植物组织培养学论文

植物激素浓度和灭菌消毒时间对植物组织培养状况影响的探究一.植物祖师培养综述1.1概念植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞、原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。

狭义组织培养是指用植物各部分组织，如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株，也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织，愈伤组织再经过再分化形成再生植物。

1.2 研究历史19世纪30年代，德国植物学家施莱登和德国动物学家施旺创立了细胞学说，根据这一学说，如果给细胞提供和生物体内一样的条件，每个细胞都应该能够独立生活；1902年，德国植物学家哈伯兰特细胞全能性的理论是植物组培的理论基础。

1958年，一个振奋人心的消息从美国传向世界各地，美国植物学家斯蒂瓦特等人，用胡萝卜韧皮部的细胞进行培养，终于得到了完整植株，并且这一植株能够开花结果，证实了哈伯兰特在五十多年前关于细胞全能的预言。

近几十年来植物组织培养技术已经发展成为一项新兴无性繁殖技术。

1.3技术原理植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、不定根，最后形成完整的植株。

1.4培养特点1.4.1培养条件可以人为控制组培采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。

1.4.2生长周期短，繁殖率高组培是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求而提供不同的培养条件，因此生长较快。

另外，植株也比较小，往往20-30天为一个周期。

植物组织培养管理论文植物组织培养是一项重要的现代技术，它为植物繁殖和研究提供了有力的工具。

由于植物组织培养需要精密的操作和复杂的培养环境，因此，对于植物组织培养的管理不仅是一项必要的工作，更是保证培养质量的关键。

本文将讨论植物组织培养管理的重要性，以及如何实现高质量的组织培养。

一、植物组织培养管理的重要性植物组织培养管理对于保证培养品质和提高培养产量具有不可忽视的作用。

以下是植物组织培养管理的重要性：1. 保证培养质量植物组织培养中，培养基的成分和植物材料的来源、处理等诸多方面都会影响培养结果。

因此，对于培养环境的控制和维护非常重要。

包括消毒、环境温度和湿度等因素的调节，这些都是对培养质量的保障。

2. 提高培养产量植物组织培养超过单个细胞、组织或器官的生长和再生，目的是获得大量生产植株。

因此，对于培养条件的调控、管理以及后续的营养和生长阶段的管理，都至关重要。

3. 减少质量差异植物体细胞都是由相同的DNA贡献。

但在培养过程中，对于成分的变化和环境变化容易对植物细胞产生影响，这就导致培养品质差异的出现，包括营养、生长速度、形态等。

因此，对于培养条件、营养供应、组织均匀性等方面进行管理，减少培养品质差异非常必要。

二、植物组织培养管理的方式植物组织培养管理可以通过以下三个方面实现：1. 管理培养环境关于培养环境管理，保持适宜的温度、湿度以及灯光条件都非常重要。

对于培养室、培养器具等设备一定要保持清洁，并且防止因人员操作不当造成外界细菌侵入。

2. 管理培养营养对于营养的供应，最好是根据培养需要，在营养物浓度和种类的选择等方面进行一定的优化，以达到最佳外界环境与获得良好的成长和营养条件的肥料。

3. 管理培养过程关于培养过程管理，包括时间，以及培养物种类、数量、容器管理，以及后期的一些细节管理方面，保证培养物的生长平稳和高效率。

另外，定期更换营养液、检查培养物表面、观察生长情况等措施也是为了试验的成功实验，保证试验结果的准确性。

Liaoning Normal University（20--级）植物组织培养题目：果树组培研究进展学院：----学院姓名：----20--年--月果树组培研究进展摘要:基于组培苗的植物微嫁接技术广泛地应用于果树学的各项研究中。

本文探讨了组培苗微嫁接技术在果树中的主要应用，以为今后的转基因及育种工作提供参考。

关键词:果树组织培养应用生物技术在社会科技进步中发挥着越来越重要的作用，而组织培养技术则是生物技术的基本手段【1】。

植物组织培养是对细胞、组织的生长、分化及器官形态建成的规律进行研究的手段，它有力地推动了植物生理学、生物化学、遗传学、细胞学、形态学和农林等各类学科的发展和相互渗透【2】。

