【中图分类】R277.558
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黄蜀葵花不同开放程度对药材中总黄酮及其糖苷类成分含量及其提取率的影响郭小藤１ꎬ刘燕２ꎬ张清华１ꎬ尚立霞１(１.山东省药学科学院泰山学者重点实验室ꎬ山东济南２５０１０１ꎻ２.山东省药学科学院山东省生物药物重点实验室ꎬ山东济南２５０１０１)摘要:目的㊀研究黄蜀葵花不同开放程度对黄蜀葵花药材中总黄酮㊁金丝桃苷㊁异槲皮苷含量及其醇提取物的影响ꎮ方法㊀采用紫外－可见分光光度法测定黄蜀葵花药材中总黄酮含量ꎬ采用高效液相色谱法测定黄蜀葵花药材中金丝桃苷和异槲皮苷的含量ꎬ并比较黄蜀葵花药材醇提转移率ꎬ评价不同开放程度样品之间的差异ꎮ结果㊀完全开放的黄色黄蜀葵花中各成分含量均较高ꎬ醇提转移率高㊁油层较少ꎬ半开放及未开放黄绿色的黄蜀葵花中各成分均偏低ꎬ醇提转移率较低㊁油层较多ꎮ结论㊀黄蜀葵花药材宜在花期内完全开放后采收ꎬ颜色以亮黄色为最佳ꎬ本研究为各地黄蜀葵花药材的进一步开发利用提供了质量控制依据ꎮ关键词:黄蜀葵花ꎻ不同开放程度ꎻ总黄酮ꎻ金丝桃苷ꎻ异槲皮苷ꎻ提取率中图分类号:Ｒ９２７.２㊀文献标识码:Ａ㊀文章编号:２０９５－５３７５(２０２２)０１－００２６－００５ｄｏｉ:１０.１３５０６/ｊ.ｃｎｋｉ.ｊｐｒ.２０２２.０１.００５ＥｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｆｌｏｗｅｒｉｎｇｄｅｇｒｅｅｓｏｆＡｂｅｌｍｏｓｃｈｕｓｍａｎｉｈｏｔｏｎｆｌａｖｏｎｏｉｄｓａｎｄｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｒａｔｅＧＵＯＸｉａｏｔｅｎｇ１ꎬＬＩＵＹａｎ２ꎬＺＨＡＮＧＱｉｎｇｈｕａ１ꎬＳＨＡＮＧＬｉｘｉａ１(１.ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＴａｉｓｈａｎＳｃｈｏｌａｒꎬＳｈａｎｄｏｎｇＡｃａｄｅｍｙｏｆＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅꎬＪｉｎａｎ２５０１０１ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＳｈａｎｄｏｎｇＰｒｏｖｉｎｃｉａｌＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＢｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓꎬＳｈａｎｄｏｎｇＡｃａｄｅｍｙｏｆＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅꎬＪｉｎａｎ２５０１０１ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ:Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ㊀ＴｏｒｅｓｅａｒｃｈｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｆｌｏｗｅｒｉｎｇｄｅｇｒｅｅｓｏｆＡｂｅｌｍｏｓｃｈｕｓｍａｎｉｈｏｔ(Ｌ.)Ｍｅｄｉｃｏｎｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｓｏｆｔｏｔａｌｆｌａｖｏｎｏｉｄｓꎬｈｙｐｅｒｏｓｉｄｅꎬｉｓｏｑｕｅｒｃｉｔｒｉｎａｎｄｔｈｅｅｔｈａｎｏｌｅｘｔｒａｃｔｓ.Ｍｅｔｈｏｄｓ㊀ＴｈｅｃｏｎｔｅｎｔｏｆｔｏｔａｌｆｌａｖｏｎｏｉｄｓｉｎＡ.ｍａｎｉｈｏｔ(Ｌ.)ＭｅｄｉｃｗａｓｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄｂｙＵＶ－ＶｉｓｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｒｙꎬａｎｄｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｓｏｆｈｙｐｅｒｏｓｉｄｅａｎｄｉｓｏｑｕｅｒｃｉｔｒｉｎｗｅｒｅｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄｂｙＨＰＬＣ.ＴｈｅｅｔｈａｎｏｌｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｒａｎｓｆｅｒｒａｔｅｓｏｆＡ.ｍａｎｉｈｏｔ(Ｌ.)