7蔗糖酶的制备和活力测定
- 格式:pdf
- 大小:216.10 KB
- 文档页数:12


土壤酶活性测定方法一、蔗糖酶: 3,5-二硝基水杨酸比色法1. 试剂配制(1)2N氢氧化钠200mL:称取16g 氢氧化钠,用蒸馏水溶解,定溶于200mL容量瓶中。
(2)3,5-二硝基水杨酸溶液1000mL:称5g二硝基水杨酸,溶于200mL2N氢氧化钠和500mL蒸馏水中,再加300g酒石酸钾钠,用蒸馏水稀释至1000mL(不超过7天)。
(3)1/15M 磷酸氢二钠1000mL:23.867g N a2HPO4·12H2O溶于1000mL蒸馏水中。
(4)1/15M 磷酸二氢钾1000mL:9.078g KH2PO4溶于1000mL蒸馏水中。
(5)pH5.5磷酸缓冲液100mL:5 mL磷酸氢二钠(1/15M)加95mL磷酸二氢钾(1/15M) (6)8%蔗糖1000mL:称取80g蔗糖,用水溶解,稀释至1000mL。
(7)甲苯。
(8)标准葡萄糖溶液(1mg/mL)1000mL:取少量葡萄糖在真空干燥箱中,于55℃条件下真空干燥至恒重。
然后取1.00g葡萄糖溶于100ml蒸馏水中成标准葡萄糖母液(10mg还原糖/ml)。
取此母液10ml, 用蒸馏水定容至100mL即成标准葡萄糖液(1mg/ml);2. 操作步骤(1)标准曲线绘制:分别取标准葡萄糖液0.4mL,0.8 mL,1.2mL, 1.6mL, 2.0mL,2.8mL, 3.2mL于50 mL比色管中,另取一管做空白对照。
用蒸馏水补足至10mL。
加入3.0mL 3,5-二硝基水杨酸,沸水浴5min,随即在自来水流下冷却。
最后用蒸馏水稀释至50mL,并在分光光度计上于波长508nm处进行比色。
比色后,以光密度值为纵坐标,葡萄糖浓度为横坐标绘制成标准曲线。
(2)土壤蔗糖酶活性测定:称5.00g土样,置于50mL三角瓶中,注入15.0mL 8%蔗糖溶液,5.0mL pH5.5磷酸缓冲液和5滴甲苯。
摇匀混合物后,放入恒温箱,在37℃下培养24h。
实验四蔗糖合成酶、酸性转化酶、碱性转化酶活力活力的测定参考一、实验意义和目的 (2)二、实验原理 (2)三、材料、设备与试剂 (3)四、实验步骤 (3)1.蔗糖合成酶活性测定实验 (3)2.转化酶活性测定 (4)五、实验结果与分析 (4)1.蔗糖合成酶活性测定.................................................................... 错误!未定义书签。
2.转化酶活性测定............................................................................ 错误!未定义书签。
六、误差分析........................................................................................... 错误!未定义书签。
一、实验意义和目的蔗糖作为植物体内主要的光合产物和运输物质,其代谢强弱对许多生理活动都会产生显著影响。
蔗糖合成酶(SuSy)是植物进行蔗糖代谢的关键酶之一,与植物细胞组织和骨架的构建、植株的生长发育和果实的成熟以及植物对逆境胁迫的响应等方面密切相关,在植物的生长发育和代谢活动中具有重要作用。
转化酶也是催化蔗糖降解的重要酶类,为细胞的可溶性糖类贮库提供可利用六碳糖,以用于细胞壁、贮藏多糖及果聚糖的生物合成,并通过与呼吸作用偶联的氧化磷酸化产生能量,还是控制淀粉合成的关键酶,测定转化酶活性对了解光合产物的贮存、转运及累积都有重要意义。
通过本实验要掌握三种酶的作用、酶活力测定的原理和方法、学习酶活力的计算方法,了解糖类水解。
二、实验原理1.蔗糖合成酶催化蔗糖的水解反应:蔗糖+UDP 果糖+UDPG。
2.转化酶催化蔗糖的水解反应:蔗糖+H2O—►葡萄糖+果糖。
根据催化反应所需的最适PH,可将转化酶分为两种:一种称为酸性转化酶,主要分布在液泡和细胞壁中,另一类转化酶称为碱性或中性转化酶,主要分布在细胞质中。
