实验一 细菌感受态的制备和质粒的转化.

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实验一细菌感受态的制备和质粒的转化

实验目的

通过实验学会感受态细胞的制备方法和DNA转化的最基本操作,以及如何提高转化效率的思路。本实验综合因素较多,难度较大,是分子生物学中的一个很关键的实验手段。

实验原理

转化是指某一细胞系由于接受了外源DNA,而导致其原来的遗传性状发生改变,这种遗传性状包括遗传型和表型的改变。

感受态是受体菌能接受外源DNA能力的一种生理状态。用CaCl2处理细菌,改变细胞膜的结构,使质粒DNA能够穿过细菌细胞膜进入细胞。然后在选择性培养基中培养转化处理过的细菌,转化成功的细菌可以在选择性培养基上生长形成菌落。

本实验采用质粒pUC118转化大肠杆菌DH-5 ,通过氨苄青霉素抗性筛选转化子。

图1-1质粒pUC118/pUC119图谱

实验材料和试剂

(一)实验材料

大肠杆菌DH-5α

质粒pUC118(ampicillin,Amp R

(二)培养基和试剂

1. LB液体培养基(%)

胰蛋白胨(Tryptone)0.5

酵母浸出粉(Yeast extract)1.0

NaCl 0.5

pH 7.2~7.4(用2mol/L NaOH调节)

(分装:20ml/250ml三角瓶,每组2瓶。3ml/试管,每组2管。0.07Mpa 高压灭菌30分钟)。

2. LB固体培养基

LB液体培养基加入1.6%的琼脂粉即可。

(分装:50ml/250ml三角瓶,加入0.8克琼脂粉,每组1瓶。0.07Mpa 高压灭菌30分钟)。

3. 抗生素:氨苄青霉素(ampicillin,,Amp),配制成100mg/ml备用。

4. 0.1mol/L CaCl2溶液

(配制方法:称取1.1克无水CaCl2,溶于90ml蒸馏水中,定容至100ml,装于250ml三角瓶中,0.07Mpa高压灭菌30分钟,4℃保存。)(三)器材

接种针10ml移液管

50ml塑料离心管5ml移液管

90mm培养皿1ml移液管

1.5ml Eppendorf管200μl吸头

三角爬15×150试管

冰块试管铝帽

牛皮纸纱布盖

线绳硫酸纸

(四)仪器

净化工作台摇床机

恒温水浴锅离心机

培养箱

实验步骤

以下均需无菌操作

(一)感受态细胞的制备

1. 大肠杆菌DH-5α冷冻保存的菌种,挑取一环,划线接种在LB固体培养基平板上(活化菌种),37℃培养过夜(约16小时)。

2. 从长好的平板上挑取一个单菌落,转接在含有3ml LB液体培养基的试管中,37℃振荡培养过夜(约16小时)。

3. 取0.3ml菌液接种于20ml LB液体培养基的250ml三角瓶中,37℃振荡培养2~3小时,待OD600值达到0.3~0.4时,取下三角瓶,立即置冰浴10~15 分钟。

4. 将细菌转移到一个灭菌的50ml离心管中,4℃3000r/min离心10分钟,弃去上清液(尽可能将所有的上清液去净),收集菌体。

5. 加入20ml用冰预冷的0.1mol/L CaCl2溶液,重新悬浮菌体,使菌体分散均匀,置冰浴中30分钟。

6. 4℃3000r/min离心10分钟,弃去上清液(尽可能将所有的上清液去净)。

7. 再加入2ml用冰预冷的0.1mol/L CaCl2溶液,小心重新悬浮菌体(操作要轻)。在4℃冰箱中放置12~24小时,即可应用于DNA转化。

(二)细菌的转化

1. 取大肠杆菌DH-5α新鲜感受态细胞100μl于1.5ml Eppendorf管中,加入50~100ng质粒pUC118 DNA,轻轻旋转以混合内容物,在冰浴中放置30分钟。

2. 42℃热休克120秒,不要摇动Eppendorf管。

3. 加入LB液体培养基900μl,37℃保温60分钟。

4. 取100μl转化液涂布在含氨苄青霉素(Amp)100 μg/ml的LB固体平板上,37℃倒置培养16~24小时。

5.观察平板,长出的菌落可能就是转化子,可进一步提取质粒鉴定。

【提示】

实验操作中注意的问题

1. DNA与感受态细胞混合后,一定要在冰浴条件下操作,如果温度时高时低,转化效率极差。

2. Eppendorf管盖紧,以免反应液溢出或外面水进入而污染。

3. 42℃热处理时很关键,转移速度要快,但温度要准确。

4. 涂布转化液时,要避免反复来回涂布,因为感受态细菌的细胞壁有了变化,过多的机械挤压涂布会使细胞破裂,影响转化率。

【思考题】

1.制备感受态细胞的关键是什么?

2.如果DNA转化后,没有得到转化子或者转化子很少,分析原因。

3.如何提高转化效率?