主要作用在于保存和交换珍稀濒危植物种质资源；加速世代繁殖，缩短育种周期，获得新基因型；促进幼胚发育，克服远缘杂交中的不亲和不育性等【3】植物组织培养指用无菌方法使植物体的离体器官、组织和细胞在人为提供的条件下生长和发育的所有培养技术的总称，也称之为离体培养或试管培养【4】。

近年来其在果树育种上的应用取得了较大进展，尤其在优良树种的快速繁育、种质保存和品种选育等许多领域得到了广泛应用，显示出巨大的潜力。

19世纪30年代，德国植物学家施莱登和德国动物学家施旺创立了细胞学说，根据这一学说，如果给细胞提供和生物体内一样的条件，每个细胞都应该能够独立生活；1902年，德国植物学家哈伯兰特细胞全能性的理论是植物组培的理论基础。

【5】1958年，一个振奋人心的消息从美国传向世界各地，美国植物学家斯蒂瓦特等人，用胡萝卜韧皮部的细胞进行培养，终于得到了完整植株，并且这一植株能够开花结果，证实了哈伯兰特在五十多年前关于细胞全能的预言。

植物组培的简单过程如下：剪接植物器官或组织——经过脱分化（也叫去分化）形成愈伤组织——再经过再分化形成组织或器官——经过培养发育成一颗完整的植株。

植物组培的大致过程是：在无菌条件下，将植物器官或组织（如芽、茎尖、根尖或花药）的一部分切下来，用纤维素酶与果胶酶处理用以去掉细胞壁，使之露出原生质体，然后放在适当的人工培养基上进行培养，这些器官或组织就会进行细胞分裂，形成新的组织。

植物组织培养技术【摘要】植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。

我分別从植物组织的培养方法、植物组织培养步骤、植物组织培养的优点来学习植物组织培养技术。

【关键词】植物组织培养、离体培养、试管苗、培养基植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。

植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。

一、植物组织的培养方法1、非试管微组织快繁非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。

一般植物7～15天可以生长出根系。

此技术投资低，操作环节少。

2、试管组织培养试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在试管等器皿中在无菌的条件下进行组织培养获得试管苗。

二、植物组织培养步骤1、培养材料的采集要根据培养目的适当选取材料，选择原则：易于诱导、带菌少。

要选取植物组织内部无菌的材料。

这一方面要从健壮的植株上取材料，不要取有伤口的或有病虫的材料。

另一方面要在晴天，最好是中午或下午取材料，决不要在雨天、阴天或露水未干时取材料。

因为健壮的植株和晴天光合呼吸旺盛的组织，有自身消毒作用，这种组织一般是无菌的。

培养材料的消毒从外界或室内选取的植物材料，都不同程度地带有各种微生物。

这些污染源一旦带人培养基，便会造成培养基污染。

因此，植物材料必须经严格的表面灭菌处理，再经无菌操作手续接到培养基上。

（一）试剂：乙醇、吲哚乙酸（ IAA）或 2 ，4 – D （生长素类似物）、氯化汞（升汞）或次氯酸钠、6- 苄基氨基腺嘌呤（ 6-BA ）MS 培养基、0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl（二）配制培养基（ 1 ）愈伤组织诱导培养基： MS 培养基（蔗糖含量为 10 g/L ， 2,4 – D 含量为 2 mg/L ，琼脂 10 g/L ）。

植物组织培养题目：烟草的再生姓名：专业班级：学号：指导老师：烟草的再生前言：植物组织培养是指用无菌方法使植物体的离体器官、组织和细胞在人为提供的条件下生长和发育的所有培养技术的总称，也称之为离体培养或试管培养。

植物体的每一个具有完整细胞核的细胞都具有该物种全部遗传的物质，在一定条件下具有发育成完整植物体的潜在能力，这就是植物细胞的全能性，这也是植物组织培养的理论基础。

组织培养材料可分为①器官：根、茎尖、叶、花、果实等；②组织：形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等；③细胞：大孢子、小孢子、体细胞；④原生质体。