Ｍｅｄｉｃｗｅｒｅｃｏｍｐａｒｅｄｔｏｅｖａｌｕａｔｅｔｈｅｄｉｆｆｅｒ￣ｅｎｃｅｓａｍｏｎｇｓａｍｐｌｅｓｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｆｌｏｗｉｎｇｄｅｇｒｅｅｓ.Ｒｅｓｕｌｔｓ㊀Ｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｏｆｅａｃｈｃｏｍｐｏｎｅｎｔｉｎｆｕｌｌｙ－ｏｐｅｎｅｄ－ｙｅｌｌｏｗｆｌｏｗｅｒｗａｓｈｉｇｈｅｒꎬｔｈｅａｌｃｏｈｏｌｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｒａｎｓｆｅｒｒａｔｅｗａｓｈｉｇｈｅｒａｎｄｔｈｅｏｉｌｌａｙｅｒｗａｓｌｅｓｓ.Ｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｏｆｅａｃｈｃｏｍｐｏｎｅｎｔｉｎｓｅｍｉ－ｏｐｅｎｅｄａｎｄｕｎｏｐｅｎｅｄｙｅｌｌｏｗ－ｇｒｅｅｎｆｌｏｗｅｒｗａｓｌｏｗｅｒꎬｔｈｅａｌｃｏｈｏｌｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｒａｎｓｆｅｒｒａｔｅｗａｓｌｏｗｅｒａｎｄｔｈｅｏｉｌｌａｙｅｒｗａｓｍｏｒｅｔｈａｎｏｔｈｅｒｓ.Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ㊀ＴｈｅＡ.ｍａｎｉｈｏｔｓｈｏｕｌｄｂｅｈａｒｖｅｓｔｅｄａｆｔｅｒｆｕｌｌｏｐｅｎｉｎｇｄｕｒｉｎｇｔｈｅｆｌｏｗｅｒｉｎｇｐｅｒｉｏｄꎬａｎｄｂｒｉｇｈｔｙｅｌｌｏｗｉｓｔｈｅｂｅｓｔｃｏｌｏｒ.ＴｈｉｓｓｔｕｄｙｐｒｏｖｉｄｅｄｑｕａｌｉｔｙｃｏｎｔｒｏｌｂａｓｉｓｆｏｒｔｈｅｆｕｒｔｈｅｒｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎｏｆＡ.ｍａｎｉｈｏｔｉｎｖａｒｉｏｕｓｒｅｇｉｏｎｓ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ:ＡｂｅｌｍｏｓｃｈｕｓｍａｎｉｈｏｔＬ.ＭｅｄｉｃꎻＤｉｆｆｅｒｅｎｔｆｌｏｗｅｒｉｎｇｄｅｇｒｅｅꎻＴｏｔａｌｆｌａｖｏｎｏｉｄｓꎻＨｙｐｅｒｏｓｉｄｅꎻＩｓｏｑｕｅｒｃｉｔｒｉｎꎻＥｘ￣ｔｒａｃｔｉｏｎｒａｔｅ㊀㊀黄蜀葵花为锦葵科秋葵属植物黄蜀葵[Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｕｓｍａｎｉｈｏｔ(Ｌ.)Ｍｅｄｉｃ.]的干燥花冠(带雄蕊及花柱)ꎬ味甘性寒ꎬ归肾及膀胱经ꎻ具有清利湿热㊁消肿解毒的功效ꎻ内服用于湿热壅遏和淋浊水肿ꎻ外治痈疽肿毒ꎬ水火烫伤[１]ꎮ它作为药用始于宋代[２]ꎬ其后历代本草均有记载ꎬ民间应用历史悠久ꎬ并收载于各版«中国药典»以及江苏㊁山东等一些地方药材标准中ꎮ黄蜀葵花原产于我国南方ꎬ喜温暖湿润ꎬ现㊀基金项目:药物分析与质量控制中心创新能力建设项目(山东省企业重大技术创新及产业化项目)㊀作者简介:郭小藤ꎬ女ꎬ主管药师ꎬ研究方向:中药新药研究与开发ꎬＥ－ｍａｉｌ:ｇｈａｕｔ＠１２６.ｃｏｍ除西北地区外ꎬ全国各地均有栽培ꎬ主要产区有江苏㊁浙江以及安徽等[３－４]ꎮ黄蜀葵花含有上千种化合物ꎬ主要包括黄酮类㊁还原糖类㊁鞣质㊁甾醇类㊁多糖类化合物以及其他成分ꎬ其中黄酮类化合物为黄蜀葵花的主要活性成分ꎬ黄酮类成分中又以金丝桃苷和异槲皮苷含量最高[５－８]ꎮ药理学研究表明ꎬ黄蜀葵花的黄酮类成分具有保护心㊁脑缺血ꎬ改善肝㊁肾功能以及修复口腔黏膜溃疡等作用[９－１０]ꎮ临床应用黄蜀葵花及其总黄酮治疗多种口腔炎症㊁慢性支气管炎ꎬ止痛效果显著ꎬ对慢性肾小球肾炎有明显疗效[１１]ꎮ中药材的采收㊁加工是其生产和品质形成的重要环节ꎬ对确保中药材质量和临床疗效有着十分重要的意义ꎮ历版«中国药典»仅规定黄蜀葵花于夏㊁秋二季花开时采摘ꎬ及时干燥ꎮ但目前关于黄蜀葵花开放程度对药材质量影响的相关报道尚少ꎮ因此ꎬ为了保证黄蜀葵花药材质量的优质和均一ꎬ本研究以金丝桃苷和异槲皮苷为对照品ꎬ采用紫外－可见分光光度法和高效液相色谱法对黄属葵花药材中总黄酮㊁金丝桃苷和异槲皮苷成分进行含量测定ꎬ同时采用正交试验确定的总黄酮提取最佳工艺ꎬ考察药材的提取率ꎬ评价黄蜀葵花不同开放程度时药材的质量ꎬ为黄蜀葵花的合理开发及利用提供了科学依据ꎮ１㊀仪器与试药１.１㊀仪器设备㊀Ｗａｔｅｒｓｅ２６９５高效液相色谱仪(２９９８ＰＤＡ二极管阵列检测器ꎬＷａｔｅｒｓＥｍｐｏｗｅｒ工作站ꎬ均为美国Ｗａｔｅｒｓ公司)ꎻＡｇｉｌｅｎｔ８４５４ＵＶ－Ｖｉｓ分光光度计(美国安捷伦)ꎻＭｅｔｔｌｅｒＸＳ－２０５电子分析天平(瑞士梅特勒－托利多)ꎻＤＮＴ－０.