土壤蔗糖酶活性测定方法方法一:邻苯二甲酸二甲酯(OMPA)法1.实验原理:邻苯二甲酸二甲酯(OMPA)可通过蔗糖酶催化水解产生对甲酚背氧钠(PMS),PMS与p-苯醌反应生成紫色物质,紫色物质的光学密度与蔗糖酶活性呈正相关关系。
2.实验步骤:1) 准备土壤样品:将土壤样品通过2mm筛分获得<2mm的土壤颗粒,取适量土壤加入含有0.01mol/L可溶性蔗糖溶液的无磷酸钠缓冲液中制备土壤悬浮液。
2) 补充试剂:将0.5%邻苯二甲酸二甲酯(OMPA)和0.1mol/L乙酰胆碱溶液准备好。
3) 催化反应:取50ml土壤悬浮液加入50ml离心管中,加入0.5ml 邻苯二甲酸二甲酯(OMPA)溶液和0.5ml乙酰胆碱溶液,摇匀后放置于恒温水浴中,在37℃下培养2小时。
4) 停止反应:加入0.5ml冷却剂(10%w/v次氯酸钠和10%w/v硼酸混合物)停止反应。
5) 比色:每个试管取1ml反应液加入4ml氢氧化钠溶液,并通过pH 试纸调整pH值为7-8,然后以1ml/分钟的速度加入1mol/L硫酸,同时记录反应液的吸光度。
6)计算结果:根据吸光度计算出土壤中蔗糖酶的活性。
方法二:葡萄糖法1.实验原理:葡萄糖测定法使用试剂酚氨试剂和葡萄糖酸嵌合物的形成来测定土壤中蔗糖酶的活性。
葡萄糖酸嵌合物的形成量与蔗糖酶活性呈正相关关系。
2.实验步骤:1) 准备土壤样品:将土壤样品通过2mm筛分获得<2mm的土壤颗粒,取适量土壤加入含有0.3mol/L蔗糖溶液的无磷酸钠缓冲液中制备土壤悬浮液。
2) 补充试剂:准备好酚氨试剂和0.3mol/L葡萄糖溶液。
3) 催化反应:取2ml土壤悬浮液,加入2ml酚氨试剂和1ml葡萄糖溶液,放置于37℃恒温水浴中,培养2小时。
4) 停止反应:加入5ml冷却剂(20%醋酸和20%硼酸混合液)停止反应。
5) 比色:每个试管取4ml反应液加入10ml硫酸进行酸化,然后以每分钟加入2ml五氯酚酸溶液的速度加入到试管中,同时记录反应液的吸光度。
土壤蔗糖酶活性测定1.原理采用3,5-二硝基水杨酸比色法。
该方法以蔗糖为基质, 基质在土壤蔗糖酶作用下生成葡萄糖, 葡萄糖和3,5-二硝基水杨酸反应生成橙黄色的3-氨基-5-硝基水杨酸, 并在508nm波长下有最大吸光值。
2.测定方法①称取壤土0.15g、砂土0.3g、粘土0.1g风干土于10mL离心管中, 加入0.06 mL甲苯和1mL ph5.5磷酸缓冲液, 再加3mL 8%蔗糖溶液, 摇匀后加盖, 放进36~37℃的培养箱中进行培养24个小时;②培养完成后取出, 摇匀, 并于4000r/min离心5min;③取上层清液0.2ml于20ml玻璃管中, 并加入0.5ml3,5-二硝基水杨酸, 再立即将玻璃管沸水浴中加热5min, 加热完毕后在自来水流下冷却3min;④将显色液体用蒸馏水稀释到5ml, 在508nm波长下比色, 记录吸光值。
3.蔗糖酶标准曲线的测定方法(1)葡萄糖标准溶液的配制a.饱和苯甲酸溶液的配制在洁净的烧杯中加入适量蒸馏水, 慢慢加入少量苯甲酸同时用玻璃棒搅拌, 直至苯甲酸溶解的同时出现析出的苯甲酸晶体为止。
b.标准葡萄糖溶液的配制称取500mg葡萄糖溶解于适量苯甲酸饱和溶液中, 并取100ml容量瓶用苯甲酸饱和溶液定容(5mg/ml)。
(2).操作步骤a.取11支洁净20ml玻璃管编号0—10。
b.按下表加液编号: 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10葡萄糖母液(ml)0 0.005 0.01 0.015 0.02 0.025 0.03 0.04 0.05 0.06 0.07饱和苯甲酸(ml)0.2 0.195 0.19 0.185 0.18 0.175 0.17 0.16 0.15 0.14 0.13葡萄糖浓度(mg/ml)0 0.005 0.01 0.015 0.02 0.025 0.03 0.04 0.05 0.060.07吸光值(A508nm)0 0.05 0.117 0.227 0.31 0.392 0.49 0.666 0.839 1.0061.176c.在玻璃管中各加入0.5ml3,5-二硝基水杨酸溶液, 并立刻放入沸水浴中加热5min.加热后, 立刻将玻璃管在流动自来水下冷却3min.冷却完毕后, 用蒸馏水定容至5ml.d.将显色液在508nm波长下比色。