因此按照组织培养的材料可将植物组织培养分为（1）组织、器官或细胞培养：指利用生物体各部分组织、器官或细胞进行离体培养，使之形成愈伤组织或完整有机体的技术。

（2）原生质体培样：指将微生物或植物细胞游离成原生质体，在适宜培养条件下，依据细胞全能性使其再生细胞壁，并进行细胞分裂分化，形成完整个体的技术。

一个细胞一旦沿着某一条特定的途径分化发育后，一般不会再回复到未分化状态，但在组织培养条件下，可能发生脱分化和再分化。

脱分化是将已分化的不分裂的静止细胞，放在培养基上培养后，细胞重新进入分裂状态。

一个成熟的细胞转变为分生状态的过程。

再分化是脱分化的组织或细胞在一定的培养条件下可转变为各种不同的细胞类型，形成完整植株的过程。

植物组织培养具有①培养条件可以人为控制；②生长周期短，繁殖率高；③管理方便，利于工厂化生产和自动化控制等特点。

植物组织培养过程为：一、实验目的：1.了解学习组织培养的基本操作过程。

2.实践母液的配制、培养基的配制。

二、实验材料试剂和实验仪器1.实验材料：烟草的叶片2.实验试剂：MS培养基母液所需的各类药品，蔗糖，琼脂，1mol/L的NaOH，70%酒精，升汞溶液，蒸馏水，无菌水3.实验仪器：无菌操作台，锥形瓶，镊子，解剖刀，酒精灯，电子天平，烧杯，高压蒸汽灭菌锅，刀片，培养皿，量筒，培养箱，牛皮纸，玻璃棒，漏斗，灭菌后的滤纸，棉线，电炉，PH试纸，冰箱，塑料瓶，移液管，洗耳球三、实验步骤（一）MS培养基的配制1.大量元素母液的配制（1）大量元素母液配制的方法无机盐中大量元素母液按照培养基配方的用量，用感量为0.01g的天平，分别用50mL烧杯称量，用蒸馏水溶解。

植物组织培养论文-植物学论文-生物学论文——文章均为WORD文档，下载后可直接编辑使用亦可打印——植物组织培养是指用植物各部分组织，如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株，本篇文章就向大家介绍几篇植物组织培养论文，希望对大家探讨植物组织培养时有所帮助。

植物组织培养论文参考阅读10篇之第一篇：浅谈林木植物组织培养技术中存在的问题及对策摘要：该文从褐化、玻璃化、生根困难、组培成本较高等方面分析了林木植物组织培养技术存在的主要问题，介绍了植物无糖组培技术，以期提升林木植物组织培养技术水平，为该领域的研究提供参考。

关键词：林木植物；组织培养技术；问题；对策；自细胞全能性理论于1902年被提出以来，人们对植物组织培养技术的研究已有100多年的历史，并且研究成果在不断增加，对细胞全能性理论的利用也越来越广泛。

长期以来，对于植物组织培养主要是从外植体方面进行相关的研究，同时也对完善培养基和提高增殖率方面加强了研究。

我国在研究植物组织培养的方面较早，最初在组培技术方面的利用是对欧洲赤松进行胚胎培养，20世纪70年代以后，一些研究成果已处于世界领先水平。

近年来，我国开始利用小型化的培养材料和试管苗，为在小空间培育出大量植物幼苗提供了条件。

组织培养最显著的特点是快,以1个茎尖或少量的叶片为基数，可以在组织培养下增殖10000~100000株/年。

目前，相较于花卉、草本植物，移植存活率更低、生长周期更长的林木植物在组培研究中受到褐化、玻璃化、生根困难、组培成本较高等因素的影响，需要通过相关研究解决这些难题。

1 林木植物组织培养存在的主要问题1.1 褐化褐化又被称为酚污染，出现这一情况不仅会影响培养组织的再分化，也会影响外植体脱分化，对林木植物的组织培养具有重要的影响。