１/００多功能提取浓缩机组(浙江温兄机械阀业有限公司)ꎻＥＹＥＬＡＮ－１１００旋转蒸发仪(上海爱朗仪器有限公司)ꎻＫＱ２２００ＤＡ型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司)ꎮ１.２㊀试药㊀金丝桃苷对照品(批号:１１１５２１－２０１８０９ꎬ含量:９４.９％ꎬ中国食品药品检定研究院)ꎻ异槲皮苷对照品(批号:１１１８０９－２０１８０４ꎬ含量:９７.２％ꎬ中国食品药品检定研究院)ꎻ黄蜀葵花药材产地均为江苏ꎬ经山东省药学科学院泰山学者重点实验室鉴定为锦葵科植物黄蜀葵[Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｕｓｍａｎｉｈｏｔ(Ｌ.)Ｍｅｄｉｃ.]的干燥花ꎻ乙腈为色谱纯ꎬ磷酸为优级纯ꎬ其他试剂均为分析纯ꎬ超纯水为自制ꎮ２㊀方法与结果２.１㊀性状㊀黄蜀葵花药材的外观性状是其质量评价的重要部分ꎬ由于黄蜀葵花不属于大宗药材ꎬ市售黄蜀葵花药材外观性状差异较大ꎬ因此本研究对黄蜀葵花药材的花形及开放程度㊁花色进行了观察ꎬ并考察了外观性状与含量之间的相关性ꎮ江苏是黄蜀葵花药材种植规模较大的省份ꎬ花期为８ １０月ꎬ本试验选用的药材均为江苏种植且在花期内不同开放程度的药材ꎮ经过对６批药材样品外观性状的观察ꎬ发现其花形基本分为全开放形或半开放形㊁未开放螺旋卷状形等开放程度ꎻ花色分为亮黄色或黄色㊁黄色偏绿等颜色ꎮ其中全开放的花ꎬ花瓣大而舒展ꎬ花色为亮黄色ꎻ半开放的花ꎬ花瓣没有完全展开ꎬ花色多为黄色ꎻ未开放的花ꎬ花形为卷曲螺旋状ꎬ外层花瓣呈浅绿色ꎬ结果见表１㊁图１~２ꎮ表１㊀黄蜀葵花药材来源及外观性状药材编号产地开放程度花色Ｓ１江苏盐城未开放螺旋卷形黄色偏绿Ｓ２江苏盐城未开放螺旋卷形黄色偏绿Ｓ３江苏淮安未开放螺旋卷形黄色偏绿Ｓ４江苏泰州未开放螺旋卷形黄色偏绿Ｓ５江苏无锡未开放螺旋卷形黄色偏绿Ｓ６江苏东台半开放形黄色Ｓ７江苏宜兴半开放形黄色Ｓ８江苏徐州半开放形黄色Ｓ９江苏宿迁半开放形黄色Ｓ１０江苏盐城半开放形黄色Ｓ１１江苏苏州全开放形亮黄色Ｓ１２江苏宿迁全开放形亮黄色Ｓ１３江苏盐城全开放形亮黄色Ｓ１４江苏盐城全开放形亮黄色Ｓ１５江苏淮安全开放形亮黄色Ａ.全开放形ꎻＢ.半开放形ꎻＣ.未开放螺旋卷形图１㊀黄蜀葵花药材不同花形样品Ａ.亮黄色ꎻＢ.黄色ꎻＣ.黄色偏绿图２㊀黄蜀葵花药材不同花色样品２.２㊀黄蜀葵花药材的提取㊀分别取不同开放程度的黄蜀葵花药材各４ｋｇꎬ加８５％乙醇回流提取两次ꎬ第一次１２倍量ꎬ第二次１０倍量ꎬ每次提取１ｈꎬ提取液滤过ꎬ滤液减压回收乙醇并浓缩至相对密度为１.１８~１.２０(６０ħ)ꎮ将醇提浓缩液静置１６~２０ｈꎬ撇去上层油ꎬ即得醇提浸膏ꎮ分别称定醇提浸膏和油层的重量ꎬ计算本品醇提浸膏得率ꎬ结果见表２ꎮ㊀㊀全开放的黄蜀葵花提醇提出膏率最高ꎬ油层最少ꎻ半开放的黄蜀葵花出膏率略低于全开放的花ꎬ去油率偏高ꎻ未开放的黄蜀葵花醇提浸膏出膏率最低ꎬ去油率高且油层结实ꎮ表２㊀黄蜀葵花药材提取结果药材编号醇提浸膏重量/ｋｇ醇提出膏率(％)去油率(％)油层状态Ｓ１１.８４４６.００８.１８结实Ｓ２１.９６４９.００８.３７结实Ｓ３２.０２５０.５０８.０１结实Ｓ４１.８６４６.５０７.６５结实Ｓ５１.９４４８.５０７.９７结实Ｓ６２.３１５７.７５５.４１较松散Ｓ７２.２７５６.７５５.６９较松散Ｓ８２.１２５３.００５.２７较松散Ｓ９２.０８５２.００５.８８较松散Ｓ１０２.１９５４.７５５.４８较松散Ｓ１１２.３３５８.２５３.９６薄而松散Ｓ１２２.３６５９.００４.６５薄而松散Ｓ１３２.４３６０.７５３.４９薄而松散Ｓ１４２.３７５９.２５４.１３薄而松散Ｓ１５２.４５６１.２５３.７３薄而松散Ｓ１~Ｓ５平均１.９２４８.１０８.０４Ｓ６~Ｓ１０平均２.１９５４.８５５.５５Ｓ１１~Ｓ１５平均２.３９５９.７０３.９９２.３㊀总黄酮含量测定２.３.１㊀供试品溶液的制备㊀取不同开放程度的黄蜀葵花药材样品粉末(过四号筛)０.５ｇꎬ每个样品各２份ꎬ精密称定ꎬ置圆底烧瓶中ꎬ精密加入甲醇１００ｍＬꎬ称定重量ꎬ加热回流２ｈꎬ放冷ꎬ再称定重量ꎬ用甲醇补足减失的重量ꎬ摇匀ꎬ滤过ꎬ取续滤液备用ꎮ取不同批次的醇提取样品０.１５ｇꎬ置２５ｍＬ量瓶中ꎬ精密称定ꎬ加甲醇２０ｍＬꎬ超声处理２０ｍｉｎꎬ放冷ꎬ加甲醇至刻度ꎬ摇匀ꎬ离心１０ｍｉｎꎬ取上清液备用ꎮ２.３.２㊀对照品溶液的制备㊀取金丝桃苷对照品适量ꎬ精密称定ꎬ加甲醇制成每１ｍＬ含金丝桃苷８０μｇ的溶液ꎬ即得ꎮ２.３.３㊀测定波长的选择㊀精密量取对照品溶液３ｍＬꎬ置２５ｍＬ量瓶中ꎬ加５０％甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎻ精密量取供试品溶液１ｍＬꎬ置２５ｍＬ量瓶中ꎬ加５０％甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎻ以５０％甲醇为空白ꎬ在２００~８００ｎｍ范围内扫描吸收曲线ꎮ结果表明ꎬ金丝桃苷对照品与供试品溶液在２５６ｎｍ波长处均有相同的最大吸收ꎮ２.