褐化包括酶促褐化和非酶促褐化2个方面，通常酶促褐化是常见的病变。

在正常生长发育的植物组织细胞中，多酚类物质不会与多酚氧化酶接触，所以不存在褐化的问题。

菊花组织培养论文引言在植物组织培养领域，菊花（Chrysanthemum morifolium）是一个重要的研究对象。

菊花具有丰富的花色和形态的变异性，广泛用作观赏植物。

然而，菊花的繁殖方式繁琐且时间较长，限制了大规模繁衍菊花。

组织培养技术的引入为菊花的快速繁殖和改良提供了解决方案。

本论文旨在研究菊花的组织培养方法，以及组织培养对菊花生长和形态的影响。

材料与方法1. 实验材料•菊花离体组织：从菊花茎、根和叶中分离获得。

•培养基：含有适当激素和营养元素的MS培养基。

2. 组织培养方法1.材料消毒：将菊花组织浸泡在含有0.1%次氯酸钠的消毒液中，连续搅拌10分钟。

2.组织分离：使用无菌工具将经消毒的菊花茎、根和叶切割成小块。

3.转接至培养基：将切割好的菊花组织转移到含有MS培养基的培养皿中。

4.培养条件：在光照强度为2500 lux、温度为25℃的无菌培养室中培养。

3. 观察和测量指标•菊花组织是否存活：观察培养基中组织的颜色和形态的变化。

•菊花组织生长指标：测量组织的增长速度和鲜重。

结果1. 组织存活情况经过观察，菊花茎和叶的存活率高，颜色鲜绿，软硬适中；而菊花根的存活率较低，颜色较暗，质地较硬。

根据这些观察结果，我们选择茎和叶作为菊花组织培养的优选材料。

2. 菊花组织生长情况菊花组织在MS培养基中呈现良好的生长趋势。

初始培养后的菊花茎和叶组织在第4周开始发芽，生长速度逐渐加快，到第8周达到最大鲜重。

然后，鲜重稳定，在第12周后稍有下降。

菊花根组织的生长速度较慢，到第8周才开始发芽，但鲜重相对稳定，在第12周后也有轻微下降。

讨论通过本研究，我们成功地建立了菊花的组织培养方法，为菊花的快速繁殖提供了解决方案。

从实验结果可以看出，菊花茎和叶组织在培养基中的生长情况较好，适合用于大规模繁衍菊花。

而菊花根组织的生长速度较慢，不适合用于菊花的组织培养。

这些结果对于菊花的组织培养技术的进一步优化和应用具有重要的参考价值。

植物组织培养论文第一篇论文植物组织培养班级：生物技术112组别：第六组姓名：蔡静波摘要：近些年来玉米组织培养技术发展十分迅速，玉米组织培养技术作为一种新型的科研技术，越来越受到人们的重视。

浅谈植物组织培养技术的基本原理、意义及面临的一些问题，综述了玉米子房和幼胚系统的组织培养研究、玉米茎尖和根尖离体培养研究和玉米花粉和花药培养研究。

关键词：组织培养；原理；玉米1 植物组织培养1.1 植物组织培养的意义植物组织培养首先不仅可以生产大量的优良无性系，而且可以获得人类需要的多种代谢物质；其次，细胞融合可打破种属间的界限，克服远缘杂交不亲和性障碍，在植物新品种的培育和种性的改良中发挥着巨大的作用；再次，还可获得单倍体、三倍体及其它多倍体、非整倍体；最后，组织培养的植物细胞也成为在细胞水平上分析研究的理想材料。

1.2 植物组织培养的基本原理植物组织细胞培养的依据是植物细胞的全能性和再生作用。

1902 年，德国著名植物学家G Haberlanclt 根据细胞学理论，大胆地提出了高等植物的器官和组织可以不断分割，直到单个细胞，即植物体细胞，在适当的条件下，具有不断分裂和繁殖，发育成完整植株的潜力的观点。

织培养选用的基础培养基有MT 、MS 、SH 、White 、N6等，由于不同种类植物所需要的生长条件有所不同，有的培养基要作一些改良，有的要选择专用培养基，但是一般采用较多的是MS 。

组织培养采用固体培养基的比较多，但固体培养基只有在植物的周围的营养物和激素被吸收，而大多数的物质还残留在培养基里，如果这些培养基还能被利用，对工厂化生产的减少成本方面有很大的帮助。

杜勤仁等在无外源激素条件下，研究液体和固体培养基对黄瓜子叶培养器官分化的影响，结果用液体培养基直接诱导花芽率更高，分化高峰期出现的时间也更早。

这也说明了液体培养基对外植体的生长更有利，只是固体培养基在操作上更方便，被较广泛应用。

胚性愈伤组织比非胚性愈伤组织具有更强的生长能力、胚胎发生能力和相对较高的同工酶活性，而形成胚状体再分化出植株比形成愈伤组织再形成植株要更容易。

兰花的组织培养xx生物科学 xxx 指导教师 xx学号 xxxxxxxxxx摘要：组织培养是先进的无性繁殖方法。

取用植物器官或组织的一小部分，脱离母体而加以培养，经过诱导和分化，使它再生成独立的新植株。

也称为外植体培养。

关键词：植物组织培养兰花植物快速繁殖早在1902年，德国植物学家哈巴兰特（Haberlandt）预言：“植物细胞具有全能性，每个细胞都像胚胎细胞那样，可以经过体外培养成为一个完整的植株。