３.４㊀标准曲线的绘制㊀精密量取对照品溶液１㊁２㊁３㊁４㊁５㊁６ｍＬꎬ分别置２５ｍＬ量瓶中ꎬ加５０％甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎮ以５０％甲醇为空白ꎬ照紫外－可见分光光度法在２５６ｎｍ波长处测定吸光度ꎬ以吸光度为纵坐标ꎬ浓度为横坐标ꎬ绘制标准曲线ꎮ得回归方程:Ｃ＝０.０５２１Ａ－０.００１１(Ｒ２＝０.９９９９９)ꎬ线性范围为３.０３６８~１８.２２１０μｇ ｍＬ－１ꎮ２.３.５㊀含量测定㊀精密量取药材供试品溶液１.０ｍＬꎬ置２５ｍＬ量瓶中ꎬ精密量取醇提浸膏供试品溶液１.０ｍＬꎬ置５０ｍＬ量瓶中ꎬ分别加５０％甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎬ在２５６ｎｍ处测定吸光度ꎬ从标准曲线上读出供试品溶液中金丝桃苷的量ꎬ计算总黄酮含量ꎮ结果见表３ꎮ㊀㊀全开放的黄蜀葵花样品中总黄酮含量及醇提转移率最高ꎬ半开放的黄蜀葵花总黄酮含量及醇提转移率略低于全开放的花ꎬ未开放的黄蜀葵花总黄酮含量和醇提转移率均最低ꎬ醇提浸膏中总黄酮含量趋势与药材基本一致ꎮ表３㊀不同开放程度黄蜀葵花及醇提浸膏总黄酮含量测定结果(％ꎬｎ＝２)样品编号黄蜀葵花(％)醇提浸膏/ｍｇ ｇ－１总黄酮转移率(％)Ｓ１３.６７６３.０８７９.０７Ｓ２３.７６６２.２９８１.１７Ｓ３３.９２６２.１１８０.０１Ｓ４４.０３６６.５９７６.８３Ｓ５３.８９６４.１２７９.９４Ｓ６４.５５６６.３９８４.２６Ｓ７５.１１７３.１６８１.２５Ｓ８４.２８６６.１３８１.８９Ｓ９４.３１６９.５５８３.９１Ｓ１０４.６２７０.０４８３.００Ｓ１１５.０４７５.４１８７.１５Ｓ１２４.４６６６.５７８８.０７Ｓ１３４.７４６８.２１８７.４２Ｓ１４４.６１６６.１４８５.０１Ｓ１５５.５０７８.５５８７.４８Ｓ１~Ｓ５平均３.８５６３.６４７９.４１Ｓ６~Ｓ１０平均４.５７６９.０５８２.８６Ｓ１１~Ｓ１５平均４.８７７０.９８８７.０２２.４㊀金丝桃苷㊁异槲皮苷含量测定２.４.１㊀色谱条件㊀ＺｏｒｂａｘＳＢ－Ｃ１８(４.６ｍｍˑ２５０ｍｍꎬ５μｍ)ꎻ流动相:乙腈－０.１％磷酸溶液(１５ʒ８５)ꎬ流速１.０ｍＬ ｍｉｎ－１ꎬ检测波长:３６０ｎｍꎬ进样量:１０μＬꎬ柱温:３５ħꎮ２.４.２㊀混合对照品溶液的制备㊀取金丝桃苷和异槲皮苷对照品适量ꎬ精密称定ꎬ加甲醇制成每１ｍＬ含金丝桃苷１００μｇ㊁异槲皮苷６０μｇ的混合溶液ꎬ即得ꎮ２.４.３㊀供试品溶液的制备㊀取样品粉末(过四号筛)０.２ｇꎬ精密称定ꎬ置２５ｍＬ容量瓶中ꎬ加入甲醇１５ｍＬ超声处理(功率１００Ｗꎬ频率４０ｋＨｚ)３０ｍｉｎꎬ放冷ꎬ加甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎬ滤过ꎬ取续滤液作为供试品溶液ꎮ取不同批次的醇提取样品０.１５ｇꎬ置２５ｍＬ量瓶中ꎬ精密称定ꎬ加甲醇２０ｍＬꎬ超声处理３０ｍｉｎꎬ放冷ꎬ加甲醇至刻度ꎬ摇匀ꎬ离心１０ｍｉｎꎬ取上清液作为供试品溶液ꎮ２.４.４㊀专属性试验㊀分别精密吸取混合对照品溶液㊁供试品溶液各１０μＬꎬ注入液相色谱仪ꎬ记录色谱图(见图３)ꎮ供试品溶液的色谱图中ꎬ在与对照品溶液的色谱图相应的位置上ꎬ有相同保留时间的色谱峰ꎬ且金丝桃苷峰㊁异槲皮苷峰与相邻峰之间的分离度均符合要求ꎮＡ.混合对照品溶液ꎻＢ.供试品溶液㊀１.金丝桃苷２.异槲皮苷图３㊀黄蜀葵花高效液相色谱图２.４.５㊀样品含量测定㊀分别取黄蜀葵花不同部位药材粉末及不同批次的醇提取样品ꎬ按 ２.４.３ 项下方法制备供试品溶液ꎬ按 ２.４.１ 项下色谱条件测定ꎬ按外标法以峰面积计算金丝桃苷㊁异槲皮苷含量ꎬ结果见表４ꎮ表４㊀不同开放程度黄蜀葵花及醇提浸膏金丝桃苷㊁异槲皮苷含量测定结果(％ꎬｎ＝２)样品编号黄蜀葵花(％)醇提浸膏/ｍｇ ｇ－１金丝桃苷异槲皮苷金丝桃苷异槲皮苷Ｓ１０.６４６０.４３１９.９８６７.３７６Ｓ２０.６３４０.３０５８.３６３６.６７５Ｓ３０.７０２０.４１２１０.８５１６.４５２Ｓ４０.６６７０.３８７９.１８４５.１３４Ｓ５０.６３８０.３９９１０.５４２６.８４５Ｓ６０.７５３０.４１０９.５３８７.３１８Ｓ７０.８９３０.４３２１０.５７９９.２３７Ｓ８０.７２１０.４５７９.７４４８.４６５Ｓ９０.７６１０.４１８１０.０４６７.４６６Ｓ１００.７４８０.４３０１０.７５３７.４３０Ｓ１１０.８７００.４４１１３.５８７８.４２６Ｓ１２０.６９８０.４６８１１.４２５７.１６７Ｓ１３０.９１２０.５０７１２.０４５８.１２８Ｓ１４０.８９５０.４８３１０.４５８８.３８５Ｓ１５０.８６３０.４９１１２.８５６９.４５０Ｓ１~Ｓ５平均０.６５７０.３８７９.７８５６.４９６Ｓ６~Ｓ１０平均０.７７５０.４２９１０.１３２７.９８３Ｓ１１~Ｓ１５平均０.８４８０.４７８１２.０７４８.３１１㊀㊀全开放的黄蜀葵花样品中金丝桃苷㊁异槲皮苷平均含量最高ꎬ半开放的黄蜀葵花中两成分平均含量略低于全开放的花ꎬ未开放的黄蜀葵花中两成分平均含量均最低ꎬ醇提浸膏中两成分含量趋势与药材基本一致ꎮ３　讨论与结论３.１㊀提取溶剂及方法考察㊀黄酮类成分是黄蜀葵花的有效部位ꎬ由于黄酮类成分在水中溶解度不高ꎬ多采用适当浓度的甲醇或乙醇作为溶剂ꎬ采用加热回流㊁超声或索氏等方法进行提取[１２－１３]ꎮ由于索氏和超声提取仅适合少量药材的提取ꎬ且甲醇的毒性较大ꎬ而乙醇具有价格低㊁易回收㊁污染小等优点ꎬ因此本研究采用的乙醇回流提取的方法最适合放大生产ꎮ在醇提取工艺研究中ꎬ以总黄酮的含量为指标ꎬ设计乙醇浓度㊁乙醇用量㊁提取时间㊁提取次数４个因素进行正交试验ꎬ考察对总黄酮提取率的影响ꎬ最终选定了最佳的提取工艺条件ꎮ３.２㊀药材性状的选择㊀黄蜀葵花药材醇提液浓缩静置后ꎬ提取浸膏上层有一层油状物ꎬ分析是由花托中的叶绿素及花蕊中的多糖㊁果胶等成分组成[１４]ꎮ本研究通过试验对比发现未开放及半开放的黄蜀葵花药材醇提去油率较高ꎬ分析是由于未完全开放的花瓣将花蕊包裹ꎬ保留了较多的多糖及果胶成分ꎬ不利于有效部位的分离纯化ꎮ因此在对黄蜀葵花总黄酮有效部位分离纯化时ꎬ应优选完全开放的花进行提取ꎬ同时对药材的花托比例进行限定ꎮ３.３㊀含量测定指标的选择㊀目前对黄蜀葵花药材含量测定的文献报道多为单独测定总黄酮有效部位或单独测定金丝桃苷㊁异槲皮苷等单成分含量[１５－１６]ꎮ本研究不仅对黄蜀葵花药材不同部位的总黄酮总量进行了测定ꎬ同时对总黄酮中含量及活性最高的指标成分金丝桃苷㊁异槲皮苷进行了定量分析ꎬ结果表明黄蜀葵花中总黄酮含量较高时ꎬ金丝桃苷和异槲皮苷含量也较高ꎬ二者呈一定相关性ꎬ更全面的评价了黄蜀葵花药材的质量ꎬ为进一步研究有效部位与单成分之间的相关性和药理药效的机理提供了数据支持ꎮ３.４㊀不同开放程度药材含量分析㊀黄蜀葵花中总黄酮㊁金丝桃苷及异槲皮苷含量趋势为:黄色全开放花>黄色半开放花>偏绿色未开放花ꎮ全开放的黄蜀葵花ꎬ颜色为亮黄色ꎬ花瓣大而舒展ꎬ有效成分含量高ꎬ提取转移率高ꎬ去油率低ꎻ未开放的黄蜀葵花ꎬ花瓣卷曲呈螺旋状ꎬ由于其尚未开放即进行采摘ꎬ花朵接收的阳光光照不足ꎬ其外层花瓣呈浅绿色ꎬ有效成分含量偏低ꎬ提取转移率低ꎻ半开放的黄蜀葵花ꎬ其颜色为黄色ꎬ花瓣没有完全展开ꎬ有效成分的含量居于前两者之间ꎮ从上述结果可以看出ꎬ黄蜀葵花药材的质量与其开放程度密切相关ꎬ由于该花只有一天开放时间ꎬ因此采收时间宜在晴天的白天花朵完全开放后当天采摘ꎬ过早采摘未开放的花将影响药材的质量ꎮ在黄蜀葵花１５个样品中ꎬＳ１~Ｓ５样品颜色较其他样品偏绿ꎬ同时各成分含量较其他样品偏低ꎬ说明黄蜀葵花中黄酮类成分的含量可能与其颜色有一定的相关性ꎬ有待进一步研究ꎮ３.５㊀结论㊀总黄酮㊁金丝桃苷和异槲皮苷作为黄蜀葵花中主要活性成分ꎬ其含量高低直接影响黄蜀葵花的内在质量及临床疗效ꎮ本研究以总黄酮有效部位㊁金丝桃苷及异槲皮苷和醇提转移率为检测指标ꎬ对不同开放程度的黄蜀葵花药材进行分析研究ꎬ结果表明ꎬ黄蜀葵花药材不同的开放程度对总黄酮㊁金丝桃苷和异槲皮苷的含量均有影响ꎬ亮黄色全开放花中总黄酮㊁金丝桃苷及异槲皮苷的含量最高ꎮ参考文献:[１]㊀国家药典委员会.中华人民共和国药典２０１５年版(一部)[Ｓ].北京:中国医药科技出版社ꎬ２０１５.[２]李时珍.本草纲目[Ｍ].北京:人民卫生出版社ꎬ１９８２:１０４６.[３]陈刚.黄蜀葵花的化学成分和降糖活性研究[Ｄ].北京:中国人民解放军军事医学科学院ꎬ２００６.[４]梁文波ꎬ谭柳燕ꎬ严方明.中药材黄蜀葵的研究现状及存在问题[Ｊ].农业研究与应用ꎬ２０１２(５):４８－５２. 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[１６]陆林玲ꎬ钱大玮ꎬ郭建明ꎬ等.一测多评法测定黄蜀葵花中７个黄酮类成分[Ｊ].药物分析杂志ꎬ２０１３ꎬ３３(１２):２０８２－２０８７.(上接第８页)[９]㊀ＳＴＥＷＡＲＴＧＤꎬＮＡＮＤＡＪꎬＢＲＯＷＮＤꎬｅｔａｌ.ＮＯ－ｓｕｌｉｎｄａｃｉｎｈｉｂｉｔｓｔｈｅｈｙｐｏｘｉａｒｅｓｐｏｎｓｅｏｆＰＣ－３ｐｒｏｓｔａｔｅｃａｎｃｅｒｃｅｌｌｓｖｉａｔｈｅＡｋｔｓｉｇｎａｌｌｉｎｇｐａｔｈｗａｙ[Ｊ].ＩｎｔＪＣａｎｃｅｒꎬ２０１０ꎬ１２４(１):２２３－２３２.[１０]ＨＡＯＪꎬＳＯＮＧＧꎬＬＩＵＴꎬｅｔａｌ.