”在这个假说指引下，法国科学家戈第勒（Gautheret）和诺贝库特（Nobecourt）用小块的胡萝卜根，于1938年成功地在试管中用培养基培养出愈伤组织。

1939年，美国科学家怀特（White）用烟草茎段形成层进行组织培养和继代培养，也获得成功。

他们的工作为植物细胞和组织培养技术的发展奠定了基础。

1949年，美国斯库格（Skooog)等又从愈伤组织中分化出幼苗来，培养出了真正的试管植物。

从此之后，组织培养的技术，不断创新改进，在实验上和应用上都获得日新月异的进展。

兰花的茎尖组织培养，最早是法国人葛雷尔（Morel）在1960年获得成功的。

他利用茎尖培养的目的是想除去兰属植物上的病毒，他得到了无病毒的幼苗。

他发现兰属茎尖培养，可逐渐增大而形成类原球茎体，与兰花胚胎正常发育相似，经过分割，重复培养可以大量增殖。

按照理论计算，l个外植体在1年之内可产生400万株苗之多。

从此，组织培养技术被应用于兰花的繁殖，多年来形成了兰花的工厂化、商品化的生产。

目前，兰花的各个部位，各个器官，即根、茎、叶、芽、花序、幼胚等都可以作为外植体进行培养。

组织培养要有必要的设备和比较高的技术措施。

首先要有培养室、无菌接种室及各种培养用具、用品等。

在培养时要先配制培养基，剥取外植体，然后消毒、接种、转移，最后试管苗移植等，都需要比较复杂和细致的技术。

现将组织培养的方法简介如下。

1培养基的配制培养基是用各种不同成分和剂量的元素，加上各种维生素、激素等制成。

生菜组织培养技术论文学院：生命科学学院专业: 2013级生物科学学号: 201312200501003姓名: 方来前言：生菜（Romaine Lettuce）属菊科莴苣属，为一年生或二年生草本作物，因其生长快、栽培容易、产量高、鲜食口感好而广受欢迎。

生菜中含有丰富的营养成分，其中富含B族维生素和维生素C、E等，含水量很高，而且最突出的特点就是超级低脂。

生菜此外富含膳食纤维以及多种矿物质生菜，对于人的消化系统大有裨益。

它也可以促进胃肠道的血液循环，对于脂肪、蛋白质等大分子物质，能够起到帮助消化的作用。

另外对于胆汁的形成也有促进作用，并且可以为血液消毒。

生菜的子叶、叶片离体培养容易，再生率和转化率较高，我们选择生菜作为研究植物组织培养技术的材料，为进一步研究生菜的生理效应做基础。

1. 材料与方法实验材料：生菜种子试剂：MS培养基2,4-D 6-BA NAA实验方法生菜种子的消毒→种子在MS培养基上培养生芽→外植体→诱导愈伤组织→分化成完整植株种子的消毒培养75 %的酒精表面消毒30s，无菌水冲洗2次，再用0.1%升汞消毒8min，无菌水冲洗4~6次[1]。

将消过毒的种子在无菌条件下接种到MS固体培养基中，放入4~5℃冰箱中催种24 h，再放入温度为25℃，每日光照16h，光照强度为2000 lx 的培养室中培养，1~2 d 后种子萌发[2]。

外植体诱导愈伤组织摘要：选用较粗壮的茎和肥硕的叶作为外植体，以MS为基本培养基，附加不同激素的配比，经愈伤组织诱导、芽分化、生根 3 个步骤的离体培养，建立生菜快速、高频再生体系，进行组织培养技术的研究。

利用植物激素6-BA、NAA、不同浓度配比对愈伤组织作用不同，从而研究何种浓度配比下愈伤组织诱导生成芽的概率大小。

预计最佳诱导外植体分化培养基为MS+0.15 mg/L 6-BA + 0.2 mg/L NAA，出愈率达到100 %，出芽率达到87 %。

待真叶长出后10 d，取无菌真叶作为外植体进行诱导培养。