Ｉｎｖｉｖｏｌｏｎｇ－ｔｅｒｍｂｉｏｄｉｓｔｒｉ￣ｂｕｔｉｏｎꎬｅｘｃｒｅｔｉｏｎꎬａｎｄｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙｏｆＰＥＧｙｌａｔｅｄｔｒａｎｓｉｔｉｏｎ－ｍｅｔａｌｄｉｃｈａｌｃｏｇｅｎｉｄｅｓＭＳ２(Ｍ＝ＭｏꎬＷꎬＴｉ)ｎａｎｏｓｈｅｅｔｓ[Ｊ].ＡｄｖＳｃｉꎬ２０１７ꎬ４(１):１６００１６０.[１１]ＬＩＵＴꎬＬＩＵＺ.２ＤＭｏＳ２ｎａｎｏｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓｆｏｒｂｉｏｍｅｄｉｃａｌａｐ￣ｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ[Ｊ].ＡｄｖＨｅａｌｔｈｃＭａｔｅｒꎬ２０１８ꎬ７(８):１７０１１５８. [１２]ＹＡＤＡＶＶꎬＲＯＹＳꎬＳＩＮＧＨＰꎬｅｔａｌ.２ＤＭｏＳ２－ｂａｓｅｄｎａｎｏｍａｔｅｒｉａｌｓｆｏｒｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃꎬｂｉｏｉｍａｇｉｎｇꎬａｎｄｂｉｏｓｅｎｓｉｎｇａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ[Ｊ].Ｓｍａｌｌꎬ２０１９ꎬ１５(１):１８０３７０６.[１３]ＬＩＵＴꎬＷＡＮＧＣꎬＧＵＸꎬｅｔａｌ.ＤｒｕｇｄｅｌｉｖｅｒｙｗｉｔｈＰＥＧｙｌａｔｅｄＭｏＳ２ｎａｎｏ－ｓｈｅｅｔｓｆｏｒｃｏｍｂｉｎｅｄｐｈｏｔｏｔｈｅｒｍａｌａｎｄｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙｏｆｃａｎｃｅｒ[Ｊ].ＡｄｖＭａｔｅｒꎬ２０１４ꎬ２６(２１):３４３３－３４４０.[１４]ＹＩＮＷꎬＹＡＮＬꎬＹＵＪꎬｅｔａｌ.Ｈｉｇｈ－ｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔｓｙｎｔｈｅｓｉｓｏｆｓｉｎｇｌｅ－ｌａｙｅｒＭｏＳ２ｎａｎｏｓｈｅｅｔｓａｓａｎｅａｒ－ｉｎｆｒａｒｅｄｐｈｏｔｏ￣ｔｈｅｒｍａｌ－ｔｒｉｇｇｅｒｅｄｄｒｕｇｄｅｌｉｖｅｒｙｆｏｒｅｆｆｅｃｔｉｖｅｃａｎｃｅｒｔｈｅｒａｐｙ[Ｊ].ＡＣＳＮａｎｏꎬ２０１４ꎬ８(７):６９２２－６９３３.[１５]ＬＩＵＪꎬＺＨＥＮＧＪꎬＮＩＥＨꎬｅｔａｌ.Ｍｏｌｙｂｄｅｎｕｍｄｉｓｕｌｆｉｄｅ－ｂａｓｅｄｈｙａｌｕｒｏｎｉｃａｃｉｄ－ｇｕｉｄｅｄｍｕｌｔｉｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｔｈｅｒａｎｏｓｔｉｃｎａｎｏｐｌａｔｆｏｒｍｆｏｒｍａｇｎｅｔｉｃｒｅｓｏｎａｎｃｅｉｍａｇｉｎｇａｎｄｓｙｎｅｒｇｅｔｉｃｃｈｅｍｏ－ｐｈｏｔｏｔｈｅｒｍａｌｔｈｅｒａｐｙ[Ｊ].ＪＣｏｌｌｏｉｄＩｎ￣ｔｅｒｆａｃｅＳｃｉꎬ２０１９(５４８):１３１－４４.[１６]ＬＩＵＪꎬＺＨＥＮＧＪꎬＮＩＥＨꎬｅｔａｌ.Ｃｏ－ｄｅｌｉｖｅｒｙｏｆｅｒｌｏｔｉｎｉｂａｎｄｄｏｘｏｒｕｂｉｃｉｎｂｙＭｏＳ２ｎａｎｏｓｈｅｅｔｓｆｏｒｓｙｎｅｒｇｅｔｉｃｐｈｏｔｏ￣ｔｈｅｒｍａｌｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙｏｆｃａｎｃｅｒ[Ｊ].ＣｈｅｍＥｎｇＪꎬ２０２０(３８１):１２２５４１.[１７]ＪＯＥＮＳＥＮＰꎬＦＲＩＮＤＴＲＦꎬＭＯＲＲＩＳＯＮＳＲ.Ｓｉｎｇｌｅ－ｌａｙｅｒＭｏＳ２[Ｊ].ＭａｔｅｒｉａｌｓＲｅｓｅａｒｃｈＢｕｌｌｅｔｉｎꎬ１９８６ꎬ２１(４):４５７－４６１.[１８]ＬＩＵＴꎬＳＨＩＳꎬＬＩＡＮＧＣꎬｅｔａｌ.ＩｒｏｎＯｘｉｄｅＤｅｃｏｒａｔｅｄＭｏＳ２ＮａｎｏｓｈｅｅｔｓｗｉｔｈＤｏｕｂｌｅＰＥＧｙｌａｔｉｏｎｆｏｒＣｈｅｌａｔｏｒ－ＦｒｅｅＲａｄｉ￣ｏｌａｂｅｌｉｎｇａｎｄＭｕｌｔｉｍｏｄａｌＩｍａｇｉｎｇＧｕｉｄｅｄＰｈｏｔｏｔｈｅｒｍａｌＴｈｅｒａｐｙ[Ｊ].ＡｃｓＮａｎｏꎬ２０１５ꎬ９(１):９５０－９６０.[１９]ＹＵＸꎬＹＡＮＧＫꎬＣＨＥＮＸꎬｅｔａｌ.Ｂｌａｃｋｈｏｌｌｏｗｓｉｌｉｃｏｎｏｘｉｄｅｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓａｓｈｉｇｈｌｙｅｆｆｉｃｉｅｎｔｐｈｏｔｏｔｈｅｒｍａｌａｇｅｎｔｓｉｎｔｈｅｓｅｃｏｎｄｎｅａｒ－ｉｎｆｒａｒｅｄｗｉｎｄｏｗｆｏｒｉｎｖｉｖｏｃａｎｃｅｒｔｈｅｒａｐｙ[Ｊ].Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓꎬ２０１７(１４３):１２０－１２９.。

含黄蜀葵花外用制剂的研究进展陈淑娴1* 柴程芝1 葛海涛2**（1. 中国药科大学 南京 210009；2. 南京苏中药物研究有限公司 南京 210009）摘 要 黄蜀葵花为锦葵科植物黄蜀葵的干燥花冠，药用历史悠久。

化学研究表明，黄蜀葵花的主要活性成分为黄酮类化合物，其中以金丝桃苷，槲皮素，异槲皮苷三者含量最高。

近年来的药理及临床研究表明，黄蜀葵花具有广泛的药理活性，其外用可治疗溃疡以及烧烫伤。

本文结合相关的药理作用机制，对黄蜀葵花外用的临床研究进展进行综述，探讨黄蜀葵花作为外用制剂的药用价值，为该中药作为外用制剂的进一步开发和利用提供参考。

关键词 黄蜀葵花 外用 溃疡中图分类号：R286; R282.71 文献标识码：A 文章编号：1006-1533(2017)05-0075-04Research progress of the topical preparations containing abelmoschus corollaCHEN Shuxian1*, CHAI Chengzhi1, GE Haitao2**(1. China Pharmaceutical University, Nanjing 210009, China; 2.Nanjing Suzhong Pharma R&D Co. Ltd., Nanjing 210009, China)ABSTRACT Abelmoschus corolla is a traditional Chinese medicine with a long history of medication. Chemical researches indicate that the flavonoids is the main active component, in which the contents of hyperoside, quercetin and isoquercitrin are the highest. Pharmacological and clinical studies have showed in recent years that abelmoschus corolla has a wide range of pharmacological activity, which can be used for treating the ulcers and burns. The pharmacological and clinical studies on the external application of abelmoschus corolla are mainly reviewed in this article so as to discuss its medicinal value in external application and provide evidence for the further development and utilization of abelmoschus corolla as topical preparation.KEY WORDS abelmoschus corolla; external application; ulcer黄蜀葵花为锦葵科植物黄蜀葵Abelmoschus manihot (L.)Medic.的干燥花冠[1]，始载于《嘉祐本草》：“黄蜀葵花，主诸恶疮脓水久不瘥者，作末敷”。

黄蜀葵化学成分与药理活性研究进展温锐;谢国勇;李旭森;秦民坚【期刊名称】《中国野生植物资源》【年(卷),期】2015(000)002【摘要】黄蜀葵[Abelmoschus manihot (L.) Medicus]为锦葵科秋葵属植物，主要含黄酮类、有机酸类、甾类及挥发性成分，具有消炎止痛、抗氧化、保肝保肾、保护心脑血管等药理活性。

通过系统的文献调研，对黄蜀葵花、根茎叶、种子的化学成分和药理活性分别进行了总结，为进一步开发利用该植物资源提供参考。

%Abelmoschus manihot (L. ) Medic. belongs to Malvaceae. The chemical constituents in the plant are mainly flavonoids, organic acids, steroids and volatile compounds. It has a wide range of phar-macological activities, such as analgesic, anti-inflammory, anti-oxidant, hepatoprotective, renal protec-tion, cardiovascular protection etc. Through a sysmatic literature review, the phytochemistry and pharma-cological activities of A. manihot are summarized. It will provide a certain scientific and theoretical basis for its further development.【总页数】8页(P37-44)【作者】温锐;谢国勇;李旭森;秦民坚【作者单位】中国药科大学中药资源学教研室，江苏南京 210009; 中国药科大学教育部现代中药研究重点实验室，江苏南京 210009;中国药科大学中药资源学教研室，江苏南京 210009; 中国药科大学教育部现代中药研究重点实验室，江苏南京 210009;中国药科大学中药资源学教研室，江苏南京 210009; 中国药科大学教育部现代中药研究重点实验室，江苏南京 210009;中国药科大学中药资源学教研室，江苏南京 210009; 中国药科大学教育部现代中药研究重点实验室，江苏南京 210009【正文语种】中文【中图分类】R284;R285【相关文献】1.黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分及药理作用研究进展 [J], 黎晶晶;徐柏颐2.黄蜀葵花总黄酮药理活性的研究进展 [J], 文松;张贵强;汪艳艳;周英;王海南3.黄蜀葵化学成分及药理活性研究进展 [J], 刘爽;江蔚新;吴斌4.水芹的化学成分、药理活性及其功能性食品研究进展 [J], 欧开翔;谷荣辉5.苦瓜化学成分的提取分离及药理活性研究进展 [J], 刘馨泽;吴新民;蔺冬梅;冯琳;杨洪梅;王欢;王冬雪;刘淑莹;吴巍;万茜淋因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

黄蜀葵花总黄酮定量研究
钱芳;张芹
【期刊名称】《中国民族民间医药》
【年(卷),期】2015(000)023
【摘要】目的：用高效液相色谱法测定黄蜀葵花总黄酮中金丝桃苷的含量。

方法：色谱柱：依利特－C18柱（250×4．6 mm，5μm），以乙腈－0．1％磷酸溶液
为流动相进行梯度洗脱，流速：1．0ml ／min，检测波长：360nm，柱温：30℃。

结果：金丝桃苷在11．4059～364．99μg／ml 范围内与峰面积的积分值呈现良
好的线性关系（r ＝1．0000），平均加样回收率97．14％，RSD1．86％（n ＝6）。

结论：HPLC法简便易行、结果准确、重复性好，可用于测定黄蜀葵花总黄
酮中金丝桃苷含量。

【总页数】2页(P14-15)
【作者】钱芳;张芹
【作者单位】江苏省中医院药学部，江苏南京 210029;江苏省中医院药学部，江
苏南京 210029
【正文语种】中文
【中图分类】R284.1
【相关文献】
1.紫外分光光度法测定黄蜀葵花总黄酮片中总黄酮的含量△ [J], 邾枝花;黄平
2.黄蜀葵花总黄酮提取物中鞣质的含量测定 [J], 张清华;崔燕
3.高效液相色谱法测定黄蜀葵花总黄酮胶囊中的金丝桃苷和槲皮素-3'-葡萄糖苷[J], 杜安全;周正华
4.顶空气相色谱法同时测定黄蜀葵花总黄酮提取物中9种有机溶剂的残留量 [J], 张清华; 张治云; 杨海霞
5.黄蜀葵花总黄酮的质量标准及指纹图谱研究 [J], 张俊;章方珺;宋必卫
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黄蜀葵花的功效与作用黄蜀葵花，科学名称为锈苏木花（Hibiscus mutabilis Linn.），是锦葵科植物黄蜀葵的花朵。

黄蜀葵花在我国被广泛种植，并且被人们广泛应用于医疗、美容、保健等方面。

黄蜀葵花不仅具有美丽的外观和迷人的香气，更重要的是它在保健养生方面具有许多独特的功效与作用。

本文将详细介绍黄蜀葵花的功效与作用，希望能对读者们有所启发。

黄蜀葵花具有丰富的营养价值和药用价值，其中最为重要的成分是多种维生素、天然植物酚类等。

这些成分为黄蜀葵花赋予了多种功效与作用。

首先，黄蜀葵花具有清热解毒的作用。

它含有丰富的黄酮类物质，能够保护肝脏、改善胃肠道功能，具有抗菌、抗炎、抗氧化的作用，有助于清除体内的有害物质，净化血液，提升免疫力。

此外，黄蜀葵花中的花青素具有抗氧化作用，可以中和自由基，减缓衰老进程，对皮肤有一定的美容养颜效果。

其次，黄蜀葵花具有祛湿利尿的作用。

黄蜀葵花富含的植物酚类化合物能够刺激肾脏的排尿功能，增强尿液排出，从而达到利尿作用，有助于排除体内多余的水分和废物，减轻体重、改善水肿症状，有助于肥胖、水肿等问题的改善。

此外，黄蜀葵花还具有舒张血管的作用，可以降低血压、改善微循环，对心血管疾病也有一定的预防和治疗作用。

再次，黄蜀葵花具有调节血糖和降脂作用。

黄蜀葵花中的多糖和植物酚类化合物能够提高胰岛素的分泌，促进葡萄糖的利用，减少葡萄糖的生成，从而有效控制血糖水平，对糖尿病有一定的治疗效果。

此外，黄蜀葵花中的芳香族化合物还具有降低胆固醇和甘油三酯的作用，可以改善血脂异常，预防动脉粥样硬化等心血管疾病。

同时，黄蜀葵花还具有丰胸美颜的功效和作用。

黄蜀葵花中含有的多种维生素和矿物质，可以促进乳房发育，增加乳腺组织的营养供应，从而实现丰胸效果。

此外，黄蜀葵花中的活性成分可以促进皮肤细胞的新陈代谢，增加胶原蛋白的合成，有助于保持肌肤的弹性和光泽，减少皱纹的生成，延缓皮肤老化速度。

同时，黄蜀葵花中的芳香族化合物能够调节皮肤的油脂分泌，改善痤疮、粉刺等问题，使肌肤更加清爽细腻。

黄蜀葵花黄酮成分的研究王先荣;周正华;杜安全;黄正明【期刊名称】《中国天然药物》【年(卷),期】2004(002)002【摘要】目的:对黄蜀葵花(Abelmoschus manihot L. Medic)总黄酮进行化学成分的研究.方法:利用色谱和分部结晶方法进行成分分离,根据物理化学性质和波谱学手段对化合物进行结构鉴定.结果:分离到4个黄酮醇单糖苷,分别鉴定为棉皮素-3′-O-β-葡萄糖苷(Gossypetin-3′-O-β-glucoside ,1),异槲皮苷(Isoquercetin,2),金丝桃苷(Hyperoside,3)和槲皮素-3′-葡萄糖苷(Quercetin-3′-glucoside,4).结论:其中1为新化合物,2为从该植物中首次分得.【总页数】3页(P91-93)【作者】王先荣;周正华;杜安全;黄正明【作者单位】安徽省医学科学研究所,合肥,230061;安徽省医学科学研究所,合肥,230061;安徽省医学科学研究所,合肥,230061;解放军北京军医学院药理学教研室,北京,100071【正文语种】中文【中图分类】R284【相关文献】1.黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分及药理作用研究进展 [J], 黎晶晶;徐柏颐2.黄蜀葵花黄酮成分F-6对四氯化碳致小鼠急性肝损伤的保护作用 [J], 程丽娟;苏成虎;刘青川;徐雪钰;于珊;李瑞生;黄正明3.HPLC法测定不同产地黄蜀葵花中黄酮类成分含量 [J], 蒋建春;朱华云4.黄蜀葵花中黄酮类成分的含量测定及HPLC指纹图谱研究 [J], 王妍;王宝华;鲁冰;杨贝贝;李萍;孟庆卿;季文琴5.黄蜀葵花不同部位黄酮类成分含量的比较研究 [J], 郭小藤;刘燕;张清华;尚立霞因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。